WO2020262150A1 - 脂質ナノ粒子 - Google Patents

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原島　秀吉
イクラミ アブデルラヒム カリル イブラヒム
誠悟 木村
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Definitions

  • the lipid nanoparticles according to the present invention can highly express the encapsulated gene in the spleen. Therefore, the lipid nanoparticles are useful as spleen-specific gene delivery carriers used in immunotherapy and gene therapy.
  • [DODAP / (DODAP + DOPE)] is preferably 15 to 75 mol%. More preferably, it is ⁇ 60 mol%.
  • [DODAP / (DODAP + DOPE)] is preferably 44 to 65 mol%. It is more preferably 45 to 63 mol%, further preferably 47 to 60 mol%.
  • the lipid nanoparticles can be surface-modified with an oligosaccharide compound having 3 or more sugars.
  • the type of oligosaccharide compound having 3 or more sugars is not particularly limited, but for example, an oligosaccharide compound in which about 3 to 10 sugar units are bound can be used, and preferably about 3 to 6 sugar units are bound. Oligosaccharide compounds can be used.
  • the size of the lipid nanoparticles according to the present invention is preferably 400 nm or less, and the average particle size is preferably 400 nm or less, because high delivery efficiency can be easily obtained for spleen cells existing in a relatively deep part in the living body. Is more preferably 300 nm or less.
  • the average particle size of the lipid nanoparticles means the number average particle size measured by a dynamic light scattering (DLS) method. The measurement by the dynamic light scattering method can be performed by a conventional method using a commercially available DLS apparatus or the like.
  • the lipid nanoparticles according to the present invention preferably contain the target component to be delivered into the target cell inside the particles covered with the lipid film.
  • the component contained in the lipid nanoparticles according to the present invention is not particularly limited as long as it can be included in the particles, and the lipid nanoparticles according to the present invention include nucleic acids, sugars, peptides, and the like. Any substance such as a low molecular weight compound and a metal compound can be encapsulated.
  • the nucleic acid to be encapsulated in the lipid nanoparticles according to the present invention is preferably a nucleic acid containing a foreign gene for expression in a target cell, and is a nucleic acid that functions to express the foreign gene in the cell by being incorporated into the cell. More preferably.
  • the foreign gene may be a gene originally contained in the genomic DNA of a target cell (preferably a spleen cell), or may be a gene not contained in the genomic DNA.
  • Examples of such a nucleic acid include a gene expression vector containing a nucleic acid having a base sequence encoding a gene of interest to be expressed.
  • the gene expression vector may be present as an extrachromosomal gene in the introduced cell, or may be incorporated into genomic DNA by homologous recombination.
  • composition of the aqueous solvent is not particularly limited, and examples thereof include buffer solutions such as phosphate buffer solution, citrate buffer solution, and phosphate buffered saline solution, physiological saline solution, and a medium for cell culture. Can be done.
  • disaccharides such as maltose, trisaccharides such as raffinose and mereginose, polysaccharides such as cyclodextrin, and sugars (aqueous solution) such as sugar alcohols such as erythritol, xylitol, sorbitol, mannitol, and martitol.
  • sugars aqueous solution
  • sugar alcohols such as erythritol, xylitol, sorbitol, mannitol, and martitol.
  • FIGS. 8B and 8C are diagram showing the results of lipid nanoparticles having a total amount of DODAP and DOPE of 70 mol% based on the total amount of lipids
  • FIG. 8C shows the results of lipid nanoparticles having a total amount of DODAP and DOPE of 60 mol% based on the total amount of lipids. It is a figure which showed the result of a particle.
  • FIG. 8A is a diagram showing the results of FIG.
  • lipid nanoparticles (hereinafter, may be referred to as "DODAP / DOPE-pOVA") produced by the same method as in Example 6 except that pOVA is encapsulated instead of pLuc are used per animal.
  • C57BL / 6J mice female were administered so that the pOVA dose was 30 ⁇ g, and 5.0 ⁇ 10 5 EG7-OVA cells per animal were subcutaneously transplanted.
  • the prophylactic antitumor effect of the lipid nanoparticles was evaluated by monitoring the tumor volume for 30 days after tumor cell transplantation.
  • Example 8 5.0 ⁇ 10 5 EG7-OVA cells were subcutaneously transplanted into C57BL / 6J mice (female), and engraftment of EG7-OVA cells was confirmed. On the 7th, 10th, and 14th days after the subcutaneous transplantation, DODAP / DOPE-pOVA was intravenously administered to the tail vein so that the pOVA dose per animal was 30 ⁇ g. After subcutaneous transplantation, the tumor volume was monitored for 24 days to evaluate the therapeutic antitumor effect of the lipid nanoparticles.

Abstract

脾臓に選択的に送達可能な遺伝子送達キャリアとなる脂質ナノ粒子は、ＤＯＤＡＰ（１，２－ジオレオイル－３－ジメチルアミノプロパン）とＤＯＰＥ（１，２－ジオレオイル－ｓｎ－グリセロ－３－ホスフォエタノールアミン）と、を含有しており、ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの含有量の和に対するＤＯＤＡＰの含有量の割合が１０～７５モル％であり、脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対する、ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの含有量の和の割合が６０～８８モル％である。

Description

脂質ナノ粒子
　本発明は、脾臓に選択的に送達可能な遺伝子送達キャリアとして有用な脂質ナノ粒子に関する。
　本願は、２０１９年６月２４日に、日本に出願された特願２０１９－１１６５９４号に基づき優先権を主張し、その内容をここに援用する。
　遺伝子治療は、従来の低分子医薬や抗体医薬が治療対象とすることができなかった遺伝子やタンパク質を標的可能であり、次世代の各種難治性疾患に対する治療法として期待されている。遺伝子治療の実現には、治療用遺伝子を標的細胞へ導入するためのベクターが必要であり、ウイルスベクターと非ウイルスベクターに大別される。遺伝子発現の高効率性から、遺伝子治療における多くの臨床試験ではウイルスベクターが用いられている（例えば、非特許文献１参照。）。しかし、高い免疫原性や毒性、大量製造が難しいといった問題がある。特に、ウイルスベクター由来の免疫応答による死亡例や重篤な副作用が報告されてから（非特許文献２又は３参照。）、より安全で容易に製造可能な非ウイルスベクターの開発が望まれている。
　２０１２年に最初の遺伝子治療薬となる「Ｇｌｙｂｅｒａ」が欧州で販売承認された。これに続いて「ＩＭＬＹＧＩＣ」、「Ｓｔｒｉｍｖｅｌｉｓ」、及び「Ｚａｌｍｏｘｉｓ」の販売が欧州で承認されている。また、近年注目を浴びているＣＡＲ－Ｔ療法も承認されている。しかし、いずれの治療薬もウイルスベクターを用いており、遺伝子導入もｅｘ　ｖｉｖｏ又は局所投与で行われている。Ｅｘ　ｖｉｖｏでの遺伝子導入には、標的細胞の採取、培養操作、遺伝子導入など多くの過程が存在し、実用的、規制的なハードルが高い。また、局所投与は、体の深部になると侵襲性が高くなり、患者への負担が大きくなる。これらの過程が必要ない全身投与（静注型）ｉｎ　ｖｉｖｏ遺伝子導入は、非常に魅力的であるが、ウイルスベクターの全身投与は先述した免疫原性や、臓器特異性の面で難しい。これに対して、非ウイルスベクターは、全身投与による毒性が少ない。そこで、リポソームやミセルなど様々なキャリアを用いて、非ウイルスベクターによる臓器特異的な遺伝子導入の研究がなされている（例えば、非特許文献４又は５参照。）。
　一方で、脂溶性薬物や、ｓｉＲＮＡ（short interfering RNA）又はｍＲＮＡ等の核酸を封入し、標的細胞へ送達するためのキャリアとして、脂質ナノ粒子（ＬＮＰ）が利用されている。例えば、ｓｉＲＮＡなどの核酸を効率的に標的細胞内へ送達するためのキャリアとなる脂質ナノ粒子として、ｐＨ感受性カチオン性脂質を構成脂質として含む脂質ナノ粒子が報告されている（特許文献１）。また、肝臓特異的に高い遺伝子発現を示す脂質ナノ粒子も報告されている（非特許文献６参照。）。
国際公開第２０１８／２３０７１０号
Lukashev et al., Biochemistry. Biokhimiia, 2016, vol.81, p.700-708. Marshall, Science, 1999, vol.286, p.2244-2245. Hacein-Bey-Abina et al., Science, 2003, vol.302, p.415-419. Yin et al., Nature Reviews Genetics, 2014, vol.15, p.541-555. Yellepeddi et al., Austin Therapeutics, 2015, vol.2(1), id1014. Khalil et al., Journal of Controlled Release, 2011, vol. 156(3), p.374-380.
　肝臓は、その血管構造や解剖学的生理学的性質から、全身投与したキャリアのアクセスが容易である。このため、肝臓を標的とした遺伝子送達キャリアの報告は多い。一方で、肝臓以外の臓器で特異的に遺伝子発現を達成するキャリアは依然として少ない。肝臓以外の特定の臓器に選択的に送達可能な遺伝子送達キャリアの開発が、全身投与型遺伝子治療実現のために重要である。
　脾臓は、血液濾過機能と免疫システムを担う重要な臓器である。脾臓には、Ｂ細胞、樹状細胞、マクロファージ等の多くの免疫細胞が存在しており、免疫治療や遺伝子治療の標的臓器として好ましい。そこで、本発明は、脾臓に選択的に送達可能な遺伝子送達キャリアとなる脂質ナノ粒子を提供することを目的とする。
　本発明者らは、脂質ナノ粒子を構成する脂質成分として１，２－ジオレオイル－３－ジメチルアミノプロパン（ＤＯＤＡＰ）と１，２－ジオレオイル－ｓｎ－グリセロ－３－ホスフォエタノールアミン（ＤＯＰＥ）を特定の比率となるように含有する脂質ナノ粒子が、脾臓特異的に高発現する遺伝子送達キャリアとして有用であることを見出し、本発明を完成させた。
　すなわち、本発明は、以下の脂質ナノ粒子を提供するものである。
［１］　ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥを含有しており、
　ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの含有量の和に対するＤＯＤＡＰの含有量の割合が、１０～７５モル％であり、
　脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対するＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの含有量の和の割合が、６０～８８モル％である、脂質ナノ粒子。
［２］　前記脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対するＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの含有量の和の割合が、６５～８８モル％であり、
　ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの含有量の和に対する、ＤＯＤＡＰの含有量の割合が１５～７５モル％である、前記［１］の脂質ナノ粒子。
［３］前記脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対するＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの含有量の和の割合が、６０～６５モル％であり、
　ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの含有量の和に対する、ＤＯＤＡＰの含有量の割合が４４～６５モル％である、前記［１］の脂質ナノ粒子。
［４］　さらに、ステロール及びポリアルキレングリコール修飾脂質を含有しており、前記脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対する、前記ポリアルキレングリコール修飾脂質の割合が１～３モル％である、前記［１］～［３］のいずれかの脂質ナノ粒子。
［５］　核酸をさらに含有する、前記［１］～［４］のいずれかの脂質ナノ粒子。
［６］　前記核酸が、脾臓細胞内で発現させる遺伝子である、前記［５］の脂質ナノ粒子。
［７］　前記［１］～［６］のいずれかの脂質ナノ粒子を有効成分とする、医薬用組成物。
［８］　免疫治療又は遺伝子治療に用いられる、前記［７］の医薬用組成物。
［９］　前記［１］～［６］のいずれかの脂質ナノ粒子であって、脾臓細胞内で発現させる目的の外来遺伝子を封入した脂質ナノ粒子を、被験動物（但し、ヒトを除く）へ投与し、前記被験動物の脾臓内で前記外来遺伝子を発現させる、外来遺伝子の発現方法。
　本発明に係る脂質ナノ粒子は、封入された遺伝子を脾臓内で高発現させることができる。このため、当該脂質ナノ粒子は、免疫治療や遺伝子治療に用いられる脾臓特異的遺伝子送達キャリアとして有用である。
実施例１において、ｐＬｕｃを封入した各脂質ナノ粒子を、ＨｅＬａ細胞に取り込ませてルシフェラーゼ活性を測定した結果を示した図である。 実施例１において、ｐＬｕｃを封入した各脂質ナノ粒子を投与したマウスにおける、各臓器のルシフェラーゼ活性を測定した結果を示した図である。 実施例１において、各脂質ナノ粒子の単位質量当たりの臓器移行量（投与量に対する各臓器への移行量の割合（％）を臓器質量（ｇ）で補正した値）の測定結果を示した図である。 実施例１において、各脂質ナノ粒子の臓器移行後の遺伝子発現効率（［遺伝子発現活性］／［臓器移行量］）の測定結果（Ｂ）を示した図である。 実施例２において、ｐＬｕｃを封入した各脂質ナノ粒子を投与したマウスにおける、各臓器のルシフェラーゼ活性を測定した結果を示した図である。 実施例２において、各脂質ナノ粒子の単位質量当たりの臓器移行量の測定結果を示した図である。 実施例２において、各脂質ナノ粒子の臓器移行後の遺伝子発現効率（［遺伝子発現活性］／［臓器移行量］）の測定結果（Ｂ）を示した図である。 実施例３において、ｐＬｕｃを封入した各脂質ナノ粒子を投与したマウスにおける、各臓器のルシフェラーゼ活性を測定した結果を示した図である。 実施例３において、各脂質ナノ粒子の単位質量当たりの臓器移行量の測定結果を示した図である。 実施例３において、各脂質ナノ粒子の臓器移行後の遺伝子発現効率（［遺伝子発現活性］／［臓器移行量］）の測定結果（Ｂ）を示した図である。 実施例４において、ｐＬｕｃを封入し、ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの含有比率の異なる各脂質ナノ粒子をマウスに投与し、各臓器のルシフェラーゼ活性を測定した結果を示した図である。 図３における結果について、ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの含有比率ごとに示した図であり、全脂質量に対するＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの総量が８５モル％の脂質ナノ粒子を投与したマウスにおける、各臓器のルシフェラーゼ活性を測定した結果を示した図である。 実施例５において、ｐＬｕｃを封入し、全脂質量に対するＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの総量が７０モル％の脂質ナノ粒子を投与したマウスにおける、各臓器のルシフェラーゼ活性を測定した結果を示した図である。 実施例５において、ｐＬｕｃを封入し、全脂質量に対するＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの総量が６０モル％の脂質ナノ粒子を投与したマウスにおける、各臓器のルシフェラーゼ活性を測定した結果を示した図である。 実施例６において、ｐＬｕｃを封入した脂質ナノ粒子を投与したマウスにおける、各臓器のルシフェラーゼ活性を測定した結果を示した図である。 実施例６において、ＤｉＤ修飾された脂質ナノ粒子をマウスへ投与し、脾臓内分布を調べた結果を示した図である。 実施例６において、ＤｉＤ修飾された脂質ナノ粒子を投与したマウスの脾臓内の４種の細胞（Ｔ細胞、Ｂ細胞、樹状細胞及びマクロファージ細胞）の全量のＤｉＤ蛍光強度を１００％とした時の各細胞の相対ＤｉＤ蛍光強度（％）を示した図である。 実施例６において、ＤｉＤ修飾された脂質ナノ粒子を投与したマウスの脾臓内の４種の各細胞におけるＤｉＤ蛍光陽性細胞の比率（％）を示した図である。 実施例７において、各脂質ナノ粒子を投与したマウスに、ＥＧ７－ＯＶＡを皮下移植し、腫瘍体積をモニタリングした結果を示した図である。 実施例８において、ＥＧ７－ＯＶＡを皮下移植したマウスに、各脂質ナノ粒子を投与し、腫瘍体積をモニタリングした結果を示した図である。 実施例９において、各脂質ナノ粒子を投与したマウスの血清中の各種サイトカインを測定した結果を示した図である。
　以下、本発明の実施態様について具体的に説明する。本願明細書において、「Ｘ１～Ｘ２（Ｘ１とＸ２は、Ｘ１＜Ｘ２を満たす実数）」は、「Ｘ１以上Ｘ２以下」を意味する。
　本発明に係る脂質ナノ粒子は、ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥを含有しており、ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの含有量の和に対するＤＯＤＡＰの含有量の割合（［ＤＯＤＡＰ（モル）］／（［ＤＯＤＡＰ（モル）］＋［ＤＯＰＥ（モル）］）×１００％）（以下、「DODAP/(DODAP+DOPE)]」と表すことがある。）が、１０～７５モル％であり、脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対するＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの含有量の和の割合（（［ＤＯＤＡＰ（モル）］＋［ＤＯＰＥ（モル）］）／［脂質ナノ粒子を構成する全脂質（モル）］×１００％）（以下、「[(DODAP+DOPE)/Total]」と表すことがある。）が、６０～８８モル％である。本発明に係る脂質ナノ粒子は、脾臓特異的な遺伝子発現活性が高い。このため、本発明に係る脂質ナノ粒子は、脾臓細胞を標的細胞とする遺伝子発現キャリアとして非常に有用である。
　本発明に係る脂質ナノ粒子において[(DODAP+DOPE)/Total]が６５～８８モル％の場合には、[DODAP/(DODAP+DOPE)]は１５～７５モル％であることが好ましく、１５～６０モル％であることがより好ましい。
　本発明に係る脂質ナノ粒子において、[(DODAP+DOPE)/Total]が６０～６５モル％の場合には、[DODAP/(DODAP+DOPE)]は４４～６５モル％であることが好ましく、４５～６３モル％であることがより好ましく、４７～６０モル％であることがさらに好ましい。
　本発明に係る脂質ナノ粒子の構成脂質のうち、ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥ以外の脂質としては、一般的にリポソームを形成する際に使用される脂質を用いることができる。このような脂質としては、例えば、リン脂質、ステロール、又は飽和若しくは不飽和の脂肪酸等が挙げられる。これらは１種又は２種以上を組み合わせて用いることができる。
　リン脂質としては、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジルグリセロール、セラミドホスフォリルグリセロールホスファート、ホスファチジン酸などを挙げることができる。
　ステロールとしては、例えば、コレステロール、コレステロールコハク酸、ラノステロール、ジヒドロラノステロール、デスモステロール、ジヒドロコレステロール等の動物由来のステロール；スチグマステロール、シトステロール、カンペステロール、ブラシカステロール等の植物由来のステロール（フィトステロール）；チモステロール、エルゴステロール等の微生物由来のステロールなどが挙げられる。
　本発明に係る脂質ナノ粒子としては、ステロールを含むことが好ましく、コレステロールを含むことがより好ましい。
　本発明に係る脂質ナノ粒子は、脂質成分としてポリアルキレングリコール修飾脂質を含有することが好ましい。ポリアルキレングリコールは親水性ポリマーであり、ポリアルキレングリコール修飾脂質を脂質膜構成脂質として用いて脂質ナノ粒子を構築することにより、脂質ナノ粒子の表面をポリアルキレングリコールで修飾することができる。ポリアルキレングリコールで表面修飾することにより、脂質ナノ粒子の血中滞留性などの安定性を高めることができる場合がある。
　ポリアルキレングリコールとしては、例えば、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、ポリテトラメチレングリコール、ポリヘキサメチレングリコールなどを用いることができる。ポリアルキレングリコールの重量平均分子量は、例えば３００～１０，０００程度、好ましくは５００～１０，０００程度、さらに好ましくは１，０００～５，０００程度である。
　例えば、脂質のポリエチレングリコールによる修飾には、ステアリル化ポリエチレングリコール（例えばステアリン酸PEG45(STR-PEG45)など）を用いることができる。その他、N-[カルボニル－メトキシポリエチレングリコール-2000]-1,2-ジパルミトイル-sn-グリセロ-3-ホスフォエタノールアミン、n-[カルボニル-メトキシポリエチレングリコール-5000]-1,2-ジパルミトイル-sn-グリセロ-3-ホスフォエタノールアミン、N-[カルボニル-メトキシポリエチレングリコール-750]-1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスフォエタノールアミン、N-[カルボニル-メトキシポリエチレングリコール-2000]-1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスフォエタノールアミン、N-[カルボニル-メトキシポリエチレングリコール-5000]-1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスフォエタノールアミン、1,2-ジミリストイル-rac-グリセロ-3-メトキシポリエチレングリコール-2000（ＰＥＧ－ＤＭＧ）などのポリエチレングリコール誘導体などを用いることもできるが、ポリアルキレングリコール化脂質はこれらに限定されることはない。
　本発明に係る脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対する、ポリアルキレングリコール修飾脂質の割合は、ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥによる脾臓特異的遺伝子発現活性を損なわない量であれば特に限定されるものではない。例えば、脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対する、ポリアルキレングリコール修飾脂質の割合は、１～３モル％とすることが好ましい。
　本発明に係る脂質ナノ粒子には、必要に応じて適宜の表面修飾などを行うことができる。
　本発明に係る脂質ナノ粒子は、表面を親水性ポリマー等で修飾することにより、血中滞留性を高めることができる。これらの修飾基で修飾された脂質を脂質ナノ粒子の構成脂質として使用することにより、表面修飾を行なうことができる場合もある。
　本発明に係る脂質ナノ粒子の製造にあたり、血中滞留性を高めるための脂質誘導体として、例えば、グリコフォリン、ガングリオシドＧＭ１、ホスファチジルイノシトール、ガングリオシドＧＭ３、グルクロン酸誘導体、グルタミン酸誘導体、ポリグリセリンリン脂質誘導体などを利用することもできる。
　また、血中滞留性を高めるための親水性ポリマーとして、ポリアルキレングリコールのほかにデキストラン、プルラン、フィコール、ポリビニルアルコール、スチレン－無水マレイン酸交互共重合体、ジビニルエーテル－無水マレイン酸交互共重合体、アミロース、アミロペクチン、キトサン、マンナン、シクロデキストリン、ペクチン、カラギーナンなどを表面修飾に用いることもできる。
　また、本発明に係る脂質ナノ粒子の核内移行を促進するために、例えば、脂質ナノ粒子を３糖以上のオリゴ糖化合物で表面修飾することもできる。３糖以上のオリゴ糖化合物の種類は特に限定されないが、例えば、３～１０個程度の糖ユニットが結合したオリゴ糖化合物を用いることができ、好ましくは３～６個程度の糖ユニットが結合したオリゴ糖化合物を用いることができる。中でも、好ましくはグルコースの３量体ないし６量体であるオリゴ糖化合物を用いることができ、さらに好ましくはグルコースの３量体又は４量体であるオリゴ糖化合物を用いることができる。より具体的には、イソマルトトリオース、イソパノース、マルトトリオース、マルトテトラオース、マルトペンタオース、又はマルトヘキサオースなどを好適に用いることができ、これらのうち、グルコースがα1-4結合したマルトトリオース、マルトテトラオース、マルトペンタオース、又はマルトヘキサオースがさらに好ましい。特に好ましいのはマルトトリオース又はマルトテトラオースであり、最も好ましいのはマルトトリオースである。
　オリゴ糖化合物による脂質ナノ粒子の表面修飾量は特に限定されないが、例えば、総脂質量に対して１～３０モル％程度、好ましくは２～２０モル％程度、より好ましくは５～１０モル％程度である。
　オリゴ糖化合物で脂質ナノ粒子を表面修飾する方法は特に限定されないが、例えば、脂質ナノ粒子をガラクトースやマンノースなどの単糖で表面を修飾したリポソーム（国際公開第２００７／１０２４８１号）が知られているので、この刊行物に記載された表面修飾方法を採用することができる。上記刊行物の開示の全てを参照により本明細書の開示として含める。
　また、本発明に係る脂質ナノ粒子には、例えば、温度変化感受性機能、膜透過機能、遺伝子発現機能、及びｐＨ感受性機能などのいずれか１つ又は２つ以上の機能を付与することができる。これらの機能を適宜付加することにより、脂質ナノ粒子の血液中での滞留性を向上させ、標的細胞におけるエンドサイトーシスの後にエンドソームから効率的に脂質ナノ粒子を脱出させて、封入された核酸を脾臓細胞内でより効率よく発現させることができる。
　本発明に係る脂質ナノ粒子は、トコフェロール、没食子酸プロピル、パルミチン酸アスコルビル、又はブチル化ヒドロキシトルエンなどの抗酸化剤、荷電物質、及び膜ポリペプチドなどからなる群から選ばれる１種又は２種以上の物質を更に含んでいてもよい。
　正荷電を付与する荷電物質としては、例えば、ステアリルアミン、オレイルアミンなどの飽和若しくは不飽和脂肪族アミンなどを挙げることができ、負電荷を付与する荷電物質としては、例えば、ジセチルホスフェート、コレステリルヘミスクシネート、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジン酸などを挙げることができる。
　膜ポリペプチドとしては、例えば、膜表在性ポリペプチド、又は膜内在性ポリペプチドなどが挙げられる。
　これらの物質の配合量は特に限定されず、目的に応じて適宜選択することができる。
　本発明に係る脂質ナノ粒子の大きさは、生体内の比較的深奥部に存在する脾臓細胞に高い送達効率が得られやすいことから、平均粒子径が４００ｎｍ以下であることが好ましく、平均粒子径が３００ｎｍ以下であることがより好ましい。なお、脂質ナノ粒子の平均粒子径とは、動的光散乱法（Dynamic light scattering：ＤＬＳ）により測定された個数平均粒子径を意味する。動的光散乱法による測定は、市販のＤＬＳ装置等を用いて常法により行うことができる。
　本発明に係る脂質ナノ粒子の多分散度指数（ＰＤＩ）は０．０５～０．７程度、好ましくは０．１～０．６程度、さらに好ましくは０．２～０．６程度である。
　ゼータ電位は－５０ｍＶ～－１０ｍＶの範囲、好ましくは－４５ｍＶ～－１５ｍＶの範囲とすることができる。
　本発明に係る脂質ナノ粒子の形態は特に限定されないが、例えば、水系溶媒に分散した形態として一枚膜リポソーム、多重層リポソーム、球状ミセル、又は不定型の層状構造物などを挙げることができる。本発明に係る脂質ナノ粒子としては、一枚膜リポソーム、多重層リポソームであることが好ましい。
　本発明に係る脂質ナノ粒子は、脂質膜で覆われた粒子内部に、標的の細胞内に送達する目的の成分を内包していることが好ましい。本発明に係る脂質ナノ粒子が粒子内部に内包する成分としては、内包可能な大きさであれば特に限定されるものではなく、本発明に係る脂質ナノ粒子には、核酸、糖類、ペプチド類、低分子化合物、金属化合物など任意の物質を封入することができる。
　本発明に係る脂質ナノ粒子に内包させる成分としては、核酸が好ましい。核酸としては、ＤＮＡであってもよく、ＲＮＡであってもよく、これらの類似体又は誘導体（例えば、ペプチド核酸（ＰＮＡ）やホスホロチオエートＤＮＡなど）であってもよい。本発明に係る脂質ナノ粒子に内包させる核酸は、１本鎖核酸であってもよく、２本鎖核酸であってもよく、線状であってもよく、環状であってもよい。
　本発明に係る脂質ナノ粒子に内包させる核酸は、標的細胞内で発現させるための外来遺伝子を含むことが好ましく、細胞内に取り込まれることによって外来遺伝子を細胞内で発現させるために機能する核酸であることがより好ましい。当該外来遺伝子は、標的細胞（好ましくは脾臓細胞）のゲノムＤＮＡ中に本来含まれている遺伝子であってもよく、ゲノムＤＮＡ中に含まれていない遺伝子であってもよい。このような核酸としては、発現させる目的の遺伝子をコードする塩基配列からなる核酸を含む遺伝子発現ベクターが挙げられる。当該遺伝子発現ベクターは、導入された細胞内において、染色体外遺伝子として存在するものであってもよく、相同組換えによりゲノムＤＮＡ中に取り込まれるものであってもよい。
　本発明に係る脂質ナノ粒子に内包させる遺伝子発現ベクターとしては、特に限定されるものではなく、一般的に遺伝子治療等で使用されるベクターを用いることができる。本発明に係る脂質ナノ粒子に内包させる遺伝子発現ベクターとしては、プラスミドベクター等の核酸ベクターであることが好ましい。プラスミドベクターは、環状のままであってもよく、予め線状に切断した状態で本発明に係る脂質ナノ粒子に封入させてもよい。遺伝子発現ベクターは、発現させる対象の遺伝子の塩基配列情報に基づいて、一般的に使用される分子生物学的ツールを利用して常法により設計でき、公知の各種の方法で製造することができる。
　本発明に係る脂質ナノ粒子に内包させる核酸は、標的細胞内に存在する標的遺伝子の発現を制御する機能性核酸であることも好ましい。当該機能性核酸としては、アンチセンスオリゴヌクレオチド、アンチセンスＤＮＡ、アンチセンスＲＮＡ、ｓｉＲＮＡ、ｍｉｃｒｏＲＮＡ等が挙げられる。また、細胞内でｓｉＲＮＡを発現させるｓｉＲＮＡ発現ベクターであってもよい。ｓｉＲＮＡ発現ベクターとしては、市販のｓｉＲＮＡ発現ベクターから調製することができ、また、これを適宜改変してもよい。
　本発明に係る脂質ナノ粒子の製造方法は特に限定されず、当業者に利用可能な任意の方法を採用することができる。一例を挙げれば、全ての脂質成分をクロロホルムなどの有機溶媒に溶解し、エバポレータによる減圧乾固や噴霧乾燥機による噴霧乾燥を行うことによって脂質膜を形成した後、当該脂質ナノ粒子に封入させる成分、例えば核酸等を含む水系溶媒を乾燥した上記の混合物に添加し、さらにホモジナイザーなどの乳化機、超音波乳化機、又は高圧噴射乳化機などにより乳化することで製造することができる。また、リポソームを製造する方法としてよく知られている方法、例えば逆相蒸発法などによっても製造することができる。脂質ナノ粒子の大きさを制御したい場合には、孔径のそろったメンブランフィルターなどを用いて、高圧下でイクストルージョン（押し出し濾過）を行えばよい。
　水系溶媒（分散媒）の組成は特に限定されないが、例えば、リン酸緩衝液、クエン酸緩衝液、リン酸緩衝生理食塩液などの緩衝液、生理食塩水、細胞培養用の培地などを挙げることができる。これら水系溶媒（分散媒）は脂質ナノ粒子を安定に分散させることができるが、さらに、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトース、イノシトール、リボース、キシロース糖の単糖類、乳糖、ショ糖、セロビオース、トレハロース、マルトースなどの二糖類、ラフィノース、メレジノースなどの三糖類、シクロデキストリンなどの多糖類、エリスリトール、キシリトール、ソルビトール、マンニトール、マルチトールなどの糖アルコールなどの糖（水溶液）や、グリセリン、ジグリセリン、ポリグリセリン、プロピレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール、ジエチレングリコール、トリエチレングリコール、ポリエチレングリコール、エチレングリコールモノアルキルエーテル、ジエチレングリコールモノアルキルエーテル、1,3-ブチレングリコールなどの多価アルコール（水溶液）などを加えてもよい。この水系溶媒に分散した脂質ナノ粒子を安定に長期間保存するには、凝集抑制などの物理的安定性の面から水系溶媒中の電解質を極力排除することが望ましい。また、脂質の化学的安定性の面からは水系溶媒のｐＨを弱酸性から中性付近（ｐＨ３．０～８．０程度）に設定し、及び／又は窒素バブリングなどにより溶存酸素を除去することが望ましい。
　得られた脂質ナノ粒子の水性分散物を凍結乾燥又は噴霧乾燥する場合には、例えば、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトース、イノシトール、リボース、キシロース糖の単糖類、乳糖、ショ糖、セロビオース、トレハロース、マルトースなどの二糖類、ラフィノース、メレジノースなどの三糖類、シクロデキストリンなどの多糖類、エリスリトール、キシリトール、ソルビトール、マンニトール、マルチトールなどの糖アルコールなどの糖（水溶液）を用いると安定性を改善できる場合がある。また、上記水性分散物を凍結する場合には、例えば、前記の糖類やグリセリン、ジグリセリン、ポリグリセリン、プロピレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール、ジエチレングリコール、トリエチレングリコール、ポリエチレングリコール、エチレングリコールモノアルキルエーテル、ジエチレングリコールモノアルキルエーテル、1,3-ブチレングリコールなどの多価アルコール（水溶液）を用いると安定性を改善できる場合がある。
　遺伝子発現ベクターを封入した本発明に係る脂質ナノ粒子を動物個体に投与すると、当該脂質ナノ粒子に封入された遺伝子発現ベクターは、他の臓器よりも脾臓において選択的に発現する。同様に、ｓｉＲＮＡ発現ベクターを封入した本発明に係る脂質ナノ粒子を動物個体に投与すると、当該脂質ナノ粒子に封入されたｓｉＲＮＡ発現ベクターは、他の臓器よりも脾臓において選択的に発現し、当該発現ベクターが標的とする遺伝子の発現が抑制される。例えば、脾臓細胞内で発現させる目的の外来遺伝子を封入した本発明に係る脂質ナノ粒子を、被験動物へ投与すると、当該被験動物の脾臓内で当該外来遺伝子を発現させることができる。
　この脾臓に対する高選択的な遺伝子発現活性により、本発明に係る脂質ナノ粒子は、脾臓を標的とする遺伝子発現キャリアとして機能する。このため、本発明に係る脂質ナノ粒子は、免疫治療や遺伝子治療に用いられる医薬用組成物の有効成分として有用であり、特に、脾臓を標的臓器とする免疫治療や遺伝子治療に用いられる医薬用組成物の有効成分として有用である。
　本発明に係る脂質ナノ粒子が投与される動物は、特に限定されるものではなく、ヒトであってもよく、ヒト以外の動物であってもよい。非ヒト動物としては、ウシ、ブタ、ウマ、ヒツジ、ヤギ、サル、イヌ、ネコ、ウサギ、マウス、ラット、ハムスター、モルモット等の哺乳動物や、ニワトリ、ウズラ、カモ等の鳥類等が挙げられる。また、本発明に係る脂質ナノ粒子を動物に投与する際の投与経路は、特に限定されるものではないが、経静脈投与、経腸投与、筋肉内投与、皮下投与、経皮投与、経鼻投与、経肺投与等の非経口投与であることが好ましい。
　次に実施例を示して本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
［脂質ナノ粒子の調製］
　以降の実験において、特に記載のない限り、脂質ナノ粒子は以下の通りにして調製した。
　目的の脂質組成の脂質エタノール溶液（総脂質量：９６０ｎｍｏｌ）を試験管内に調製し、デシケーター減圧下で一晩インキュベーションさせることによってエタノールをとばし、当該試験管の底に脂質膜を作製した。当該脂質膜を作製した試験管に、５００μＬのｐＤＮＡ溶液（１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ、ｐＨ４、ｐＤＮＡ　３０μｇ）を加え、室温で３０分間インキュベーションした後、浴槽型ソニケーターで１分間ソニケーションした。その後、当該試験管内のリポソーム溶液を、遠心式限外ろ過デバイス（製品名：「Amicon Ultra (100kDa)」、メルク社製）に移し、１５００×ｇで３０分間遠心処理することにより限外ろ過した後、６００μＬのリン酸緩衝液（ＰＢＳ、ｐＨ７．４）で回収した。回収されたリポソームのＰＢＳ懸濁液を、脂質ナノ粒子溶液として用いた。
［脂質ナノ粒子の粒子径及びゼータ電位の測定］
　脂質ナノ粒子の粒子径及びゼータ電位は、動的光散乱法を用いて粒子径を、ＤＬＳ装置（製品名：「ゼータサイザー」、マルバーン・パナリティカル社製）を用いて測定した。
［ｐＤＮＡ回収率及び脂質ナノ粒子への封入率の評価］
　ＤＮＡ定量試薬（製品名：「PicoGreen」、Thermo Fisher Scientific社製）を用いて、ｐＤＮＡ回収率及び脂質ナノ粒子への封入率を評価した。脂質ナノ粒子溶液をＴＥバッファー（１０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、１ｍＭ　ＥＤＴＡ、ｐＨ８）で４０倍希釈し、デキストラン硫酸入りPicoGreen希釈液、デキストラン硫酸及びＴｒｉｒｏｎ Ｘ－１００入り希釈液のそれぞれと等量混合し、分析用サンプルを調製した。この分析用サンプルを、プレートリーダーで蛍光を測定した。濃度既知のｐＤＮＡ溶液を用いて作成した検量線に基づき、脂質ナノ粒子調製後のｐＤＮＡ量と脂質ナノ粒子に封入されていないｐＤＮＡ量を算出し、回収率及び封入率を、以下の式で算出した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-M000001
Figure JPOXMLDOC01-appb-M000002
［ルシフェラーゼ活性の評価］
　ルシフェラーゼをコードしたｐＤＮＡ（ルシフェラーゼ遺伝子を含むｐＤＮＡ：ｐＬｕｃ）（配列番号１）を封入した脂質ナノ粒子をマウスに投与し、ルシフェラーゼ活性を指標にして、各臓器の遺伝子発現活性を評価した。
　まず、ｐＬｕｃを封入した脂質ナノ粒子を、一匹当たりのｐＬｕｃ投与量が３０μｇとなるように、ＩＣＲマウス（４週齢、オス）に尾静脈内投与し、投与から６時間後の肝臓、肺、脾臓を回収した。各臓器をハサミで細かく裁断した後、ライシスバッファー（１００ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、１ｍＭ　ＥＤＴＡ、０．１％　ＴｒｉｔｏｎＸ－１００、ｐＨ７．８）中でビーズ破砕によりホモジェナイズした。得られたホモジェネートを遠心処理（１５，０００ｒｐｍ、４℃、１０分間）し、上清を回収した。１０μＬの上清と５０μＬのルシフェラーゼ基質溶液を混合した後、ルミノメーターで発光値（ＲＬＵ）を測定した。上清を１００倍希釈し、ＢＣＡプロテインアッセイにより総タンパク質量（ｍｇ protein／ｍＬ）を測定し、タンパク質量で活性値を補正した（ＲＬＵ／ｍｇ protein)。
［体内分布評価］
　ＩＣＲマウスに、総脂質量の１％をＤｉＤ修飾した脂質ナノ粒子を尾静脈内投与し、６時間後に肝臓、肺、脾臓を回収した。各臓器の質量を測定した後、ハサミで細かく裁断した後、細断物２５ｍｇを１ｍＬの１％ ＳＤＳ中でホモジェナイズした。得られたホモジェネートを遠心処理（１５，０００ｒｐｍ、４℃、１０分間）し、上清を回収した。１００μＬの上清のＤｉＤ蛍光強度を、プレートリーダーで測定した。脂質ナノ粒子の組織への移行量を、脂質ナノ粒子と無処理マウスの臓器を用いて作製した検量線用サンプルのＤｉＤ蛍光強度を基に算出した。
［脾臓内分布評価］
　ＩＣＲマウスに、総脂質量の１％をＤｉＤ修飾した脂質ナノ粒子を尾静脈内投与し、６時間後に脾臓を回収した。脾臓細胞用培地（RPMI1640に、１０％　非働化ＦＢＳ、１００Ｕ／ｍＬ　ペニシリン、１００μｇ／ｍＬ　ストレプトマイシン、１０ｍＭ　ＨＥＰＥＳ、１００ｍＭ　ピルビン酸ナトリウム、及び５０ｎＭ　２－メルカプトエタノール（Ｇｉｂｃｏ社製）を添加した培地）中で、回収した脾臓から脾臓細胞を単離し、得られた細胞懸濁液をナイロンメッシュに通して凝集塊を取り除いた。凝集塊除去後の細胞懸濁液を遠心処理（１，５００ｇ、４℃、５分間）し、上清を除去した後、１ｍＬのACK Lysing Buffer（Thermo Fisher Scientific社製）を加え、５分間室温でインキュベーションし、赤血球を溶血させた。その後、９ｍＬの脾臓細胞用培地を加え、遠心処理（１，５００ｇ、４℃、５分間）して上清を除去した後に脾臓細胞用培地を添加する操作を２回繰り返した後、目的の抗体及びアイソタイプコントロール抗体で処理した。抗体処理後、ＦＡＣＳバッファー（ＰＢＳに０．５％　ＢＳＡ、０．２％　ＮａＮ３を添加したバッファー）で洗浄し、最終的に得られた細胞懸濁液を分析用サンプルとした。この分析用サンプルをナイロンメッシュに通して、フローサイトメーター用のチューブに移してフローサイトメーターに設置し、各細胞種のＤｉＤ陽性細胞を検出し、脂質ナノ粒子の脾臓内分布を評価した。
［予防的抗腫瘍効果の測定］
　まず、ＯＶＡ（ｏｖａｌｂｕｍｉｎ）をコードしたｐＤＮＡ（ｐＯＶＡ）(配列番号２)を封入した脂質ナノ粒子を作製し、一匹当たりのｐＯＶＡ投与量が３０μｇとなるように、マウス（Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ、メス）に尾静脈内投与して免疫した。次いで、投与から１週間後の各マウスに、一匹当たり５．０×１０５個のＥＧ７－ＯＶＡ細胞（ＡＴＣＣより入手）を皮下移植し、３０日間腫瘍体積をモニタリングした。腫瘍体積は以下の式で算出した。
［腫瘍体積（ｍｍ３）］＝［長径（ｍｍ）］×［短径（ｍｍ）］２×０．５２
［治療的抗腫瘍効果の測定］
　Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウス（メス）に、一匹当たり５．０×１０５個のＥＧ７－ＯＶＡ細胞を皮下移植し、ＥＧ７－ＯＶＡ細胞の生着を確認した。
　皮下移植後、７日目、１０日目、及び１４日目に、一匹当たりのｐＯＶＡ投与量が３０μｇとなるように、ｐＯＶＡを封入した脂質ナノ粒子を尾静脈内投与した。
　皮下移植後、２４日間腫瘍体積をモニタリングした。腫瘍体積は前記式に基づき算出した。
［血清中サイトカインの測定］
　Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウス（メス）に、ｐＬｕｃもしくはｐＯＶＡを封入した脂質ナノ粒子を、一匹当たりのｐＬｕｃもしくはｐＯＶＡの投与量が３０μｇとなるように、尾静脈内投与した。
　投与後、２時間及び６時間経過時に採血し、回収したマウス血液から血清を調製し、ＥＬＩＳＡにより、ＩＬ－６、ＩＦＮ－α、ＩＦＮ－β、及びＩＦＮ－γを測定した。
［実施例１］
　カチオン性脂質としてＹＳＫ０５を含む脂質ナノ粒子と、カチオン性脂質としてＤＯＤＡＰを含む脂質ナノ粒子とについて、脾臓での遺伝子発現活性を比較した。
　まず、表１に記載の脂質組成で、ルシフェラーゼをコードしたｐＬｕｃを封入した脂質ナノ粒子を作製した。脂質ナノ粒子の構成脂質として、ｐＨ感受性カチオン性脂質としてＤＯＤＡＰ又はＹＳＫ０５を、中性リン脂質としてＤＯＰＥを、その他の脂質としてコレステロール（ｃｈｏｌ）及び1,2-ジミリストイル-rac-グリセロ-3-メトキシポリエチレングリコール-2000（ＰＥＧ－ＤＭＧ）を用いた。３０μｇのｐＬｕｃ当たり、総脂質量は６４０ｎｍｏｌで作製した。作製された脂質ナノ粒子の物理化学的性質を表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　作製された各脂質ナノ粒子を、ＨｅＬａ細胞の培養培地に添加し、２４時間培養後のＨｅＬａ細胞のルシフェラーゼ活性を測定した（ｎ＝３）。結果を図１Ａに示す。
　また、各脂質ナノ粒子をマウスに投与し、肝臓、肺、及び脾臓のルシフェラーゼ活性を測定した（ｎ＝３）。結果を図１Ｂに示す。
　図１Ａに示すように、ｉｎ　ｖｉｔｒｏにおける遺伝子発現活性は、ＹＳＫ０５を含む脂質ナノ粒子のほうが、ＤＯＤＡＰを含む脂質ナノ粒子よりも顕著に高かった。これに対して、図１Ｂに示すように、ｉｎ　ｖｉｖｏにおける遺伝子発現活性は、ＹＳＫ０５を含む脂質ナノ粒子よりもＤＯＤＡＰを含む脂質ナノ粒子の方が高く、特にＤＯＤＡＰを含む脂質ナノ粒子の脾臓における遺伝子発現活性は１０６ＲＬＵ／ｍｇ protein以上と非常に高かった。
　ＤＯＤＡＰは、公知のｐＨカチオン性脂質の中でも比較的、遺伝子発現活性が低く、このため、ＤＯＤＡＰは遺伝子発現ベクターを封入する遺伝子発現キャリアとなる脂質ナノ粒子の構成脂質としては適していないと考えられていた。実際に、ｉｎ　ｖｉｔｒｏの系では、ＤＯＤＡＰを含有する脂質ナノ粒子は、ＹＳＫ０５を含有する脂質ナノ粒子とは異なり、遺伝子発現活性は低かった。にもかかわらず、外来遺伝子を脾臓特異的発現させるための遺伝子発現キャリアとしては、ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥを特定の割合で含む脂質ナノ粒子が、ＹＳＫ０５を含有する脂質ナノ粒子よりも非常に優れていた。
　各脂質ナノ粒子のマウスの体内分布を調べた。単位質量当たりの臓器移行量（投与量に対する各臓器への移行量の割合（％）を臓器質量（ｇ）で補正した値）の測定結果を図２Ａに示す。さらに、各脂質ナノ粒子の各臓器に対する臓器移行後の遺伝子発現効率（各脂質ナノ粒子の遺伝子発現活性を臓器移行量で補正した値：［遺伝子発現活性］／［臓器移行量］）の算出結果を図２Ｂに示す。
　ＤＯＤＡＰを含む脂質ナノ粒子の臓器移行量は、特に脾臓に多いとはいえなかった。また、脾臓への移行量は、ＤＯＤＡＰを含む脂質ナノ粒子よりもＹＳＫ０５を含む脂質ナノ粒子のほうが多かった。にもかかわらず、ＤＯＤＡＰを含む脂質ナノ粒子の脾臓での遺伝子発現活性が非常に高かった。これらの結果から、ＤＯＤＡＰを含む脂質ナノ粒子とＹＳＫ０５を含む脂質ナノ粒子の遺伝子発現活性の差は、臓器移行量の差によるものではなく、臓器移行後の遺伝子発現効率の差によるものであることが示唆された。
［実施例２］
　ＤＯＤＡＰを含む脂質ナノ粒子について、遺伝子発現活性に対する全脂質量に占めるＤＯＤＡＰの割合の影響を調べた。
　まず、表３に記載の脂質組成で、ｐＬｕｃを封入した脂質ナノ粒子を作製した。作製された脂質ナノ粒子の物理化学的性質を表４に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　作製された各脂質ナノ粒子をマウスに投与し、肝臓、肺、及び脾臓のルシフェラーゼ活性を測定した（ｎ＝３）。結果を図３に示す。この結果、構成脂質におけるＤＯＤＡＰの割合が増加するに伴い、脾臓における遺伝子発現活性が減少する傾向が観察された。
　最もルシフェラーゼ活性の差が大きかったＤＯＤＡＰ含有量が３５モル％の脂質ナノ粒子と６０モル％の脂質ナノ粒子について、実施例１と同様にして体内分布を調べた。それぞれの脂質ナノ粒子の単位質量当たりの臓器移行量の測定結果を図４Ａに、臓器移行後の遺伝子発現効率（［遺伝子発現活性］／［臓器移行量］）の測定結果を図４Ｂに、それぞれ示す。この結果、両脂質ナノ粒子の各臓器への臓器移行量に差はなく、遺伝子発現活性の差は、臓器移行後の遺伝子発現効率の影響が大きいことが示唆された。
［実施例３］
　ＤＯＤＡＰを含む脂質ナノ粒子について、構成脂質に含有させる中性脂質の種類の遺伝子発現活性に対する影響を調べた。
　まず、表５に記載の脂質組成で、ｐＬｕｃを封入した脂質ナノ粒子を作製した。作製された脂質ナノ粒子の物理化学的性質を表６に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000008
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　作製された各脂質ナノ粒子をマウスに投与し、肝臓、肺、及び脾臓のルシフェラーゼ活性を測定した（ｎ＝３）。結果を図５に示す。この結果、脾臓における遺伝子発現活性は、ＤＯＰＥを含有する脂質ナノ粒子が最も高かった。
　各脂質ナノ粒子について、実施例１と同様にして体内分布を調べた。それぞれの脂質ナノ粒子の単位質量当たりの臓器移行量の測定結果を図６Ａに、臓器移行後の遺伝子発現効率（［遺伝子発現活性］／［臓器移行量］）の測定結果を図６Ｂに、それぞれ示す。この結果、ＰＥ系脂質の方がＰＣ系脂質よりも脾臓への集積性が高いことが示唆された。これは、ＰＥ系脂質の方がＰＣ系脂質よりも、補体系タンパク質Ｃ３と結合しやすいため、マクロファージなどの免疫細胞が多い脾臓で取り込まれやすくなったためだと考えられた。また、当該実験でも、遺伝子発現の差は、臓器移行量ではなく臓器移行後の発現効率の差による影響が大きいことが示唆された。
［実施例４］
　ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥを含有する脂質ナノ粒子について、両脂質の含有比率の遺伝子発現活性に対する影響を調べた。
　具体的には、表７に記載の脂質組成で、ｐＬｕｃを封入した脂質ナノ粒子を作製した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　作製された各脂質ナノ粒子をマウスに投与し、肝臓、肺、及び脾臓のルシフェラーゼ活性を測定した。結果を図７に示す。この結果、ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥを含有する脂質ナノ粒子は、ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの含有量比（モル比）がＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ＝１０／７５～６０／２５、すなわち、[DODAP/(DODAP+DOPE)]が１１．８～７０．６モル％において、特にＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ＝１５／７５～５０／３５（[DODAP/(DODAP+DOPE)]＝１７．６～５８．８モル％）において、脾臓における遺伝子発現活性が、肺や肝臓よりも明らかに高かった。一方で、ＤＯＤＡＰを含有していない脂質ナノ粒子では、脾臓への高選択性は確認されなかった。これらの結果から、ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥを含有する脂質ナノ粒子が、脾臓に高選択的な遺伝子キャリアとして好適であることが確認された。
［実施例５］
　ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥを含有する脂質ナノ粒子について、両脂質の総含有量の構成脂質全量に対する含有比率の遺伝子発現活性に対する影響を調べた。
　具体的には、表８に記載の脂質組成で、ｐＬｕｃを封入した脂質ナノ粒子を作製した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
　作製された各脂質ナノ粒子をマウスに投与し、肝臓、肺、及び脾臓のルシフェラーゼ活性を測定した。結果を、図８Ｂ及び図８Ｃに示す。図８Ｂは、全脂質量に対するＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの総量が７０モル％の脂質ナノ粒子の結果を示した図であり、図８Ｃは、全脂質量に対するＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの総量が６０モル％の脂質ナノ粒子の結果を示した図である。また、図８Ａは、実施例２における図３の結果ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの含有比率ごとに示した図であり、全脂質量に対するＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの総量が８５モル％の脂質ナノ粒子の結果を示した図である。
　この結果、ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの総量が７０モル％～８５モル％の場合には、４種全ての脂質ナノ粒子において、脾臓特異的な遺伝子発現活性が観察された（図８Ａ及び図８Ｂ）。
　一方、ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥの総量が６０モル％の場合には、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ＝３５／５０～５０／３５の脂質ナノ粒子の遺伝子発現活性は、脾臓で最も高く、特にＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ＝４０／４５～５０／３５の脂質ナノ粒子では脾臓特異的な遺伝子発現活性が観察された（図８Ｃ）。
［実施例６］
　ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥを含有する脂質ナノ粒子について、脾臓内の細胞分布を調べた。
　まず、表９に記載の脂質組成で、ｐＬｕｃを封入した脂質ナノ粒子（以下、「ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＬｕｃ」ということがある。）を作製した。作製された脂質ナノ粒子をマウスに投与し、肝臓、肺、及び脾臓のルシフェラーゼ活性を測定した（ｎ＝３）。結果を図９に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
　さらにこの脂質ナノ粒子の総脂質量の１％をＤｉＤ修飾した脂質ナノ粒子（以下、「ＤｉＤ修飾ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＬｕｃ」ということがある。）をマウスへ投与し、脾臓内分布を調べた。脂質ナノ粒子を投与したマウスから脾臓を回収し、Ｔ細胞（Ｂ２２０陰性／ＣＤ３陽性細胞）、Ｂ細胞（Ｂ２２０陽性／ＣＤ３陰性細胞）、樹状細胞（ＣＤ１１ｃ陽性／Ｆ４/８０陰性細胞）、及びマクロファージ細胞（ＣＤ１１ｃ陰性／Ｆ４/８０陽性細胞）に分離し、それぞれのＤｉＤ蛍光強度を測定した。対照として、脂質ナノ粒子を投与していないマウスから回収された脾臓を用いて、同様の測定を行った。測定結果を図１０Ａに示す。また、これら４種の細胞全量のＤｉＤ蛍光強度を１００％とし、各細胞の相対ＤｉＤ蛍光強度（％）を図１０Ｂに、各細胞におけるＤｉＤ蛍光陽性細胞の比率（％）を図１０Ｃに、それぞれ示す。ＤｉＤ蛍光陽性細胞は、ＤｉＤ修飾された脂質ナノ粒子が取り込まれた細胞である。この結果、ＤｉＤ修飾された脂質ナノ粒子は脾臓中の抗原提示細胞に多く取り込まれていることが示された。
［実施例７］
　ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥを含有する脂質ナノ粒子のがんＤＮＡワクチンとしての有用性を調べた。
　具体的には、ｐＬｕｃの代わりにｐＯＶＡを封入した以外は実施例６と同様の方法で作製した脂質ナノ粒子（以下、「ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＯＶＡ」ということがある。）を、一匹当たりのｐＯＶＡ投与量が３０μｇとなるように、Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウス（メス）に投与し、一匹当たり５．０×１０５個のＥＧ７－ＯＶＡ細胞を皮下移植した。腫瘍細胞移植後３０日間、腫瘍体積をモニタリングすることにより、当該脂質ナノ粒子の予防的抗腫瘍効果を評価した。
　比較対象として、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＯＶＡに代えて、ＰＢＳ、リン脂質に封入していないｐＯＶＡ（ｎａｋｅｄ　ｐＯＶＡ）、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＬｕｃ、及び、ＤＯＰＥに代えてＤＯＰＣを用いた以外はＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＯＶＡと同様にして作製した脂質ナノ粒子（以下、「ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＣ－ｐＯＶＡ」ということがある。）を用い、同様に予防的抗腫瘍効果を評価した。
　腫瘍体積をモニタリングした結果を図１１に示す（ｎ＝５）。この結果、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＬｕｃ投与群は、対照であるＰＢＳ投与群と同様に、腫瘍増大が確認され、抗腫瘍効果を示さなかった。これに対して、リン脂質に封入していないｐＯＶＡの投与群では、腫瘍増大がＰＢＳ投与群よりも抑制されており、抗腫瘍効果が確認された。これは、脾臓細胞内に取り込まれたｐＯＶＡの発現により、抗原特異的な腫瘍免疫が誘導されたためだと考えられた。ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＣ－ｐＯＶＡ投与群でも腫瘍増大の抑制が観察されたが、その効果はリン脂質に封入していないｐＯＶＡと同程度でしかなかった。これに対して、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＯＶＡ投与群では、腫瘍細胞投与～３０日間、腫瘍増大は確認されず、極めて高い抗腫瘍効果が確認された。脾臓での遺伝子発現活性が低かったＤＯＤＡＰとＤＯＰＣを含有する脂質ナノ粒子に比べて、脾臓での遺伝子発現活性が高かったＤＯＤＡＰとＤＯＰＥを含有する脂質ナノ粒子の方が、非常に強い抗腫瘍効果を示したことから、脾臓における効率的な抗原遺伝子発現が抗腫瘍効果に寄与していることが示唆された。また、ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥを含有する脂質ナノ粒子がキャリアとして、免疫治療、特にがんに対する免疫治療に有効であることが確認された。
［実施例８］
　Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウス（メス）に、一匹当たり５．０×１０５個のＥＧ７－ＯＶＡ細胞を皮下移植し、ＥＧ７－ＯＶＡ細胞の生着を確認した。皮下移植後、７日目、１０日目、及び１４日目に、一匹当たりのｐＯＶＡ投与量が３０μｇとなるように、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＯＶＡを尾静脈内投与した。皮下移植後、２４日間腫瘍体積をモニタリングし、当該脂質ナノ粒子の治療的抗腫瘍効果を評価した。
　比較対象として、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＯＶＡに代えて、ＰＢＳ、ｎａｋｅｄ　ｐＯＶＡ、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＬｕｃ、及び、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＣ－ｐＯＶＡを用い、同様に治療的抗腫瘍効果を評価した。
　腫瘍体積をモニタリングした結果を図１２に示す（ｎ＝５）。この結果、対照であるＰＢＳ投与群、ｎａｋｅｄ　ｐＯＶＡ投与群、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＬｕｃ投与群、及び、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＣ－ｐＯＶＡ投与群では、腫瘍増大が確認され、顕著な抗腫瘍効果が確認されなかった。これに対して、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＯＶＡ投与群では、対照群に比べて高い抗腫瘍効果が確認された。すなわち、ＯＤＡＰとＤＯＰＥを含有する脂質ナノ粒子に、治療対象となる腫瘍抗原をコードするｐＯＶＡを封入することが、特にがんの治療に有効であることが確認された。
［実施例９］
　Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウス（メス）に、一匹当たりのｐＬｕｃ又はｐＯＶＡ投与量が３０μｇとなるように、脂質ナノ粒子として、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＬｕｃ又はＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＯＶＡを尾静脈内投与した。投与後、２時間、及び６時間経過時に採決し、回収したマウス血液から血清を調製し、ＥＬＩＳＡにより、ＩＬ－６、ＩＦＮ－α、ＩＦＮ－β、及びＩＦＮ－γを測定した。
　比較対象として、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＯＶＡに代えて、ＰＢＳ又はｎａｋｅｄ　ｐＯＶＡを用い、同様に、ＩＬ－６、ＩＦＮ－α、ＩＦＮ－β、及びＩＦＮ－γを測定した。
　測定結果を図１３に示す（ｎ＝３）。図１３において、ｐｈｉは、尾静脈投与後の経過時間を示し、例えば、２ｐｈｉは、投与後２時間経過時を意味する。また、ＬＮＰ　ｐＬｕｃは、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＬｕｃを意味し、ＬＮＰ　ｐＯＶＡは、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＯＶＡを意味する。
　結果、対照であるＰＢＳ投与群、ｎａｋｅｄ　ｐＯＶＡ投与群に比べて、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＬｕｃ投与群、及び、ＤＯＤＡＰ／ＤＯＰＥ－ｐＯＶＡ投与群では、ＩＬ－６、ＩＦＮ－α、ＩＦＮ－β、及びＩＦＮ－γの産生量の増大が確認された。これらの結果から、ＤＯＤＡＰとＤＯＰＥを含有した脂質ナノ粒子をキャリアとして用いることにより、ｐＤＮＡを免疫細胞に効率的に集積させることができ、効果的に免疫を活性化可能であり、免疫治療に有効であることが確認された。
　本発明に係る脂質ナノ粒子は、封入された遺伝子を脾臓内で高発現させることができる。このため、当該脂質ナノ粒子は、免疫治療や遺伝子治療に用いられる脾臓特異的遺伝子送達キャリアとして有用である。

Claims (9)

  1. 　１，２－ジオレオイル－３－ジメチルアミノプロパンと１，２－ジオレオイル－ｓｎ－グリセロ－３－ホスフォエタノールアミンと、を含有しており、
    　１，２－ジオレオイル－３－ジメチルアミノプロパンの含有量と１，２－ジオレオイル－ｓｎ－グリセロ－３－ホスフォエタノールアミンの含有量の和に対する、１，２－ジオレオイル－３－ジメチルアミノプロパンの含有量の割合が１０～７５モル％であり、
    　脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対する、１，２－ジオレオイル－３－ジメチルアミノプロパンの含有量と１，２－ジオレオイル－ｓｎ－グリセロ－３－ホスフォエタノールアミンの含有量の和の割合が６０～８８モル％である、脂質ナノ粒子。
  2. 　前記脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対する、１，２－ジオレオイル－３－ジメチルアミノプロパンの含有量と１，２－ジオレオイル－ｓｎ－グリセロ－３－ホスフォエタノールアミンの含有量の和の割合が６５～８８モル％であり、
    　１，２－ジオレオイル－３－ジメチルアミノプロパンの含有量と１，２－ジオレオイル－ｓｎ－グリセロ－３－ホスフォエタノールアミンの含有量の和に対する、１，２－ジオレオイル－３－ジメチルアミノプロパンの含有量の割合が１５～７５モル％である、請求項１に記載の脂質ナノ粒子。
  3. 　前記脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対する、１，２－ジオレオイル－３－ジメチルアミノプロパンの含有量と１，２－ジオレオイル－ｓｎ－グリセロ－３－ホスフォエタノールアミンの含有量の和の割合が６０～６５モル％であり、
    　１，２－ジオレオイル－３－ジメチルアミノプロパンの含有量と１，２－ジオレオイル－ｓｎ－グリセロ－３－ホスフォエタノールアミンの含有量の和に対する、１，２－ジオレオイル－３－ジメチルアミノプロパンの含有量の割合が４４～６５モル％である、請求項１に記載の脂質ナノ粒子。
  4. 　さらに、ステロール及びポリアルキレングリコール修飾脂質を含有しており、
    　前記脂質ナノ粒子を構成する全脂質量に対する、前記ポリアルキレングリコール修飾脂質の割合が１～３モル％である、請求項１～３のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
  5. 　核酸をさらに含有する、請求項１～４のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子。
  6. 　前記核酸が、脾臓細胞内で発現させる遺伝子である、請求項５に記載の脂質ナノ粒子。
  7. 　請求項１～６のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子を有効成分とする、医薬用組成物。
  8. 　免疫治療又は遺伝子治療に用いられる、請求項７に記載の医薬用組成物。
  9. 　請求項１～６のいずれか一項に記載の脂質ナノ粒子であって、脾臓細胞内で発現させる目的の外来遺伝子を封入した脂質ナノ粒子を、被験動物（但し、ヒトを除く）へ投与し、前記被験動物の脾臓内で前記外来遺伝子を発現させる、外来遺伝子の発現方法。
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