WO2017110772A1 - リポソーム及びリポソーム組成物 - Google Patents
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Definitions
- Liposomes also referred to as lipid vesicles
- features such as barrier ability, compound retention ability, biocompatibility, freedom of particle size setting, ease of degradation, surface modification, etc., for immunosensors, artificial red blood cells, drug delivery
- system carriers have been studied.
- the liposome can encapsulate a wide variety of substances such as water-soluble compounds, lipid-soluble small molecules, and polymers.
- the presence of phospholipids with a negative charge in the pH 6-8 region reduces the toxicity by allowing the charge of the liposomes from which the phospholipids to which the hydrophilic polymer is bound to fall off to have a negative charge. Can do.
- dipalmitoyl phosphatidylethanolamine (DPPE-PEG5000) bound with PEG having a weight average molecular weight of 5000 and dimyristoyl phosphatidylethanolamine (DMPE-PEG2000) bound with PEG having a weight average molecular weight of 2000 are particularly preferable.
- the phospholipid having a negative charge in the pH 6 to 8 region means a lipid having an acidic group in which protons are separated in the pH 6 to 8 region.
- the phospholipid having a negative charge in the pH range of 6 to 8 is not particularly limited, and examples thereof include phosphatidylglycerol, phosphatidic acid, distearoylphosphatidic acid, phosphatidylserine, and phosphatidylinositol.
- an oil phase in which lipids are dissolved in an organic solvent and an aqueous phase are mixed and an aqueous solution containing lipids is stirred and emulsified.
- an emulsion in which the oil phase and the water phase are emulsified in an oil-in-water type is prepared.
- liposomes are formed by removing part or all of the organic solvent derived from the oil phase by the evaporation step described below. Alternatively, part or all of the organic solvent in the oil phase evaporates in the course of stirring and emulsification to form liposomes.
- Tumor volume in a mammalian subject can be measured using any art-recognized method. For example, using the caliper measurement, using the formula: (a ⁇ b 2 ) ⁇ 0.5 (where “a” is the maximum diameter and “b” is the length of the minor axis) Tumor volume can be assessed. In humans, the tumor volume can be measured by techniques such as diagnostic imaging such as computed tomography (CT) scanning and magnetic resonance imaging (MRI) scanning.
- CT computed tomography
- MRI magnetic resonance imaging
- the mixing ratio in the solvent composition means a volume ratio.
Abstract
Description
本発明によれば、以下の発明が提供される。
[2] 上記親水性高分子が、ポリエチレングリコール類、ポリグリセリン類、ポリプロピレングリコール類、ポリビニルアルコール、スチレン-無水マレイン酸交互共重合体、ポリビニルピロリドン及び合成ポリアミノ酸からなる群から選択される一種以上である、[1]に記載のリポソーム。
[3] 上記親水性高分子の重量平均分子量が500~10,000である、[1]又は[2]に記載のリポソーム。
[4] 上記の親水性高分子が結合したリン脂質が、pH6~8の領域で負電荷を持つ、[1]から[3]の何れか一に記載のリポソーム。
[5] 上記の親水性高分子が結合したリン脂質が、親水性高分子が結合したジアシルホスファチジルエタノールアミン、又は親水性高分子が結合したジアシルグリセロールである、[1]から[4]の何れか一に記載のリポソーム。
[7] 上記のpH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質が、ホスファチジルコリン、ホスファチジルエタノールアミン、スフィンゴミエリン、及びカルジオリピンからなる群から選択される一種以上である、[1]から[6]の何れか一に記載のリポソーム。
[8] 上記のpH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質の平均炭素鎖長が14~24である、[1]から[7]の何れか一に記載のリポソーム。
[9] 上記の親水性高分子が結合したリン脂質が、ポリエチレングリコールが結合したジパルミトイルホスファチジルエタノールアミン、又はポリエチレングリコールが結合したジミリストイルホスファチジルエタノールアミンであり、上記のpH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質が、水素添加大豆ホスファチジルコリンである、[1]から[8]の何れか一に記載のリポソーム。
[10] リポソーム膜を構成する脂質全体に対する上記の親水性高分子が結合したリン脂質の含有率が1~20モル%であり、リポソーム膜を構成する脂質全体に対する上記のpH6~8の領域で負電荷を持つリン脂質の含有率が1~20モル%であり、リポソーム膜を構成する脂質全体に対する上記のpH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質の含有率が30~80モル%である、[1]から[9]の何れか一に記載のリポソーム。
[12] 上記さらに別の脂質が、コレステロールである、[1]から[11]の何れか一に記載のリポソーム。
[13] リポソームを分散する媒体中に分散している、[1]から[12]の何れか一に記載のリポソーム。
[14] [1]から[13]の何れか一に記載のリポソームと、上記リポソームに内包された薬物とを含む、リポソーム組成物。
[15] 上記薬物の分配係数LogDが1以下である、[14]に記載のリポソーム組成物。
本明細書において「~」を用いて示された数値範囲は、「~」の前後に記載される数値をそれぞれ最小値及び最大値として含む範囲を示す。
本明細書において組成物中の各成分の量は、リポソーム又は組成物中に各成分に該当する物質が複数存在する場合、特に断らない限り、リポソーム又は組成物中に存在する上記の複数の物質の合計量を意味する。
「血中滞留性」とは、リポソーム(又はリポソーム組成物)を投与した対象において、リポソームに封入された状態の薬物が血液中に存在する性質(状態)を意味する。
「リポソームの平均粒子径」とは、リポソームの体積平均粒子径を意味する。リポソームの平均粒子径は動的光散乱法を用いて測定する。動的光散乱を用いた市販の測定装置としては、濃厚系粒子アナライザーFPAR-1000(大塚電子社製)、ナノトラックUPA(日機装社製)及びナノサイザー(マルバーン社製)等が挙げられる。
「腫瘍」(本発明では、「がん(癌)」と同義で用いる)とは、具体的には食道癌、胃癌(胃腺癌を含む)、大腸癌、結腸癌、直腸癌、肝臓癌、膵臓癌、腎細胞癌、喉頭癌、肺癌(非小細胞肺癌を含む)、前立腺癌、膀胱癌、乳癌、子宮癌(子宮体癌を含む)、卵巣癌、尿路上皮癌、頭頚部扁平上皮癌、カポジ肉腫、メラノーマ、非ホジキンリンパ腫などの固形腫瘍、また白血病などの液性腫瘍が挙げられる。腫瘍が発生する部位は、腫瘍の細胞、組織、器官又は臓器及びそれらの内部などである。
本発明は、親水性高分子が結合したリン脂質、pH6~8の領域で負電荷を持つリン脂質、及びpH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質を少なくとも含むリポソームであって、親水性高分子が結合したリン脂質の平均炭素鎖長が、pH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質の平均炭素鎖長よりも短い、リポソームに関する。
また、pH6~8の領域で負電荷を持つリン脂質の存在により、親水性高分子が結合したリン脂質が脱落したリポソームの電荷が負の電荷を帯びるようにすることで、毒性を低減することができる。
本発明の構成とすることにより、全く予想外の薬効の発現と副作用の低減が実現されたと推定できる。
リポソームとは、脂質を用いた脂質二重膜で形成される閉鎖小胞体であり、その閉鎖小胞の空間内に水相(内水相)を有する。内水相には、水等が含まれる。リポソームは通常、閉鎖小胞外の水溶液(外水相)に分散した状態で存在する。リポソームはシングルラメラ(単層ラメラ又はユニラメラとも呼ばれ、二重層膜が一重の構造である。)であっても、多層ラメラ(マルチラメラとも呼ばれ、タマネギ状の形状の多数の二重層膜の構造である。個々の層は水様の層で仕切られている。)であってもよいが、本発明では、医薬用途での安全性及び安定性の観点から、シングルラメラのリポソームであることが好ましい。
親水性高分子が連結したリン脂質としては、ジアシルホファチジルエタノールアミンに親水性高分子を連結させ負電荷を持つリン脂質、及びジアシルグリセロールに親水性高分子を連結させ電荷を有さないリン脂質などが挙げられ、ポリエチレングリコールが結合したジパルミトイルホスファチジルエタノールアミン、又はポリエチレングリコールが結合したジミリストイルホスファチジルエタノールアミンが好ましい。
上記の中でも、重量平均分子量5000のPEGが結合したジパルミトイルホスファチジルエタノールアミン(DPPE-PEG5000)及び重量平均分子量2000のPEGが結合したジミリストイルホスファチジルエタノールアミン(DMPE-PEG2000)が特に好ましい。
平均炭素鎖長は、pH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質として使用する各リン脂質(1種又は2種以上)の炭素鎖長の値と、各リン脂質の含有率(pH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質の全質量に対する各リン脂質の質量の割合)とから求めることができる。
リポソーム膜を構成する脂質全体に対する、pH6~8の領域で負電荷を持つリン脂質の含有率は、好ましくは1~20モル%であり、より好ましくは2~15モル%であり、さらに好ましくは2~10モル%であり、特に好ましくは3~10モル%である。
リポソーム膜を構成する脂質全体に対する、pH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質の含有率は、好ましくは30~80モル%であり、より好ましくは35~70モル%であり、さらに好ましくは40~60モル%である。
上記したさらに別の脂質としては、リン脂質以外の脂質を挙げることができる。リン脂質以外の脂質としては、リン酸を含まない脂質が挙げられ、特に限定されないがリン酸部分をその分子内に有しないグリセロ脂質、リン酸部分をその分子内に有しないスフィンゴ脂質等が挙げられる。なお、本発明において、「リン脂質以外の脂質」とはリン脂質以外の脂質に修飾を加えたリン脂質以外の脂質の誘導体も包含する。
(薬物)
本発明のリポソームに薬物を含めることにより、リポソーム組成物を提供することができる。薬物としては、リポソームに内包することのできる薬物であればよく、具体的には、酵素、タンパク質、ペプチド、核酸(DNA、mRNA、siRNA(small interfering RNA)、miRNA(microRNA))、低分子化合物、糖類(オリゴ糖及び多糖)、高分子化合物、抗腫瘍剤、抗菌剤、造影剤、抗酸化剤、抗炎症剤、美白剤、保湿剤、育毛剤等の生理活性又は薬理学的活性を有する水溶性の物質が挙げられるが、これらに限定されるものではない。リポソームを薬物送達システムのキャリヤーとして用いる場合、安定性の観点から、低分子化合物であることが好ましい。本発明のリポソーム組成物は、医薬組成物、化粧品組成物、食品組成物などとして提供することができるが、特に限定されない。医薬組成物の具体例としては、抗腫瘍剤などを挙げることができるが、特に限定されない。
薬物としては、好ましく、脂溶性が低い薬物を使用することができる。脂溶性が所定値より高い薬物は、リポソーム膜を形成する脂質に溶解し、引き続き外水相に分配することで、内水相からの漏出が生じ易い。したがって脂溶性が所定値以下の薬物を使用することにより、薬物を安定にリポソーム内水相に保持し易くなく。脂溶性の尺度としては分配係数LogDを用いることができる。
薬物の塩としては、通常知られているアミノ基などの塩基性基、ヒドロキシル基及びカルボキシル基などの酸性基における塩を挙げることができる。
本発明のリポソーム組成物には、適宜、水性溶媒、添加剤等を加えてもよい。リポソーム組成物は、投与経路に関連して、医薬的に許容される等張化剤、安定化剤、酸化防止剤、及びpH調整剤の少なくとも一種を含んでもよい。
本発明のリポソーム及びリポソーム組成物の製造方法は特に限定されないが、例えば、有機溶媒に溶解した脂質を乳化してリポソームを形成する乳化工程、及び乳化工程で得られたリポソームに水溶性薬物を内包させる薬物ローディング工程によって、本発明のリポソーム及びリポソーム組成物を製造することができる。リポソーム及びリポソーム組成物の製造方法は、必要に応じて、乳化工程で用いた有機溶媒を蒸発させる蒸発工程等、他の工程を含んでもよい。
乳化工程では、脂質が有機溶媒に溶解している油相と、水相とを混合して脂質を含む水溶液を攪拌して乳化する。脂質が有機溶媒に溶解している油相及び水相を混合し撹拌し、乳化することで、油相及び水相が水中油型(O/W型)に乳化した乳化液が調製される。混合後、油相由来の有機溶媒の一部又は全部を後述する蒸発工程によって除去することにより、リポソームが形成される。又は、油相中の有機溶媒の一部又は全部が撹拌・乳化の過程で蒸発して、リポソームが形成される。
油相として用いられる有機溶媒として、水溶性有機溶媒及びエステル系有機溶媒の混合溶媒を用いる。本発明では、有機溶媒として、クロロホルム、塩化メチレン、ヘキサン、又はシクロヘキサンといった有機溶媒を実質的に用いないことが好ましく、これらの有機溶媒をまったく用いないことがより好ましい。
水相とは、外水相及び内水相を意味する。
本発明における外水相とは、リポソームを分散する水溶液を意味する。たとえば注射剤の場合においては、バイアル瓶やプレフィルドシリンジ包装されて保管されたリポソームの分散液のリポソームの外側を占める溶液が外水相となる。また、添付された分散用液やその他溶解液により投与時に用時分散した液についても同様に、リポソームの分散液のリポソームの外側を占める溶液が外水相となる。
本発明における内水相とは、脂質二重膜を隔てた閉鎖小胞内の水相を意味する。
本発明では、必要に応じて蒸発工程を設けてもよい。蒸発工程では、乳化工程で得られたリポソームを含む水溶液から有機溶媒を蒸発させる。本発明において、蒸発工程とは、油相由来の有機溶媒の一部又は全部を蒸発工程として強制的に除去する工程、及び油相中の有機溶媒の一部又は全部が撹拌・乳化の過程で自然に蒸発する工程の少なくとも一つを含む。
エクストリュージョン処理とは、細孔を有するフィルターにリポソームを通過させることで、物理的なせん断力を施し、微粒化する工程を意味する。
薬物ローディング工程では、リポソームに薬物を封入させる。
薬物を水性媒体に溶解して薬物溶液を調製し、この薬物溶液と薬物未封入リポソームとを混合し、薬物ローディング液とする。次いで、透析液(適当な濃度のスクロース/ヒスチジン水溶液など)を用いて透析を行うことにより、薬物ローディング液の外水相に存在する未封入の薬物と溶質を除去し、透析液で外水相を置換することにより、リポソームに薬物を封入したリポソーム組成物を製造することができる。
上記により得られるリポソームを含む水溶液をリポソーム組成物とするためには、無菌ろ過を行うことが好ましい。ろ過の方法としては、中空糸膜、逆浸透膜、メンブレンフィルター等を用いて、リポソームを含む水溶液から不要な物を除去することができる。本発明では、特に限定されないが、滅菌できる孔径をもつフィルター(好ましくは0.2μmのろ過滅菌フィルター)によってろ過することが好ましい。通常、ろ過工程において、ろ過滅菌フィルターへのリポソームが吸着又は凝集が発生することがある。
無菌ろ過の後に得られたリポソームを含む水溶液は、医療用途として無菌充填することが好ましい。無菌充填の方法は公知のものが適用できる。容器に無菌的に充填することで医療用として好適なリポソーム組成物が調製できる。
本発明では、腫瘍体積を測定するために、モデルとなる動物(好ましくはマウスもしくはラット)に対して腫瘍を移植できる。本発明のリポソーム又はリポソーム組成物を哺乳動物等の対象に投与する場合、腫瘍の体積の増殖抑制という効果が観測できる。腫瘍の体積の増殖抑制は、使用される薬物、リポソームを構成する脂質等の組合せ、及び有効量に依存する。腫瘍体積の増殖抑制とは、腫瘍成長を抑制し得るか、腫瘍静止を達成し得るか、及び実質的若しくは完全な腫瘍退縮の少なくとも一つを意味する。
溶媒組成における混合比は容量比を意味する。例えば、「エタノール/酢酸エチル=75/25」は、容量比で75%エタノール/25%酢酸エチルを意味する。
また、1mol/m3=10-3mol/L=1mmol/Lである。
重量平均分子量2000のPEGが結合したジミリストイルホスファチジルエタノールアミン(DMPE-PEG2000):SUNBRIGHT PM-020CN(日油株式会社製)
重量平均分子量5000のPEGが結合したジパルミトイルホスファチジルエタノールアミン(DPPE-PEG5000):SUNBRIGHT PP-050CN(日油株式会社製)
重量平均分子量2000のPEGが結合したジステアロイルホスファチジルエタノールアミン(DSPE-PEG2000):SUNBRIGHT DSPE-020CN(日油株式会社製)
ジステアロイルホスファチジン酸(DSPA):COATSOME MA-8080LS(日油株式会社製)
水素添加大豆ホスファチジルコリン(HSPC):COATSOME NC21E(日油株式会社製)
コレステロール(Chol):Cholesterol HP(Dishman株式会社製)
ジミリストイルホスファチジルコリン(DMPC):COATSOME MC-4040(日油株式会社製)
ドキソルビシン塩酸塩:ドキソルビシン塩酸塩(日本マイクロバイオファーマ株式会社製)
a)油相の調製
DMPE-PEG2000(成分A:親水性高分子が結合したリン脂質)、DSPA(成分B:pH6~8の領域で負電荷を持つリン脂質)、HSPC(成分C:pH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質)及びコレステロール(Chol)を5/5/50/40のモル比となるように混合し、油相中に含まれる上記脂質混合物の濃度が51mg/mlとなるように、有機溶媒(エタノール/酢酸エチル=75/25)405mlを加えて70℃に加温して脂質を溶解し油相とした。
26.7gの硫酸アンモニウムを日局注射用水1080mlに溶解し水相とした。
水相を70℃に加温し、油相を添加した後、回転かき混ぜ式乳化機にて、周速30m/s、19000rpmで30分間混合した。その後、相転位温度以上に加温しながら窒素を送気することで有機溶媒と水とを蒸発させ、約1000mL蒸発濃縮した。410mmol/Lの塩化ナトリウムを透析液として、外水相を透析置換し、さらに410mmol/L透析液を用いて脂質混合物が32mg/mlとなるように希釈し、薬物未内包リポソームを得た
薬物ローディング
1)薬物ローディング液の調製
ドキソルビシン塩酸塩(日本マイクロバイオファーマ株式会社製)4mg/mL溶液を塩化ナトリウム水溶液に加えて溶解させ、薬物溶液とした。つづいて、薬物溶液と薬物未封入リポソーム体積比1:1で混合した。57℃で60分間加熱し、薬物ローディング液とした。
透析液として275mmol/Lスクロース/10mmol/Lヒスチジン水溶液を調製した。この透析液を用いて室温にて透析を行い、薬物ローディング液の外水相に存在する未封入のゲムシタビン塩酸塩と各溶質を除去し、透析液で外水相を置換し、ドキソルビシンを封入したリポソーム組成物を完成した。
a)油相の調製におけるDMPE-PEG2000(成分A)を、DPPE-PEG5000(成分A)に変更した以外は実施例1同様にして、ドキソルビシンを内包したリポソーム組成物を得た。
a)油相の調製におけるDMPE-PEG2000(成分A)及びDSPA(成分B)を添加せず、HSPC(成分C)、コレステロール、DSPE-PEG2000を55/40/5のモル比となるように混合した以外は実施例1と同様にして、ドキソルビシンを内包したリポソーム組成物を得た。
HSPC(成分C)、コレステロール、DSPE-PEG2000を59/40/1のモル比となるように混合した以外は比較例1と同様にして、ドキソルビシンを内包したリポソーム組成物を得た。
HSPC(成分C)、コレステロール、DSPE-PEG2000に加え、DMPCを41/40/5/14のモル比となるように混合した以外は比較例1と同様にして、ドキソルビシンを内包したリポソーム組成物を得た。
a)油相の調製におけるDSPA(成分B)を添加せず、DMPE-PEG2000(成分A)、HSPC(成分C)、コレステロールを5/55/40のモル比となるように混合した以外は実施例1と同様にして、ドキソルビシンを内包したリポソーム組成物を得た。
平均粒子径は、試料を超純水で10倍体積に希釈し、F-PAR(大塚電子社製)を用い、動的光散乱法で体積平均粒子径を測定した。結果を表1に示す。
6週齢雌BALB/cマウスに飽食条件下で、ドキソルビシン塩酸塩の9.4質量%スクロース水溶液(ドキソルビシン溶液とも称する)(0.9mg/ml)、あるいは実施例1、実施例2、比較例1又は比較例3のリポソーム組成物を薬物量として9mg/kg静脈内投与した。ドキソルビシン溶液は投与後5分、15分、30分、1時間、2時間、4時間、8時間、実施例1、実施例2、比較例1及び比較例3のリポソームは投与後5分、1時間、3時間又は4時間、8時間で採血し、遠心分離を施し血漿中のドキソルビシン濃度を定量した。結果を図1に示す。また、実施例1を除く上記血漿サンプルを限外ろ過し、リポソームから放出された血漿中のドキソルビシン濃度を定量した。結果を図2に示す。
6週齢雌BALB/cマウスに飽食条件下で比較例1、比較例2のリポソーム組成物を、薬物量として4mg/kg静脈注射により投与した。投与後5分、4時間、24時間、72時間で採血し、遠心分離を施し血漿中のドキソルビシン濃度を定量した。結果を図3に示す。
この結果より、比較例1に対して比較例2は血中からの薬物消失が速いリポソーム組成物であることが分かる
6週齢雌BALB/cマウスに飽食条件下で比較例1、比較例4のリポソーム組成物を、薬物量として4mg/kg静脈注射により投与した。投与後5分、4時間、24時間、72時間で採血し、遠心分離を施し血漿中のドキソルビシン濃度を定量した。結果を図4に示す。
この結果より、比較例1に対して比較例4は血中からの薬物消失が速いリポソーム組成物であることが分かる
ヒト結腸線癌細胞株であるHCT116細胞をBALB/Cヌードマウスの皮下に移植し皮下腫瘍を形成させた。移植後11日目からドキソルビシン塩酸塩の9.4質量%スクロース水溶液(0.4mg/ml)、実施例1及び比較例1のリポソーム組成物(4mg/kg/週)並びに溶媒参照(9.4質量%スクロース水溶液)を投与開始した。リポソーム組成物及び溶媒参照を静脈投与して、1週間1回を1クール、合計3クール実施した。腫瘍体積をノギスで測定し、皮下腫瘍の抑制効果について評価した。結果を図5に示す。
この結果より、実施例1と比較例1のリポソーム組成物は、ドキソルビシン塩酸塩を投与した場合に比べ同等の高い薬効を示すことが分かる。
ヒト結腸線癌細胞株であるHCT116細胞をBALB/Cヌードマウスの皮下に移植し皮下腫瘍を形成させた。移植後11日目から比較例1及び比較例2のリポソーム組成物(4mg/kg/週)並びに溶媒参照(9.4質量%スクロース水溶液)を投与開始した。リポソーム組成物及び溶媒参照を静脈投与して、1週間1回を1クール、合計3クール実施した。腫瘍体積をノギスで測定し、皮下腫瘍の抑制効果について評価した。結果を図6に示す。
この結果より、比較例2のリポソーム組成物は、比較例1を投与した場合に比べ薬効が減弱することが分かる。
ヒト結腸線癌細胞株であるHCT116細胞をBALB/Cヌードマウスの皮下に移植し皮下腫瘍を形成させた。移植後14日目から比較例1及び比較例4のリポソーム組成物(4mg/kg/週)並びに溶媒参照(9.4質量%スクロース水溶液)を投与開始した。リポソーム組成物及び溶媒参照を静脈投与して、1週間1回を1クール、合計3クール実施した。腫瘍体積をノギスで測定し、皮下腫瘍の抑制効果について評価した。結果を図7に示す。
この結果より、比較例1と比較例4のリポソーム組成物は、ドキソルビシン塩酸塩を投与した場合に比べ同等の高い薬効を示すことが分かる。
BALB/C雌マウスに薬物として投与量9mg/kg、週2回6回投与を、実施例1、実施例2、比較例1、比較例2、比較例3、比較例4のリポソーム組成物、並びに溶媒参照(9,4質量%スクロース水溶液)について実施した。手足症候群を評価することを目的に、一般状態観察を実施した。生存状態のマウスについて足の腫れを観察し、腫れの有無を評価した。また、最終投与1週間後に剖検し、皮膚の赤色化の程度を評価した。結果を表2に示す。
- 直径1mm以下の赤色点0~2個又は微細赤色点複数
+ 直径1mm以上の赤色点1~2個かつ微細赤色点複数、又は直径5mm以上の赤色斑
2+ 直径1mm以上の赤色点3個以上 又は 直径10mm以上の赤色斑
3+ 直径1mm以上赤色点複数 かつ 直径5mm以上の赤色斑複数
以上試験結果を表3にまとめた。本発明の実施例1、実施例2が強い腫瘍抑制効果を示し、さらに手足症候群を低減し、マウスへの致死的な変化が認められない高い治療指数を持つリポソーム製剤を提供できることが分かった。
比較例2はPEG修飾量を低減することで、比較例1が示す長すぎる血中滞留性を低減させ、手足症候群を低減するが、投与直後からリポソーム粒子が血中から消失するため腫瘍へ充分な集積がなされず薬効が減じると推定された。
比較例4はHSPCより平均アルキル鎖が短いDMPE-PEG2000でリポソーム表面をPEG修飾させた。投与直後はリポソーム粒子の消失もドキソルビシンの放出も比較例1同等に充分に抑制され心毒性を抑えつつも腫瘍への高い集積を達成し、比較例1同等の薬効を示した。この脂質は、血中投与後一定時間経過後にPEG脂質が脱離し、血中滞留が短くなり、またPEG脂質が持っていた負電荷も同時に消失し特定の臓器への移行が促進され、手足症候群が悪化したと推定される。
** 足の腫れの発生率(%)=(四肢の内指1本でも腫れが認められた個体数)/(群全体の個体数)×100
Claims (15)
- 親水性高分子が結合したリン脂質、pH6~8の領域で負電荷を持つリン脂質、及びpH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質を少なくとも含むリポソームであって、前記の親水性高分子が結合したリン脂質の平均炭素鎖長が、前記のpH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質の平均炭素鎖長よりも短い、前記リポソーム。
- 前記親水性高分子が、ポリエチレングリコール類、ポリグリセリン類、ポリプロピレングリコール類、ポリビニルアルコール、スチレン-無水マレイン酸交互共重合体、ポリビニルピロリドン及び合成ポリアミノ酸からなる群から選択される一種以上である、請求項1に記載のリポソーム。
- 前記親水性高分子の重量平均分子量が500~10,000である、請求項1又は2に記載のリポソーム。
- 前記の親水性高分子が結合したリン脂質が、pH6~8の領域で負電荷を持つ、請求項1から3の何れか一項に記載のリポソーム。
- 前記の親水性高分子が結合したリン脂質が、親水性高分子が結合したジアシルホスファチジルエタノールアミン、又は親水性高分子が結合したジアシルグリセロールである、請求項1から4の何れか一項に記載のリポソーム。
- 前記のpH6~8の領域で負電荷を持つリン脂質が、ホスファチジン酸、ジステアロイルホスファチジン酸、ホスファチジルグリセロール、ホスファチジルセリン、及びホスファチジルイノシトールからなる群から選択される一種以上である、請求項1から5の何れか一項に記載のリポソーム。
- 前記のpH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質が、ホスファチジルコリン、ホスファチジルエタノールアミン、スフィンゴミエリン、及びカルジオリピンからなる群から選択される一種以上である、請求項1から6の何れか一項に記載のリポソーム。
- 前記のpH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質の平均炭素鎖長が14~24である、請求項1から7の何れか一項に記載のリポソーム。
- 前記の親水性高分子が結合したリン脂質が、ポリエチレングリコールが結合したジパルミトイルホスファチジルエタノールアミン、又はポリエチレングリコールが結合したジミリストイルホスファチジルエタノールアミンであり、前記のpH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質が、水素添加大豆ホスファチジルコリンである、請求項1から8の何れか一項に記載のリポソーム。
- リポソーム膜を構成する脂質全体に対する前記の親水性高分子が結合したリン脂質の含有率が1~20モル%であり、リポソーム膜を構成する脂質全体に対する前記のpH6~8の領域で負電荷を持つリン脂質の含有率が1~20モル%であり、リポソーム膜を構成する脂質全体に対する前記のpH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質の含有率が30~80モル%である、請求項1から9の何れか一項に記載のリポソーム。
- 前記した、親水性高分子が結合したリン脂質、pH6~8の領域で負電荷を持つリン脂質、及びpH6~8の領域で電気的に中性であるリン脂質以外に、さらに別の脂質を一種以上含む、請求項1から10の何れか一項に記載のリポソーム。
- 前記さらに別の脂質が、コレステロールである、請求項1から11の何れか一項に記載のリポソーム。
- リポソームを分散する媒体中に分散している、請求項1から12の何れか一項に記載のリポソーム。
- 請求項1から13の何れか一項に記載のリポソームと、前記リポソームに内包された薬物とを含む、リポソーム組成物。
- 前記薬物の分配係数LogDが1以下である、請求項14に記載のリポソーム組成物。
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