WO2010092917A1 - 腸管粘膜蛍光観察用検査試薬 - Google Patents

腸管粘膜蛍光観察用検査試薬 Download PDF

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後藤秀実
安藤貴文
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Definitions

  • the present invention relates to a test reagent. Specifically, the present invention relates to a test reagent for intestinal mucosal fluorescence observation that is useful in the field of digestive organ internal medicine and the like.
  • This application claims priority based on Japanese Patent Application No. 2009-28071 filed on Feb. 10, 2009, the entire contents of which are incorporated by reference.
  • Endoscopy is essential for examining inflammatory diseases and neoplasms (benign and malignant tumors). Advances in endoscopic equipment have made it possible to obtain new information on inflammatory diseases and neoplasms that could not be obtained with conventional endoscopes, and as a result, appropriate diagnosis has become possible. .
  • Recent new endoscopic equipment includes confocal laser endoscopes using fluorescence and autofluorescence endoscopes (Non-Patent Documents 1 to 3), and these fluorescent endoscopes can be obtained by using various fluorescent dyes. Is even more useful. Until now, fluorescein (left column in Fig. 1) has been widely used as a fluorescent dye.
  • an object of the present invention is to provide a test reagent that enables fluorescence observation of the gland duct structure of the intestinal mucosa and its use.
  • An intestinal fluorescence observation test reagent comprising a fluorescent dye as a main component and comprising a buffer adjusted to pH 7 to 8, wherein the fluorescent dye is in a pH range lower than the pH of the buffer.
  • a test reagent for intestinal mucosal fluorescence observation characterized by being a fluorescent dye whose fluorescence intensity increases with a decrease in pH.
  • [5] Use of a fluorescent dye for producing a test reagent for intestinal mucosal fluorescence observation, wherein the fluorescent dye increases in fluorescence intensity with a decrease in pH in a pH range lower than pH 7-8. Use characterized by that.
  • [6] A step of applying the intestinal fluorescence observation test reagent according to any one of [1] to [4] to the subject's intestinal tract, a step of observing the fluorescence of the application site after a predetermined time, Intestinal fluorescence observation method.
  • Fluorescent dye used in the present invention increases in fluorescence intensity as the pH decreases in a pH range lower than the pH of the buffer solution constituting the reagent. Since the fluorescence intensity of the fluorescent dye before application is low, the background fluorescence is low when applied to the intestinal mucosa and does not hinder fluorescence observation. Therefore, the reagent of the present invention can be applied directly to the intestinal tract. Moreover, it is not necessary to wash before performing fluorescence observation.
  • the mucous granules of goblet cells constituting the gland duct of the intestinal mucosa contain acidic mucopolysaccharides, the pH of the mucous granules of goblet cells is lowered.
  • the fluorescence intensity of the fluorescent dye increases in the mucous granules of goblet cells, and an annular fluorescent image reflecting the gland duct structure can be observed.
  • the gland duct of the intestinal mucosa can be easily fluorescently observed. Therefore, the reagent of the present invention is extremely useful for diagnosis of enteritis and colon neoplasia.
  • A Hematoxylin / eosin stained image of mucosal tissue.
  • B Alcian blue stained image. Goblet cell mucus granules are intensely stained blue, indicating that they contain acidic mucopolysaccharides.
  • C Stereomicroscopic image of the mucosa.
  • D Fluorescence observation image of mucous membrane (mucosal was immersed in phosphate buffer and observed with fluorescent stereomicroscope).
  • E Fluorescence observation image of mucous membrane (immersed in a phosphate buffer solution (fluorescence observation reagent) containing 1 ⁇ g / ml of NBD-PZ, incubated at 37 ° C. for 3 minutes, and then observed with a fluorescence stereomicroscope).
  • F Expansion of the enclosure of E.
  • G Stereomicroscopic image of mucosa.
  • H Fluorescence observation image of mucous membrane (LysoSensor TM Green DND-189 immersed in a phosphate buffer solution (fluorescence observation reagent) containing 1 ⁇ g / ml, incubated at 37 ° C. for 20 minutes, and then observed with a fluorescence stereomicroscope).
  • the bar in the figure indicates 200 ⁇ m.
  • the figure which shows the fluorescence observation image and tissue image of enteritis of a mouse
  • the circular fluorescence image by NBD-PZ is also disordered, and there are places that are distorted, interrupted, or fragmented.
  • A After injecting 100 ⁇ l of phosphate buffer solution containing 2.5 ⁇ g / ml of NBD-PZ into the large intestine from the anus, the tissue image of the large intestine mucosa was examined by hematoxylin and eosin staining. No abnormalities were observed compared to the large intestine (Normal).
  • B When liver function and kidney function were evaluated by measuring ALT and BUN in blood, no abnormality was observed.
  • N 5.
  • the test reagent for intestinal mucosal fluorescence observation of the present invention utilizes the low pH of the mucous granules of goblet cells constituting the gland duct of the intestinal mucosa to make the structure of the gland duct It is a test reagent for observing.
  • the method of fluorescence observation is not particularly limited, but fluorescence observation with a fluorescence endoscope (for example, a confocal fluorescence endoscope) is preferable.
  • the reagent of the present invention contains a fluorescent dye as a main component, and consists of a buffer adjusted to a pH of 7-8.
  • the fluorescent dye a fluorescent dye whose fluorescence intensity increases with a decrease in pH in a pH range lower than the pH of the buffer solution is used.
  • a fluorescent dye that does not substantially fluoresce in the state before application that is, at the pH range of the reagent is used.
  • the pH of the buffer constituting the reagent of the present invention is a physiological pH of pH 7.4 to 7.5.
  • a fluorescent dye whose fluorescence intensity increases in a pH range of pH 7.4 to 7.5 or less is used.
  • Examples of the corresponding fluorescent dyes (3 types) are shown below.
  • 4-nitro-7-piperazino-2,1,3-benzoxadiazole (NBD-PZ) The compound is commercially available under the name LysoSensor TM Green DND-153 (trade name, Invitrogen).
  • the compound is commercially available under the name LysoSensor TM Green DND-189 (trade name, Invitrogen).
  • a fluorescent dye represented by a form in which a base (piperazine (PZ) in NBD-PZ) is bonded to a chromophore (nitrobenzoxadiazole (NBD) in NBD-PZ) as an electron donor, as in NBD-PZ above.
  • PZ piperazine
  • NBD nitrobenzoxadiazole
  • the reagent of the present invention can be prepared, for example, by dissolving a desired fluorescent dye in a buffer solution having a buffer capacity at pH 7-8.
  • a buffer solution for example, a phosphate buffer solution, a lactic acid buffer solution, a citrate-phosphate buffer solution, a tris (tris (hydroxymethyl) aminomethane) -hydrochloric acid buffer solution and the like can be used.
  • the content of the fluorescent dye is not particularly limited, but is, for example, 0.1 ⁇ g / ml to 10 ⁇ g / ml, preferably 0.25 ⁇ g / ml to 2.5 ⁇ g / ml.
  • the structure of the gland duct of the intestinal mucosa can be easily observed with fluorescence.
  • the reagent of the present invention is applied to the intestinal tract (such as the large intestine surface) of the subject (first step).
  • An example of the application method is spraying, but is not limited to this.
  • the fluorescence of the application site is observed after a predetermined time (second step).
  • the predetermined time is not particularly limited as long as fluorescence necessary for observing the tube structure is generated, and may be set in consideration of the properties of the fluorescent dye used (mainly the relationship between pH and fluorescence intensity). .
  • the predetermined time here can be set between 3 minutes and 30 minutes.
  • NBD-PZ is adopted as the fluorescent dye, fluorescence observation is possible in a short time. Therefore, after applying the reagent of the present invention, fluorescence observation (second step) is performed when, for example, 3 to 5 minutes have elapsed. Just do it.
  • the application target of the reagent of the present invention is not limited to a living body, and the reagent of the present invention can also be used for fluorescence observation of a tissue piece collected from a living body.
  • the large intestine mucosa tissue of an experimental mouse was collected and subjected to hematoxylin / eosin staining, Alcian blue staining, and staining with a fluorescence observation reagent.
  • a fluorescence observation reagent for the former two, the conventional method was used, and for the latter, the tissue was immersed in a fluorescence observation reagent, kept at 37 ° C., and then observed with a fluorescence stereomicroscope.
  • FIG. 1 A stained image and a fluorescence observation image are shown in FIG. The tube structure is clearly observed (A).
  • B the mucous granules of goblet cells of embryonic cells are strongly stained blue, indicating that acidic mucopolysaccharides are contained.
  • D a fluorescent stereomicroscope
  • E an annular fluorescent image showing a gland duct was observed when immersed in an NBD-PZ-containing fluorescence observation reagent (1) and incubated at 37 ° C. for 3 minutes and then observed with a fluorescent stereomicroscope (E).
  • NBD-PZ has been reported to have no cytotoxicity even when cultured for 24 hours with cultured cells derived from the gastrointestinal mucosa up to a concentration of 2.5 ⁇ g / ml (10 ⁇ M) (Non-patent Document 4).
  • Non-patent Document 6 In enteritis, especially ulcerative colitis, which is one of inflammatory bowel diseases, it is sometimes difficult to evaluate the degree of inflammation with an ordinary endoscope (Non-patent Document 6).
  • the findings obtained with a magnifying endoscope using methylene blue reflect the duct structure and are reported to be useful for predicting recurrence of ulcerative colitis (Non-patent Document 7). Therefore, it is considered that the test reagent of the present invention, which can obtain a fluorescent image reflecting the duct structure, is also useful for determining the prognosis of enteritis such as ulcerative colitis.
  • Colorectal cancer is a major cause of cancer death in Western countries, and the proportion of cancer death in Japan is increasing (Non-patent Document 8).
  • the development process of colorectal cancer includes an increase in gland ducts and abnormal differentiation of gland ducts (Non-patent Document 8).
  • Goblet cells are the main cells that occupy the gland duct and are also cells that show normal differentiation (Non-patent Document 5). Therefore, by performing fluorescence endoscopy using the test reagent we developed to fluorescently stain the mucus granules of the goblet cells, it will be possible to observe a fluorescent image reflecting the development process of colorectal cancer, In addition to early detection of colorectal cancer, it is possible to make a diagnosis reflecting its pathological findings.
  • Fluorescent images of the intestinal mucosa that are completely different from the conventionally used fluorescein can be obtained with the test reagent of the present invention. Furthermore, it is possible to observe fluorescence only by spraying on the intestinal mucosa as needed, without the need for washing. Therefore, by using the test reagent of the present invention, it is possible to observe image findings of the intestinal mucosa that could not be obtained so far with a fluorescence endoscope, and the advantages and indications of fluorescence endoscopy Contributes to further expansion of the scope.

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Abstract

 腸管粘膜の腺管構造を簡便に蛍光観察することを可能にする検査試薬及びその用途を提供することを課題とする。緩衝液のpHよりも低いpH域においてpH低下に伴い蛍光強度が上昇する蛍光色素を主成分として含有し、pH 7~8に調整された緩衝液からなる腸管蛍光観察用検査試薬が提供される。

Description

腸管粘膜蛍光観察用検査試薬
 本発明は検査試薬に関する。詳しくは、消化器内科の分野等で有用な腸管粘膜蛍光観察用検査試薬に関する。本出願は、2009年2月10日に出願された日本国特許出願第2009-28071号に基づく優先権を主張するものであり、当該特許出願の全内容は参照により援用される。
 内視鏡検査は炎症疾患や新生物(良性腫瘍及び悪性腫瘍)を調べるために必須な検査である。内視鏡機器の進歩により従来の内視鏡では得ることが出来なかった炎症疾患や新生物に関する新しい情報を得ることが可能になり、その結果として適切な診断をすることが出来るようになった。最近の新しい内視鏡機器には蛍光を利用した共焦点レーザー内視鏡や自家蛍光内視鏡があるが(非特許文献1~3)、さまざまな蛍光色素を用いることでこれら蛍光内視鏡の有用性はいっそう高まる。これまで蛍光色素として汎用されているものがフルオレセイン(図1左欄)であるが、フルオレセインは生理的pH 7.4~7.5で既に蛍光強度が高いため、これを利用した場合には、静脈注射を行い腸管粘膜に血管から漏出してくるフルオレセインの蛍光を観察するか、もしくは酢酸液を腸管粘膜に散布してからフルオレセインを散布する必要があった(非特許文献1、2)。静脈注射を行うことは蛍光色素を全身投与することになり煩雑であり、また酢酸を散布することは粘膜刺激となるため好ましくはない。更にフルオレセインは非特異的な蛍光色素であるため粘膜の間質を一様に染めるだけであり、腸管粘膜の腺管そのものを特異的に染めることは出来ない。このように、従来、腸管粘膜の腺管を特異的に観察するための検査試薬はなかった。
Kiesslich R, Burg J, Vieth M, Gnaendiger J, Enders M, Delaney P, Polglase A, McLaren W, Janell D, Thomas S, Nafe B, Galle PR, Neurath MF. Confocal laser endoscopy for diagnosing intraepithelial neoplasias and colorectal cancer in vivo. Gastroenterology 2004;127:706-713. Wang TD, Friedland S, Sahbaie P, Soetikno R, Hsiung PL, Liu JT, Crawford JM, Contag CH. Functional imaging of colonic mucosa with a fibered confocal microscope for real-time in vivo pathology. Clin Gastroenterol Hepatol 2007;5:1300-1305. Schmid RM. The future for endoscopy is bright. Gastroenterology 2008;135:1032-1034. Ishiguro K, Ando T, Goto H. Novel application of 4-nitro-7-(1-piperazinyl)-2,1,3-benzoxadiazole to visualize lysosomes in live cells. Biotechniques 2008;45:465, 467-468. Specian RD, Oliver MG. Functional biology of intestinal goblet cells. Am J Physiol 1991;260:C183-193. Riley SA, Mani V, Goodman MJ, Dutt S, Herd ME. Microscopic activity in ulcerative colitis: what does it mean? Gut 1991;32:174-178. Nishio Y, Ando T, Maeda O, Ishiguro K, Watanabe O, Ohmiya N, Niwa Y, Kusugami K, Goto H. Pit patterns in rectal mucosa assessed by magnifying colonoscope are predictive of relapse in patients with quiescent ulcerative colitis. Gut 2006;55:1768-1773. Ponz de Leon M, Di Gregorio C. Pathology of colorectal cancer. Dig Liver Dis 2001;33:372-388.
 以上の背景の下、本発明の課題は、腸管粘膜の腺管構造を簡便に蛍光観察することを可能にする検査試薬及びその用途を提供することである。
 本発明者らは、上記の課題に鑑みて鋭意研究を行った結果、pH低下に伴い蛍光強度が上昇する蛍光色素を含有する生理的pHに調整された緩衝液が有用であることを見出した。また、比較実験の結果、短時間での蛍光観察を可能にするためには低分子量の蛍光色素が好ましいことを見出した。本発明は、これらの成果に基づくものであり、次の通りである。
 [1]蛍光色素を主成分として含有し、pH 7~8に調整された緩衝液からなる腸管蛍光観察用検査試薬であって、前記蛍光色素が、前記緩衝液のpHよりも低いpH域においてpH低下に伴い蛍光強度が上昇する蛍光色素であることを特徴とする、腸管粘膜蛍光観察用検査試薬。
 [2]前記緩衝液のpHが7.4~7.5である、[1]に記載の腸管粘膜蛍光観察用検査試薬。
 [3]前記蛍光色素が、分子量250以下の蛍光色素である、[1]又は[2]に記載の腸管粘膜蛍光観察用検査試薬。
 [4]前記蛍光色素が、以下の化学式のいずれかで表される蛍光色素である、[1]~[3]のいずれか一項に記載の腸管粘膜蛍光観察用検査試薬。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000005
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000006
 [5]腸管粘膜蛍光観察用検査試薬を製造するための蛍光色素の使用であって、該蛍光色素がpH 7~8よりも低いpH域においてpH低下に伴い蛍光強度が上昇する蛍光色素であることを特徴とする使用。
 [6][1]~[4]のいずれか一項に記載の腸管蛍光観察用検査試薬を被検者の腸管に適用するステップと、所定時間経過後に適用部位の蛍光を観察するステップと、を含む腸管蛍光観察法。
 本発明で使用する蛍光色素は、試薬を構成する緩衝液のpHよりも低いpH域においてpH低下に伴いその蛍光強度が上昇する。適用前の蛍光色素の蛍光強度が低いことから、腸管粘膜に適用した際、背景となる蛍光は低く蛍光観察の妨げにはならない。従って、本発明の試薬は直接腸管に適用することができる。しかも蛍光観察を行う前に洗浄する必要がない。
 ここで、腸管粘膜の腺管を構成する杯細胞の粘液顆粒は酸性ムコ多糖体を含有するため、杯細胞の粘液顆粒ではpHが低下している。その結果、本発明の試薬を適用すると、蛍光色素の蛍光強度は杯細胞の粘液顆粒で上昇し、腺管構造を反映する円環状蛍光像を観察することが出来るようになる。
 このように、本発明の試薬によれば簡便に腸管粘膜の腺管を蛍光観察することが可能となる。従って、本発明の試薬は腸炎や大腸新生物の診断に極めて有用である。
フルオレセイン(fluorescein)およびNBD-PZの化学構造を示す図。 マウス大腸粘膜の組織像および蛍光観察像を示す図。(A)粘膜組織のヘマトキシリン・エオジン染色像。(B)アルシアンブルー染色像。杯細胞の粘液顆粒は青色に強染し、酸性ムコ多糖体が含まれていることを示す。(C)粘膜の実体顕微鏡像。(D)粘膜の蛍光観察像(粘膜をリン酸緩衝液に浸し蛍光実体顕微鏡で観察した)。(E)粘膜の蛍光観察像(NBD-PZ 1μg/ml含有リン酸緩衝液(蛍光観察試薬)に浸し、37℃で3分間保温した後、蛍光実体顕微鏡で観察した)。(F)Eの囲みの拡大。(G)粘膜の実体顕微鏡像。(H)粘膜の蛍光観察像(LysoSensorTM Green DND-189 1μg/ml含有リン酸緩衝液(蛍光観察試薬)に浸し、37℃で20分間保温した後、蛍光実体顕微鏡で観察した)。図中のバーは200μmを示す。 マウスの腸炎の蛍光観察像および組織像を示す図。TNBS(A-C), DSS(D-F), IL-10欠損(G-I)によりマウスで大腸炎を起こさせた後に大腸を摘出し実体顕微鏡像(A, D, G)、NBD-PZ 1μg/ml含有リン酸緩衝液(蛍光観察試薬)による蛍光実体顕微鏡像(B, E, H)、ヘマトキシリン・エオジン染色組織像(C, F, I)を得た。いずれの腸炎でも腺管の破壊・杯細胞の消失に伴い正常腸管粘膜で見られたNBD-PZによる円環状蛍光像が消失している。 マウスの腸管ポリープの蛍光観察像および組織像を示す図。IL-10欠損マウスの大腸に生じたポリープの実体顕微鏡像(A, D)、NBD-PZ 1μg/ml含有リン酸緩衝液による蛍光実体顕微鏡像(B, E)、ヘマトキシリン・エオジン染色組織像(C, F)。腺管の増大に伴いNBD-PZによる円環状蛍光像も増大している。また構造異型による杯細胞分布の乱れによりNBD-PZによる円環状蛍光像も乱れ、歪んでいたり途中で途切れたり断片的になっている箇所がある。 NBD-PZ 2.5μg/mlの注腸が腸管粘膜、肝機能、腎機能に与える影響を示す図。(A)マウスの大腸にNBD-PZ 2.5μg/ml含有リン酸緩衝液100μlを肛門から注入してから24時間後に大腸粘膜の組織像をヘマトキシリン・エオジン染色により調べたところ、無処置のマウスの大腸(Normal)と比べ異常を認めなかった。(B)血液中のALT、BUNを測定することにより肝機能、腎機能を評価したところ異常を認めなかった。N = 5。
 本発明の腸管粘膜蛍光観察用検査試薬(以下、「本発明の試薬」と呼ぶ)は、腸管粘膜の腺管を構成する杯細胞の粘液顆粒のpHが低いことを利用して腺管の構造を観察するための検査試薬である。蛍光観察の手法は特に限定されないが、蛍光内視鏡(例えば共焦点蛍光内視鏡)による蛍光観察が好適である。本発明の試薬は蛍光色素を主成分として含有し、pH 7~8に調整された緩衝液からなる。蛍光色素としては、緩衝液のpHよりも低いpH域においてpH低下に伴い蛍光強度が上昇する蛍光色素が用いられる。典型的には、適用前の状態(即ち、試薬のpH域のとき)では蛍光を実質的に発することがない蛍光色素が用いられる。
 好ましくは、本発明の試薬を構成する緩衝液のpHは生理的pHのpH 7.4~7.5である。このときには、pH 7.4~7.5以下のpH域において蛍光強度が上昇する蛍光色素が用いられることになる。該当する蛍光色素の例(3種類)を以下に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000007
 4-nitro-7-piperazino-2,1,3-benzoxadiazole (NBD-PZ)
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000008
 当該化合物は、LysoSensorTM Green DND-153(商品名、Invitrogen社)の名称で市販されている。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000009
 当該化合物は、LysoSensorTM Green DND-189(商品名、Invitrogen社)の名称で市販されている。
 尚、上記NBD-PZのように、発色団(NBD-PZではnitrobenzoxadiazole(NBD))に電子供与体として塩基(NBD-PZではpiperazine(PZ))が結合した形で表される蛍光色素を好適に用いることができる。
 本発明者らの検討の結果、良好な蛍光像が観察できるまでに要した時間は、LysoSensorTM Green DND-153及びLysoSensorTM Green DND-189よりもNBD-PZの方が格段に短かった。この事実と、各化合物の分子量(LysoSensorTM Green DND-153の分子量356、LysoSensorTM Green DND-189の分子量398、NBD-PZの分子量249)を考え合わせると、杯細胞の粘液顆粒に蛍光色素が短時間で到達するためには分子量が250以下と小さいことが重要であると考えられる。換言すれば、短時間での蛍光観察を可能とするためには、分子量250以下の蛍光色素(例えば上記NBD-PZ)を採用することが好ましいといえる。
 本発明の試薬は、例えば、pH7~8において緩衝能を示す緩衝液に所望の蛍光色素を溶解することによって調製することができる。緩衝液には例えばリン酸緩衝液、乳酸緩衝液、クエン酸-リン酸緩衝液、トリス(tris(hydroxymethyl)aminomethane)-塩酸緩衝液などを用いることができる。蛍光色素の含有量は特に限定されないが、例えば0.1μg/ml~10μg/ml、好ましくは0.25μg/ml~2.5μg/mlとする。
 本発明の試薬によれば、腸管粘膜の腺管の構造を簡便に蛍光観察できる。本発明の試薬を生体の蛍光観察に適用する際には次の二つのステップを行う。まず、本発明の試薬を被検者の腸管(大腸表面など)に適用する(第1ステップ)。適用方法の一例は散布であるが、これに限定されるものではない。次に、所定時間経過後に適用部位の蛍光を観察する(第2ステップ)。ここでの所定時間は、線管構造を観察するために必要な蛍光が生ずる限りにおいて特に限定されず、使用する蛍光色素の性質(主としてpHと蛍光強度の関係)を考慮して設定すればよい。例えば、ここでの所定時間を3分~30分の間で設定することができる。蛍光色素にNBD-PZを採用した場合には短時間で蛍光観察が可能となることから、本発明の試薬を適用後、例えば3分~5分経過したときに蛍光観察(第2ステップ)を行えばよい。尚、本発明の試薬の適用対象は生体に限定されるものではなく、生体から採取した組織片などの蛍光観察にも本発明の試薬を利用することができる。
1.マウス大腸粘膜の観察
 蛍光色素を含む緩衝液(蛍光観察試薬(1)~(3))を調製した。NBZ-PZの構造を図1の右欄に示した。比較のため、フルオレセインの構造を同左欄に示す。
(1)NBD-PZ(東京化学工業株式会社) 1μg/ml含有リン酸緩衝液
(2)LysoSensorTM Green DND-189(Invitrogen社) 1μg/ml含有リン酸緩衝液
(3)LysoSensorTM Green DND-153(Invitrogen社) 1μg/ml含有リン酸緩衝液
 実験用マウスの大腸粘膜組織を採取し、ヘマトキシリン・エオジン染色、アルシアンブルー染色、及び蛍光観察試薬による染色に供した。前2者については常法に従い、後者については蛍光観察試薬に組織を浸漬後、37℃で保温した後に蛍光実体顕微鏡で観察した。
 染色像及び蛍光観察像を図2に示す。線管構造が明瞭に観察される(A)。アルシアンブルー染色(B)では胚細胞の杯細胞の粘液顆粒が青色に強染し、酸性ムコ多糖体が含まれていることがわかる。粘膜をリン酸緩衝液(蛍光色素非含有)に浸し蛍光実体顕微鏡で観察しても蛍光像は認めない(D)。これに対して、NBD-PZ含有の蛍光観察試薬(1)に浸し37℃で3分間保温した後に蛍光実体顕微鏡で観察すると腺管を示す円環状蛍光像を認めた(E)。同様に、粘膜をLysoSensorTM Green DND-189含有の蛍光観察試薬(2)に浸し37℃で20分間保温した後に蛍光実体顕微鏡で観察すると円環状蛍光像を認めた(H)。尚、LysoSensorTM Green DND-153含有の蛍光観察試薬(3)の場合も同様の蛍光像を認めた(図示せず)。
 粘液顆粒は酸性ムコ多糖体を含有するため、杯細胞の粘液顆粒ではpHが生理的pH7.4-7.5より低くなっている。その結果、生理的pH7.4-7.5以下で蛍光強度が上昇するNBD-PZ(非特許文献4)の蛍光強度は杯細胞の粘液顆粒で上昇し、腺管構造を反映する円環状蛍光像を観察することが出来るようになった(図2E,F)。LysoSensor Green DND-153(pH7.5以下で蛍光強度が上昇する)、DND-189(pH5.2以下で蛍光強度が上昇する)でも同様な所見が得られた(図2G, H)。但し、円環状蛍光像を観察するまでNBD-PZでは3分間であるのに対してLysoSensorTM Green DND-153およびDND-189では20分間であった。NBD-PZの分子量が249であるのに対してLysoSensorTM Green DND-153及びDND-189の分子量はそれぞれ356及び398であるため、杯細胞の粘液顆粒に蛍光色素が短時間で到達するためには分子量が250以下と小さいことが重要であると考えられた。
2.マウスの腸炎の蛍光観察
 TNBS(Trinitrobenzenesulfonic acid)誘発性マウス大腸炎モデル、DSS(デキストラン硫酸)誘発性マウス大腸炎モデル、及びIL-10(interleukin-10)欠損マウス大腸炎モデルを作製した。各大腸炎モデルから大腸を摘出し、実体顕微鏡像(図3A, D, G)、NBD-PZ含有の蛍光観察試薬による蛍光実体顕微鏡像(同図B, E, H)、ヘマトキシリン・エオジン染色組織像(同図C, F, I)を得た。いずれの腸炎でも腺管の破壊・杯細胞の消失に伴い正常腸管粘膜で見られたNBD-PZによる円環状蛍光像が消失していることがわかる。このように、BD-PZ含有の蛍光観察試薬を適用し、円環状蛍光像の消失の程度を観察することによって、腸炎による腺管の破壊の程度を評価することが可能であった。
3.マウスの腸管ポリープの蛍光観察
 IL-10欠損マウス大腸炎モデルの大腸に生じたポリープの実体顕微鏡像(図4A, D)、NBD-PZ含有の蛍光観察試薬による蛍光実体顕微鏡像(同図B, E)、ヘマトキシリン・エオジン染色組織像(同図C, F)を得た。腺管の増大に伴い、NBD-PZによる円環状蛍光像も増大していることがわかる。また、構造異型による杯細胞分布の乱れによってNBD-PZによる円環状蛍光像も乱れ、歪んでいたり途中で途切れたり断片的になっている箇所がある。このように、NBD-PZ含有の蛍光観察試薬を適用し、円環状蛍光像を観察することでポリープなどの新生物に認められる腺管増大や分化異常を評価することが可能であった。
4.NBD-PZの毒性評価
 マウスの大腸にNBD-PZ含有(2.5μg/ml)の蛍光観察試薬100μlを肛門から注入してから24時間後に大腸粘膜の組織像をヘマトキシリン・エオジン染色により調べた。その結果、無処置のマウスの大腸(正常)と比べ異常を認めなかった(図5A)。また、血液中のALT、BUNを測定することにより肝機能、腎機能を評価したところ異常を認めなかった(同図B)。このように、NBD-PZを2.5μg/mlの濃度でマウスの腸管内に投与しても粘膜障害、肝障害、腎障害を認めることはなかった。尚、NBD-PZは2.5μg/ml(10μM)の濃度まで、消化管粘膜由来培養細胞とともに24時間培養しても細胞毒性がないことが報告されている(非特許文献4)。
 通常の内視鏡では潰瘍、腫瘍および粘膜色調変化を観察することが出来るが、蛍光観察を行うことにより通常内視鏡では得ることが出来ない病変の画像所見を得ることが可能となる。この蛍光観察が可能な内視鏡では生検を行わなくてもリアルタイムで組織像を反映した情報を得ることができ、その結果、腫瘍を早期発見したり炎症の状態を正確に評価したりすることが出来るようになる。これまで腸管粘膜の腺管を特異的に蛍光染色する検査試薬はなかった。本発明の検査試薬は、これまで得ることが出来なかった腺管の構造に関する情報を得ることを可能とし腸炎や腫瘍の診断に極めて有用であり、蛍光内視鏡の有用性を拡大するものである。
 腸炎、特に炎症性腸疾患の一つである潰瘍性大腸炎において通常内視鏡では炎症の程度を評価することが時として困難である(非特許文献6)。メチレンブルーを用いた拡大内視鏡で得られる所見は腺管構造を反映し、潰瘍性大腸炎の再発を予見するのに有用であることが報告されている(非特許文献7)。したがって、腺管構造を反映した蛍光像が得られる、本発明の検査試薬も潰瘍性大腸炎などの腸炎の予後を判定するに有用であると考えられる。
 大腸癌は西欧諸国における癌死の主要な原因であり、日本でも癌死の中で占める割合は大きくなってきている(非特許文献8)。大腸癌の発生過程には腺管の増大、腺管の分化異常が含まれる(非特許文献8)。杯細胞は腺管を占める主要な細胞であり、また正常分化を示す細胞でもある(非特許文献5)。したがって、その杯細胞の粘液顆粒を蛍光染色する我々が開発した検査試薬を用いた蛍光内視鏡を行うことで、大腸癌の発生過程を反映した蛍光像を観察することが出来ることになり、大腸癌の早期発見だけでなくその病理所見を反映した診断を行うことが可能となる。
 本発明の検査試薬では従来使用されてきたフルオレセインとは全く異なる腸管粘膜の蛍光像を得ることが出来る。更に腸管粘膜に必要に応じて散布するだけで、洗浄する必要もなく、蛍光観察が出来る。したがって、本発明の検査試薬を用いることで、これまで得ることが出来なかった腸管粘膜の画像所見を蛍光内視鏡で極めて容易に観察することが可能となり、蛍光内視鏡検査の利点と適応範囲を更にいっそう拡大することに貢献する。
 この発明は、上記発明の実施の形態及び実施例の説明に何ら限定されるものではない。特許請求の範囲の記載を逸脱せず、当業者が容易に想到できる範囲で種々の変形態様もこの発明に含まれる。
 本明細書の中で明示した論文、公開特許公報、及び特許公報などの内容は、その全ての内容を援用によって引用することとする。

Claims (6)

  1.  蛍光色素を主成分として含有し、pH 7~8に調整された緩衝液からなる腸管蛍光観察用検査試薬であって、
     前記蛍光色素が、前記緩衝液のpHよりも低いpH域においてpH低下に伴い蛍光強度が上昇する蛍光色素であることを特徴とする、腸管粘膜蛍光観察用検査試薬。
  2.  前記緩衝液のpHが7.4~7.5である、請求項1に記載の腸管粘膜蛍光観察用検査試薬。
  3.  前記蛍光色素が、分子量250以下の蛍光色素である、請求項1に記載の腸管粘膜蛍光観察用検査試薬。
  4.  前記蛍光色素が、以下の化学式のいずれかで表される蛍光色素である、請求項1に記載の腸管粘膜蛍光観察用検査試薬。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
  5.  腸管粘膜蛍光観察用検査試薬を製造するための蛍光色素の使用であって、該蛍光色素がpH 7~8よりも低いpH域においてpH低下に伴い蛍光強度が上昇する蛍光色素であることを特徴とする使用。
  6.  請求項1に記載の腸管蛍光観察用検査試薬を被検者の腸管に適用するステップと、
     所定時間経過後に適用部位の蛍光を観察するステップと、を含む腸管蛍光観察法。
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