WO2012150535A1 - Utilisation de ef-1 et de ses homologues, pour detecter une proteine retrovirale p24 ou un homologue de celle-ci - Google Patents

Utilisation de ef-1 et de ses homologues, pour detecter une proteine retrovirale p24 ou un homologue de celle-ci Download PDF

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WO2012150535A1
WO2012150535A1 PCT/IB2012/052124 IB2012052124W WO2012150535A1 WO 2012150535 A1 WO2012150535 A1 WO 2012150535A1 IB 2012052124 W IB2012052124 W IB 2012052124W WO 2012150535 A1 WO2012150535 A1 WO 2012150535A1
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WO
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protein
homologue
retroviral
subunit
detection
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Application number
PCT/IB2012/052124
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Georges Herbein
Stéphanie Morot-Bizot
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Apex Biosolutions
Universite De Franche-Comte
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    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56983Viruses
    • G01N33/56988HIV or HTLV
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
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    • G01N2333/005Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from viruses
    • G01N2333/08RNA viruses
    • G01N2333/15Retroviridae, e.g. bovine leukaemia virus, feline leukaemia virus, feline leukaemia virus, human T-cell leukaemia-lymphoma virus
    • G01N2333/155Lentiviridae, e.g. visna-maedi virus, equine infectious virus, FIV, SIV
    • G01N2333/16HIV-1, HIV-2
    • G01N2333/161HIV-1, HIV-2 gag-pol, e.g. p55, p24/25, p17/18, p.7, p6, p66/68, p51/52, p31/34, p32, p40

Definitions

  • the present invention relates to the field of biological diagnosis.
  • the invention relates to the use of a subunit of a translation elongation factor Factor 1, or EF-1, or a homologue thereof, or a portion thereof. as a capture agent for the detection of a retroviral protein.
  • the invention also relates to a method and a kit for detecting a retroviral protein.
  • AIDS Acquired Immune Deficiency Syndrome
  • HIV Human Immunodeficiency Virus
  • viral infections including HIV
  • many viral infections are diagnosed by the detection of viral proteins and / or antibodies targeting these viral proteins, in a biological sample, such as blood, of the individual tested.
  • viral proteins used for this purpose, mention may be made of the p24 retroviral protein, or its p26 homologue, derived from the cleavage of the GAG polyprotein, and constituting the capsid of certain viruses, such as HIV-1. 1, HIV-2 and HTLV-1 (Human T-Lymphotropic Virus) and HTLV-2.
  • the diagnostic tests commercially available for the detection of HIV rely, for the most part, on the detection of antibodies directed against one of the virus proteins, p24, gp41, gp120, gp160 or gp105. These tests, however, have the disadvantage of not being able to give a positive result with a good confidence interval before a period of at least 3 weeks from the presumed date of infection. This period of time is necessary for the development of a sufficient immune response so that it can be detectable.
  • Other so-called rapid diagnostic tests (RDTs) or 4 th generation tests (TDR 4G) rely on the combined detection of antibodies to HIV-1 or HIV-2 and retroviral p24. They allow to obtain a result in about 15 minutes.
  • the object of the present invention is to satisfy these needs.
  • the present invention relates to the use of at least one subunit of a Protein Elongation Factor 1, EF-1, an EF-1 homolog, or a C-terminal fragment thereof, as a detection agent for a p24 retroviral protein, or a homologue thereof.
  • EF-1 EF-1
  • EF-1 protein an EF-1 homolog, a subunit thereof, or a C-terminal fragment of a subunit.
  • the inventors have observed that the EF-1 protein, and in particular the EF-1 subunit, can bind an HIV p24 retroviral protein, and form with it a protein complex. This property is advantageously used for the capture and detection of retroviral proteins.
  • the inventors have observed that the combination of EF-1 with a viral GAG polyprotein improves the capture of the p24 protein, and consequently the sensitivity of the detection of this protein.
  • the invention takes advantage of a newly observed property of EF-1, namely its high affinity towards retroviral proteins, and more particularly with respect to GAG and p24.
  • This property makes it possible to detect, with good confidence, the p24 retroviral protein at very low concentrations, for example less than 100 ⁇ g / ml, or even less than 50 ⁇ g / ml, or even less than 3 ⁇ g / ml.
  • the present invention thus makes it possible to achieve early, sensitive, rapid, reliable and inexpensive detection of infection by a virus expressing a p24 protein, or a homologue thereof.
  • diagnosis of a viral infection by means of a method according to the invention may require only the detection of the p24 retroviral protein, or a homologue thereof.
  • the present invention relates to a method for detecting, in a biological sample, the presumed presence of a p24 retroviral protein, or a homologue thereof, said method comprising at least the steps of:
  • step b- contacting the protein complex of step a- with a bi-functional entity, said entity being provided with a group capable of binding specifically to at least one retroviral protein p24, or a homologue thereof, in said complex, and group capable of being detectable, directly or indirectly, by a detection mode, the bringing into contact being carried out under conditions suitable for the establishment of a link between said retroviral protein and said bifunctional entity,
  • a use or a method of the invention may be implemented in vivo, in vitro or ex vivo, and preferably in vitro or ex vivo.
  • the present invention relates to a kit for detecting at least one p24 retroviral protein, or a homologue thereof, comprising:
  • At least one first receptacle comprising at least one subunit of a translation elongation factor-1 protein, EF-1, an EF-1 homolog, or a C-terminal fragment thereof, and
  • At least one second receptacle comprising a bi-functional entity provided with a group capable of binding specifically at least to said p24 retroviral protein, or said homologue thereof, capable of being present in a protein complex formed with the EF-1 subunit, the EF-1 homolog, or the C-terminal fragment thereof, and a group capable of being detectable, directly or indirectly, by a detection mode.
  • the invention makes it possible to improve the sensitivity, rapidity and reliability of the diagnosis of infections by viruses expressing a p24 retroviral protein, or a homologue thereof.
  • the invention makes it possible to propose an early diagnosis of an HIV infection.
  • the invention makes it possible to propose tests and devices for the diagnosis of retroviral infections that are inexpensive, simple, rapid and that make it possible to satisfy the various requirements in the field, both economically and on the plane. public health and safety. Such tests may provide a better guarantee regarding human blood transfusions, establish an early diagnosis of viral infections, and optimize the corresponding therapeutic treatments.
  • the term "detection agent" for a molecule is intended to mean a compound having the property of binding, for example by affinity, said molecule when it is brought into contact with it under conditions appropriate.
  • a biological sample is intended to denote any sample taken from a mammal, in particular a human, or from biological fluids, or tissues or cells eukaryotes cultured in vitro or ex vivo, and susceptible to be infected by a retrovirus containing a p24 retroviral protein.
  • a biological sample may be a sample of a body fluid, such as blood, plasma, leucocyte extracts, saliva, urine, bile, tears, or breast milk, or a supernatant culture medium, a lysate or a cell or tissue extract.
  • a cultured biological tissue may be tissue reconstituted in vitro or tissue harvested from a mammal and cultured ex vivo.
  • the cell cultures contemplated by the invention may be primary cell cultures or cell line cultures. They may be identical or of different types, for example dendritic cells, leucocytes, lymphocytes, monocytes, macrophages, etc., infected or not with HIV.
  • a mammal considered by the invention may be any mammal susceptible to be infected by a retrovirus comprising a p24 retroviral protein, or a homologue thereof, such as a cat or a primate, and in particular a human being.
  • a "viral infection” may be any infection of a cell, tissue or individual, including a human being, with a virus possessing and / or capable of producing by the cell, tissue or tissue. infected individual, a p24 retroviral protein, or a homologue thereof.
  • the term "homologous" is intended to denote, with respect to a first amino acid sequence, any amino acid sequence presenting at least 60% or even at least 70%, at least 80% at least 85%, at least 90%, at least 95%, at least 98%, at least 99% homology with this first amino acid sequence, and having a similar biological activity.
  • Sequence homology can be identified by any technique commonly used in the art by those skilled in the art. For example, sequence homology can be determined using the BLAST computer interface available on the NCBI website at http://blast.ncbi.nlm.nih.gov configured with default settings .
  • a homologue of a first amino acid sequence may differ therefrom, for example, by one or more deletion (s), and / or insertion (s) and / or one or more substitution (s) of a amino acid. These changes can be combined.
  • a homologue of a first amino acid sequence may comprise one or more conservative amino acid substitutions. The modifications presented above can be called, in general, "mutation". Thus, the homologues of the invention also relate to the mutants and amino acid sequence variants of the invention.
  • hydropathic index is an index attributed to amino acids according to their hydrophobicity and charge (Kyte and Doolittle (1982), J. Mol Biol., 157: 105).
  • homologue also means covering amino acid sequences originating from a species other than that selected for the first amino acid sequence, but having the requisite degree of homology and exhibiting the properties necessary for the implementation of the invention.
  • homologues considered by the invention mention may be made with respect to a fragment of EF- ⁇ , a fragment of EF-Tu present in prokaryotes, and with regard to the protein retroviral p24 of HIV-1, HTLV-1 and HTLV-2 p24 proteins, and HIV-2 p26 retroviral protein.
  • amino acid sequences that are suitable for the invention may be natural or synthetic, where appropriate may be obtained by chemical or biological synthesis, or by extraction from a biological tissue, expressing naturally or after transduction, the sequence as well as the different post-translational forms, homologues, mutants or fragments thereof. They can be obtained by any method known to those skilled in the art, especially as described by SAMBROOK et al. (Molecular Cloning: A laboratory Manual, Ed. Cold Spring Harbor, 2001).
  • effective amount means the minimum and sufficient amount to observe the occurrence of a desired effect, namely for example the formation of a complex comprising at least one p24 retroviral protein, or a homologue of that associated with EF-1.
  • Protein Translation Elongation Factor 1 is involved in the phase of elongation of protein synthesis within all cells. It is involved in the GTP-dependent binding of aminoacyl-tRNAs to ribosomes. This ubiquitous protein is called EF-1 protein in eukaryotes and EF-Tu protein in prokaryotes.
  • the EF-1 protein more particularly considered in the present invention may be the human EF-1 protein.
  • the EF-1 protein consists of four subunits, namely EF-1a, EF- ⁇ ⁇ , EF- ⁇ and EF-1 ⁇ .
  • the present invention can implement at least one EF-1 subunit, an EF-1 homolog, or a C-terminal fragment thereof.
  • At least one subunit of the EF-1 protein, or even the entire EF-1 protein, comprising the 4 subunits mentioned above, can be implemented.
  • a subunit of the EF-1 protein suitable for the invention may be selected from EF-1a, EF- ⁇ , EF- ⁇ and EF- ⁇ .
  • an implemented subunit may be EF-1a.
  • the EF-1a, EF- ⁇ , EF- ⁇ and EF- ⁇ subunits considered in the invention can be represented by the sequences identified by the respective SwissProt references P68104, P24534, P26641 and P29692, or a homologue of those -this.
  • An EF-1 homolog suitable for the invention has the previously defined degree of homology, and a similar biological activity.
  • a similar biological activity considered for an EF-1 homolog may be an elongation factor activity and / or an ability to bind a p24 retroviral protein, or a homologue thereof, and / or a retroviral GAG protein, or a homologue of it.
  • an EF-1 homolog suitable for the invention has, if necessary to a different degree, these three aptitudes.
  • the degree of homology according to the invention between EF-1 and a homologue thereof can be satisfied on only a portion of the amino acid sequences considered, and preferably in the C-terminal portion.
  • a C-terminal fragment of EF-1 suitable for the invention is of sufficient length to necessarily possess the property of binding, for example by affinity, a p24 retroviral protein or a homologue thereof.
  • This property can be determined by any method known to those skilled in the art.
  • a C-terminal fragment of a subunit of the EF-1 protein to be tested may be attached to a support, such as a plastic surface.
  • a p24 retroviral protein is then contacted with the C-terminal fragment, and its binding to the fragment can then be detected using a luminescent anti-p24 antibody.
  • a C-terminal fragment of a subunit of the EF-1 protein suitable for the invention may comprise an amino acid sequence ranging from 150 to 250, even from 160 to 240, and preferably from 170 to 230 acids. contiguous amines of the C-terminus of the subunit, it being understood that the amino acids are counted from the last amino acid of the amino acid sequence considered.
  • a C-terminal fragment may comprise 150, 160, 170, 180, 190, or 200 contiguous amino acids of the C-terminus of a subunit of the EF-1 protein.
  • a C-terminal fragment of one of the subunits of the EF-1 protein Preferably, a C-terminal fragment of the EF-1 ⁇ subunit can be used.
  • a homologue of a C-terminal fragment of EF-1 has been represented by a C-terminal fragment of the prokaryotic protein of EF-Tu translation elongation factor.
  • the prokaryotic protein of elongation factor of EF-Tu translation May also be suitable for the invention, the prokaryotic protein of elongation factor of EF-Tu translation.
  • EF-Tu proteins which are suitable for the invention, mention may be made of the EF-Tu proteins of Geobacillus stearothermophilus represented by the sequence 050306 (Swiss-Prot).
  • EF-1 can be implemented in a form associated with a GAG viral polyprotein, or a homologue thereof.
  • Such an implementation advantageously makes it possible to increase the capture and detection sensitivity of the p24 retroviral protein or of a homologue thereof. Also, such an implementation makes it possible to reduce the background noise of the immunocapture methods.
  • the viral GAG polyprotein is expressed by retroviruses, and in particular by lentiviruses. This protein is cleaved during its processing to give the pl7 matrix protein, the p24 capsid protein, the p7 core protein, and the p1, p2 and p6 proteins. This polyprotein is more particularly described by Ganser-Pornillos et al. (Opinion Curr .: Biol., 2008, 18: 203).
  • a GAG viral polyprotein suitable for the invention may be of the same species or strain of virus as the p24 protein, or the homologue thereof.
  • a GAG viral polyprotein suitable for the invention may be chosen from the viral GAG viral proteins, in particular HIV-1 or HIV-2, or HTLV, in particular HTLV-1 or HTLV-2. More particularly, it may be represented by an amino acid sequence identified by SwissProt references P04591 or P 18095, or a homologue thereof.
  • a homolog of a GAG viral polyprotein suitable for the invention has the degree of homology previously defined and a similar biological activity.
  • a biological activity of a GAG polyprotein to be considered for the invention is preferably its ability to bind, under appropriate conditions, to EF-1 and a p24 protein, or a homologue thereof.
  • a homologue of a GAG viral polyprotein may advantageously have at least 75%, at least 80%, at least 85%, at least 90%, at least 95%, at least 98%, and even at least 99% homology with the sequences indicated above.
  • EF-1 and the GAG viral polyprotein, or a homologue thereof can be implemented in a weight ratio GAG / EF-1, less than or equal to 1, and preferably less than 1 .
  • Detectable retroviral protein can be implemented in a weight ratio GAG / EF-1, less than or equal to 1, and preferably less than 1 .
  • a retroviral protein detectable by means of the invention is a p24 retroviral protein, or a homologue thereof.
  • the p24 retroviral protein plays a major role in many lentiviruses, and more particularly in HIV-1 and HTLV-1 and HTLV-2 (Human T-Lymphotrophic) viruses.
  • Virus by constituting the capsid containing the genetic information (RNA) of the virus.
  • RNA genetic information
  • retroviral proteins p24 detectable by the invention include proteins represented by an amino acid sequence identified by the references
  • a p24 retroviral protein, or a homologue thereof, detectable by means of the invention may be selected from the p24 retroviral proteins of HIV-1, HTLV-1 or
  • a virus comprising a retroviral protein detectable by the invention may be chosen from HIV type 1 or type 2, and HTLV-1 and HTLV-2 viruses.
  • a virus comprising a retroviral protein detectable by the invention may be HIV, in particular HIV-1. Detection method
  • a method of the invention for detecting the presumed presence of a p24 retroviral protein, or a homologue thereof, in a biological sample relies on the formation of a protein complex between EF-1 and a p24 retroviral protein. , or the counterpart thereof.
  • a method of the invention for detecting, in a biological sample, the presumed presence of a p24 retroviral protein, or a homologue thereof comprises at least the steps of:
  • step b- contacting the protein complex of step a- with a bifunctional entity, said entity being provided with a group capable of specifically binding at least one retroviral protein p24, or a homologue thereof, in said complex, and a group capable of being detectable, directly or indirectly, by a detection mode, the contacting being carried out under conditions appropriate to the establishment of a link between said retroviral protein and said bi-functional entity ,
  • EF-1 can be immobilized on a support as described below.
  • the biological sample can be used raw or prepared, for example by dilution, purification or addition of various reagents intended, for example, to neutralize enzymatic activities which may be deleterious for a process of the invention.
  • the biological sample is then brought into contact with EF-1 (step a-), and incubated for a time sufficient for the formation of the protein complex EF-1-protein p24 (or a homologue thereof).
  • An incubation time suitable for the invention may vary from a few minutes, for example 10, 20, 30 or 60 minutes, to a few hours, for example 2, 3 or 4 hours.
  • a method of the invention may provide an additional step of removing the excess biological sample, for example by rinsing.
  • a bifunctional entity carrying a first functional group allowing its binding with the p24 protein (or the homologue thereof) in the protein complex and a second functional group allowing, directly or indirectly, its detection is brought to the contact of the protein complex (step b).
  • the incubation time of the bifunctional entity with the protein complex depends on the affinity of the entity for the p24 protein (or a homologue thereof), and may vary from a few minutes to a few hours. For example, the incubation time can be 10, 20, 30 or 60 minutes, or 2, 3 or 4 hours
  • a method of the invention may preferably comprise at least one additional step after step b- and before step c-, of removing the bifunctional entity not bound to the viral protein p24, or to a homologue of it, in step b-.
  • the EF-1 / p24 protein complex (or a homologue thereof) having bound the bifunctional entity is then subjected to a detection step suitable for detection of the second functional group (step c-).
  • a detection step suitable for detection of the second functional group can be done directly, if the second functional group is itself able to emit a detectable signal, such as a luminescent, radioactive or colored signal, or indirectly if the second group is to be brought into contact with and / or react with additional entity (s), such as enzymes, chromogenic or luminescent substrates, or antibodies themselves labeled, to form an assembly capable of emitting a detectable signal.
  • additional entity such as enzymes, chromogenic or luminescent substrates, or antibodies themselves labeled, to form an assembly capable of emitting a detectable signal.
  • the detection means used is naturally adapted to the nature of the signal to be detected.
  • EF-1 can be immobilized on any support usually used in the field of protein binding and detection.
  • a carrier of the invention may be any solid, flexible, flexible or rigid material on or in which EF-1 may be bound, adsorbed, or synthesized in situ.
  • a carrier suitable for the invention may be organic or inorganic in nature, or may be a combination of organic and inorganic material.
  • a support of the invention may consist of a material of cellulose, nitrocellulose, plastic, glass, ceramic, silica, or polymeric resin.
  • a support can be in any form, adapted to the invention.
  • a carrier of the invention may be in the form of particles, gels, sheets, tubes, spheres, for example hollow or microporous, capillaries, dots, films, well plates, strips, or columns.
  • a support according to the invention may be represented by a well plate, a latex ball, a glass ball, a plastic ball, a paper strip, a microtube, a nitrocellulose membrane, a nylon membrane. , a silica chip, a chip coated with gold nanoparticles or magnetic nanoparticles, a glass slide, a porous surface, a microfluidic system, or a magnetized nanoparticle.
  • a support that is suitable for the invention may be a nitrocellulose membrane or any surface suitable for carrying out an ELISA type test, such as a well plate.
  • the immobilization of EF-1 on a support can be carried out directly by one or more covalent bond (s) or by adsorption.
  • the method of immobilizing EF-1 on the support is naturally chosen so as not to affect the properties thereof to bind the p24 protein, or a homologue thereof, and optionally its ability to bind a polyprotein.
  • viral GAG or a homologue thereof
  • EF-1 can be immobilized on a support alone or previously associated with the GAG viral polyprotein (or a homologue thereof). According to a preferred embodiment, the immobilization is carried out directly by adsorption.
  • EF-1 can also be immobilized on a support by covalent bonding.
  • a covalent bond may result from the reaction of at least one of the EF-1 amino acids having a reactive function with a reactive function of the support.
  • a reactive function carried by an amino acid may, for example, be a -SH, -OH, or -COOH function. These functions may, for example, lead to the formation of disulfide bridges by reaction with a thiol function of the support, or of ester or amide function by reaction respectively with an acid, alcohol or amine function of the support.
  • the reactive functions may be carried naturally by the amino acids and / or the support, or may have been introduced on the amino acids and / or the support, by any modification process known to those skilled in the art.
  • EF-1 can be immobilized on a support indirectly, i.e. via a spacer.
  • a spacer suitable for the invention may be attached to EF-1 by chemical reaction, generation of an EF-1-spacer fusion protein, or affinity.
  • the spacer may be attached to the support by any type of appropriate interaction or bonding.
  • a spacer may be a protein sequence, which may preferably comprise from 1 to 200 amino acids, preferably from 6 to 100 amino acids, preferably from 10 to 50 amino acids.
  • the EF-1-spacer linkage can be made by preparing an EF-1-spacer fusion protein or by an affinity binding between EF-1 and the spacer.
  • An EF-1-spacer fusion protein can be prepared by producing a recombinant protein using any molecular biology tool known to those skilled in the art.
  • a fusion protein suitable for the invention may be an EF-1-polyhistidine protein.
  • the polyhistidine group can be linked to the support via ions.
  • an EF-1 fusion protein with streptavidin may be suitable for the invention. This fusion protein can be immobilized on the support by interaction with biotin, previously fixed to the support, by adsorption or covalent bonding.
  • a spacer suitable for the invention may be an antibody specific for EF-1.
  • the antibody can be bound to the support by adsorption.
  • antibodies capable of binding EF-1 and which are suitable as spacer are the anti-EF- ⁇ antibodies sc-68481 and sc-68482 (SANTA CRUZ).
  • Such an implementation may be particularly suitable for developing test form ELISA (Enzyme Linked ImmunoSorbent Assay).
  • a bifunctional entity of the invention is capable of binding at least one protein detectable by the invention in a complex as defined above.
  • a suitable bifunctional entity may preferably be an antibody or an antibody fragment.
  • the bifunctional entity may be a polyclonal or monoclonal antibody, of the IgG, IgA, IgM or IgE type.
  • An antibody suitable for the invention may be selected from mouse, rat, rabbit, goat, horse, llama, human or other primate antibodies.
  • antibody fragment having the binding properties defined above.
  • antibody fragment is meant a portion of an antibody such as Fab, Fab ', F (ab) 2, F (ab') 2, and other similar fragments.
  • Fab fragment of an antibody
  • Fab ' fragment of an antibody
  • F (ab) 2 fragment of an antibody
  • F (ab') 2 fragment of an antibody
  • other similar fragments include any synthetic or genetically modified protein that can act as an antibody by binding to a detectable protein of the invention, in a protein complex as defined above.
  • An antibody or an antibody fragment suitable for the invention may be prepared by any method known to those skilled in the art, as described, for example, in “Making and using antibodies: a practical handbook” (Howard & Kaser, Ed. CRC, 2006).
  • An antibody suitable for the invention may not be specific for a given virus, but may recognize a family of p24 retroviral proteins or homologs thereof belonging to a family of viruses.
  • an antibody or an antibody fragment may be specific for a protein detectable by the invention belonging to a given virus species.
  • an antibody or an antibody fragment may be specific for an HIV p24 retroviral protein, in particular HIV-1.
  • a bifunctional entity according to the invention comprises a group capable of conferring on it the property of being detectable. , directly or indirectly, by a detection mode.
  • a detectable moiety may be conducive to luminescent, colorimetric, or radioactive detection.
  • a detectable group "directly" is a group capable of generating a signal, for example colorimetric, luminescent, in particular fluorescent, or radioactive, which can be detected directly.
  • a luminescent group, and in particular a fluorescent group, that is suitable for the invention may be any marker usually used in the field, for example fluorescein, BODIPY, fluorescent probes of the ALEXA type, coumarin and its derivatives, phycoerythrin and its derivatives. , or fluorescent proteins such as GFP or DsRed.
  • a radioactive group that is suitable for the invention may for example be H, I, I, 99m Tc, 14 C or 32 P.
  • an "indirectly" detectable moiety is a moiety that requires the presence of one or more additional moiety (s), such as enzymes, chromogenic or luminescent substrates, or antibodies themselves labeled, to form a suitable assembly. to emit a detectable signal.
  • additional moiety such as enzymes, chromogenic or luminescent substrates, or antibodies themselves labeled
  • An indirectly detectable group may be a portion Fc that is bare or carrying an affinity marker, such as a polyhistidine tag, a biotin, or a streptavidin, or carrying an enzyme, or an enzymatic substrate capable of generating a signal by hydrolysis.
  • the detection of this group can be carried out, respectively, by the use of a secondary antibody carrying a detectable group capable of recognizing the Fc portion or the affinity marker, or by implementation, as the case may be, of a biotin group or a streptavidin group bearing a detectable group, or by using a substrate specific for the enzyme and capable of emitting a detectable signal by hydrolysis, or by implementing a substrate-specific enzyme .
  • a method of the invention may implement an anti-retroviral protein antibody bearing a functional group detectable directly or indirectly, as defined above.
  • a method of the invention comprising the implementation of a bifunctional entity comprising an indirectly detectable functional group may comprise the use of an antibody carrying a chromogenic enzymatic substrate or an enzyme capable of hydrolyzing the chromogenic enzymatic substrate, or may include the implementation of a primary antibody-secondary antibody pair.
  • the primary antibody may comprise a portion Fc that is bare or bears a marker recognized by the secondary antibody.
  • the secondary antibody may comprise a detectable group directly as defined above or may comprise a chromogenic enzymatic substrate or an enzyme capable of hydrolyzing the chromogenic enzymatic substrate.
  • an enzyme that is suitable for the invention may be an alkaline phosphatase, a tyrosinase, a peroxidase, or a glucosidase.
  • a chromogenic substrate that is suitable for the invention can then be BCIP / MBT (5-bromo-4-chloro-3'-indolyphosphate p-toluidine-know-nitro-blue tetrazolium chloride).
  • a detectable moiety suitable for the invention may be set by any appropriate method at the bifunctional entity. Its location on the bifunctional entity is chosen so as not to affect the ability of the bifunctional entity to bind to a p24 retroviral protein (or a homologue thereof) in a protein complex of the invention.
  • detection mode any system capable of detecting the emission of a signal by a bi-functional entity of the invention.
  • a detection mode of the invention can implement, for example, a detection system in visible colorimetry, such as the naked eye, a detection system by radiochemistry or by nuclear medicine, such as scintigraphy, a detection system by imaging, resonance (MRI), X-ray, light scattering, mass spectrometry, spectroscopy for example by fluorescence or UV-visible, ultrasound, radioactivity, refractometry, optical, piezoelectric , acoustics, electrochemistry, conductivity, pHmetry or biologically.
  • a detection system in visible colorimetry such as the naked eye
  • a detection system by radiochemistry or by nuclear medicine such as scintigraphy
  • a detection system by imaging, resonance (MRI), X-ray, light scattering, mass spectrometry spectroscopy for example by fluorescence or UV-visible, ultrasound, radioactivity, refractometry, optical, piezoelectric , acoustics, electrochemistry, conductivity, pHmetry or biologically.
  • a detection mode more particularly considered by the invention is based on a detection system in visible colorimetry, more particularly to the naked eye.
  • the detection can be done quantitatively or qualitatively.
  • Quantitative detection can lead to the simple conclusion of the presence or absence of the retroviral protein sought. Quantitative detection may allow an assay of the desired protein in the biological sample tested.
  • the quantification of the signal obtained can be carried out by comparing its intensity with that obtained with a control sample devoid of the desired retroviral protein, and, where appropriate, with that obtained with a control sample comprising the retroviral protein sought at a known concentration. .
  • a control sample devoid of the desired retroviral protein
  • a control sample comprising the retroviral protein sought at a known concentration.
  • the reference values of the control sample and control samples may be determined simultaneously with the measurement of the test sample or determined earlier or later. When reference values are determined previously, these can be stored in a database and used for a series of test sample measurements. Kit
  • the present invention also relates to a kit for detecting at least one p24 retroviral protein, or a homologue thereof, comprising:
  • At least one first receptacle comprising at least one subunit of a translation elongation factor-1 protein, EF-1, an EF-1 homolog, or a C-terminal fragment thereof, and
  • At least one second receptacle comprising a bi-functional entity provided with a group capable of binding specifically at least to said p24 retroviral protein, or said homologue thereof, capable of being present in a protein complex formed with the EF-1 subunit, the EF-1 homolog, or the C-terminal fragment thereof, and a group capable of being detectable, directly or indirectly, by a detection mode.
  • kits of the invention may further comprise a GAG viral polyprotein or a homologue thereof.
  • the GAG viral polyprotein or the homologue thereof may be disposed of in an additional receptacle or in the same receptacle as that comprising EF-1.
  • a kit of the invention may further comprise at least one receptacle comprising a p24 protein, or a homologue thereof, in known amount or concentration.
  • This embodiment may allow the realization of a positive control or a standard curve of p24 protein (or homologue thereof).
  • a kit of the invention may furthermore comprise at least one implementation instruction of EF-1, where appropriate associated with GAG (or a homologue thereof), and the bifunctional entity for detecting the presumed presence of a p24 retroviral protein (or a homologue thereof) in a biological sample.
  • EF-1 can be used as a capture agent for a p24 retroviral protein or a homologue thereof.
  • This aspect of the invention can be implemented for purposes of purifying a biological sample, or enriching a p24 protein sample.
  • a step of precipitation or separation of the complex obtained can be carried out by any means known to those skilled in the art.
  • the complex is then dissociated to recover the retroviral protein.
  • the dissociation step may be carried out by any method known in the art, such as the use of a suitable salt buffer.
  • this embodiment can be carried out by implementing a chromatography column functionalized by means of EF-1.
  • FIG. 1 illustrates the variations in the intensity of the colorimetric signal, in% of the maximum signal obtained by hydrolysis of the BCIP-NBT substrate by the alkaline phosphatase of the secondary antibody attached to the primary mouse antibody anti-retroviral protein p24 bound to the EF-1 ⁇ / p24 protein complex, depending on the concentration thereof.
  • the smooth curve represents the logarithmic transformation of the results.
  • FIG. 2 illustrates the variations in the intensity of the colorimetric signal, in% of the maximum signal resulting from the hydrolysis of the BCIP-NBT substrate by the alkaline phosphatase of the secondary antibody fixed to the mouse anti-p24 primary antibody fixed EF-1 ⁇ / GAG / p24 complex as a function of p24 protein concentration.
  • EF-1a and GAG are implemented, respectively, at 100 and 50 ng / ⁇ .
  • the smooth curve represents the logarithmic transformation of the results obtained.
  • FIGS. 3 and 4 show the variation of the intensity of the colorimetric signal as a percentage of the maximum signal obtained during the experiment, resulting from the hydrolysis of BCIP-NBT by the alkaline phosphatase of a secondary antibody attached to the antibody.
  • anti-p24 mouse primer itself attached to the EF-1a / GAG / p24 complex as a function of retroviral protein p24 and as a function of the concentration of viral polyprotein GAG implemented at a rate of 25 ng / ⁇ . ( Figure 3) and 100 ng / ⁇ . ( Figure 4).
  • the EF concentration-the implementation is constant, at 100 ng / ⁇ .
  • FIG. 5 illustrates the variation of the colorimetric signal, as a percentage of the maximum signal obtained, by hydrolysis of the BCIP-NBT substrates by the alkaline phosphatase of the secondary antibody attached to the primary anti-p24 antibody, which is itself attached to the EF-complex.
  • / GAG / p24 as a function of the p24 protein concentration and the nature of the primary antibody used.
  • EF-la and GAG are implemented, respectively, at 100 ng / ⁇ and 50 ng / ⁇ .
  • the primary mouse antibodies used are sc-69,728 (diamond), sc-65,462 (square), sc-57,827 (triangle) and sc-73,300 (cross), respectively, of SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY.
  • the secondary antibody is a goat anti-mouse antibody labeled with diluted alkaline phosphatase (SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY sc.-2008).
  • FIGS. 7 and 8 show the variation of the intensity of the colorimetric signal, as a percentage of the maximum signal, after hydrolysis of the BCIP-NBT substrate by the alkaline phosphatase of the secondary antibody attached to the primary anti-p24 antibody, itself even fixed to the EF-1 ⁇ / GAG / p24 complex as a function of the concentration of p24 protein, and according to the nature, on the one hand, of the primary antibody, and, on the other hand, of the secondary antibody.
  • the primary mouse antibodies used are, respectively, sc-69728 (rhombus), sc-65462 (square), sc-57 827 (triangle), sc-73300 (cross), all of SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY.
  • the secondary goat anti-mouse antibodies tested are respectively S3721 from PROMEGA (FIG. 7) and SE-15065 from SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY (FIG. 8).
  • the EF-1 subunit of the human EF-1 protein is adsorbed on the surface of a nitrocellulose membrane by depositing 1 ⁇ l of a solution comprising 100 ⁇ g / ⁇ of human EF-1 protein (PROSPEC reference PRO -773). The deposits, or spots, are made in line on the membrane and each spaced about 1 cm.
  • the membrane is allowed to dry, and non-specific binding sites of the membrane are saturated by incubation for 1 hour in saturation solution (5% skim milk in Tris Buffer Saline-2.5% Tween 20 (TBS-T sold by Sigma-Aldrich) at room temperature.
  • saturation solution 5% skim milk in Tris Buffer Saline-2.5% Tween 20 (TBS-T sold by Sigma-Aldrich) at room temperature.
  • the membrane is rinsed and then is incubated in a solution of anti-p24 mouse primary antibody to HIV-I diluted to l / 50th (SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY, sc-69728).
  • the membrane is rinsed in TBS-T and then incubated for 30 minutes at room temperature in a secondary antibody solution labeled mouse anti-goat alkaline phosphatase diluted to l / 2500th (SANTACRUZ BIOTECHNOLOGY sa- 2008).
  • the membrane is rinsed again in a solution of TBS-T, then in a solution of TBS (Tris Buffer Saline).
  • the membrane is rinsed with distilled water and the intensity of the coloring of the different spots is read qualitatively to the naked eye.
  • results are expressed as percentage of intensity relative to the maximum signal obtained in the experiment. A value corresponding to 50% of the maximum signal and retained as positively indicating the presence of the viral protein p24.
  • the results obtained presented in FIG. 1 show, on the one hand, that the EF-1 ⁇ subunit of the EF-1 protein, and the p24 retroviral protein, interact with each other.
  • the formed complex can be detected with good sensitivity at very low concentrations of p24 retroviral protein (50% of maximal signal at about 3 ⁇ g / ml).
  • This good detection sensitivity advantageously makes it possible to diagnose an infection early in an individual with a virus expressing a p24-type retroviral protein such as HIV-1 (or p26 in HIV-2).
  • Example 2
  • the protocol implemented in this example is similar to that of Example 1, except that it comprises an additional step of depositing on EF-1 ⁇ spots a GAG viral polyprotein solution (50 ng / ml). ⁇ , Millipore).
  • the primary and secondary antibodies used are the same as those of Example 1 and are used at the same concentration.
  • Such a concentration is representative of a very early stage of infection by a virus, which is generally not detectable by other diagnostic tests currently available, including those based on the detection of p24, and potentially more than those based on detection of the presence of viral DNA or RNA.
  • the GAG protein was tested at the concentration, respectively, of 25 ng / ⁇ ( Figure 3) and 100 ng / ⁇ ( Figure 4), while keeping constant the concentration of subunits EF-1a (100 ng / ⁇ ). ).
  • FIGS. 2 (GAG 50 ng / ⁇ ), 3 (GAG 25 ng / ⁇ ) and 4 (GAG 100 ng / ⁇ ) shows, a weight ratio GAG / EF- ⁇ of less than 1 leads to the best result, and allows the detection of p24 retroviral protein at very low concentrations.
  • the antibodies tested are mouse monoclonal antibodies to HIV-1 p24 protein, sc-69728, sc-65462, sc-57827, sc-73300 (SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY).
  • the concentrations used are those of Example 1.
  • the secondary antibody is also that of Example 1.
  • the primary mouse antibodies used are, respectively, sc-69728 (rhombus), sc-65462 (square), sc-57827 (triangle) and sc-73300 (cross), all of SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY.
  • mice antibodies Two alkaline phosphatase-coupled goat secondary antibodies, mouse antibodies were used, namely S 3721 (PROMEGA, Figure 6) and SE-15065 (SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY, Figure 7). These antibodies were used as described in examples above ie diluted l / 2500 th.
  • FIGS. 7 and 8 show that the nature of the secondary antibody does not substantially affect the detection of the p24 protein, nor the detection threshold, achieved by means of the different primary antibodies previously tested.

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Abstract

La présente invention concerne l'utilisation d'au moins une sous-unité d'une protéine Facteur d'Elongation de la traduction 1, EF-1, d'un homologue de celle-ci, ou d'un fragment C-terminal de ceux-ci, comme agent de détection d'une protéine rétrovirale p24, ou d'un homologue de celle-ci.

Description

Utilisation de EF-1 et de ses homologues, pour détecter une protéine rétrovirale p24 ou un homologue de celle-ci
La présente invention se rapporte au domaine du diagnostic biologique.
Plus précisément l'invention concerne l'utilisation d'une sous-unité d'une protéine Facteur d'Elongation de la traduction 1, ou EF-1, ou d'un homologue de celle-ci, ou d'une portion de ceux-ci, comme agent de capture pour la détection d'une protéine rétrovirale. L'invention concerne également un procédé et un kit de détection d'une protéine rétrovirale.
Le Syndrome de l'ImmunoDéficience Acquise (SIDA) est une maladie infectieuse due au Virus de l'Immunodéficience Humaine (VIH), qui se caractérise notamment par la destruction des cellules immunitaires chez l'individu infecté, et qui a fréquemment pour issue la mort du patient, des suites de maladies opportunistes.
Selon les estimations de l 'United Nations Programme on HIV/AIDS (UNAIDS), plus de 33 millions de personnes dans le monde seraient atteintes du SIDA. Transmissible par voies sexuelle et sanguine, et également de la mère à l'enfant, cette maladie infecte 2 à 3 millions de nouvelles personnes chaque année. Très souvent, la transmission se fait alors que la personne infectée n'a pas été diagnostiquée comme telle, et n'a en conséquence pas pris les mesures de précaution nécessaires pour prévenir la contamination d'autrui. Un diagnostic tardif de cette maladie chez une personne nouvellement infectée est donc l'une des raisons majeures conduisant à l'augmentation et au renouvellement de la population mondiale infectée par le VIH.
Il est ainsi primordial de pouvoir diagnostiquer la présence du VIH chez un individu le plus rapidement possible après son infection.
Actuellement, beaucoup d'infections virales, et notamment le VIH, sont diagnostiquées par la détection de protéines virales et/ou d'anticorps ciblant ces protéines virales, dans un échantillon biologique, comme le sang, de l'individu testé. A titre d'exemple de protéines virales mises en œuvre à cette fin, on peut citer la protéine rétrovirale p24, ou son homologue p26, issue du clivage de la polyprotéine GAG, et constitutive de la capside de certains virus, tel que le VIH-1, VIH-2 et les virus HTLV-1 (Human T-Lymphotropic Virus) et HTLV-2.
Les tests diagnostics commercialement disponibles pour la détection du VIH reposent, pour la plupart, sur la détection d'anticorps dirigés contre l'une des protéines du virus, p24, gp41, gpl20, gpl60 ou gpl05. Ces tests présentent, toutefois, l'inconvénient de ne pas pouvoir donner un résultat positif avec un bon intervalle de confiance avant une période d'au moins 3 semaines à compter de la date présumée de l'infection. Cette période de temps est nécessaire au développement d'une réponse immunitaire suffisante pour qu'elle puisse être détectable. D'autres tests dits de diagnostic rapide (TDR) ou de 4eme génération (TDR 4G) s'appuient sur la détection combinée d'anticorps anti-VIH-1 ou anti-VIH-2 et de la protéine rétrovirale p24. Ils permettent l'obtention d'un résultat en environ 15 minutes. Cependant, leur sensibilité est relativement faible, et ils ne peuvent généralement détecter la protéine rétrovirale p24 à des concentrations inférieures à environ 50 pg/ml. Un résultat positif avec un intervalle de confiance raisonnable requiert la présence de la protéine rétrovirale p24 à des concentrations supérieures à environ 100 pg/ml. Ces tests peuvent donc donner de faux négatifs pour des patients infectés peu de temps avant le diagnostic, par exemple moins de 15 jours ou moins d'un mois. Ils doivent donc être renouvelés plusieurs semaines après l'obtention d'un résultat négatif afin de confirmer ou d'infirmer celui-ci. Ceci peut se traduire par une augmentation substantielle des coûts liés aux politiques sanitaires et de prévention de la maladie.
D'autres tests de diagnostic s'appuient sur la détection de la présence d'ADN ou d'ARN viraux, par exemple par PCR ou RT-PCR. Bien que de meilleure sensibilité que les tests précédents, ils sont d'un coût plus élevé, et nécessitent des locaux et une installation spécifiques. Ils sont donc peu accessibles aux pays en voie de développement n'ayant pas les ressources et les infrastructures adéquates à leur mise en place. Qui plus est, ils impliquent des manipulations précises et longues, habituellement 48 heures, entre le prélèvement de l'échantillon à tester et l'obtention du résultat. Au vu de ce qui précède, il apparaît qu'il demeure un besoin de disposer d'un test de détection d'une infection virale qui soit rapide, simple, avec un seuil de sensibilité permettant un diagnostic précoce, et de faible coût.
Il demeure également un besoin de disposer d'un test de détection d'une infection virale fiable ne requérant la détection que d'une protéine rétrovirale.
II existe encore un besoin de disposer d'un nouvel outil de détection de protéines rétrovirales qui soit robuste et de bonne sensibilité.
Il existe également un besoin de disposer d'un nouvel outil de capture de protéines rétrovirales.
Il existe encore un besoin de disposer d'un test de détection de protéines rétrovirales simple, rapide, reproductible, sensible, robuste et peu coûteux.
Il existe également un besoin de disposer d'un test de diagnostic permettant la détection précoce d'une infection virale.
Enfin, il existe un besoin d'un test de diagnostic du VIH fiable, rapide, sensible, robuste, reproductible et peu coûteux. La présente invention a pour objet de satisfaire à ces besoins.
Selon un premier objet, la présente invention concerne l'utilisation d'au moins une sous-unité d'une protéine Facteur d'Elongation de la traduction 1 , EF- 1 , d'un homologue de EF- 1 , ou d'un fragment C-terminal de ceux-ci, comme agent de détection d'une protéine rétrovirale p24, ou d'un homologue de celle-ci.
Sauf indications contraires, par la suite, lorsque le terme « EF-1 » est utilisé seul, il vise à désigner, indifféremment, la protéine EF-1, un homologue de EF-1, une sous-unité de ceux- ci, ou un fragment C-terminal d'une sous-unité.
De manière inattendue, et comme détaillé dans les exemples, les inventeurs ont observé que la protéine EF- 1 , et notamment la sous-unité EF- 1 a, peut lier une protéine rétrovirale p24 du VIH, et former avec elle un complexe protéique. Cette propriété est avantageusement mise à profit pour la capture et la détection de protéines rétrovirales. En outre, les inventeurs ont observé que l'association de EF-1 avec une polyprotéine virale GAG améliore la capture de la protéine p24, et par conséquent la sensibilité de la détection de cette protéine.
Ainsi, l'invention tire profit d'une propriété nouvellement observée de EF-1, à savoir sa forte affinité vis-à-vis des protéines rétrovirales, et plus particulièrement vis-à-vis de GAG et de p24. Cette propriété permet la détection, avec une bonne confiance, de la protéine rétrovirale p24 à de très faibles concentrations, par exemple inférieure à 100 pg/ml, voire inférieure à 50 pg/ml, voire encore inférieure à 3 pg/ml.
La présente invention permet donc de réaliser une détection précoce, sensible, rapide, fiable et peu coûteuse d'une infection par un virus exprimant une protéine p24, ou un homologue de celle-ci. Avantageusement, le diagnostic d'une infection virale au moyen d'une méthode selon l'invention peut ne requérir que la détection de la protéine rétrovirale p24, ou d'un homologue de celle-ci.
Selon un autre objet, la présente invention concerne un procédé pour détecter, dans un échantillon biologique, la présence présumée d'une protéine rétrovirale p24, ou d'un homologue de celle-ci, ledit procédé comprenant au moins les étapes consistant à :
a- mettre en contact ledit échantillon avec une quantité efficace d'au moins une sous- unité d'une protéine facteur d'élongation de la traduction 1 , EF-1, d'un homologue de EF-1, ou d'un fragment C-terminal de ceux-ci, dans des conditions appropriées à la formation d'au moins un complexe protéique entre la sous-unité de EF-1, l'homologue de EF-1, ou le fragment C- terminal de ceux-ci, et au moins une protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci,
b- mettre en contact le complexe protéique de l'étape a- avec une entité bi- fonctionnelle, ladite entité étant dotée d'un groupement apte à se lier spécifiquement au moins à une protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci, dans ledit complexe, et d'un groupement apte à être détectable, directement ou indirectement, par un mode de détection, la mise en contact étant effectuée dans des conditions appropriées à l'établissement d'une liaison entre ladite protéine rétrovirale et ladite entité bi- fonctionnelle,
c- détecter ladite entité bi-fonctionnelle, la détection de ladite entité bi-fonctionnelle liée étant indicatrice de la présence de la protéine rétrovirale p24, ou de l'homologue de celle-ci.
Selon un mode de réalisation, une utilisation ou un procédé de l'invention peuvent être mis en œuvre in vivo, in vitro ou ex vivo, et de préférence in vitro ou ex vivo.
Selon encore un autre objet, la présente invention concerne un kit de détection d'au moins une protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci, comprenant :
- au moins un premier réceptacle comprenant au moins une sous-unité d'une protéine facteur d'élongation de la traduction 1, EF-1, un homologue de EF-1, ou un fragment C-terminal de ceux-ci, et
- au moins un second réceptacle comprenant une entité bi-fonctionnelle dotée d'un groupement apte à se lier spécifiquement au moins à ladite protéine rétrovirale p24, ou ledit homologue de celle-ci, susceptible d'être présent(e) dans un complexe protéique formé avec la sous-unité de EF-1, l'homologue de EF-1, ou le fragment C-terminal de ceux-ci, et un groupement apte à être détectable, directement ou indirectement, par un mode de détection.
Avantageusement, l'invention permet une amélioration de la sensibilité, de la rapidité et de la fiabilité du diagnostic d'infections par des virus exprimant une protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci.
Avantageusement encore, l'invention permet de proposer un diagnostic précoce d'une infection par le VIH.
Avantageusement encore, l'invention permet de proposer des tests et des dispositifs pour le diagnostic d'infections par rétrovirus, peu coûteux, simples, rapides, et permettant de satisfaire aux différentes exigences dans le domaine, tant sur le plan économique que sur le plan de la santé publique et de la sécurité sanitaire. De tels tests peuvent permettre d'apporter une meilleure garantie concernant les transfusions sanguines humaines, d'établir un diagnostic précoce des infections virales, et d'optimiser les traitements thérapeutiques correspondants.
Au sens de l'invention, par « agent de détection » d'une molécule on entend désigner un composé doté de la propriété de lier, par exemple par affinité, ladite molécule lorsqu'il est mis en contact avec celle-ci dans des conditions appropriées.
Selon l'invention, par « échantillon biologique » on entend désigner tout prélèvement issu d'un mammifère, notamment humain, ou de liquides biologiques, ou de tissus ou de cellules eucaryotes cultivé(e)s in vitro ou ex vivo, et susceptibles d'être infecté(e)(s) par un rétrovirus contenant une protéine rétrovirale p24. Par exemple, un échantillon biologique peut être un prélèvement d'un fluide corporel, tel que le sang, le plasma, les extraits leucocytaires, la salive, l'urine, la bile, les larmes, ou le lait maternel, ou encore un surnageant de milieu de culture, un lysat ou un extrait cellulaire ou tissulaire.
Un tissu biologique en culture peut être un tissu reconstitué in vitro ou être un tissu prélevé chez un mammifère et cultivé ex vivo.
Les cultures de cellules considérées par l'invention peuvent être des cultures de cellules primaires ou des cultures de lignées cellulaires. Elles peuvent être identiques ou de différentes natures, comme par exemple des cellules dendritiques, des leucocytes, des lymphocytes, des monocytes, des macrophages, etc., infectées ou non par le VIH.
Un mammifère considéré par l'invention peut être tout mammifère susceptible d'être infecté par un rétrovirus comprenant une protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci, tel qu'un chat ou un primate, et notamment un être humain.
Une « infection virale » peut être toute infection d'une cellule, d'un tissu ou d'un individu, notamment d'un être humain, par un virus possédant et/ou apte à faire produire par la cellule, le tissu ou l'individu infecté(e), une protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci.
Selon l'invention, par « homologue », on entend désigner, à l'égard d'une première séquence d'acides aminés, toute séquence d'acides aminés présentant au moins 60 %, voire au moins 70 %, au moins 80 %, au moins 85 %, au moins 90 %, au moins 95 %, au moins 98 %, au moins 99 % d'homologie avec cette première séquence d'acides aminés, et présentant une activité biologique similaire.
Une homologie de séquence peut être identifiée par toute technique habituellement utilisée dans le domaine par l'homme de l'art. A titre d'exemple, une homologie de séquence peut être déterminée par utilisation de l'interface informatique BLAST disponible sur le site Internet NCBI à l'adresse http://blast.ncbi.nlm.nih.gov configurée avec les paramètres par défaut.
Un homologue d'une première séquence d'acides aminés peut différer de celle-ci, par exemple, par une ou plusieurs délétion(s), et/ou insertion(s) et/ou une ou plusieurs substitution(s) d'un acide aminé. Ces modifications peuvent être combinées. Un homologue d'une première séquence d'acides aminés peut comprendre une ou plusieurs substitutions conservatrices d'acides aminés. Les modifications présentées ci-dessus peuvent être dénommées, de manière générale, « mutation ». Ainsi, les homologues de l'invention concernent également les mutants et les variants de séquences d'acides aminés de l'invention.
A titre d'exemple de mutations que l'on peut considérer dans la présente invention, on peut mentionner le remplacement d'un ou de plusieurs résidus d'acides aminés par des résidus d'acides aminés ayant un indice hydropathique similaire, sans pour autant affecter de manière sensible les propriétés biologiques de la protéine, et notamment sa propriété d'interaction avec sa protéine partenaire. L'indice hydropathique est un indice attribué aux acides aminés en fonction de leur hydrophobicité et de leur charge (Kyte et Doolittle (1982), J. Mol. Biol., 157: 105).
Par "homologue" au sens de l'invention on entend également couvrir des séquences d'acides aminés issues d'une autre espèce que celle retenue pour la première séquence d'acides aminés, mais possédant le degré d'homologie requis et manifestant les propriétés nécessaires à la mise en œuvre de l'invention. A titre d'exemple d'homologues considéré par l'invention, on peut citer à l'égard d'un fragment de EF-Ι α, un fragment de EF-Tu présent chez les procaryotes, et à l'égard de la protéine rétrovirale p24 du VIH-1 , les protéines p24 de HTLV-1 et HTLV-2, et la protéine rétrovirale p26 du VIH-2.
Les séquences d'acides aminés convenant à l'invention peuvent être naturelles ou synthétiques, le cas échéant susceptibles d'être obtenues par synthèse chimique ou biologique, ou par extraction à partir d'un tissu biologique, exprimant naturellement ou après transduction, la séquence, ainsi que les différentes formes post-traductionnelles, les homologues, les mutants ou les fragments de celle-ci. Elles peuvent être obtenues par tout procédé connu de l'homme de l'art, notamment comme décrit par SAMBROOK et al. (Molecular Cloning : A laboratory Manual, Ed. Cold Spring Harbor, 2001).
Au sens de l'invention, par « environ » on entend indiquer que la valeur qui suit ce terme est vérifiée en prenant en compte les limites d'erreurs expérimentales acceptables pour l'homme du métier.
Au sens de l'invention, « quantité efficace » signifie la quantité minimale et suffisante pour observer la survenue d'un effet recherché, à savoir par exemple la formation d'un complexe comprenant au moins une protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci, associée à EF-1.
Protéine facteur d'élongation de la traduction 1 (protéine EF-1)
La protéine Facteur d'Elongation de la traduction 1 , ou protéine EF-1 , est impliquée dans la phase d'élongation de la synthèse protéique au sein de toutes cellules. Elle intervient dans la liaison GTP-dépendante des aminoacyl-ARNts aux ribosomes. Cette protéine, ubiquitaire, est appelée protéine EF-1 chez les eucaryotes et protéine EF-Tu chez les procaryotes.
La protéine EF-1 plus particulièrement considérée dans la présente invention peut être la protéine EF- 1 humaine.
La protéine EF-1 est constituée de quatre sous-unités, à savoir EF-1 a, EF-Ι β, EF-Ιγ et EF-1 δ. La présente invention peut mettre en œuvre au moins une sous-unité de EF-1, d'un homologue d'EF-1, ou un fragment C-terminal de ceux-ci.
Selon un mode de réalisation, au moins une sous-unité de la protéine EF-1, voire la protéine EF-1 entière, comprenant les 4 sous-unités mentionnées ci-dessus, peut être mise en œuvre.
Une sous-unité de la protéine EF-1 convenant à l'invention peut être choisie parmi EF-1 a, EF-Ιβ, EF-Ιγ et EF-Ιδ. De préférence, une sous-unité mise en œuvre peut être EF-1 a.
Les sous-unités EF-1 a, EF-Ιβ, EF-Ιγ et EF-Ιδ considérés dans l'invention peuvent être figurées par les séquences identifiées par les références SwissProt respectives P68104, P24534, P26641 et P29692, ou un homologue de celles-ci.
Un homologue de EF-1 convenant à l'invention présente le degré d'homologie précédemment défini, et une activité biologique similaire. Une activité biologique similaire considérée pour un homologue de EF-1 peut être une activité de facteur d'élongation et/ou une aptitude à lier une protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci, et/ou une protéine rétrovirale GAG, ou un homologue de celle-ci. De préférence, un homologue de EF-1 convenant à l'invention possède, le cas échéant à un degré différent, ces trois aptitudes.
Le degré d'homologie conforme à l'invention entre EF-1 et un homologue de celle-ci peut être satisfait sur une portion seulement des séquences d'acides aminés considérées, et de préférence dans la portion C-terminale.
Un fragment C-terminal de EF-1 convenant à l'invention est de longueur suffisante pour être nécessairement doté de la propriété de lier, par exemple par affinité, une protéine rétrovirale p24 ou un homologue de celle-ci. Cette propriété peut être déterminée par toute méthode connue de l'homme de l'art. Par exemple, un fragment C-terminal d'une sous-unité de la protéine EF-1 à tester peut être fixé sur un support, tel qu'une surface plastique. Une protéine rétrovirale p24 est ensuite mis(e) en contact avec le fragment C-terminal, et sa liaison au fragment peut ensuite être détectée au moyen d'un anticorps anti-p24 luminescent.
Un fragment C-terminal d'une sous-unité de la protéine EF-1 convenant à l'invention peut comprendre une séquence d'acides aminés variant de 150 à 250, voire de 160 à 240, et de préférence de 170 à 230 acides aminés contigus de l'extrémité C-terminale de la sous-unité, étant entendu que les acides aminés sont décomptés à partir du dernier acide aminé de la séquence d'acides aminés considérée. Un fragment C-terminal peut comprendre 150, 160, 170, 180, 190, ou 200 acides aminés contigus de l'extrémité C-terminale d'une sous-unité de la protéine EF-1.
Comme indiqué ci-dessus, il est possible d'utiliser un fragment C-terminal de l'une des sous-unités de la protéine EF-1. De préférence, on peut utiliser un fragment C-terminal de la sous-unité EF-1 a. Ainsi, peut convenir à l'invention un homologue d'un fragment C-terminal de EF-l a figuré par un fragment C-terminal de la protéine procaryotique de facteur d'élongation de la traduction EF-Tu.
Peut également convenir à l'invention, la protéine procaryotique de facteur d'élongation de la traduction EF-Tu.
A titre d'exemple de protéines EF-Tu convenant à l'invention, on peut citer les protéines EF-Tu de Geobacillus stearothermophilus figuré par la séquence 050306 (Swiss-Prot).
Polyprotéine virale GAG
Selon un mode de réalisation, EF-1 peut être mise en œuvre sous une forme associée à une polyprotéine virale GAG, ou un homologue de celle-ci.
Une telle mise en œuvre permet avantageusement d'augmenter la sensibilité de capture et de détection de la protéine rétrovirale p24 ou d'un homologue de celle-ci. Egalement, une telle mise en œuvre permet de diminuer le bruit de fond des procédés d'immunocapture.
La polyprotéine virale GAG est exprimée par les rétrovirus, et notamment par les lentivirus. Cette protéine est clivée durant sa maturation pour donner la protéine de matrice pl7, la protéine de capside p24, la protéine de nucléocapside p7, et les protéines pl, p2 et p6. Cette polyprotéine est plus particulièrement décrite par Ganser-Pornillos et al. (Curr. Opin. Struct. Biol., 2008, 18 :203).
De préférence, une polyprotéine virale GAG convenant à l'invention peut être de la même espèce ou souche de virus que la protéine p24, ou l'homologue de celle-ci. Ainsi, une polyprotéine virale GAG convenant à l'invention peut être choisie parmi les polyprotéines virales GAG du VIH, en particulier du VIH-1 ou du VIH-2, ou du HTLV, en particulier du HTLV-1 ou HTLV-2. Plus particulièrement, elle peut-être figurée par une séquence d'acides aminés identifiée par les références SwissProt P04591 ou P 18095, ou un homologue de celles-ci.
Un homologue d'une polyprotéine virale GAG convenant à l'invention présente le degré d'homologie précédemment définie et une activité biologique similaire. Une activité biologique d'une polyprotéine GAG à considérer pour l'invention est, de préférence, son aptitude à se lier, dans des conditions appropriées, à EF-1 et à une protéine p24, ou à un homologue de celle-ci. Un homologue d'une polyprotéine virale GAG peut avantageusement présenter au moins 75 %, au moins 80 %, au moins 85 %, au moins 90 %, au moins 95 %, au moins 98 %, voire au moins 99 % d'homologie avec les séquences indiquées ci-dessus.
Selon un mode de réalisation, EF-1 et la polyprotéine virale GAG, ou un homologue de celle-ci, peuvent être mis en œuvre selon un rapport pondéral GAG/EF-1, inférieur ou égal à 1, et de préférence inférieur à 1. Protéine rétrovirale détectable
Une protéine rétrovirale détectable au moyen de l'invention est une protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci.
La protéine rétrovirale p24 joue un rôle majeur chez de nombreux lentivirus, et plus particulièrement chez le VIH-1 et les virus HTLV-1 et HTLV-2 (Human T-Lymphotrophic
Virus), en constituant la capside renfermant l'information génétique (ARN) du virus. Cette protéine est décrite dans les documents "p24 Antigen Capture Assay for Quantification of Human
Immunodeficiency Virus Using Readily Available Inexpensive Reagents", Methods, 1997 Aug ; 12(4) : 288-293, et "Biochemical and Immunological Analysis of Human Immunodeficiency
Virus GAG Gene Products pl7 and p24", J. Virol., 1998 Mar ; 62(3) : 795-801.
A titre d'exemple de protéines rétrovirales p24 détectables par l'invention on peut citer les protéines figurées par une séquence d'acides aminés identifiée par les références
SwissProt P04591 ou PI 8095, ou un homologue de celles-ci.
A titre d'homologue de la protéine rétrovirale p24, on peut plus particulièrement considérer la protéine rétrovirale p26 du VIH-2.
Une protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci, détectable au moyen de l'invention peut être choisi(e) parmi les protéines rétrovirales p24 du VIH-1, du HTLV-1 ou du
HTLV-2 et p26 du VIH-2.
Un virus comprenant une protéine rétrovirale détectable par l'invention peut être choisi parmi le VIH de type 1 ou de type 2, et les virus HTLV-1 et HTLV-2. De préférence, un virus comprenant une protéine rétrovirale détectable par l'invention peut-être le VIH, en particulier le VIH- 1. Procédé de détection
Un procédé de l'invention pour détecter la présence présumée d'une protéine rétrovirale p24, ou d'un homologue de celle-ci, dans un échantillon biologique repose sur la formation d'un complexe protéique entre EF-1 et une protéine rétrovirale p24, ou l'homologue de celle-ci.
Ainsi, un procédé de l'invention pour détecter, dans un échantillon biologique, la présence présumée d'une protéine rétrovirale p24, ou d'un homologue de celle-ci, comprend au moins les étapes consistant à :
a- mettre en contact ledit échantillon avec une quantité efficace d'au moins une sous- unité d'une protéine facteur d'élongation de la traduction 1 , EF-1, d'un homologue de EF-1, ou d'un fragment C-terminal de ceux-ci, dans des conditions appropriées à la formation d'au moins un complexe protéique entre la sous-unité de EF-1, l'homologue de EF-1, ou le fragment C- terminal de ceux-ci, et au moins une protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci,
b- mettre en contact le complexe protéique de l'étape a- avec une entité bifonctionnelle, ladite entité étant dotée d'un groupement apte à se lier spécifiquement au moins à une protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci, dans ledit complexe, et d'un groupement apte à être détectable, directement ou indirectement, par un mode de détection, la mise en contact étant effectuée dans des conditions appropriées à l'établissement d'une liaison entre ladite protéine rétrovirale et ladite entité bi- fonctionnelle,
c- détecter ladite entité bi-fonctionnelle, la détection de ladite entité bi-fonctionnelle liée étant indicatrice de la présence de la protéine rétrovirale p24, ou de l'homologue de celle-ci.
Avantageusement, EF-1 peut être immobilisé sur un support comme décrit ci-après.
L'échantillon biologique peut être utilisé brut ou préparé, par exemple par dilution, purification ou ajout de divers réactifs destinés, par exemple, à neutraliser des activités enzymatiques susceptibles d'être délétères pour un procédé de l'invention. L'échantillon biologique est ensuite amené au contact de EF-1 (étape a-), et laissé incubé un temps suffisant pour la formation du complexe protéique EF- 1 -protéine p24 (ou un homologue de celle-ci). Un temps d'incubation convenant à l'invention peut varier de quelques minutes, par exemple 10, 20, 30 ou 60 minutes, à quelques heures, par exemple 2, 3 ou 4 heures.
Un procédé de l'invention peut prévoir une étape additionnelle consistant à éliminer le surplus d'échantillon biologique, par exemple par rinçage.
Après formation du complexe, une entité bifonctionnelle portant un premier groupe fonctionnel permettant sa liaison avec la protéine p24 (ou l'homologue de celle-ci) dans le complexe protéique et un second groupe fonctionnel permettant, directement ou indirectement, sa détection est amené au contact du complexe protéique (étape b-). Le temps d'incubation de l'entité bifonctionnelle avec le complexe protéique dépend de l'affinité de l'entité envers la protéine p24 (ou un homologue de celle-ci), et peut varier de quelques minutes à quelques heures. Par exemple, le temps d'incubation peut être de 10, 20, 30 ou 60 minutes, ou de 2, 3 ou 4 heures
Un procédé de l'invention peut comprendre, de préférence, au moins une étape supplémentaire après l'étape b- et avant l'étape c-, consistant à éliminer l'entité bifonctionnelle non liée à la protéine virale p24, ou à un homologue de celle-ci, à l'étape b-.
Le complexe protéique EF-l/p24 (ou un homologue de celle-ci) ayant lié l'entité bifonctionnelle est ensuite soumis à une étape de détection convenant à la détection du second groupe fonctionnel (étape c-). Celle-ci peut être effectuée directement, si le second groupe fonctionnel est apte par lui-même à émettre un signal détectable, comme un signal luminescent, radioactif ou coloré, ou indirectement si le second groupe doit être mis à en contact et/ou à réagir avec une ou des entité(s) additionnelle(s), telles que des enzymes, des substrats chromogéniques ou luminescents, ou des anticorps eux-mêmes marqués, pour former un ensemble apte à émettre un signal détectable. Le moyen de détection mis en œuvre est naturellement adapté à la nature du signal à détecter.
Immobilisation d'EF-1 sur un support
EF-1 peut être immobilisé sur tout support habituellement utilisé dans le domaine de la fixation et de la détection des protéines. Un support de l'invention peut être tout matériau solide, souple, flexible ou rigide, sur ou dans lequel EF-1 peut être lié(e), adsorbé(e), ou synthétisé(e) in-situ.
Un support convenant à l'invention peut être de nature organique ou inorganique, ou encore être une combinaison de matière organique et inorganique. Avantageusement, un support de l'invention peut être constitué d'un matériau de cellulose, de nitrocellulose, en plastique, en verre, en céramique, en silice, ou en résine polymérique.
Un tel support peut se présenter sous toute forme, adaptée à l'invention. Par exemple, un support de l'invention peut être sous la forme de particules, de gels, de feuilles, de tubes, de sphères, par exemples creuses ou microporeuses, de capillaires, de points, de films, de plaques de puits, de bandelettes, ou de colonnes.
En particulier, un support selon l'invention peut être figuré par une plaque de puits, une bille de latex, une bille de verre, une bille de plastique, une bandelette de papier, un microtube, une membrane de nitrocellulose, une membrane de nylon, une puce de silice, une puce recouverte de nanoparticules d'or ou de nanoparticules aimantées, une lame de verre, une surface poreuse, un système microfluidique, ou une nanoparticule aimantée.
De préférence, un support convenant à l'invention peut être une membrane de nitrocellulose ou toute surface convenant à la mise en œuvre d'un test de type ELISA, telle qu'une plaque de puits.
L'immobilisation de EF-1 sur un support peut être effectuée de manière directe par une ou des liaison(s) covalente(s) ou par adsorption. La méthode d'immobilisation de EF-1 au support est naturellement choisie de sorte à ne pas affecter les propriétés de celle-ci à lier la protéine p24, ou un homologue de celle-ci, et le cas échéant sa capacité à lier une polyprotéine virale GAG (ou un homologue de celle-ci). EF-1 peut être immobilisé sur un support seul ou préalablement associé à la polyprotéine virale GAG (ou à un homologue de celle-ci). Selon un mode de réalisation préféré, l'immobilisation est effectuée de manière directe par adsorption.
EF- 1 peut également être immobilisé sur un support par liaison covalente. Une liaison covalente peut résulter de la réaction d'au moins un des acides aminés de EF-1 ayant une fonction réactive avec une fonction réactive du support. Une fonction réactive portée par un acide aminé peut, par exemple, être une fonction -SH, -OH, ou -COOH. Ces fonctions peuvent, par exemple, conduire à la formation de ponts disulfure par réaction avec une fonction thiol du support, ou de fonction ester ou amide par réaction respectivement avec une fonction acide, alcool, ou aminée du support.
Les fonctions réactives peuvent être portées naturellement par les acides aminés et/ou le support, ou peuvent avoir été introduites sur les acides aminés et/ou le support, par tout processus de modification connu de l'homme de l'art.
Alternativement, EF-1 peut être immobilisé(e) sur un support de façon indirecte, i.e. par l'intermédiaire d'un espaceur.
Le choix d'un espaceur pour la mise en œuvre de l'invention sera naturellement effectué de sorte à ne pas altérer l'aptitude de EF-1 à lier ou à favoriser la capture de la protéine rétrovirale à détecter.
Selon sa nature, un espaceur convenant à l'invention peut être fixé à EF-1 par réaction chimique, par génération d'une protéine de fusion EF- 1 -espaceur, ou par affinité. L'espaceur peut être fixé au support par tout type d'interactions ou de liaisons appropriées.
Un espaceur peut être une séquence protéique, pouvant de préférence comprendre de 1 à 200 acides aminés, de préférence de 6 à 100 acides aminés, préférentiellement de 10 à 50 acides aminés. Dans un tel mode de réalisation, la liaison EF-1 - espaceur peut être réalisée par préparation d'une protéine de fusion EF-1 - espaceur ou par une liaison d'affinité entre EF-1 et l'espaceur.
Une protéine de fusion EF-1 - espaceur peut être préparée par production d'une protéine recombinante au moyen de tout outil de biologie moléculaire connu de l'homme de l'art. Une protéine de fusion convenant à l'invention peut être une protéine EF-1 - polyhistidine. Le groupement polyhistidine peut être lié au support par l'intermédiaire d'ions. Egalement, peut convenir à l'invention une protéine de fusion EF-1 avec la streptavidine. Cette protéine de fusion peut être immobilisée sur le support par interaction avec la biotine, préalablement fixée au support, par adsorption ou liaison covalente.
De manière préférée encore, un espaceur convenant à l'invention peut être un anticorps spécifique de EF-1. L'anticorps peut être lié au support par adsorption. A titre d'exemple d'anticorps aptes à lier EF-1 et convenant à titre d'espaceur, on peut citer les anticorps anti-EF-Ια sc-68481et sc-68482 (SANTA CRUZ).
Une telle mise en œuvre peut particulièrement convenir au développement de test sous forme ELISA (Enzyme Linked ImmunoSorbent Assay).
Entité bifonctionnelle
Une entité bifonctionnelle de l'invention est apte à se lier à au moins une protéine détectable par l'invention dans un complexe tel que défini précédemment.
Une entité bifonctionnelle convenant peut être de préférence un anticorps ou un fragment d'anticorps.
L'entité bifonctionnelle peut être un anticorps polyclonal ou monoclonal, de type IgG, IgA, IgM, ou IgE. Un anticorps convenant à l'invention peut être choisi parmi des anticorps de souris, de rat, de lapin, de chèvre, de cheval, de lama, d'humain ou d'un autre primate.
Peut également convenir à l'invention un fragment d'anticorps ayant les propriétés de liaison définies ci-dessus. Par « fragment d'anticorps », on entend désigner une portion d'un anticorps telle que Fab, Fab', F(ab)2, F(ab')2, et d'autres fragments similaires. Ces termes incluent également toute protéine synthétique ou génétiquement modifiée qui peut agir comme un anticorps en se liant à une protéine détectable de l'invention, dans un complexe protéique tel que défini ci-dessus.
Un anticorps ou un fragment d'anticorps convenant à l'invention peut être préparé par tout procédé connu de l'homme du métier dans le domaine, comme décrit, par exemple, dans « Making and using antibodies : a practical handbook » (Howard & Kaser, Ed. CRC, 2006).
Un anticorps convenant à l'invention peut ne pas être spécifique d'un virus donné, mais peut reconnaitre une famille de protéines rétrovirales p24 ou homologues de celles-ci appartenant à une famille de virus. Alternativement, un anticorps ou un fragment d'anticorps peut être spécifique d'une protéine détectable par l'invention appartenant à une espèce de virus donné. Par exemple, un anticorps ou un fragment d'anticorps peut être spécifique d'une protéine rétrovirale p24 du VIH, notamment du VIH- 1. Une entité bifonctionnelle conforme à l'invention comprend un groupement apte à lui conférer la propriété d'être détectable, directement ou indirectement, par un mode de détection. Un groupement détectable peut être propice à une détection luminescente, colorimétrique, ou radioactive. Un groupement détectable « directement » est un groupement apte à générer un signal, par exemple colorimétrique, luminescent, notamment fluorescent, ou radioactif, susceptible d'être détecté directement.
Un groupement luminescent, et en particulier fluorescent, convenant à l'invention peut-être tout marqueur habituellement utilisé dans le domaine par exemple la fluorescéine, le BODIPY, les sondes fluorescentes du type ALEXA, la coumarine et ses dérivés, la phycoerythrine et ses dérivés, ou des protéines fluorescentes telles que la GFP ou le DsRed.
Un groupement radioactif convenant à l'invention peut-être par exemple H, I, I, le 99mTc, le 14C ou 32P.
Un groupement détectable « indirectement » est un groupement nécessitant la présence d'une ou plusieurs entité(s) additionnelle(s), telles que des enzymes, des substrats chromogéniques ou luminescents, ou des anticorps eux-mêmes marqués, pour former un ensemble apte à émettre un signal détectable.
Un groupement détectable indirectement peut être une portion Fc nue ou portant un marqueur d'affinité, tel qu'un tag polyhistidine, une biotine, ou une streptavidine, ou portant une enzyme, ou un substrat enzymatique apte à générer un signal par hydrolyse. La détection de ce groupement peut être effectuée, respectivement, par mise en œuvre d'un anticorps secondaire portant un groupement détectable et apte à reconnaître la portion Fc ou le marqueur d'affinité, ou par mise en œuvre, selon le cas, d'un groupe biotine ou d'un groupe streptavidine portant un groupement détectable, ou par mise en œuvre d'un substrat spécifique de l'enzyme et apte à émettre un signal détectable par hydrolyse, ou par mise en œuvre d'une enzyme spécifique du substrat.
Selon un mode de réalisation préférée, un procédé de l'invention peut mettre en œuvre un anticorps anti-protéine rétrovirale portant un groupement fonctionnel détectable directement ou indirectement, comme défini précédemment.
Avantageusement, un procédé de l'invention comprenant la mise en œuvre d'une entité bifonctionnelle comprenant un groupe fonctionnel détectable indirectement peut comprendre la mise en œuvre d'un anticorps portant un substrat enzymatique chromogénique ou une enzyme apte à hydrolyser le substrat enzymatique chromogénique, ou peut comprendre la mise en œuvre d'un couple anticorps primaire-anticorps secondaire. L'anticorps primaire peut comprendre une portion Fc nue ou portant un marqueur reconnu par l'anticorps secondaire. L'anticorps secondaire peut comprendre un groupe détectable directement comme défini précédemment ou peut comprendre un substrat enzymatique chromogénique ou une enzyme apte à hydrolyser le substrat enzymatique chromogénique. Selon un mode de réalisation particulier, une enzyme convenant à l'invention peut être une phosphatase alcaline, une tyrosinase, une peroxydase, ou une glucosidase.
Il relève des connaissances de l'homme du métier de déterminer le substrat chromogénique convenant selon l'enzyme considérée.
Lorsque l'enzyme est une phosphatase alcaline, un substrat chromogénique convenant à l'invention peut alors être le BCIP/MBT (5-bromo-4-chloro-3'-indolyphosphate p-toluidine sait - nitro-blue tetrazolium chloride).
Un groupement détectable convenant à l'invention peut être fixé par toutes méthodes appropriées au niveau de l'entité bifonctionnelle. Sa localisation sur l'entité bifonctionnelle est choisie de manière à ne pas affecter l'aptitude de celle-ci à se lier à une protéine rétrovirale p24 (ou à un homologue de celle-ci) dans un complexe protéique de l'invention.
Mode de détection
Le mode de détection d'une entité bi-fonctionnelle liée à un complexe de l'invention sera naturellement adapté au groupement détectable mis en œuvre.
Par « mode de détection », on entend tout système capable de détecter l'émission d'un signal par une entité bi-fonctionnelle de l'invention.
Ainsi, un mode de détection de l'invention peut mettre en œuvre, par exemple, un système de détection en colorimétrie visible, tel que l'œil nu, un système de détection par radiochimie ou par médecine nucléaire, tel que la scintigraphie, un système de détection par imagerie, par résonance (IRM), par rayons X, par diffusion de lumière, par spectrométrie de masse, par spectroscopie par exemple par fluorescence ou par UV-visible, par ultrasons, par radioactivité, par réfractométrie, optique, piézoélectrique, acoustique, par électrochimie, par conductivité, par pHmétrie ou encore par voie biologique.
Selon un mode de réalisation, un mode de détection plus particulièrement considéré par l'invention s'appuie sur un système de détection en colorimétrie visible, plus particulièrement à l'œil nu.
La détection peut se faire de manière quantitative ou qualitative.
Une détection qualitative peut conduire à conclure simplement à la présence ou à l'absence de la protéine rétrovirale cherchée. Une détection quantitative peut permettre un dosage de la protéine recherchée dans l'échantillon biologique testé.
La quantification du signal obtenu peut-être effectué par comparaison de son intensité à celui obtenu avec un échantillon contrôle dénué de la protéine rétrovirale recherchée, et, le cas échéant, à celui obtenu avec un échantillon témoin comprenant la protéine rétrovirale cherchée à une concentration connue. De manière préférée, il est possible de réaliser une série d'échantillons témoins de concentrations connues, et croissantes, de la protéine rétrovirale cherchée de sorte à établir une courbe étalon à l'égard de laquelle l'intensité du signal mesuré dans l'échantillon à tester sera comparée. Les valeurs de référence de l'échantillon contrôle et des échantillons témoins peuvent être déterminées simultanément à la mesure de l'échantillon test ou être déterminées antérieurement ou postérieurement. Lorsque les valeurs de référence sont déterminées antérieurement, celles-ci peuvent être stockées dans une base de données et être utilisées pour une série de mesures d'échantillons tests. Kit
La présente invention concerne également un kit de détection d'au moins une protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci, comprenant:
- au moins un premier réceptacle comprenant au moins une sous-unité d'une protéine facteur d'élongation de la traduction 1, EF-1, un homologue de EF-1, ou un fragment C-terminal de ceux-ci, et
- au moins un second réceptacle comprenant une entité bi-fonctionnelle dotée d'un groupement apte à se lier spécifiquement au moins à ladite protéine rétrovirale p24, ou ledit homologue de celle-ci, susceptible d'être présent(e) dans un complexe protéique formé avec la sous-unité de EF-1, l'homologue de EF-1, ou le fragment C-terminal de ceux-ci, et un groupement apte à être détectable, directement ou indirectement, par un mode de détection.
Selon un mode de réalisation, un kit de l'invention peut en outre comprendre une polyprotéine virale GAG ou un homologue de celle-ci.
La polyprotéine virale GAG ou l'homologue de celle-ci peut être disposé(e) dans un réceptacle supplémentaire ou dans le même réceptacle que celui comprenant EF- 1.
Un kit de l'invention peut en outre comprendre au moins un réceptacle comprenant une protéine p24, ou un homologue de celle-ci, en quantité ou concentration connue. Ce mode de réalisation peut permettre la réalisation d'un contrôle positif ou d'une courbe étalon en protéine p24 (ou homologue de celle-ci).
Un kit de l'invention peut comprendre en outre au moins une instruction de mise en œuvre de EF-1, le cas échéant associée à GAG (ou à un homologue de celle-ci), et de l'entité bi- fonctionnelle pour détecter la présence présumée d'une protéine rétrovirale p24 (ou d'un homologue de celle-ci) dans un échantillon biologique.
EF-1, GAG, l'entité bifonctionnelle, p24, et leurs homologues sont avantageusement tels que définis précédemment. Selon un aspect de l'invention, EF-1 peut être utilisé comme agent de capture d'une protéine rétrovirale p24 ou de l'un de ses homologues. Cet aspect de l'invention peut être mis en œuvre à des fins de purification d'un échantillon biologique, ou d'enrichissement d'un échantillon en protéine p24.
Dans une telle mise en œuvre, l'utilisation d'une entité bifonctionnelle telle que définie précédemment n'est pas nécessaire.
Après formation d'un complexe protéique EF-l/p24 (ou homologue de celle-ci), une étape de précipitation ou de séparation du complexe obtenu peut être effectuée, par tout moyen connu de l'homme de l'art. Le complexe est ensuite dissocié pour récupérer la protéine rétrovirale. L'étape de dissociation peut-être effectuée par toute méthode connue dans le domaine, tel quel l'utilisation d'un tampon salin adéquat.
Avantageusement, ce mode de réalisation peut être effectué par mise en œuvre d'une colonne de chromatographie fonctionnalisée au moyen d'EF-l .
Dans la description ci-avant, l'expression « compris entre » ou « allant de » doit s'entendre bornes incluses.
Les exemples ci-après sont donnés uniquement à titre illustratif de l'invention.
LEGENDES DES FIGURES
Figure 1 : illustre les variations de l'intensité du signal colorimétrique, en % du signal maximal obtenu par hydrolyse du substrat BCIP-NBT par la phosphatase alcaline de l'anticorps secondaire fixé à l'anticorps primaire de souris anti-protéine rétrovirale p24 lié au complexe EF-1 a / protéine p24, en fonction de la concentration de celle-ci. La courbe lisse représente la transformation logarithmique des résultats.
Figure 2 : illustre les variations de l'intensité du signal colorimétrique, en % du signal maximal résultant de l'hydrolyse du substrat BCIP-NBT par la phosphatase alcaline de l'anticorps secondaire fixé à l'anticorps primaire de souris anti-p24 fixé au complexe EF-1 a / GAG / p24 en fonction de la concentration en protéine p24. EF-1 a et GAG sont mis en œuvre, respectivement, à raison de 100
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et 50 ng/μΕ. La courbe lisse représente la transformation logarithmique des résultats obtenus.
Figures 3 et 4 : illustrent la variation de l'intensité du signal colorimétrique en pourcentage du signal maximal obtenu lors de l'expérience, résultant de l'hydrolyse de BCIP- NBT par la phosphatase alcaline d'un anticorps secondaires fixé à l'anticorps primaire de souris anti-p24, lui-même fixé au complexe EF-1 a / GAG / p24 en fonction de la concentration en protéine retrovirale p24 et en fonction de la concentration en polyproteine virale GAG mise en œuvre à raison de 25 ng/μΐ. (Figure 3) et 100 ng/μΐ. (Figure 4). La concentration en EF-la mise en œuvre est constante, à 100 ng/μΕ.
Figure 5 : illustre la variation du signal colorimétrique, en pourcentage du signal maximal obtenu, par hydrolyse des substrats BCIP-NBT par la phosphatase alcaline de l'anticorps secondaire fixé à l'anticorps primaire anti-p24 lui-même fixé au complexe EF-la / GAG / p24 en fonction de la concentration en protéine p24 et de la nature de l'anticorps primaire utilisé. EF-la et GAG sont mis en œuvre, respectivement, à raison de 100 ng/μΕ et 50 ng/μΕ. Les anticorps primaires de souris utilisés sont, respectivement, sc-69 728 (losange), sc-65 462 (carré), sc-57 827 (triangle) et sc-73 300 (croix), tous de SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY. L'anticorps secondaire est un anticorps de chèvre anti-anticorps de souris marqué à l'alcaline phosphatase dilué (SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY sc.-2008).
Figures 7 et 8 : illustrent la variation de l'intensité du signal colorimétrique, en pourcentage du signal maximal, après hydrolyse du substrat BCIP-NBT par la phosphatase alcaline de l'anticorps secondaires fixé à l'anticorps primaire anti-p24, lui-même fixé au complexe EF-la / GAG / p24 en fonction de la concentration en protéine p24, et selon la nature, d'une part, de l'anticorps primaire, et, d'autre part, de l'anticorps secondaire. Les anticorps primaires de souris utilisés sont, respectivement, sc-69728 (losange), sc-65462 (carré), sc-57 827 (triangle), sc-73300 (croix), tous de SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY. Les anticorps secondaires de chèvre anti-souris testés sont respectivement S3721 de PROMEGA (Figure 7) et se- 15065 de SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY (Figure 8).
EXEMPLES Exemple 1
Interaction entre une sous-unité EF-la et une protéine rétrovirale p24
La sous-unité EF-la de la protéine EF-1 humaine est adsorbée à la surface d'une membrane de nitrocellulose par dépôt d'1 iL d'une solution comprenant 100 ng/μΕ de protéine EF-la humaine (PROSPEC référence PRO-773). Les dépôts, ou spots, sont effectués en ligne sur la membrane et espacés chacun d'environ 1 cm.
La membrane est laissée sécher, et les sites de liaison non spécifiques de la membrane sont saturés par incubation pendant 1 heure dans une solution de saturation (5 % de lait écrémé dans du Tris Buffer Saline-2,5 % Tween 20 (TBS-T), vendu par la société Sigma-Aldrich), à température ambiante. Des échantillons (1 μΐ^) de plasma ou de sérum humain comprenant chacun une concentration donnée de protéine rétrovirale p24 (FITZGERALD INDUSTRIES) à, respectivement, 0,75 pg/ml, 1 ,35 pg/ml, 3 pg/ml, 27 pg/ml, 58 pg/ml, 60 pg/ml, 89 pg/ml, 93 pg/ml, 121 pg/ml, 352 pg/ml, et 400 pg/ml sont déposés sur la membrane de nitrocellulose. Chaque échantillon est déposé sur un spot différent.
La membrane est rincée puis est mise à incuber dans une solution d'anticorps primaire de souris anti-p24 VIH-I dilué au l/50ème (SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY, sc- 69728).
La membrane est rincée dans du TBS-T puis mise à incuber pendant 30 minutes à température ambiante dans une solution d'anticorps secondaire de chèvre anti-anticorps de souris marqué à l'alcaline phosphatase dilué au l/2500ème (SANTACRUZ BIOTECHNOLOGY sa-2008).
La membrane est à nouveau rincée dans une solution de TBS-T, puis dans une solution de TBS (Tris Buffer Saline).
La membrane est ensuite laissée à incuber dans une solution de BCIP/NBT
(5-bromo-4-chloro-3'-indolyphosphate p-toluidine salt-nitro-blue tetrazolium chloride) (Sigma- Al drich) jusqu'à apparition de la coloration environ 5 à 15 minutes.
Enfin, la membrane est rincée à l'eau distillée puis l'intensité de la coloration des différents spots est lue qualitativement à l'œil nue.
Les résultats sont exprimés en pourcentage d'intensité par rapport au signal maximum obtenu dans l'expérience. Une valeur correspondant à 50 % du signal maximal et retenu comme indiquant positivement la présence de la protéine virale p24.
Les résultats obtenus présentés Figure 1 montrent, d'une part, que la sous-unité EF- la de la protéine EF-1 , et la protéine rétrovirale p24 interagissent l'une avec l'autre. Le complexe formé peut être détectée avec une bonne sensibilité, à de très faibles concentrations en protéine rétrovirale p24 (50 % du signal maximal à environ 3 pg/ml). Cette bonne sensibilité de détection permet avantageusement de diagnostiquer de façon précoce une infection chez un individu par un virus exprimant une protéine rétrovirale de type p24 tel que le VIH-1 (ou p26 chez le VIH-2). Exemple 2
Interaction entre une sous-unité EF-la / polyprotéine GAG et une protéine rétrovirale p24
Le protocole mis en place dans cet exemple est similaire à celui de l'Exemple 1 , à ceci près qu'il comprend une étape supplémentaire de dépôt sur les spots de EF-l a d'une solution de polyprotéine virale GAG (50 ng/μΕ ; Millipore). Les anticorps primaires et secondaires utilisés sont les mêmes que ceux de l'Exemple 1 et sont mis en œuvre à la même concentration.
La révélation du signal colorimétrique se fait également comme indiqué à l'Exemple
1.
Les résultats, présentés en Figure 2, montrent que la formation d'un complexe sous unité EF-la / polyprotéine GAG favorise la liaison de la protéine p24, permettant une augmentation significative de la sensibilité de la détection de cette protéine.
En effet, 50 % du signal maximal est cette fois obtenu dès 1,10 pg/ml de protéine rétro virale p24.
Une telle concentration est représentative d'un stade très précoce d'infection par un virus, qui n'est en général pas détectable par les autres tests de diagnostic actuellement disponible, notamment ceux s'appuyant sur la détection de la p24, et potentiellement plus précoce que ceux basés sur la détection de la présence d'ADN ou d'ARN viral.
Exemple 3
Effet du ratio sous-unité EF-la / polyprotéine virale GAG sur la détection d'une protéine rétrovirale p24.
Le procédé mis en œuvre est similaire à celui de l'Exemple 2.
La protéine GAG a été testée à la concentration, respectivement, de 25 ng/μΕ (Figure 3) et 100 ng/μί (Figure 4), tout en conservant constante la concentration en sous-unités EF-l a (100 ng/μΐ). Comme le montre la comparaison des figures 2 (GAG 50 ng/μΕ), 3 (GAG 25 ng/μΕ) et 4 (GAG 100 ng/μΕ) un rapport pondéral GAG/EF-Ια inférieur à 1 conduit au meilleur résultat, et permet la détection de la protéine rétrovirale p24 à de très faibles concentrations.
En revanche, pour un rapport pondéral GAG / EF-la égal à 1, la sensibilité de détection est réduite (seuil de 50 % du signal colorimétrique atteint pour les concentrations supérieures à 121 pg/ml). Toutefois, ce seuil de détection demeure convenable pour la mise en œuvre d'un test diagnostic.
Exemple 4
Effet de la variation de la nature de l 'anticorps primaire sur la détection d'une protéine rétrovirale p24 au moyen du complexe sous unités EF-la / polyprotéine virale GAG.
Le procédé mis en œuvre est similaire à celui de l'Exemple 1.
Les anticorps testés sont des anticorps monoclonaux de souris anti-protéine p24 du VIH-1, sc-69728, sc-65462, sc-57827, sc-73300 (SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY). Les concentrations utilisées sont celles de l'Exemple 1. L'anticorps secondaire est également celui de l'Exemple 1.
Les résultats illustrés par la Figure 5 montrent une excellente reproductibilité de la détection et du seuil de détection de la protéine p24, quelque soit la nature de l'anticorps primaire utilisé sc-69728 (losange), sc-65162 (carré), sc-57 827 (triangle), ou sc-73300 (croix). Ces résultats révèlent la robustesse du test diagnostic de l'invention.
Exemple 5
Effet de la variation de la nature de l 'anticorps secondaire sur la détection d'une protéine rétrovirale p24 au moyen du complexe EF-la / polyprotéine virale GAG.
Le procédé mis en œuvre est similaire à celui des Exemples 1 et 4.
Les anticorps primaires de souris utilisés sont, respectivement, sc-69728 (losange), sc-65462 (carré), sc-57827 (triangle) et sc-73300 (croix), tous de SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY.
Deux anticorps secondaires de chèvre, couplées à la phosphatase alcaline, antianticorps de souris ont été utilisés, à savoir S 3721 (PROMEGA ; Figure 6) et se- 15065 (SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY ; Figure 7). Ces anticorps ont été utilisés comme indiqué aux exemples précèdent à savoir dilués au l/2500eme.
La comparaison des Figures 7 et 8 montrent que la nature de l'anticorps secondaire n'affecte pas sensiblement la détection de la protéine p24, ni le seuil de détection, réalisé au moyen des différents anticorps primaires précédemment testés.
Ces résultats démontrent encore la robustesse et la reproductibilité du test de détection de la protéine rétrovirale p24, ainsi que de ses homologues tel que la protéine rétrovirale p26 du VIH-2.

Claims

REVENDICATIONS
1. Utilisation, in vitro ou ex vivo, d'au moins une sous-unité d'une protéine Facteur d'Elongation de la traduction 1, EF-1, d'un homologue de EF-1, ou d'un fragment C-terminal de ceux-ci, comme agent de détection d'une protéine rétrovirale p24, ou d'un homologue de celle-ci.
2. Utilisation selon la revendication précédente, dans laquelle la sous-unité de EF-1, l'homologue de EF-1, ou le fragment C-terminal de ceux-ci, est mis(e) en œuvre sous une forme associée à une polyprotéine virale GAG, ou un homologue de celle-ci.
3. Utilisation selon la revendication 1 ou 2, dans laquelle EF-1 est une protéine EF- 1 humaine.
4. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle la sous-unité de EF-1 est choisie parmi EF-1 a, EF-Ιβ, EF-Ιγ et EF-Ιδ, et de préférence est la sous-unité EF-1 a.
5. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle la protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci, est choisi(e) parmi les protéines rétrovirales p24 du VIH-1, du HTLV-1 ou du HTLV-2 et p26 du VIH-2.
6. Procédé, in vitro ou ex vivo, pour détecter la présence présumée d'une protéine rétrovirale p24, ou d'un homologue de celle-ci, dans un échantillon biologique, ledit procédé comprenant au moins les étapes consistant à :
a- mettre en contact ledit échantillon avec une quantité efficace d'au moins une sous- unité d'une protéine facteur d'élongation de la traduction 1 , EF-1, d'un homologue de EF-1, ou d'un fragment C-terminal de ceux-ci, dans des conditions appropriées à la formation d'au moins un complexe protéique entre la sous-unité de EF-1, l'homologue de EF-1, ou le fragment C- terminal de ceux-ci, et au moins une protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci,
b- mettre en contact le complexe protéique de l'étape a- avec une entité bi- fonctionnelle, ladite entité étant dotée d'un groupement apte à se lier spécifiquement au moins à une protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci, dans ledit complexe, et d'un groupement apte à être détectable, directement ou indirectement, par un mode de détection, la mise en contact étant effectuée dans des conditions appropriées à l'établissement d'une liaison entre ladite protéine rétrovirale et ladite entité bi-fonctionnelle,
c- détecter ladite entité bi-fonctionnelle, la détection de ladite entité bi-fonctionnelle liée étant indicatrice de la présence de la protéine rétrovirale p24, ou de l'homologue de celle-ci.
7. Procédé selon la revendication précédente, comprenant au moins une étape supplémentaire après l'étape b- et avant l'étape c-, ladite étape supplémentaire consistant à éliminer l'entité bi-fonctionnelle non liée à la protéine virale p24, ou à l'homologue de celle-ci, à l'étape b-.
8. Procédé selon la revendication précédente, dans lequel la sous-unité de EF-1, l'homologue de EF-1, ou le fragment C-terminal de ceux-ci, est immobilisé(e) sur un support organique ou inorganique.
9. Procédé selon la revendication précédente, dans lequel le support est constitué d'un matériau de cellulose, de nitrocellulose, en plastique, en verre, en céramique, en silice, ou en résine polymérique.
10. Procédé selon l'une quelconque des revendications 6 à 9, dans lequel ladite entité bi-fonctionnelle est un anticorps ou un fragment d'anticorps.
11. Procédé selon l'une quelconque des revendications 6 à 10, dans lequel ledit groupement détectable est un groupement propice à une détection luminescente, colorimétrique, ou radioactive.
12. Procédé selon l'une quelconque des revendications 6 à 11, dans lequel la sous- unité de EF-1, l'homologue de EF-1, ou le fragment C-terminal de ceux-ci est mis(e) en œuvre sous une forme associée à une polyprotéine virale GAG, ou un de homologue de celle-ci.
13. Kit de détection d'au moins une protéine rétrovirale p24, ou un homologue de celle-ci, comprenant :
- au moins un premier réceptacle comprenant au moins une sous-unité d'une protéine facteur d'élongation de la traduction 1, EF-1, un homologue de EF-1, ou un fragment C-terminal de ceux-ci, et
- au moins un second réceptacle comprenant une entité bi-fonctionnelle dotée d'un groupement apte à se lier spécifiquement au moins à ladite protéine rétrovirale p24, ou ledit homologue de celle-ci, susceptible d'être présent(e) dans un complexe protéique formé avec la sous-unité de EF-1, l'homologue de EF-1, ou le fragment C-terminal de ceux-ci, et un groupement apte à être détectable, directement ou indirectement, par un mode de détection.
14. Kit selon la revendication précédente, comprenant en outre une polyprotéine virale GAG ou un homologue de celle-ci.
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