WO2013041749A1 - Procedimiento para el análisis de isoformas de glicoproteínas por electroforesis capilar - Google Patents

Procedimiento para el análisis de isoformas de glicoproteínas por electroforesis capilar Download PDF

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WO2013041749A1
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glycoprotein
capillary
immunoadsorbent
phase
electrophoresis
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PCT/ES2012/070648
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Mercedes DE FRUTOS GÓMEZ
José Carlos DÍEZ-MASA
Gabriel MORALES CID
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Consejo Superior De Investigaciones Científicas (Csic)
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    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/68—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
    • G—PHYSICS
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    • G01N2333/4728—Details alpha-Glycoproteins
    • G—PHYSICS
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    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2550/00—Electrophoretic profiling, e.g. for proteome analysis

Definitions

  • the present invention relates generally to the field of protein analysis, to the analysis of samples by capillary immunoaffinity electrophoresis in particular and specifically to the analysis of glycoprotein isoforms by capillary immunoaffinity electrophoresis. In a particularly preferred embodiment, it refers to the analysis of isoforms of the a-1 acid glycoprotein by capillary immunoaffinity electrophoresis.
  • A-1 acid glycoprotein (AGP) or orosomucoid is a protein with a pl of 2.8 to 3.8 and with a molecular weight between 41 and 43 kDa.
  • the different molecules of the protein due to variations in glycosylation and / or in the peptide sequence are called forms and each group of forms that migrate in the same electrophoresis band is called isoform.
  • Changes in the electrophoretic profile of AGP isoforms in biological samples have been related to different pathological conditions such as cancer, inflammation and cardiovascular and liver diseases, among others [Duche, J. C, Urien, S., Simón, N.
  • CZE free zone capillary electrophoresis
  • a method of purification by AGP immunoaffinity chromatography from human serum and plasma has been described which makes it possible to analyze its isoforms by CZE (Ongay, S., Neusuess, C, Vaas, S.; Diez-Masa, J .C, de Frutos, M., Electrophoresis 2010, 31, 1796-1804).
  • CZE Ongay, S., Neusuess, C, Vaas, S.; Diez-Masa, J .C, de Frutos, M., Electrophoresis 2010, 31, 1796-1804.
  • capillary immunoaffinity electrophoresis using immobilized antibodies is a hybrid technique that combines immunocapture and EC separation.
  • an affinity ligand specifically an antibody
  • attached to a solid support or immobilized directly on the capillary wall is fixed inside the electrophoresis capillary in the area near the entrance.
  • the sample is then introduced, and the antigens from it are captured and subsequently eluted and separated using a dissociating medium of the antigen-binding.
  • antibody followed by the application of a high voltage [Guzman, NA, Phillips, TM, Electrophoresis 201 1, 32, 1565-1578].
  • This IACE technique is the "on-line" combination of an immunoaffinity chromatography stage with an electrophoretic separation stage.
  • IACE is becoming a powerful tool that has unique characteristics, including automation, short sample preparation times and the use of low amounts of sample and reagents.
  • a drawback of the treatment of the sample in the separation capillary is that the sample matrix is introduced directly into the capillaries, which can cause adsorption of the matrix components in the capillary wall.
  • the capillaries are coated with a chemical substance to prevent the matrix components from adsorbing on the capillary wall and to suppress electroosmotic flow (EOF).
  • EEF electroosmotic flow
  • ITP isotachophoresis
  • the present invention describes a new method of immunoaffinity capillary electrophoresis, for the analysis of glycoprotein isoforms in biological fluid samples, where sample preparation is carried out, mostly, within the capillary.
  • the new method combines the immunocapture and preconcentration of the sample within a capillary electrophoresis column, through the use of an immunoadsorbent phase, and the induction of a concentration stage, which make it possible to purify, concentrate and separate the isoforms of the protein when applied high voltage with a minimum of sample manipulation.
  • the immunoadsorbent phase is formed by specific antibodies against the glycoprotein of interest, covalently bound to magnetic particles and is immobilized inside the column by a magnetic field.
  • the new method allows the purification, concentration, separation and determination of the AGP glycoprotein isoforms, from a sample of biological fluid, in a time of about 65 min, practically a quarter of the processes previously described.
  • the process is reproducible and in most steps automatable.
  • the consumption of sample and reagents also represents an improvement over the previously described procedures.
  • FIGURE 1 shows a perspective diagram of the magnetic device formed by two magnets (1) and a clamping device (3) containing a hole (2) through which an electrophoresis capillary can pass.
  • Fig. 1 b shows a frontal scheme of the same device.
  • Fig. 2 is an AGP electrophoregram of a serum sample analyzed according to the IACE online procedure where AGP isoforms can be distinguished. An extension is shown in the lower right.
  • the present invention describes a new method of analysis, based on capillary electrophoresis, which allows the separation of at least one glycoprotein isoform into a sample of biological fluid already obtained, by a process comprising the following steps: (a) injection into an electrophoresis capillary of an immunoadsorbent phase in such a way as to allow immobilization of said immunoadsorbent phase in said electrophoresis capillary,
  • step (b) injection into said electrophoresis capillary of the biological fluid sample containing the glycoprotein to be analyzed so as to allow the capture of the antigen (the glycoprotein) in the immunoadsorbent phase described in step (a);
  • the described method is characterized in that the glycoprotein is a-1 acidic glycoprotein.
  • the method described above is characterized in that the biological fluid sample already obtained is serum or blood plasma.
  • An immunoadsorbent phase is understood as an antibody covalently bound to a solid support, such as a magnetic particle. Therefore, a preferred embodiment of the present invention is characterized in that the phase Immunoadsorbent is formed by specific antibodies against the glycoprotein of interest, covalently bound to magnetic particles. Preferably, said antibodies are anti-a-1-acid glycoprotein.
  • An antibody-glycoprotein binding disrupting agent is understood as a compound or mixture of compounds capable of breaking down antibody-antigen interactions, such as an acid buffer.
  • Capillary electrophoresis is understood as the focus effect, the confinement of an analyte in a narrow band of the capillary due to a discontinuity in the rate of migration of the analyte in two different solutions.
  • the immunoadsorbent phase is prepared by a coupling reaction between a magnetic particle activated with functional groups and an antibody.
  • the functional groups are tosyl groups and the antibody used is human goat anti- ⁇ -1-glycoprotein.
  • the immunoadsorbent phase described in step (a) is immobilized inside the electrophoresis capillary by the application of a magnetic field.
  • the injection of the immunoadsorbent phase of step (a) is performed from a suspension of 1 mg / ml of this phase in a phosphate buffered saline for a time exceeding 100 seconds at a pressure between 50 and 150 mbar. In an even more preferred embodiment, the injection is performed for 240 seconds at a pressure of 10 mOres.
  • step (a) also comprises the addition of an acid buffer.
  • the acid buffer consists of a mixture of 10 mM tricine, 20 mM sodium chloride, 10 mM sodium acetate, 7 M urea and 3.9 mM putrescine, adjusted to pH 4.5, preferably with 2N acetic acid .
  • the injection of the biological fluid sample that Contains the glycoprotein in step (b) is performed in a time between 100 and 900 s at a pressure of 100 mbar. In a more preferred embodiment, the injection time of the biological fluid sample is 500 s.
  • the biological fluid sample prior to step (b), is acidified and centrifuged to obtain the supernatant. In a more preferred embodiment, the biological fluid sample is acidified with 1 M thchloroacetic acid.
  • a wash is performed between steps (b) and (c). In a more preferred embodiment this washing is carried out by injecting an aqueous solution at a pressure between 0.1 and 4 bar and in a time between 1 and 600 seconds. In an even more preferred embodiment, the aqueous solution is Milli-Q water and is injected for 60 seconds at a pressure of 1 bar.
  • the desorption agent used in step (c) is an acidic or basic buffer or a chaotropic substance.
  • the desorption agent is an acid buffer formed by a mixture of 10 mM thcina, 20 mM sodium chloride, 10 mM sodium acetate, 7 M urea and 3.9 mM putrescine, adjusted to pH 4.5.
  • the disrupting agent is injected in the opposite direction from the outlet end of the electrophoresis capillary, preferably for a time of 480 s at 100 mbar pressure.
  • the buffer used as a desorption agent is also used as a separation buffer.
  • step (d) the addition of a solution that induces a focusing effect is performed.
  • a solution of conductivity lower than the solution used in step (c) is used which is also used as a separation buffer.
  • the solution of step (d) is a methanol / water mixture in a 1/3 v / v ratio.
  • the solution used in step (d) is injected so that it covers the immunoadsorbent phase and the rest of the capillary is filled with the solution used in step (c), which is used as a separation buffer. Both ends of the capillary are submerged in the separation buffer.
  • the injection time of the solution is between 1 and 70 seconds and the pressure is between 1 and 100 mbar (millibars). In an even more preferred embodiment, the injection time is 35 seconds and the pressure 50 mbar.
  • the electric field applied in step (e) is greater than 100 V / cm. In a preferred embodiment the electric field is 333 V / cm.
  • the detection of the separated isoforms is carried out close to the outlet end of the capillary.
  • ultraviolet detection is performed, in a more preferred embodiment ultraviolet detection is performed at 214 nm.
  • quantification of the isoforms is performed.
  • the quantification of the isoforms is carried out taking into account the proportion of each of them.
  • the proportion considered consists of the percentage of area of each isoform with respect to the total area;
  • the percentage of area considered is the percentage of corrected area taking into account its apparent electrophoretic velocity.
  • these can be removed from the capillary and employ new particles for each analysis.
  • the removal of the particles is carried out by applying a pressure greater than 5 bar without interrupting the magnetic field.
  • the electrophoresis capillary used is an uncoated fused silica capillary.
  • the capillary measures 90 cm in length and 75 microns in internal diameter.
  • the magnetic device is formed by one or more magnets and a clamping device that allows immobilizing the magnes close to the capillary.
  • the clamping device keeps two magnets separated from each other at a distance between 0.1 and 100 mm and holds the capillary between the two magnets.
  • the two magnets are Nd-Fe-B with a disk geometry of 9 mm in diameter and 5 mm thick, and are at a distance of 1 mm from each other and the capillary is arranged equidistant between them.
  • Figures 1 a and 1 b show an example, in schematic form, of the magnetic device formed by two magnets (1) and a clamping device (3).
  • the clamping device contains a hole (2) that allows an electrophoresis capillary to pass and fix it between the two magnets.
  • the magnetic device is located at a distance between 1 and 16 cm from the capillary inlet. In a more preferred embodiment, the magnetic device is located at a distance of 8.5 cm.
  • the comparison of the electrophoretic profile of at least one isoform of the glycoprotein, obtained using the method or procedure described above, between healthy individuals and sick individuals can be used as a biomarker of different diseases that cause changes, at the physiological level, in the profile of glycoprotein isoforms.
  • the diseases are comprised between cancer, vascular diseases, inflammation and liver diseases.
  • the diseases are abdominal aortic aneurysm and carotid atherosclerosis.
  • the polyclonal human anti- ⁇ -1-glycoprotein antibody developed in goat was purchased from Immune Systems Ltd (Paignton, Devon, United Kingdom). Tricine (Sigma), sodium chloride (Merck), sodium acetate (Merck), urea (Sigma), putrescine (Sigma) and acetic acid (Merck) were used for the preparation of the buffer used as a desorption agent, to activate the particles, and as an electrophoretic separation buffer. Sodium hydroxide (Merck) was used for hair conditioning. Methanol (Merck) was used to perform a focusing effect. Brij 35 (Merck) was used to passivate the filtration devices.
  • Agilent ChemStation software was used to control the instrument and to acquire and process the data.
  • Uncoated fused silica capillaries (90 cm total length, 75 microns internal diameter, 375 microns external diameter) were purchased from Polymicro technologies (Phoenix, Arizona, USA).
  • the magnetic field was applied by two Nd-Fe-B disk magnets, 9 mm in diameter, 5 mm thick with an estimated residual magnetism of 1, 40-1, 46 T (Supermagnete, Zurich, Switzerland).
  • a laboratory-made methacrylate device was used to maintain the magnes with a 1 mm gap between them, and to fix the capillary in the central position between the two magnets. This device was located at a distance of 8.5 cm from the capillary inlet end.
  • a filtration device with a 50 kDa cut-off membrane (MICROCON® YM-50, Millipore, Billerica, MA, USA) used in a Biofuge Stratos centrifuge (Heraeus, Hanau, Germany) was used for the preparation of anti-AGP.
  • a 0.5 ml low-adsorption tube of LoBind protein (Eppendorf Ibérica, Madrid, Spain) was used to carry out the anti-AGP-MB coupling reaction.
  • a Beckman Coulter DU 800 UV / Vis spectrophotometer (Brea, CA, USA) was used for indirect calculation of the amount of immobilized antibody on MBs.
  • 100 ⁇ _ of a commercial suspension of MBs activated with tosyl groups (100 mg / ml_) was added to a 0.5 ml_ LoBind tube (Eppendorf) and washed three times with 100 ⁇ _ of coating buffer (1 M ammonium sulfate in 0.1 M sodium phosphate, pH 7.4).
  • a MICROCON ® centrifuge filter with a 50 kDa membrane of nominal cut was conditioned by treatment with a volume of 500 ⁇ _ of a 5% Brij 35 aqueous solution (w: v) , at 4 ° C for 24 hours.
  • the Brij solution was discarded and the MICROCON ® was rinsed with Milli-Q water (500 ⁇ ), and washed twice with 500 ⁇ of water by passing it through the membrane by centrifugation at 14000 g for 10 min.
  • the MICROCON ® was inverted and centrifuged for 3 min at 1000 g.
  • the solvent of the antibody solution was exchanged from PBS-azide to coating buffer.
  • the solvent of 400 ⁇ disolvente of the anti-AGP solution in PBS-azide (1 mg / mL) was removed by centrifugation (14000 g, 30 min).
  • a volume of 400 ⁇ of the coating buffer was added to the membrane retained antibody and centrifuged at 14000 g for 30 min.
  • the antibody was collected in a new vial by centrifuging the MICROCON ®, face down for 3 minutes at 1000 g. The volume of antibody collected was measured and coating buffer was added to a final volume 250 ⁇ _.
  • This anti-AGP solution was added to the tube containing 10 mg of washed MBs.
  • the mixture was incubated for 24 hours at 37 ° C with constant and homogeneous stirring (combining inclination and rotation). The supernatant was removed, and the material was washed three times with PBS. Finally, unreacted tosyl groups were blocked with 0.2 M Tris HCI prepared in PBS and adjusted to pH 7.4 (12 hours of reaction time at 37 ° C).
  • MBs with bound antibody (MB-Ab) were stored at 4 ° C in PBS at pH 7.4 (containing 0.02% sodium azide (w: v) as a bacteriostatic agent). Conditions for in-line immunocapture, preconcentration and separation of AGP isoforms.
  • Each new electrophoresis capillary was sequentially conditioned with 1 M NaOH (10 min), Milli-Q water (5 min) and separation buffer (BGE) (10 min) at 1 bar.
  • the BGE used consisted of 10 mM tricine, 20 mM sodium chloride, 10 mM sodium acetate, 7 M urea and 3.9 mM putrescine, adjusted to pH 4.5 using acetic acid.
  • the capillary was conditioned with 0.1 M NaOH (10 min), Milli-Q water (5 minutes) and BGE (10 min). Between analyzes the capillary was conditioned at a pressure of 1 bar with 0.1 M NaOH (270 s) and with Milli-Q water (270 s).
  • Step 1 capture MB-Ab by the magnetic field; a 1 mg / ml MB-Ab suspension is injected for 240 s at low pressure (100 mbar).
  • Step 2 wash with BGE (300 s, 1 bar).
  • Step 3 glycoprotein isolation; The sample subjected to acid pretreatment is injected for 500 s at 100 mbar, with the AGP retained in the MB-Ab.
  • Step 4 wash with H 2 O for 60 s at 1 bar.
  • Step 5 BGE injection from the capillary outlet end for 480 s at 100 mbar.
  • Step 6 CH 3 OH / H 2 0 injection (1: 3 v / v), for 35 seconds at 50 mbar.
  • Step 7 elution and separation by application of 30 kV with direct polarity (negative polarity at the output) at 35 ° C detecting the isoforms at 214 nm.
  • Step 8 removal of the MB-Ab at 5.5 bar using Milli-Q water (30 s) and 0.1 M NaOH (30 s).
  • results obtained in the quintuplicate analysis of a serum sample from a healthy individual are summarized in the following table. It contains the average value of the percentage of relative corrected area for each of the AGP isoforms (peaks) observed in the electroforegram of Fig. 2, together with its relative standard deviation (RSD); The table also includes the RSD values for the migration time of each of the isoforms.
  • the corrected area is calculated by multiplying the peak area by its apparent electrophoretic velocity.

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Abstract

La presente invención se refiere a un nuevo procedimiento para la purificación, concentración, separación y determinación de las isoformas de la α-1-glicoproteína ácida (AGP), en muestras de suero sanguíneo humano, por electroforesis capilar. El nuevo procedimiento se basa en laα inmunocaptura y preconcentración de la muestra dentro del capilar de separación, mediante el uso de una fase inmunoadsorbente magnéticamente inmovilizada en el interior del capilar de electroforesis, y la posterior desorción y separación de las isoformas de la glicoproteína tras la inducción de un efecto de enfoque. El nuevo procedimiento puede tener aplicaciones para el uso de la AGP como biomarcador de enfermedades tales como cáncer, enfermedades vasculares y enfermedades inflamatorias.

Description

PROCEDIMIENTO PARA EL ANÁLISIS DE ISOFORMAS DE GLICOPROTEÍNAS POR ELECTROFORESIS CAPILAR.
SECTOR DE LA TÉCNICA
La presente invención se refiere en general al campo del análisis de proteínas, al análisis de muestras por electroforesis capilar de inmunoafinidad en particular y específicamente al análisis de isoformas de glicoproteína por electroforesis capilar de inmunoafinidad. En un modo de realización particularmente preferido, se refiere al análisis de isoformas de la a-1 glicoproteína ácida mediante electroforesis capilar de inmunoafinidad.
ESTADO DE LA TÉCNICA ANTERIOR La a-1 glicoproteína ácida (AGP) u orosomucoide es una proteína con un pl de 2.8 a 3.8 y con un peso molecular comprendido entre 41 y 43 kDa. Las diferentes moléculas de la proteína debidas a variaciones en la glicosilación y/o en la secuencia peptídica se denominan formas y cada grupo de formas que migran en la misma banda de electroforesis se denomina isoforma. Los cambios en el perfil electroforético de isoformas de AGP en las muestras biológicas se han relacionado con diferentes estados patológicos como cáncer, inflamación y enfermedades cardiovasculares y del hígado, entre otros [Duche, J. C, Urien, S., Simón, N., Malaurie, E., Monnet, I., Barre, J., Clin Biochem 2000, 33, 197-202; Hashimoto, S., Asao, T., Takahashi, J., Yagihashi, Y., Nishimura, T., Saniabadi, A. R., Poland, D. C, van Dijk, W., Kuwano, H., Kochibe, N., Yazawa, S., Cáncer
2004, 101, 2825-2836; Poland, D. C, Garda Vallejo, J. J., Niessen, H. W., Nijmeyer, R., Calafat, J., Hack, C. E., Van het Hof, B., Van Dijk, W., J Leukoc Biol
2005, 78, 453-461 ; Budai, L, Ozohanics, O., Ludanyi, K., Drahos, L, Kremmer, T., Krenyacz, J., Vekey, K., Anal Bioanal Chem 2009, 393, 991 -998]. La comparación entre los perfiles electroforeticos de isoformas de AGP existentes en fluidos biológicos de individuos que sufren de diferentes enfermedades y los perfiles de individuos sanos podría ser potencialmente utilizada como biomarcador de la enfermedad con fines diagnósticos, pronósticos y de seguimiento terapéutico. Las diferencias en la composición glucídica y/o en la secuencia peptídica entre las formas de la glicoproteína pueden dar lugar a diferencias en su relación carga/tamaño, siendo por tanto la electroforesis capilar en zona libre (CZE) una técnica adecuada para el análisis de las isoformas de la glicoproteína intacta, es decir sin hidrolizar. El análisis de isoformas de la glicoproteína por CZE requiere el aislamiento previo de la proteína a partir de la muestra biológica. La purificación de AGP a partir de suero humano consiste por lo general en un proceso largo y tedioso basado en el uso de columnas de intercambio iónico o mediante cromatografía de afinidad [Kishino, S. , Miyazaki, K. , J Chromatogr B 1997, 699, 371 -381 ]. Se ha descrito un método de purificación por cromatografía de inmunoafinidad de AGP a partir de suero y plasma humanos que hace posible el análisis de sus isoformas por CZE (Ongay, S. , Neusuess, C , Vaas, S. ; Diez- Masa, J. C , de Frutos, M. , Electrophoresis 2010, 31, 1796-1804). Este método permite realizar la preparación de la muestra para el posterior análisis por CZE y detección de las isoformas de la glicoproteína en un tiempo de 4 horas. Esta metodología se ha aplicado con éxito para la comparación de isoformas de AGP en las muestras de individuos sanos y de pacientes que sufren dos enfermedades vasculares, concretamente aneurisma aórtico abdominal (AAA) y ateroesclerosis carotidea (ACT), mostrando un alto poder predictivo en los grupos sanos vs enfermos, sanos vs AAA, y sanos vs ACT [Puerta, A. , Diez-Masa, J. C , Martín- Álvarez, P. J. , Martín-Ventura, J. L. , Barbas, C , Tuñón, J. , Egido, J. , de Frutos, M. Analyst, 201 1 , 136, 816-822]. Esta última contribución muestra la viabilidad de las isoformas de AGP analizadas por CZE como biomarcador de aterotrombosis.
A pesar de estos logros, el tratamiento de la muestra sigue contribuyendo de forma significativa al tiempo total de análisis. En este sentido, la electroforesis capilar de inmunoafinidad (IACE) empleando anticuerpos inmovilizados es una técnica híbrida que combina la inmunocaptura y la separación por CE. En la IACE en columna, un ligando de afinidad, concretamente un anticuerpo, unido a un soporte sólido o inmovilizado directamente en la pared capilar se fija en el interior del capilar de electroforesis en la zona próxima a la entrada. A continuación se introduce la muestra, y los antígenos de ésta son capturados y posteriormente eluídos y separados empleando un medio disociador de la unión antígeno- anticuerpo, seguido de la aplicación de un alto voltaje [Guzman, N. A., Phillips, T. M., Electrophoresis 201 1 , 32, 1565-1578]. Esta técnica de IACE es la combinación "on-line" de una etapa de cromatografía de inmunoafinidad con una etapa de separación electroforética. La IACE se está convirtiendo en una herramienta de gran alcance que tiene características únicas, que incluyen la automatización, cortos tiempos de preparación de muestra y la utilización de bajas cantidades de muestra y de reactivos. Por otra parte, un inconveniente del tratamiento de la muestra en el capilar de separación es que la matriz de la muestra se introduce directamente en los capilares, lo cual puede ocasionar la adsorción de los componentes de la matriz en la pared capilar. Por lo general, los capilares se recubren con una sustancia química para evitar que los componentes de la matriz se adsorban en la pared de los capilares y para suprimir el flujo electroosmótico (EOF). Además, en la mayoría de los casos es necesario el uso de procedimientos de isotacoforesis (ITP) para aumentar la sensibilidad y la resolución del método. Hasta el momento, no se había conseguido utilizar con éxito esta técnica de IACE en la separación de isoformas de glicoproteínas.
Teniendo en cuenta la utilidad del perfil electroforético de las isoformas de AGP y otras glicoproteínas como biomarcadores de diferentes enfermedades, se hace necesario un método de análisis que permita de forma automática la preparación de la muestra biológica y la separación rápida y eficaz de las diferentes isoformas de estas proteínas.
BREVE DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN
La presente invención describe un nuevo método de electroforesis capilar de inmunoafinidad, para el análisis de isoformas de glicoproteínas en muestras de fluidos biológicos, donde la preparación de la muestra se realiza, de forma mayoritaria, dentro del capilar.
El nuevo método combina la inmunocaptura y preconcentración de la muestra dentro de una columna de electroforesis capilar, mediante el uso de una fase inmunoadsorbente, y la inducción de una etapa de concentración, que permiten purificar, concentrar y separar las isoformas de la proteína al aplicar alto voltaje con un mínimo de manipulación de la muestra. La fase inmunoadsorbente está formada por anticuerpos específicos frente a la glicoproteína de interés, unidos covalentemente a partículas magnéticas y se inmoviliza en el interior de la columna mediante un campo magnético.
El nuevo método permite la purificación, concentración, separación y determinación de las isoformas de la glicoproteína AGP, a partir de una muestra de fluido biológico, en un tiempo de unos 65 min, prácticamente la cuarta parte que los procesos previamente descritos. El proceso es reproducible y en la mayoría de pasos automatizable. El consumo de muestra y reactivos también representa una mejora respecto a los procedimientos previamente descritos.
El análisis del perfil electroforético de isoformas de AGP obtenido mediante la utilización de esta metodología permitiría estudiar su potencial como biomarcador de enfermedades tales como cáncer, inflamación o enfermedades vasculares y del hígado.
DESCRIPCIÓN DE LAS FIGURAS FIGURA 1 . La Fig. 1 a muestra un esquema en perspectiva del dispositivo magnético formado por dos ¡manes (1 ) y un dispositivo de sujeción (3) que contiene un orificio (2) por el que puede pasar un capilar de electroforesis. La fig. 1 b muestra un esquema frontal del mismo dispositivo. FIGURA 2. La Fig. 2 es un electroforegrama de AGP de una muestra de suero analizada según el procedimiento on-line IACE donde se pueden distinguir las isoformas de la AGP. En la parte inferior derecha se muestra una ampliación.
DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN
En un primer aspecto, la presente invención describe un nuevo método de análisis, basado en electroforesis capilar, que permite la separación de al menos una isoforma de glicoproteína en una muestra de fluido biológico ya obtenida, mediante un proceso que comprende los siguientes pasos: (a) inyección en un capilar de electroforesis de una fase inmunoadsorbente de modo tal que permita la inmovilización de dicha fase inmunoadsorbente en dicho capilar de electroforesis,
(b) inyección en dicho capilar de electroforesis de la muestra de fluido biológico que contiene la glicoproteína a analizar de modo que permita la captura del antígeno (la glicoproteína) en la fase inmunoadsorbente descrita en el paso (a);
(c) inyección en dicho capilar de una disolución que contiene un agente disruptor de la unión anticuerpo-glicoproteína de modo que permita la desorción de la glicoproteína capturada en la fase inmunoadsorbente;
(d) inyección en dicho capilar de una disolución que permita inducir un efecto de enfoque de la glicoproteína al aplicar un campo eléctrico;
(e) aplicación de un campo eléctrico a lo largo de dicho capilar de electroforesis de manera que permita separar al menos una isoforma de la glicoproteína, preferentemente se separan diferentes isoformas de la glicoproteína;
(f) detección de dicha(s) isoforma(s) descrita(s) en (e) de la glicoproteína en el extremo de salida del capilar de electroforesis y obtención de su perfil electroforético.
En una realización preferida de la presente invención, el método descrito se caracteriza porque la glicoproteína es la a-1 glicoproteína ácida. Se entiende por muestra de fluido biológico ya obtenida, por ejemplo a partir de una muestra ya obtenida de sangre humana, se ha obtenido el plasma (por centrifugación) o el suero (por coagulación). Por tanto, en una realización preferente de la presente invención, el método descrito anteriormente se caracteriza porque la muestra de fluido biológico ya obtenida, es suero o plasma sanguíneo.
Se entiende como fase inmunoadsorbente un anticuerpo unido covalentemente a un soporte sólido, como por ejemplo una partícula magnética. Por tanto, una realización preferente de la presente invención, se caracteriza porque la fase inmunoadsorbente está formada por anticuerpos específicos frente a la glicoproteína de interés, unidos covalentemente a partículas magnéticas. Preferentemente, dichos anticuerpos son anti-a-1 -glicoproteína ácida. Se entiende como agente disruptor de la unión anticuerpo-glicoproteína un compuesto o mezcla de compuestos capaz de romper las interacciones anticuerpo-antígeno, como por ejemplo un tampón ácido.
En electroforesis capilar se entiende como efecto de enfoque, el confinamiento de un analito en una banda estrecha del capilar debido a una discontinuidad en la velocidad de migración del analito en dos disoluciones diferentes.
La fase inmunoadsorbente se prepara mediante una reacción de acoplamiento entre una partícula magnética activada con grupos funcionales y un anticuerpo. De forma preferida los grupos funcionales son grupos tosilo y el anticuerpo utilizado es anti- α-1 -glicoproteina ácida humana desarrollado en cabra.
En una realización preferida la fase inmunoadsorbente descrita en el paso (a) se inmoviliza en el interior del capilar de electroforesis mediante la aplicación de un campo magnético. En una realización más preferida, la inyección de la fase inmunoadsorbente del paso (a) se realiza a partir de una suspensión de 1 mg/ml_ de esta fase en un tampón fosfato salino durante un tiempo superior a los 100 segundos a una presión comprendida entre 50 y 150 mbar. En una realización aun más preferida la inyección se realiza durante 240 segundos a una presión de l OO mbares.
Para activar el anticuerpo de la fase inmunoadsorbente, en una realización preferida de la presente invención, el paso (a) también comprende la adición de un tampón ácido. En una realización más preferida, el tampón ácido consiste en una mezcla de tricina 10 mM, cloruro de sodio 20 mM, acetato de sodio 10 mM, urea 7 M y putrescina 3,9 mM, ajustado a pH 4.5, preferentemente con ácido acético 2N.
En una realización preferida, la inyección de la muestra de fluido biológico que contiene la glicoproteína en el paso (b) se realiza en un tiempo comprendido entre 100 y 900 s a una presión de 100 mbar. En una realización más preferida el tiempo de inyección de la muestra de fluido biológico es de 500 s. En una realización preferida, de forma previa al paso (b), la muestra de fluido biológico se acidifica y se centrifuga para obtener el sobrenadante. En una realización más preferida la muestra de fluido biológico se acidifica con ácido thcloroacético 1 M. En una realización preferida se realiza un lavado entre las etapas (b) y (c). En una realización más preferida este lavado se realiza mediante la inyección de una disolución acuosa a una presión comprendida entre 0, 1 y 4 bar y en un tiempo comprendido entre 1 y 600 segundos. En una realización aún más preferida, la solución acuosa es agua Milli-Q y se inyecta durante 60 segundos a una presión de 1 bar.
El agente de desorción utilizado en el paso (c) es un tampón ácido o básico o una sustancia caotrópica. En una realización preferida, el agente de desorción es un tampón ácido formado por una mezcla de thcina 10 mM, cloruro de sodio 20 mM, acetato de sodio 10 mM, urea 7 M y putrescina 3,9 mM, ajustado a pH 4.5. En una realización más preferida el agente disruptor se inyecta en sentido inverso desde el extremo de salida del capilar de electroforesis, preferentemente durante un tiempo de 480 s a 100 mbar de presión. En una realización preferida el tampón utilizado como agente de desorción se emplea también como tampón de separación.
Para mejorar la resolución de la separación de las isoformas, en el paso (d) se realiza la adición de una disolución que permita inducir un efecto de enfoque. En una realización preferida se utiliza una disolución de conductividad inferior a la disolución utilizada en el paso (c) que se emplea también como tampón de separación. En una realización más preferida la disolución del paso (d) es una mezcla metanol/agua en una relación 1/3 v/v. En una realización preferida, la disolución utilizada en el paso (d) se inyecta de modo tal que cubra la fase inmunoadsorbente y el resto del capilar quede lleno de la disolución utilizada en el paso (c), que se emplea como tampón de separación. Ambos extremos del capilar están sumergidos en el tampón de separación. En una realización más preferida, el tiempo de inyección de la disolución está comprendido entre 1 y 70 segundos y la presión está comprendida entre 1 y 100 mbares (milibares). En una realización aún más preferida, el tiempo de inyección es de 35 segundos y la presión de 50 mbares. El campo eléctrico aplicado en el paso (e) es superior a 100 V/cm. En una realización preferida el campo eléctrico es de 333 V/cm.
La detección de las isoformas separadas se realiza próxima al extremo de salida del capilar. En una realización preferida, se realiza detección ultravioleta, en una realización más preferida la detección ultravioleta se realiza a 214 nm.
En una realización preferida se realiza cuantificación de las isoformas. La cuantificación de las isoformas se realiza teniendo en cuenta la proporción de cada una de ellas. En una realización preferida la proporción considerada consiste en el porcentaje de área de cada isoforma respecto al área total; en una realización más preferida, el porcentaje de área considerado es el porcentaje de área corregida teniendo en cuenta su velocidad electroforética aparente.
Para la realización de análisis sucesivos en el mismo capilar siguiendo el mismo procedimiento y evitando problemas de contaminación en las partículas magnéticas de inmunoadsorbente, éstas se pueden retirar del capilar y emplear nuevas partículas para cada análisis. En una realización preferida la retirada de las partículas se realiza mediante la aplicación de una presión superior a 5 bares sin necesidad de interrumpir el campo magnético.
En un segundo aspecto de la presente invención, describe un aparato o sistema para el análisis de al menos una isoforma de una glicoproteína en una muestra de fluido biológico por electroforesis capilar a través del método anteriormente descrito; dicho aparato o sistema comprende: a) un capilar de electroforesis;
b) una fase inmunoadsorbente que contiene anticuerpos específicos frente a la glicoproteína de interés;
c) un dispositivo magnético capaz de inmovilizar la fase inmunoadsorbente en el interior del capilar de electroforesis.
El capilar de electroforesis utilizado es un capilar de sílice fundida no recubierto. En una realización preferida el capilar tiene unas medidas de 90 cm de longitud y 75 mieras de diámetro interno.
En una realización preferida el dispositivo magnético está formado por uno o varios ¡manes y un dispositivo de sujeción que permite inmovilizar los ¡manes próximos al capilar. En una realización más preferida el dispositivo de sujeción mantiene dos ¡manes separados entre sí a una distancia comprendida entre 0.1 y 100 mm y sujeta el capilar entre los dos ¡manes. En una realización aun más preferida los dos ¡manes son de Nd-Fe-B con geometría de disco de 9 mm de diámetro y 5 mm de grosor, y se encuentran a una distancia entre sí de 1 mm y el capilar se dispone de forma equidistante entre ellos. Las Figuras 1 a y 1 b muestran un ejemplo, en forma de esquema, del dispositivo magnético formado por dos ¡manes (1 ) y un dispositivo de sujeción (3). El dispositivo de sujeción contiene un orificio (2) que permite pasar un capilar de electroforesis y fijarlo entre los dos ¡manes. En una realización preferida, el dispositivo magnético se sitúa a una distancia comprendida entre 1 y 16 cm de la entrada del capilar. En una realización más preferida, el dispositivo magnético se sitúa a una distancia de 8,5 cm.
En un tercer aspecto de la invención, la comparación del perfil electroforético de al menos una isoforma de la glicoproteína, obtenido utilizando el método o procedimiento descrito anteriormente, entre individuos sanos e individuos enfermos, se puede utilizar como biomarcador de diferentes enfermedades que causan cambios, a nivel fisiológico, en el perfil de isoformas de glicoproteínas. En una realización preferida, las enfermedades se comprenden entre cáncer, enfermedades vasculares, inflamación y enfermedades del hígado. En una realización más preferida, las enfermedades son aneurisma aórtico abdominal y ateroesclerosis carotidea. A lo largo de la descripción y las reivindicaciones la palabra "comprende" y sus variantes no pretenden excluir otras características técnicas, aditivos, componentes o pasos. Para los expertos en la materia, otros objetos, ventajas y características de la invención se desprenderán en parte de la descripción y en parte de la práctica de la invención. Las figuras y ejemplos incluidos se proporcionan a modo de ilustración, y no se pretende que sean limitativos de la presente invención.
EJEMPLOS Los siguientes ejemplos específicos que se proporcionan en este documento de patente sirven para ¡lustrar la naturaleza de la presente invención. Estos ejemplos se incluyen solamente con fines ilustrativos y no han de ser interpretados como limitaciones a la invención que aquí se reivindica. Por tanto, los ejemplos descritos más adelante ¡lustran la invención sin limitar el campo de aplicación de la misma.
EJEMPLO 1
Métodos Experimentales
Reactivos
Todos los reactivos fueron de grado analítico o superior. La cantidad requerida de α-1 -glicoproteína ácida humana estándar, adquirida a Sigma (St. Louis, MO, EE.UU.), se disolvió en agua MILLI-Q (Millipore Corp., Madrid, España), para obtener una disolución de 1 mg/ml que se almacenó a 4 °C. Se utilizó ácido tricloroacético (Merck, Darmstadt, Alemania) para la precipitación ácida correspondiente a la etapa de pretratamiento de la muestra. Las partículas magnéticas de 1 ,08 mieras de diámetro activadas con grupos tosilo (MB) fueron adquiridas a Dynabeads (Invitrogen, Oslo, Noruega). El anticuerpo policlonal anti- α-1 -glicoproteína ácida humana desarrollado en cabra se adquirió a Inmune Systems Ltd (Paignton, Devon, Reino Unido). Se utilizaron tricina (Sigma), cloruro de sodio (Merck), acetato de sodio (Merck), urea (Sigma), putrescina (Sigma) y ácido acético (Merck) para la preparación del tampón empleado como agente de desorción, para activar las partículas, y como tampón de separación electroforética. Se utilizó hidróxido de sodio (Merck) para el acondicionamiento capilar. Se utilizó metanol (Merck) para realizar un efecto de enfoque. Se utilizó Brij 35 (Merck) para pasivar los dispositivos de filtración. Se utilizaron azida de sodio (JT Baker, Deventer, Holanda), cloruro de trizma (Sigma), fosfato disódico (Merck), fosfato monosódico monohidratado (Merck), cloruro de sodio (Merck) y sulfato amónico (Merck) en el acoplamiento MB- anticuerpo. Las muestras de suero de un donante sano fueron proporcionadas por un Hospital, con el correspondiente consentimiento. Las alícuotas de suero fueron almacenadas a -80 °C hasta su uso posterior.
Equipos Las etapas de tratamiento de la muestra y separación electroforética de las isoformas de AGP realizadas dentro del capilar de electroforesis se llevaron a cabo empleando un equipo Agilent 7100 CE (Waldbronn, Alemania) con detección UV-Vis (λ = 214 nm) y una fuente de presión externa. Se utilizó el software Agilent ChemStation para controlar el instrumento y para adquirir y procesar los datos. Los capilares de sílice fundida sin recubrir (90 cm de longitud total, 75 mieras de diámetro interno, 375 mieras de diámetro externo) fueron adquiridos a Polymicro technologies (Phoenix, Arizona, EE. UU).
El campo magnético fue aplicado por dos ¡manes de disco de Nd-Fe-B, de 9 mm de diámetro, 5 mm de espesor con magnetismo residual estimado de 1 ,40-1 ,46 T (Supermagnete, Zurich, Suiza). Se utilizó un dispositivo de metacrilato fabricado en el laboratorio para mantener los ¡manes con una separación de 1 mm entre ellos, y para fijar el capilar en la posición central entre los dos ¡manes. Este dispositivo se ubicó a una distancia de 8,5 cm del extremo de entrada del capilar. Se utilizó un dispositivo de filtración con una membrana con tamaño de corte de 50 kDa (MICROCON ® YM-50, Millipore, Billerica, MA, EE.UU.) empleado en una centrífuga Biofuge Stratos (Heraeus, Hanau, Alemania) para la preparación de anti-AGP. Se utilizó un tubo de baja adsorción de proteína de 0,5 ml_ LoBind (Eppendorf Ibérica, Madrid, España) para llevar a cabo la reacción de acoplamiento anti-AGP-MB. Por último, se utilizó un espectrofotómetro Beckman Coulter DU 800 UV/Vis (Brea, CA, EE.UU.) para el cálculo indirecto de la cantidad de anticuerpo inmovilizado sobre las MBs.
Acoplamiento de los anticuerpos anti-AGP a las partículas magnéticas (MBs).
Se añadieron 100 μΙ_ de una suspensión comercial de MBs activadas con grupos tosilo (100 mg/ml_) a un tubo de 0,5 ml_ LoBind (Eppendorf) y se lavó tres veces con 100 μΙ_ de tampón de recubrimiento (sulfato amónico 1 M en fosfato sódico 0, 1 M, pH 7,4).
Para preparar el anticuerpo para la reacción de acoplamiento, se acondicionó un filtro de centrífuga MICROCON ® con una membrana de 50 kDa de corte nominal mediante tratamiento con un volumen de 500 μΙ_ de una disolución acuosa de Brij 35 al 5% (w:v), a 4 °C durante 24 horas. La disolución de Brij se descartó y el MICROCON ® se enjuagó con agua Milli-Q (500 μί), y se lavó dos veces con 500 μί de agua haciéndolo pasar a través de la membrana por centrifugación a 14000 g durante 10 min. En el siguiente paso, el MICROCON ® se invirtió y se centrifugó durante 3 min a 1000 g. Utilizando el MICROCON ® así preparado se intercambió el disolvente de la solución de anticuerpo pasando de PBS-azida a tampón de recubrimiento. Para ello, se eliminó, por centrifugación (14000 g, 30 min), el disolvente de 400 μί de la solución de anti-AGP en PBS-azida (1 mg/mL). A continuación, se añadió sobre el anticuerpo retenido en la membrana un volumen de 400 μί del tampón de recubrimiento y se centrifugó a 14000 g durante 30 min. Posteriormente, el anticuerpo se recogió en un nuevo vial centrifugando el MICROCON ®, boca abajo durante 3 minutos a 1000 g. Se midió el volumen de anticuerpo recogido y se adicionó tampón de recubrimiento hasta un volumen final de 250 μΙ_. Esta solución de anti-AGP se adicionó al tubo que contenía 10 mg de MBs lavadas. En el siguiente paso, la mezcla se incubó durante 24 horas a 37 °C con agitación constante y homogénea (combinando inclinación y rotación). Se retiró el sobrenadante, y el material se lavó tres veces con PBS. Por último, los grupos tosilo sin reaccionar se bloquearon con Tris HCI 0,2 M preparado en PBS y ajustado a pH 7,4 (12 horas de tiempo de reacción a 37 °C). Las MBs con anticuerpo unido (MB-Ab) fueron almacenadas a 4 °C en PBS a pH 7,4 (conteniendo azida sódica al 0,02% (w:v) como agente bacteriostático). Condiciones para la inmunocaptura en línea, preconcentración y separación de las isoformas de AGP.
Cada capilar de electroforesis nuevo fue acondicionado, de forma secuencial, con NaOH 1 M (10 min), agua Milli-Q (5 min) y tampón de separación (BGE) (10 min) a 1 bar. El BGE utilizado consistió en tricina 10 mM, cloruro sódico 20 mM, acetato sódico 10 mM, urea 7 M y putrescina 3,9 mM, ajustado a pH 4,5 utilizando ácido acético. Al comienzo de cada día, el capilar se acondicionó con NaOH 0, 1 M (10 min), agua Milli-Q (5 minutos) y BGE (10 min). Entre análisis el capilar se acondicionó a una presión de 1 bar con NaOH 0,1 M (270 s) y con agua Milli-Q (270 s).
A partir de muestras de suero humano se llevó a cabo una precipitación ácida para la purificación de AGP, que consistió en la adición de 10 μΙ_ de ácido tricloroacético 1 M a 50 μί de suero (relación 1 :5 v:v). A continuación, la mezcla se centrifugó (3000 g, 5 min) y el sobrenadante se analizó siguiendo el procedimiento que se describe a continuación.
El procedimiento de purificación dentro del capilar consistió en 8 pasos. Paso 1 : captura de las MB-Ab por el campo magnético; se inyecta una suspensión de 1 mg/ml MB-Ab durante 240 s a baja presión (100 mbar). Paso 2: lavado con BGE (300 s, 1 bar). Paso 3: aislamiento de la glicoproteína; la muestra sometida a pretratamiento ácido se inyecta durante 500 s a 100 mbar, quedando la AGP retenida en las MB-Ab. Paso 4: lavado con H2O durante 60 s a 1 bar. Paso 5: inyección de BGE desde el extremo de salida del capilar durante 480 s a 100 mbar. Paso 6: inyección de CH3OH/H20 (1 :3 v/v), durante 35 segundos a 50 mbar. Paso 7: elución y separación por aplicación de 30 kV con polaridad directa (polaridad negativa a la salida) a 35 °C detectando las isoformas a 214 nm. Paso 8: eliminación de las MB-Ab a 5,5 bar empleando agua Milli-Q (30 s) y NaOH 0, 1 M (30 s).
Los resultados obtenidos en el análisis por quintuplicado de una muestra de suero de un individuo sano, se resumen en la siguiente tabla. En ella se recoge el valor medio del porcentaje de área corregida relativa para cada una de las isoformas (picos) de AGP observadas en el electroforegrama de la Fig. 2, junto con su desviación estándar relativa (RSD); la tabla incluye también los valores de RSD para el tiempo de migración de cada una de las isoformas. El área corregida se calcula multiplicando el área de pico por su velocidad electroforética aparente.
N° de pico de Porcentaje de RSD porcentaje de RSD tiempo de AGP área (%) área (%) migración (%)
1 0,8 1 1 ,2 3,9
2 2,0 2,8 3,7
3 5,0 0,9 3,6
4 13, 1 0,5 3,5
5 22,7 0,3 3,4
6 25,4 0,5 3,3
7 18,8 0,4 3,2
8 8,7 1 , 1 3, 1
9 2,8 3,9 3, 1
10 0,8 8,8 3,0

Claims

REIVINDICACIONES
1 . Un método para la separación y determinación de al menos una isoforma de una glicoproteína en una muestra de fluido biológico por electroforesis capilar, dicho método caracterizado porque comprende los siguientes pasos:
(a) inyección en un capilar de electroforesis de una fase inmunoadsorbente para la inmovilización de la fase inmunoadsorbente en el capilar de electroforesis;
(b) inyección de la muestra de fluido biológico que contiene la glicoproteína en dicho capilar de electroforesis para la retención de la glicoproteína en la fase inmunoadsorbente;
(c) inyección de una disolución que contiene un agente disruptor de la unión anticuerpo-glicoproteína en dicho capilar de electroforesis para la desorción de la glicoproteína de la fase inmunoadsorbente;
(d) inyección en dicho capilar de electroforesis de una disolución que permita inducir un efecto de enfoque de la glicoproteína al aplicar un campo eléctrico;
(e) aplicación de un campo eléctrico en dicho capilar de electroforesis para separar al menos una isoforma de la glicoproteína; y
(f) detección de dicha(s) isoforma(s) de la glicoproteína.
2. El método según la reivindicación 1 caracterizado porque la glicoproteína es la α-1 -glicoproteina ácida.
3. El método según las reivindicaciones 1 y 2, caracterizado porque la muestra de fluido biológico es suero o plasma.
4. El método según las reivindicaciones 1 a 3, caracterizado por que la fase inmunoadsorbente está formada por anticuerpos específicos frente a la glicoproteína de interés, unidos covalentemente a partículas magnéticas.
5. El método según la reivindicación 4, caracterizado porque los citados anticuerpos son anti-a-1 -glicoproteína ácida.
6. El método según las reivindicaciones 1 a 5, caracterizado porque en el paso (a), la fase inmunoadsorbente se inmoviliza dentro del capilar de electroforesis mediante la aplicación de un campo magnético.
7. El método según las reivindicaciones 1 a 6, caracterizado porque la inyección de la fase inmunoadsorbente del paso (a) se realiza a partir de una suspensión de 1 mg/ml_ de esta fase en un tampón fosfato salino durante un tiempo de 240 segundos y a una presión de 100 mbares.
8. El método según las reivindicaciones 1 a 7, caracterizado porque el paso (a) también comprende la activación de los anticuerpos mediante la inyección de un tampón ácido.
9. El método según la reivindicación 8, caracterizado porque el citado tampón ácido utilizado consiste en una mezcla de tricina 10 mM, cloruro de sodio 20 mM, acetato de sodio 10 mM, urea 7 M y putrescina 3,9 mM ajustado a pH 4,5.
10. El método según las reivindicaciones 1 a 9, caracterizado porque la inyección de la muestra de fluido biológico que contiene la glicoproteína en el paso (b) se realiza en un tiempo de 500 s a una presión de 100 mbar.
1 1 . El método según las reivindicaciones 1 a 10, caracterizado porque la muestra de fluido biológico que contiene la glicoproteína ha sido previamente acidificada y centrifugada antes de ser inyectada en el capilar de electroforesis.
12. El método según las reivindicaciones 1 a 1 1 , caracterizado porque se realiza un lavado entre los pasos (b) y (c).
13. El método según las reivindicaciones 1 a 12, caracterizado porque el agente disruptor utilizado en el paso (c) es un tampón ácido formado por una mezcla de 10 mM tricina, 20 mM cloruro de sodio, 10 mM acetato de sodio, urea 7 M y 3,9 mM putrescina, ajustado a pH 4,5.
14. El método según la reivindicación 13 caracterizado porque el citado agente disruptor se inyecta desde el extremo de salida del capilar de electroforesis.
15. El método según las reivindicaciones 1 a 14, caracterizado porque la 5 disolución utilizada en el paso (d) tiene una conductividad inferior a la disolución utilizada en el paso (c).
16. El método según la reivindicación 15 caracterizado porque la disolución utilizada en el paso (d) es una mezcla metanol/agua en una relación 1/3 v/v.
10
17. El método según las reivindicaciones 1 a 16, caracterizado porque el campo eléctrico aplicado en el paso (e) es de 333 V/cm.
18. El método según las reivindicaciones 1 a 17, caracterizado porque la 15 determinación de las isoformas de la glicoproteína se realiza cuantificando el porcentaje de área corregida de cada isoforma respecto al área total.
19. Un aparato para la separación de glicoproteínas según el método descrito en cualquiera de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque comprende
20 los siguientes elementos:
a) un capilar de electroforesis,
b) una fase inmunoadsorbente que contiene anticuerpos específicos frente a la glicoproteína de interés, y
c) un dispositivo magnético que permite inmovilizar la fase inmunoadsorbente
25 en el interior del capilar de electroforesis.
20. El aparato según la reivindicación 19 caracterizado porque el capilar de electroforesis utilizado es un capilar de sílice fundida no recubierto.
30 21 . El aparato según las reivindicaciones 19 y 20, caracterizado porque el citado capilar de electroforesis es de 90 cm de longitud y 75 mieras de diámetro interno.
22. El aparato según las reivindicaciones 19 a 21 , caracterizado porque el citado dispositivo magnético descrito en (c) está formado por dos ¡manes y un dispositivo de sujeción que mantiene los ¡manes separados entre sí a una distancia comprendida entre 0, 1 y 100 mm y sujeta el capilar entre los dos
5 ¡manes.
23. El aparato según la reivindicación 22 caracterizado porque los dos ¡manes son ¡manes de disco de Nd-Fe-B, de 9 mm de diámetro y 5 mm de grosor.
10 24. Uso del perfil electroforético de al menos una isoforma de la glicoproteína obtenido utilizando el método descrito en cualquiera de las reivindicaciones 1 a 18, como biomarcador de enfermedades que causan cambios, a nivel fisiológico, en el perfil electroforético de dicha isoforma de la glicoproteína.
15
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ES2328172T3 (es) * 2005-10-21 2009-11-10 Peter Hermentin Procedimiento para caracterizar la glicosilacion de sialoglicoproteinas mediante un numero de isoformas i.

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