WO2005015983A1 - Method for the on-land production of red algae from the bonnemaisoniaceae family - Google Patents

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WO2005015983A1 PCT/FR2004/001825 FR2004001825W WO2005015983A1 WO 2005015983 A1 WO2005015983 A1 WO 2005015983A1 FR 2004001825 W FR2004001825 W FR 2004001825W WO 2005015983 A1 WO2005015983 A1 WO 2005015983A1
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tetrasporophytic
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algae
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Vincent Lognone
Patrick Dion
Klaus Lüning
Rui Santos
Leonardo Filipe Rodrigues Da Mata
Andreas SCHÜNHOFF
Anne Bansemir
Ulrike Lindequist
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Centre D'etude Et De Valorisation Des Algues
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    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01GHORTICULTURE; CULTIVATION OF VEGETABLES, FLOWERS, RICE, FRUIT, VINES, HOPS OR SEAWEED; FORESTRY; WATERING
    • A01G33/00Cultivation of seaweed or algae
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
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Abstract

The invention relates to an on-land method for the intensive, controlled production of red algae belonging to the Bonnemaisoniaceae family, using the tetrasporophytic form of said red algae. The invention further relates to the use of said method for the extraction of halogenated compounds having useful antibiotic properties.

Description

PROCEDE DE PRODUCTION A TERRE DES ALGUES ROUGES DE LA FAMILLE DES BONNEMAISONIACEES PROCESS FOR THE PRODUCTION ON THE GROUND OF RED ALGAE FROM THE BONNEMAISONIACEA FAMILY
La présente invention se rapporte au domaine de la production d'algues présentant un intérêt industriel. En particulier, l'invention s'intéresse aux procédés de culture et production d'algues rouges de la famille des Bonnemaisoniacées. Plus précisément, la présente invention propose un procédé de production intensive et contrôlée, à terre, d'une algue rouge appartenant à la famille des Bonnemaisoniacées, via l'utilisation de la forme tétrasporophytique de ladite algue rouge. En outre, l'invention concerne l'application d'un tel procédé à l'extraction de composés halogènes utiles pour leurs propriétés antibiotiques. Les activités antibactériennes et antifongiques des extraits d'algues rouges appartenant à la famille des Bonnemaisoniacées, en particulier des extraits d'Asparagopsis armata et de son sporophyte filamenteux microscopique Falkenbergia rufonalosa, sont connues. Les composés responsables de ces activités ont été en partie identifiés et quantifiés (Etude comparative des composés halogènes du Falkenbergia rufolanosa et de YAsparagopsis armata : Rhodophycées Bonnemaisoniales. Bruneau et al. Compte rendu de l'Académie des Sciences du 27 février 1978). Ce sont principalement des dérivés bromes et/ou chlorés de la propanone-2. D'autres composés halogènes, tels que des bromoforme et chloroforme, ainsi que des dérivés halogènes de l'acide acrylique ou de l'acide acétique (sous forme libre ou d'ester), sont également présents en quantités moindres. Les techniques de propagation d'Asparagopsis armata (Codomier et al, 1978) par bouturage sont connues. Le brevet FR 2 732 022 décrit la culture en mer de l'algue A. armata par microbouturage. L'algue produite est destinée à l'extraction de dérivés organiques du silicium. Le brevet FR 2 753 101 , et les brevets correspondants (EP 0 926 956 et US 6 346 252), concernent l'utilisation d'un extrait d'A armata présentant une activité antibactérienne et/ou anti-fongique et contenant des molécules halogénées ayant un poids moléculaire supérieur à 10 000. Selon ces documents, l'activité antibactérienne de l'extrait est avérée sur les souches bactériennes Vibrio anguillarum, Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli, Enterobacter gergoviae, Staphylococcus aureus ainsi que sur la souche de levure Candida albicans. Cette activité dépend en partie de la présence de dérivés halogènes de poids moléculaire supérieur à 10 000. Ces macromolécules n'ont pas été caractérisées dans les documents en cause. Asparagopsis armata est décrite morphologiquement sous sa forme macroscopique atteignant quelques dizaines de cm. Elle est organisée morphologiquement, différenciée anatomiquement, et représente, dans le cycle de reproduction de l'algue, la génération macroscopique ou gamétophytique. Actuellement, A. armata est produite sur filières en mer. Ce procédé de production présente un certain nombre d'inconvénients. D'une part, il ne permet pas le contrôle des conditions de culture qui influencent la biosynthèse par l'algue de composés halogènes. D'autre part, il ne résout qu'en partie les difficultés d'approvisionnement en cette algue, compte tenu des faibles quantités produites. En outre, la morphologie et la physiologie de A. armata ne permettent pas de la cultiver en suspension dans des bassins à terre. La présente invention vise donc à obvier aux inconvénients susmentionnés, en tirant avantage du fait que, contrairement à la forme macroscopique de A. armata, sa génération microscopique filamenteuse, dite sporophytique et dont elle est issue, est adaptée à la production en bassin à terre. Cette génération a été décrite séparément sous le nom de Falkenbergia rufalonosa par les premiers algologues qui ignoraient qu'un même cycle de reproduction reliait les deux formes. Ainsi, la solution selon la présente invention propose de détourner la culture d'Asparagopsis armata en cultivant plutôt sa phase filamenteuse que l'on maintient en suspensions denses en bassins à terre, à la manière d'une culture phytoplanctonique. Il est donc désormais possible, grâce à l'invention, de produire la biomasse algale à terre, en conditions intensives, tout en contrôlant sa teneur en composés halogènes et, par suite, d'utiliser cette biomasse pour la production d'un extrait antibiotique dont l'activité est standardisée. Evidemment, par extension, le procédé selon l'invention peut être appliqué à d'autres espèces de la famille des Bonnemaisoniacées, telles que Bonnemaisonia sp. et son tétrasporophyte, Trailliela sp. Selon un premier aspect, la présente invention a pour objet un procédé de production intensive et contrôlée, à terre, d'une algue rouge appartenant à la famille des Bonnemaisoniacées, ledit procédé comprenant au moins : a) la mise en suspension de la forme tétrasporophytique de ladite algue rouge dans un milieu de culture contenant de l'eau de mer ; b) la culture de ladite forme tétrasporophytique sous agitation, à une température comprise entre environ 10°C et environ 29°C, avec renouvellement du milieu de culture ; et c) la récolte de ladite forme tétrasporophytique à partir de la culture obtenue à l'étape b). Contrairement à la pratique habituelle s'agissant de la production d'algues rouges, le procédé conforme à l'invention est mis en œuvre à terre, et non en mer. Ce procédé peut notamment être mis en œuvre en bassins ou dans des bioréacteurs clos. Les bioréacteurs clos permettent d'optimiser le contrôle des conditions de culture, et en particulier de prévenir les contaminations extérieures. Néanmoins, la mise en oeuvre en bassins est préférée. En ce cas, les bassins peuvent être de différentes tailles, formes, capacités, profondeurs, etc., de sorte qu'une ou plusieurs conditions de production des algues sont contrôlées, comme indiqué ci- dessous. Par l'expression « production intensive », l'on entend une production en quantités importantes rapportées à la surface ou au volume de culture, ladite production pouvant atteindre par exemple 80 g de matière sèche par m2 et par jour. En effet, selon le procédé ci-dessus, l'algue est maintenue en suspension dense dans le milieu de culture. Dans ces conditions, elle se développe par croissance et multiplication végétative pour donner des productions par m2 particulièrement avantageuses. Comme le montre l'exemple 1.2 ci-après, les valeurs de production observées sont exceptionnelles, dans la mesure où elles représentent pratiquement le double de ce qui a été rapporté dans la littérature concernant d'autres petites macro-algues ayant déjà fait l'objet d'expérimentations de cultures en bassins (voir par exemple Neori et Shpigel. 1999. World Aquaculture. Pages 46-47). La production d'algues est « contrôlée » en ce que les conditions de production susceptibles d'agir sur la composition chimique des algues sont à la fois surveillées et régulées par rapport à des valeurs ou niveaux de référence qui ont été déterminés empiriquement dans le cadre de la présente invention. L'objectif de ce contrôle est d'obtenir une production surfacique maximale, tout en garantissant une qualité de la matière récoltée optimale. En outre, il sert à empêcher la contamination des bassins par des algues différentes de celles que l'on cherche à produire. Conformément à cette définition, au sens de l'invention, au moins l'une des conditions suivantes est contrôlée : - l'apport en sels nutritifs ; - l'apport en gaz carbonique ; - la température de la culture ; - l'agitation du milieu de culture ; - le renouvellement du milieu de culture ; - l'exposition à la lumière ; - la contamination par d'autres algues ; et - la fréquence de la récolte. De manière avantageuse, l'on contrôle également la teneur des algues récoltées en composés halogènes d'intérêt, ce qui permet de produire des extraits contenant ces composés qui présentent une activité, notamment antibiotique, standardisée (voir infra et exemples). Selon un premier mode de réalisation, le milieu de culture utilisé dans le cadre de l'invention contient de l'eau de mer filtrée, enrichie en sels nutritifs et, le cas échéant, en gaz carbonique, de manière à contrôler les apports en ces éléments. Ce contrôle aide à optimiser la croissance et la composition chimique des algues. Selon un deuxième mode de réalisation, lors de l'étape b) du procédé susmentionné, la culture est avantageusement maintenue à une température comprise entre environ 10°C et environ 24°C. Selon un troisième mode de réalisation, lors de l'étape b), le milieu de culture est renouvelé de manière séquentielle ou continue, de préférence continue, afin d'éviter un confinement du milieu de culture des algues et aider à réguler la température des cultures. Dans le cadre de la présente invention, l'agitation est utile à plusieurs titres : dans le contrôle des apports nutritifs, de la température et de l'exposition à la lumière, dans la circulation du milieu aux fins de son renouvellement, etc.. A cet égard, selon un quatrième mode de réalisation, lors de l'étape b), l'agitation est réalisée par bullage ou au moyen d'un dispositif mécanique tel que les roues à aubes des sytèmes de bassins dits « raceway », des hélices ou des pompes de circulation. Selon un cinquième mode de réalisation, l'exposition à la lumière est contrôlée par divers moyens, à savoir la profondeur des bassins, la densité de la culture et l'agitation. La profondeur des bassins dépend du type de bassins (forme et volume des bassins) et du niveau d'agitation. Elle se situe, le plus souvent, entre 50 cm et 1 m, mais peut atteindre plusieurs mètres, notamment lorsque les bassins se présentent sous la forme de colonnes. En règle générale, l'on préfère des profondeurs de l'ordre du mètre, ou en- deçà. En outre, au démarrage, il convient de protéger la culture d'un excès de lumière solaire, par exemple à l'aide d'un grillage, d'une toile, d'un tissu, de planches disposées de manière à filtrer la lumière. En revanche, au fur et à mesure que les algues se développent, la culture se densifie et l'auto-ombrage par les algues elles-mêmes suffit à les protéger du rayonnement solaire (voir exemples ci-dessous). Enfin, l'agitation participe au contrôle de l'exposition à la lumière en gouvernant le rythme de passage des algues au niveau de la surface éclairée du bassin. Selon un sixième mode de réalisation, l'absence de contamination par des algues autres que celles que l'on veut produire est contrôlée. Pour ce faire, interviennent à la fois la filtration de l'eau de mer et la densité des cultures. Effectivement, à forte densité, les cultures se préservent elles- mêmes d'une contamination éventuelle par d'autres algues. Selon un septième mode de réalisation, lors de l'étape c) du procédé objet de l'invention, la récolte des algues est effectuée de manière périodique, par exemple à une semaine d'intervalle. Bien entendu, l'homme du métier retiendra des divers modes de réalisation énoncés ci-dessus qu'ils concernent tous le contrôle des conditions de production des algues. A ce titre, chaque mode de réalisation peut être considéré seul ou en combinaison avec un ou plusieurs autres modes de réalisation. Le procédé selon l'invention est de préférence mis en œuvre en combinant tous les modes de réalisation décrits supra. Il est bien évident que l'homme du métier peut faire appel à ses connaissances générales dans le domaine technique de l'invention, ainsi qu'à des expériences de routine, pour déterminer, à la lumière de la présente description et des exemples ci-après, une ou plusieurs conditions de production des algues. N'importe quelle algue rouge de la famille des Bonnemaisoniacées peut être utilisée pour mettre en œuvre le procédé selon l'invention. En particulier, l'homme du métier peut choisir parmi les algues suivantes : Asparagopsis armata et la forme tétrasporophytique correspondante Falkenbergia rufalonosa, ou Bonnemaisonia sp. et sa forme tétrasporophytique Trailliela sp. Selon un deuxième aspect, la présente invention concerne l'application du procédé de production décrit ci-dessus, à l'extraction de composés halogènes utiles pour leurs propriétés antibiotiques. L'on entend ici par « propriétés antibiotiques », des propriétés antibactériennes et/ou antifongiques. Les composés halogènes d'intérêt ont une faible masse moléculaire. Il s'agit principalement de propanones et d'acétates d'alkyle. Il peut être également question, dans une moindre mesure, d'acrylates d'alkyle. Tous ces composés sont synthétisés par les algues au niveau de cellules spécialisées, sous la forme d'ultrastructures appelées vésicules. Ces vésicules participent aux mécanismes de défense des algues contre divers stress (oxydations, épyphites, bactéries, etc..) L'extraction des composés halogènes, dans la mesure où ils sont de petite taille et possèdent une structure relativement simple, peut être réalisée de manière classique. En particulier, l'homme du métier peut faire appel au procédé d'extraction suivant, comprenant au moins : d) la dispersion de la forme tétrasporophytique récoltée dans du propylène glycol ; e) le broyage de ladite dispersion ; f) l'extraction sous agitation, à température ambiante, pendant environ 2 heures ; g) l'élimination de la phase insoluble ; et h) la récupération de la phase soluble contenant lesdits composés halogènes. De manière avantageuse, le procédé d'extraction ci-dessus comprend en outre une étape i) de purification des composés d'intérêt par séparation liquide-liquide, notamment à l'aide d'éther. Les conditions de mise en œuvre du procédé d'extraction sus-cité font partie des connaissances générales dans le domaine de l'invention et sont, à ce titre, parfaitement connues de l'homme du métier. Par exemple, l'élimination lors de l'étape g) peut être effectuée par centrifugation et/ou filtration. Les composés halogènes antibiotiques extraits à partir d'algues rouges produites selon le procédé objet de la présente invention sont destinés à être utilisés dans des domaines très variés, comprenant notamment : - la pharmacie, en particulier la pharmacie vétérinaire ; - la cosmétique, notamment comme stabilisateurs microbiens ou principes actifs pour lutter contre l'acné, l'état pelliculaire, etc.. ; l'environnement, par exemple pour l'épuration biologique des eaux polluées telles que les rejets de piscicultures marines enrichis en sels nutritifs ; et - les revêtements antisalissures (peintures, laques, enduits, c'est-à- dire les revêtements dits « anti-fouling »). Les exemples qui suivent servent à illustrer, sans limiter, la présente invention. EXEMPLESThe present invention relates to the field of algae production of industrial interest. In particular, the invention relates to methods of cultivation and production of red algae of the Bonnemaisoniacées family. More specifically, the present invention provides a process for intensive and controlled production, on land, of a red alga belonging to the Bonnemaisoniacées family, via the use of the tetrasporophytic form of said red alga. In addition, the invention relates to the application of such a method to the extraction of halogen compounds useful for their antibiotic properties. The antibacterial and antifungal activities of red algae extracts belonging to the Bonnemaisoniacées family, in particular extracts of Asparagopsis armata and its microscopic filamentous sporophyte Falkenbergia rufonalosa, are known. The compounds responsible for these activities have been partially identified and quantified (Comparative study of the halogen compounds of Falkenbergia rufolanosa and YAsparagopsis armata: Rhodophycées Bonnemaisoniales. Bruneau et al. Report of the Academy of Sciences of February 27, 1978). They are mainly brominated and / or chlorinated derivatives of propanone-2. Other halogenated compounds, such as bromoform and chloroform, as well as halogenated derivatives of acrylic acid or acetic acid (in free or ester form), are also present in lesser amounts. The techniques of propagation of Asparagopsis armata (Codomier et al, 1978) by cuttings are known. Patent FR 2 732 022 describes the cultivation in sea of the alga A. armata by microbouturage. The alga produced is intended for the extraction of organic silicon derivatives. Patent FR 2 753 101, and the corresponding patents (EP 0 926 956 and US 6 346 252), relate to the use of an extract of A armata having antibacterial and / or anti-fungal activity and containing halogenated molecules having a molecular weight greater than 10,000. According to these documents, the antibacterial activity of the extract is proven on the bacterial strains Vibrio anguillarum, Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli, Enterobacter gergoviae, Staphylococcus aureus as well as on the yeast strain Candida albicans . This activity depends in part on the presence of halogenated derivatives of molecular weight greater than 10,000. These macromolecules have not been characterized in the documents in question. Asparagopsis armata is described morphologically in its macroscopic form reaching a few tens of cm. It is organized morphologically, differentiated anatomically, and represents, in the reproductive cycle of the alga, the macroscopic or gametophytic generation. Currently, A. armata is produced on dies at sea. This production process has a number of drawbacks. On the one hand, it does not allow the control of the culture conditions which influence the biosynthesis by the alga of halogenated compounds. On the other hand, it only partially solves the difficulties of supplying this alga, given the small quantities produced. In addition, the morphology and physiology of A. armata do not allow it to be grown in suspension in onshore tanks. The present invention therefore aims to overcome the aforementioned drawbacks, by taking advantage of the fact that, unlike the macroscopic form of A. armata, its filamentous microscopic generation, called sporophytic and from which it is derived, is suitable for production in onshore tanks . This generation has been described separately as Falkenbergia rufalonosa by the first algologists who were unaware that the same reproductive cycle linked the two forms. Thus, the solution according to the present invention proposes to divert the culture of Asparagopsis armata by cultivating rather its filamentous phase which is maintained in dense suspensions in earthen basins, in the manner of a phytoplankton culture. It is therefore now possible, thanks to the invention, to produce the algal biomass on land, under intensive conditions, while controlling its content of halogen compounds and, consequently, to use this biomass for the production of an antibiotic extract. whose activity is standardized. Obviously, by extension, the method according to the invention can be applied to other species of the Bonnemaisoniacées family, such as Bonnemaisonia sp. and its tetrasporophyte, Trailliela sp. According to a first aspect, the subject of the present invention is a process for intensive and controlled production, on land, of a red alga belonging to the Bonnemaisoniaceae family, said process comprising at least: a) suspending the tetrasporophytic form said red alga in a culture medium containing sea water; b) culturing said tetrasporophytic form with stirring, at a temperature between about 10 ° C and about 29 ° C, with renewal of the culture medium; and c) harvesting said tetrasporophytic form from the culture obtained in step b). Contrary to the usual practice with regard to the production of red algae, the process according to the invention is carried out on land, and not at sea. This process can in particular be carried out in basins or in closed bioreactors . Closed bioreactors optimize the control of culture conditions, and in particular prevent external contamination. However, the implementation in basins is preferred. In this case, the basins can be of different sizes, shapes, capacities, depths, etc., so that one or more algae production conditions are controlled, as indicated below. The expression “intensive production” means a production in large quantities relative to the surface area or to the volume of culture, said production possibly reaching, for example, 80 g of dry matter per m 2 and per day. In fact, according to the above method, the alga is kept in dense suspension in the culture medium. Under these conditions, it develops by growth and vegetative multiplication to give particularly advantageous productions per m 2 . As shown in example 1.2 below, the production values observed are exceptional, in that they represent almost double what has been reported in the literature concerning other small macroalgae which have already subject of experiments in cultures in basins (see for example Neori and Shpigel. 1999. World Aquaculture. Pages 46-47). The production of algae is "controlled" in that the production conditions liable to act on the chemical composition of the algae are both monitored and regulated in relation to reference values or levels which have been determined empirically within the framework of the present invention. The objective of this control is to obtain maximum surface production, while guaranteeing an optimal quality of the harvested material. In addition, it is used to prevent contamination of the basins by algae different from those which one seeks to produce. According to this definition, within the meaning of the invention, at least one of the following conditions is controlled: - the supply of nutritive salts; - the supply of carbon dioxide; - the temperature of the culture; - the agitation of the culture medium; - renewal of the culture medium; - exposure to light; - contamination by other algae; and - the frequency of harvest. Advantageously, the content of the algae harvested in halogen compounds of interest is also controlled, which makes it possible to produce extracts containing these compounds which have a standardized activity, in particular antibiotic (see below and examples). According to a first embodiment, the culture medium used in the context of the invention contains filtered sea water, enriched with nutritive salts and, where appropriate, carbon dioxide, so as to control the contributions in these elements. This control helps optimize the growth and chemical composition of algae. According to a second embodiment, during step b) of the above-mentioned process, the culture is advantageously maintained at a temperature of between approximately 10 ° C. and approximately 24 ° C. According to a third embodiment, during step b), the culture medium is renewed sequentially or continuously, preferably continuously, in order to avoid confinement of the algae culture medium and to help regulate the temperature of the cultures. In the context of the present invention, agitation is useful for several reasons: in the control of nutrient intakes, of temperature and of exposure to light, in the circulation of the medium for the purpose of its renewal, etc. In this regard, according to a fourth embodiment, during step b), the stirring is carried out by bubbling or by means of a mechanical device such as the impellers of the systems of so-called “raceway” tanks, propellers or circulation pumps. According to a fifth embodiment, the exposure to light is controlled by various means, namely the depth of the pools, the density of the culture and the agitation. The depth of the basins depends on the type of basins (shape and volume of the basins) and the level of agitation. It is most often between 50 cm and 1 m, but can reach several meters, especially when the basins are in the form of columns. As a general rule, depths of the order of a meter are preferred, or less. In addition, at start-up, it is advisable to protect the culture from an excess of sunlight, for example using a mesh, a canvas, a fabric, boards arranged so as to filter the light. . On the other hand, as the algae develop, the culture densifies and the self-shading by the algae themselves is enough to protect them from solar radiation (see examples below). Finally, the agitation helps control exposure to light by controlling the rate of passage of algae at the level of the lit surface of the pool. According to a sixth embodiment, the absence of contamination by algae other than those which it is desired to produce is controlled. To do this, both seawater filtration and crop density are involved. Indeed, at high density, the crops preserve themselves from possible contamination by other algae. According to a seventh embodiment, during step c) of the process which is the subject of the invention, the harvesting of the algae is carried out periodically, for example at one week intervals. Of course, those skilled in the art will retain from the various embodiments set out above that they all relate to the control of the conditions of production of algae. As such, each embodiment can be considered alone or in combination with one or more other embodiments. The method according to the invention is to preferably implemented by combining all the embodiments described above. It is obvious that a person skilled in the art can call on his general knowledge in the technical field of the invention, as well as on routine experiments, to determine, in the light of the present description and of the examples below. after, one or more algae production conditions. Any red algae of the Bonnemaisoniacées family can be used to implement the method according to the invention. In particular, a person skilled in the art can choose from the following algae: Asparagopsis armata and the corresponding tetrasporophytic form Falkenbergia rufalonosa, or Bonnemaisonia sp. and its tetrasporophytic form Trailliela sp. According to a second aspect, the present invention relates to the application of the production process described above, to the extraction of halogen compounds useful for their antibiotic properties. The term “antibiotic properties” is understood here to mean antibacterial and / or antifungal properties. The halogen compounds of interest have a low molecular weight. They are mainly propanones and alkyl acetates. There may also be, to a lesser extent, alkyl acrylates. All of these compounds are synthesized by algae at the level of specialized cells, in the form of ultrastructures called vesicles. These vesicles participate in the defense mechanisms of algae against various stresses (oxidations, epyphites, bacteria, etc.). The extraction of halogen compounds, insofar as they are small and have a relatively simple structure, can be carried out by classic way. In particular, a person skilled in the art can use the following extraction process, comprising at least: d) the dispersion of the tetrasporophytic form collected in propylene glycol; e) grinding said dispersion; f) extraction with stirring, at room temperature, for approximately 2 hours; g) elimination of the insoluble phase; and h) recovering the soluble phase containing said halogenated compounds. Advantageously, the above extraction method further comprises a step i) of purification of the compounds of interest by liquid-liquid separation, in particular using ether. The conditions for implementing the abovementioned extraction method form part of the general knowledge in the field of the invention and are, as such, perfectly known to those skilled in the art. For example, the elimination during step g) can be carried out by centrifugation and / or filtration. The halogenated antibiotic compounds extracted from red algae produced according to the process which is the subject of the present invention are intended to be used in very varied fields, comprising in particular: - pharmacy, in particular veterinary pharmacy; - cosmetics, in particular as microbial stabilizers or active principles to combat acne, dandruff, etc.; the environment, for example for the biological purification of polluted waters such as discharges from marine fish farms enriched with nutritive salts; and - anti-fouling coatings (paints, lacquers, coatings, that is to say “anti-fouling” coatings). The examples which follow serve to illustrate, without limiting, the present invention. EXAMPLES
I. Culture :I. Culture:
L'algue Falkenbergia rufolanosa a été introduite dans le sud de la France vers 1926, probablement en provenance d'Australie. Elle est conservée depuis 1978 dans la collection du Biologische Anstalt Helgoland (Allemagne). Les cultures en bassin extérieur réalisées à Faro dans le Sud du Portugal ont été réalisées à partir de cet échantillon, dont les cultures ont été redémarrées à 10°C dans de l'eau de mer enrichie avec du milieu de Von Stosch (Stein, J.R. 1973. Culture methods and growth measurements. Handbook of Phycological methods. Cambridge University Press).The alga Falkenbergia rufolanosa was introduced into the south of France around 1926, probably from Australia. It has been kept since 1978 in the collection of the Biologische Anstalt Helgoland (Germany). The cultures in external basin carried out in Faro in the South of Portugal were carried out starting from this sample, whose cultures were restarted at 10 ° C in sea water enriched with medium of Von Stosch (Stein, JR 1973. Culture methods and growth measurements. Handbook of Phycological methods. Cambridge University Press).
/.1.Démarrage du stock initial : Plusieurs thalles de Falkenbergia rufonalosa ont été nettoyés avec précaution, débarrassés des autres algues, puis incorporés dans un petit bac de culture sous flux continu d'un effluent filtré provenant des bassins d'élevage de poissons. Au démarrage, la culture a été protégée d'un excès de lumière solaire. Quand la culture est devenue dense (environ 5 g par litre), l'auto-ombrage des algues était une protection suffisante contre le rayonnement solaire. A forte densité, la culture était préservée de la contamination par d'autres espèces d'algues./.1.Starting of the initial stock: Several thalli of Falkenbergia rufonalosa were carefully cleaned, freed of other algae, then incorporated into a small culture tank under a continuous flow of filtered effluent from the fish farming tanks. At the start, the crop was protected from excess sunlight. When the culture became dense (about 5 g per liter), the self-shading of the algae was sufficient protection against solar radiation. At high density, the culture was preserved from contamination by other species of algae.
1.2. Procédé de production: Des bacs circulaires en polyethylene de 1 ,5 m2 de surface et 1 m de profondeur ont été utilisés pour cultiver Falkenbergia rufonalosa. Un effluent filtré à 150 μm provenant des bassins d'élevage de poisson approvisionnait continuellement les bacs par un tuyau affleurant à leur surface. Le maintien des algues en suspension était assuré par une conduite annulaire en PVC perforée fixée au fond le long de la paroi du bac. Un bullage continu d'air comprimé déshuilé créait l'agitation du milieu. La conduite d'évacuation des bacs était munie d'une grille (diamètre des mailles de 0,5 mm).1.2. Production method: Circular polyethylene tanks with a surface area of 1.5 m 2 and a depth of 1 m were used to cultivate Falkenbergia rufonalosa. An effluent filtered at 150 μm from the fish farming tanks continuously supplied the tanks with a pipe flush with their surface. The algae was kept in suspension by an annular perforated PVC pipe fixed to the bottom along the wall of the tank. A continuous bubbling of deoiled compressed air created the agitation of the middle. The drain line for the tanks was fitted with a grid (mesh diameter of 0.5 mm).
Les algues ont été récoltées chaque semaine à l'aide d'une pompe submersible rejetant l'eau et les algues dans un caisson recouvert d'un filet et situé sous l'évacuation principale. Les algues ont alors été introduites dans des sacs en nylon (diamètre des mailles de 0,1 mm) et centrifugées jusqu'à poids frais constant à 3600 rpm. Au bout d'une semaine, la biomasse en excès par rapport à celle correspondant initialement à la densité de stock optimale représentait la production hebdomadaire. La matière première collectée a été emballée et congelée à -21 °C. La densité optimale du stock d'algue utilisable pour atteindre les productions les plus élevées (5 g de matière fraîche par litre) a été déterminée en testant différentes densités de culture et en mesurant la production. Pour déterminer la production en masse sèche, un échantillon d'algue a été déshydraté à l'étuve à 60°C. La matière sèche moyenne des algues était de 25 %. Les données de production de septembre 2002 à juillet 2003 ont montré des fluctuations saisonnières avec un pic de production de 738 +/- 25 g de matière sèche par m2 et par semaine en mai et une valeur minimale de 226 +/- 19 g de matière sèche par m2 et par semaine en janvier (voir Tableau I ci dessous). L'influence de la teneur en ion ammonium a également été testée. En augmentant le flux d'ions ammonium jusqu'à 300 μmol par litre et par heure, la production atteignait 800 g de matière sèche par m2 et par semaine. La production hebdomadaire d'algue rouge tout au long de l'année dans le sud du Portugal est indiquée dans le Tableau I suivant. TABLEAU IThe algae were harvested weekly using a submersible pump discharging the water and the algae into a box covered with a net and located under the main drain. The algae were then introduced into nylon bags (mesh diameter of 0.1 mm) and centrifuged until constant fresh weight at 3600 rpm. After one week, the excess biomass compared to that initially corresponding to the optimal stock density represented weekly production. The raw material collected was packaged and frozen at -21 ° C. The optimal density of the algae stock usable to reach the highest productions (5 g of fresh matter per liter) was determined by testing different crop densities and measuring the production. To determine the dry mass production, a seaweed sample was dried in an oven at 60 ° C. The average dry matter of the algae was 25%. Production data from September 2002 to July 2003 showed seasonal fluctuations with a production peak of 738 +/- 25 g of dry matter per m 2 and per week in May and a minimum value of 226 +/- 19 g of dry matter per m 2 and per week in January (see Table I below). The influence of the ammonium ion content was also tested. By increasing the flow of ammonium ions to 300 μmol per liter per hour, production reached 800 g of dry matter per m 2 and per week. The weekly production of red algae throughout the year in the south of Portugal is shown in Table I below. TABLE I
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Figure imgf000012_0001
II. Extraction : 1.46 kg d'algues fraîches ont été dispersées dans 3.82 kg de propylène glycol puis broyées au broyeur colloïdal pendant 10 mn. L'extraction a été mise en œuvre à température ambiante pendant 2 h. La phase insoluble a été éliminée par centrifugation à 8000 g pendant 15 mn puis filtration à l'aide de terre filtrante. 3.34 kg d'extrait hydro- propylique (20% eau) ont été stockés à 4°C.II. Extraction: 1.46 kg of fresh algae were dispersed in 3.82 kg of propylene glycol and then ground in a colloid mill for 10 min. The extraction was carried out at room temperature for 2 h. The insoluble phase was removed by centrifugation at 8000 g for 15 min then filtration using filter earth. 3.34 kg of hydro-propyl extract (20% water) were stored at 4 ° C.
III. Analyses et caractérisation des composés halogènes: 300 g de matière première fraîche ont été broyées en présence de 600 g d'eau de mer pendant 10 mn à l'aide d'un broyeur colloïdal. Après un temps de contact de 20 mn, la suspension a été centrifugée à 8000 g pendant 15 mn. L'extraction a été renouvelée deux fois. Les trois surnageants ont été extraits par 1060 ml d'éther diéthylique. L'éther diéthylique a été déshydraté par du sulfate de magnésium anhydre puis éliminé sous flux d'azote. L'huile obtenue a été pesée. Le rendement en huile était de 0.18 % par rapport à la masse sèche d'algues. Elle a été solubilisée dans du laurate de méthyl pour l'analyse des composés halogènes a été effectuée par chromatographie en phase gazeuse couplée à la spectrométrie de masse. Le Tableau II suivant identifie les composés halogènes qui ont ainsi été mis en évidence:III. Analysis and characterization of the halogen compounds: 300 g of fresh raw material were ground in the presence of 600 g of sea water for 10 min using a colloid mill. After a contact time of 20 min, the suspension was centrifuged at 8000 g for 15 min. The extraction was repeated twice. The three supernatants were extracted with 1060 ml of diethyl ether. The diethyl ether was dried with anhydrous magnesium sulfate and then removed under a stream of nitrogen. The oil obtained was weighed. The oil yield was 0.18% relative to the dry mass of algae. It was solubilized in methyl laurate for the analysis of the halogen compounds was carried out by gas chromatography coupled with mass spectrometry. The following Table II identifies the halogen compounds which have thus been highlighted:
TABLEAU IITABLE II
Figure imgf000013_0001
Figure imgf000013_0001
Les composés dont l'indice de similitude est indiqué sont ceux qui existent dans la librairie. Les autres composés ont été retrouvés grâce aux ions spécifiques résultants des diverses fragmentations des molécules.The compounds whose index of similarity is indicated are those which exist in the library. The other compounds were found thanks to the specific ions resulting from the various fragmentations of the molecules.
IV. Détermination des propriétés antibiotiques : IV.1. Activité bactéricide et fongicide sur des microorganismes pathogènes humains : Un témoin eau distillée et un témoin solvant ont été utilisés dans chaque test. L'extrait hydropropylique a été testé à la dilution 1/10, dilution pour laquelle il n'y a plus d'effet du propylène glycol. Les extraits ont été inoculés avec une densité initiale de 105 à 107 germes/g et maintenus en contact pendant 24 h pour Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Staphylococcus epidermidis et 72 h pour Candida albicans, Propionibacterium acnés, Aspergillus niger et Pityrosporum ovale. Ils ont été neutralisés par ajout d'un mélange de lécithine, polysorbate et triton afin de stopper l'action des molécules antibactériennes et anti-fongiques (teneur finale en mélange de 10"2). Les extraits ont été incubés et le nombre de micro-organismes présents déterminé (densité finale). Le Tableau III ci-dessous montre l'activité antibiotique de l'extrait hydropropylique.IV. Determination of antibiotic properties: IV.1. Bactericidal and fungicidal activity on human pathogenic microorganisms: A distilled water control and a solvent control were used in each test. The hydropropylic extract was tested at the dilution 1/10, dilution for which there is no longer any effect of propylene glycol. The extracts were inoculated with an initial density of 10 5 to 10 7 germs / g and kept in contact for 24 h for Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Staphylococcus epidermidis and 72 h for Candida albicans, Propionibacterium acnes, Aspergillus niger and Pityrosporum ovale. They were neutralized by adding a mixture of lecithin, polysorbate and triton in order to stop the action of the antibacterial and anti-fungal molecules (final mixture content of 10 "2 ). The extracts were incubated and the number of micro -organisms present determined (final density) Table III below shows the antibiotic activity of the hydropropylic extract.
TABLEAU IIITABLE III
Figure imgf000014_0001
a : l'« abattement » est la diminution de densité par rapport à la densité initiale N0. Comme il ressort du Tableau III, l'extrait algal testé au 1/10eme a révélé une activité bactéricide et fongicide permettant un abattement des germes de 3 à 4 log comparativement au témoin initial (eau distillée).
Figure imgf000014_0001
a : the "reduction" is the decrease in density compared to the initial density N 0 . As can be seen from Table III, the algal extract tested at 1/10 th revealed a bactericidal and fungicidal activity allowing a reduction in germs of 3 to 4 log compared to the initial control (distilled water).
IV.2. Activité antibiotique sur des micro-organismes pathogènes vis à vis des poissons et de l'homme (test de diffusion sur milieu gélose) : Les extraits de Falkenbergia rufolanosa (biomasse lyophilisée) ont été préparés à partir de différents solvants organiques, de polarité croissante (dichlorométhane, méthanol, eau). L'extraction a été effectuée dans chaque cas par un traitement de 24 heures à l'aide d'un extracteur Soxhiet. Après evaporation sous vide, les extraits obtenus ont été stockés à -20°C avant utilisation.IV.2. Antibiotic activity on pathogenic microorganisms with respect to fish and humans (diffusion test on agar medium): The extracts of Falkenbergia rufolanosa (freeze-dried biomass) were prepared from different organic solvents, of increasing polarity ( dichloromethane, methanol, water). The extraction was carried out in each case by a 24-hour treatment using a Soxhiet extractor. After evaporation under vacuum, the extracts obtained were stored at -20 ° C before use.
L'activité antibactérienne a été testée par diffusion sur milieu gélose, selon la méthode préconisée par la Pharmacopée Européenne, contre 5 bactéries pathogènes du poisson : Vibrio anguillarum DSMZ 11323 ; Aeromonas salmonicida ssp salmonicida ATCC 51413 ; Aeromonas hydrophila ssp hydrophila DSMZ 6173 ; Pseudomonas anguilliseptica DSMZ 12111 ; Yersinia ruckeri ATCC 29493; et contre 6 souches pathogènes pour l'homme : Staphylococcus aureus ATCC 6538 Bacillus subtilis ATCC 6051 Micrococcus flavus SBUG Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 Escherichia coli ATCC 11229 Candida maltosa (levure) SBUG.The antibacterial activity was tested by diffusion on agar medium, according to the method recommended by the European Pharmacopoeia, against 5 fish pathogenic bacteria: Vibrio anguillarum DSMZ 11323; Aeromonas salmonicida ssp salmonicida ATCC 51413; Aeromonas hydrophila ssp hydrophila DSMZ 6173; Pseudomonas anguilliseptica DSMZ 12111; Yersinia ruckeri ATCC 29493; and against 6 strains pathogenic for humans: Staphylococcus aureus ATCC 6538 Bacillus subtilis ATCC 6051 Micrococcus flavus SBUG Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 Escherichia coli ATCC 11229 Candida maltosa (yeast) SBUG.
ATCC = American Type Culture CollectionATCC = American Type Culture Collection
DSMZ = Deutsche Sammlung fur Mikroorganismen und Zellkulturen SBUG = Strain collection of the Institute of Biology of the University Greifswald, Germany.DSMZ = Deutsche Sammlung fur Mikroorganismen und Zellkulturen SBUG = Strain collection of the Institute of Biology of the University Greifswald, Germany.
Pour le test de diffusion sur milieu gélose, le contenu d'une boucle d'inoculation a été mis en suspension dans 3 ml de solution de NaCI à 0,9%., pour chaque souche. Les suspensions ainsi préparées ont été inoculées chacune sur un milieu nutritif gélose. Des disques de papier stériles préalablement imprégnés de l'extrait d'algue (2 mg) ont été déposés sur les boîtes de Pétri inoculées. Les disques témoins contenaient respectivement de l'oxytrétracycline et le solvant d'extraction utilisé. Les diamètres d'inhibition autour de ces disques ont été mesurés après 18 ou 48 heures d'incubation à 26°C, en excluant le diamètre des disques (6 mm). Parallèlement, la concentration minimale inhibitrice (CMI) a été déterminée par dilutions successives de l'extrait, contre les bactéries les plus sensibles au test précédent : Vibrio anguillarum, Pseudomonas anguilliseptica et Staphylococcus aureus.For the diffusion test on agar medium, the content of an inoculation loop was suspended in 3 ml of 0.9% NaCl solution, for each strain. The suspensions thus prepared were each inoculated on an agar nutrient medium. Sterile paper discs previously impregnated with seaweed extract (2 mg) were placed on the inoculated petri dishes. The control discs respectively contained oxytetracycline and the extraction solvent used. The inhibition diameters around these disks were measured after 18 or 48 hours of incubation at 26 ° C., excluding the diameter of the disks (6 mm). In parallel, the minimum inhibitory concentration (MIC) was determined by successive dilutions of the extract, against the bacteria most sensitive to the previous test: Vibrio anguillarum, Pseudomonas anguilliseptica and Staphylococcus aureus.
a) Préparation des suspensions bactériennes : Le contenu d'une boucle d'inoculation a été mis en suspension dans 3 ml de solution de NaCI à 0,9%, pour chaque souche. Les suspensions ainsi préparées ont été inoculées chacune sur un milieu nutritif liquide. Après 18 heures d'incubation à 26°C (au bain-marie, avec agitation), les suspensions bactériennes ont été déposées dans des puits de micro- plaques contenant l'extrait d'algue à différentes concentrations : Colonne 1 (puits A à H) : solution contenant l'extrait d'algue à tester Colonne 1 à 11 (puits A à H) : dilutions successives de cette solution (concentrations 1/1 ,5). Les micro-plaques ont été incubées : - 24 heures à 26°C, pour Vibrio anguillarum,a) Preparation of the bacterial suspensions: The content of an inoculation loop was suspended in 3 ml of 0.9% NaCl solution, for each strain. The suspensions thus prepared were each inoculated on a liquid nutritive medium. After 18 hours of incubation at 26 ° C (in a water bath, with shaking), the bacterial suspensions were deposited in microplate wells containing the algae extract at different concentrations: Column 1 (well A to H): solution containing the algae extract to be tested Column 1 to 11 (wells A to H): successive dilutions of this solution (concentrations 1/1, 5). The microplates were incubated: - 24 hours at 26 ° C, for Vibrio anguillarum,
- 48 heures à 26°C, pour Pseudomonas anguilliseptica, - 24 heures à 37°C, pour Staphylococcus aureus. La lecture des plaques a été faite à 620 nm à l'aide d'un lecteur de microplaques ELISA, puis à 550 nm après révélation au iodonitrotétrazolium violet. b) Résultats : Les déterminations des activités antibactériennes ont été réalisées 10 fois pour les essais sur les souches pathogènes du poisson et deux fois pour les souches pathogènes de l'homme. Le Tableau IV ci-dessous indique les résultats du test de diffusion sur milieu gélose sur les souches pathogènes du poisson.- 48 hours at 26 ° C, for Pseudomonas anguilliseptica, - 24 hours at 37 ° C, for Staphylococcus aureus. The plates were read at 620 nm using an ELISA microplate reader, then at 550 nm after revelation with iodonitrotetrazolium violet. b) Results: The antibacterial activities were determined 10 times for the tests on fish pathogenic strains and twice for human pathogenic strains. Table IV below shows the results of the diffusion test on agar medium on fish pathogenic strains.
TABLEAU IVTABLE IV
Figure imgf000017_0001
Le Tableau V suivant montre les résultats du test de diffusion sur milieu gélose sur les souches pathogènes de l'homme.
Figure imgf000017_0001
Table V below shows the results of the diffusion test on agar medium on human pathogenic strains.
TABLEAU VTABLE V
Figure imgf000017_0002
Les concentrations minimales inhibitrices ont été déterminées sur l'extrait au dichloromethane Les résultats sont de 105,5 μg/ml pour Vibrio anguillarum, pour Pseudomonas anguilliseptica et 222,5 μg/ml pour Staphylococcus aureus. Les concentrations minimales inhibitrices pour des molécules antibiotiques pures comme l'OTC sont de 0,08 μg/ml for Vibrio anguillarum et de 0,08 μg/ml pour Pseudomonas anguilliseptica. Pour l'ampicilline, la concentration minimale inhibitrice est de 20 μg/ml pour Staphylococcus aureus. La composition complexe des mélanges algaux explique les écarts par rapport aux molécules témoins pures.
Figure imgf000017_0002
The minimum inhibitory concentrations were determined on the dichloromethane extract. The results are 105.5 μg / ml for Vibrio anguillarum, for Pseudomonas anguilliseptica and 222.5 μg / ml for Staphylococcus aureus. The minimum inhibitory concentrations for pure antibiotic molecules such as OTC are 0.08 μg / ml for Vibrio anguillarum and 0.08 μg / ml for Pseudomonas anguilliseptica. For ampicillin, the minimum inhibitory concentration is 20 μg / ml for Staphylococcus aureus. The complex composition of the algal mixes explains the deviations from the pure control molecules.

Claims

REVENDICATIONS
1. Procédé de production intensive et contrôlée, à terre, d'une algue rouge appartenant à la famille des Bonnemaisoniacées, ledit procédé comprenant au moins : a) la mise en suspension de la forme tétrasporophytique de ladite algue rouge dans un milieu de culture contenant de l'eau de mer ; b) la culture de ladite forme tétrasporophytique sous agitation, à une température comprise entre environ 10°C et environ 29°C, avec renouvellement du milieu de culture ; et c) la récolte de ladite forme tétrasporophytique à partir de la culture obtenue à l'étape b).1. A method of intensive and controlled production, on land, of a red alga belonging to the Bonnemaisoniacées family, said method comprising at least: a) suspending the tetrasporophytic form of said red alga in a culture medium containing sea water; b) culturing said tetrasporophytic form with stirring, at a temperature between about 10 ° C and about 29 ° C, with renewal of the culture medium; and c) harvesting said tetrasporophytic form from the culture obtained in step b).
2. Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce qu'il est mis en œuvre en bassin.2. Method according to claim 1, characterized in that it is implemented in a basin.
3. Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce qu'au moins l'une des conditions suivantes est contrôlée :3. Method according to claim 1, characterized in that at least one of the following conditions is controlled:
- l'apport en sels nutritifs ; - l'apport en gaz carbonique ;- the supply of nutritive salts; - the supply of carbon dioxide;
- la température de la culture ;- the temperature of the culture;
- l'agitation du milieu de culture ;- the agitation of the culture medium;
- le renouvellement du milieu de culture ;- renewal of the culture medium;
- l'exposition à la lumière ; - la contamination par d'autres algues ; et- exposure to light; - contamination by other algae; and
- la fréquence de la récolte.- the frequency of the harvest.
4. Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce que ledit milieu de culture contient de l'eau de mer filtrée, de préférence enrichie en sels nutritifs et, facultativement, en gaz carbonique. 4. Method according to claim 1, characterized in that said culture medium contains filtered sea water, preferably enriched in nutritive salts and, optionally, in carbon dioxide.
5. Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce que, lors de l'étape b), ladite culture est maintenue à une température comprise entre environ 10°C et environ 24°C.5. Method according to claim 1, characterized in that, during step b), said culture is maintained at a temperature between about 10 ° C and about 24 ° C.
6. Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce que, lors de l'étape b), ledit milieu de culture est renouvelé de manière séquentielle ou continue.6. Method according to claim 1, characterized in that, during step b), said culture medium is renewed sequentially or continuously.
7. Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce que, lors de l'étape b), ladite agitation est réalisée par bullage ou au moyen d'un dispositif tel que des roues à aubes, des hélices ou des pompes de circulation.7. Method according to claim 1, characterized in that, during step b), said stirring is carried out by bubbling or by means of a device such as impellers, propellers or circulation pumps.
8. Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce que, lors de l'étape c), ladite récolte est effectuée de manière périodique, par exemple à une semaine d'intervalle.8. Method according to claim 1, characterized in that, during step c), said harvest is carried out periodically, for example at one week intervals.
9. Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce que ladite algue rouge est Asparagopsis armata, et ladite forme tétrasporophytique est Falkenbergia rufalonosa.9. Method according to claim 1, characterized in that said red alga is Asparagopsis armata, and said tetrasporophytic form is Falkenbergia rufalonosa.
10. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que ladite algue rouge est Bonnemaisonia sp., et ladite forme tétrasporophytique est Trailliela sp.10. Method according to claim 1, characterized in that said red alga is Bonnemaisonia sp., And said tetrasporophytic form is Trailliela sp.
11. Application d'un procédé de production selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, à l'extraction de composés halogènes utiles pour leurs propriétés antibiotiques. 11. Application of a production process according to any one of claims 1 to 10, to the extraction of halogen compounds useful for their antibiotic properties.
12. Application selon la revendication 11 , caractérisée en ce que lesdites propriétés antibiotiques sont des propriétés antibactériennes et/ou antifongiques.12. Application according to claim 11, characterized in that said antibiotic properties are antibacterial and / or antifungal properties.
13. Application selon la revendication 11 , caractérisée en ce que ladite extraction est réalisée au moyen d'un procédé comprenant au moins : a) la dispersion de la forme tétrasporophytique récoltée dans du propylène glycol ; b) le broyage de ladite dispersion ; c) l'extraction sous agitation, à température ambiante, pendant environ 2 heures ; d) l'élimination de la phase insoluble ; et e) la récupération de la phase soluble contenant lesdits composés halogènes.13. Application according to claim 11, characterized in that said extraction is carried out by means of a process comprising at least: a) the dispersion of the tetrasporophytic form collected in propylene glycol; b) grinding said dispersion; c) extraction with stirring, at room temperature, for approximately 2 hours; d) elimination of the insoluble phase; and e) recovering the soluble phase containing said halogenated compounds.
14. Application selon la revendication 13, caractérisée en ce que ladite élimination lors de l'étape d) est effectuée par centrifugation et/ou filtration.14. Application according to claim 13, characterized in that said elimination during step d) is carried out by centrifugation and / or filtration.
15. Application selon l'une quelconque des revendications 11 à 14, caractérisée en ce que lesdits composés halogènes sont destinés à être utilisés dans un domaine choisi parmi les domaines de la pharmacie, la cosmétique, l'environnement et les revêtements antisalissures. 15. Application according to any one of claims 11 to 14, characterized in that said halogen compounds are intended to be used in a field chosen from the fields of pharmacy, cosmetics, the environment and anti-fouling coatings.
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