TITULO
NUEVO PEPTIDO INHIBIDOR DEL INTERCAMBIADO!* Na+Η* (PINHE), Y SUS
APLICACIONES
SECTOR DE LA TÉCNICA
La presente invención se encuadra en varios sectores, siendo el más importante el Farmacéutico donde tendría aplicaciones como tratamiento protector de diversos procesos patológicos de gran trascendencia tales como la patología isquémica y por reperfusión (independientemente del mecanismo de producción), arritmias, hipertensión, etc. También podría aplicarse como contraceptivo (en mamíferos macho), como antibiótico y como agente inmunorregulador. En el sector Químico, como reactivo regulador de la actividad del intercambiador de Na+/H+ . Y potencialmente en el Agrícola, como modulador frente al estrés salino.
ESTADO DE LA TÉCNICA
El intercambiador sodio-protón (Na+/H+) (sodium-proton exchanger ó NHE), es un mecanismo que está presente en las membranas de todos los tipos celulares, tanto procariotas como eucariotas, y cataliza un intercambio electroneutro de H+ intracelular por Na+ extracelular (Putney et al. 2002, Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 42: 527-552; Counillon and Pouyssegur, 2000, J Biol. Chem. 275: 1-4, Orlowsky and Grinstein, 1997, J Biol. Chem. 272: 22373-76; Grinstein et al, 1989, Biochim. Biophys. Acta, 988: 73-97,). Se sabe desde hace años que participa a nivel celular en procesos vitales que dependen del intercambio iónico transmembranal tales como homeostasis, pH intracelular, volumen celular, adhesión, determinación de la forma, migración y proliferación (Motáis et al. 1991. Biochim Biophys Acta, 1075 (2) : 169-180; Maidurna et al, 1993, Br J Cáncer, 61 (2): 297-303; Harguindey y Craoge 1992. Med Hypotheses, 39 (3): 229-237; Putney et al. 2002, Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 42: 527-552).
La familia de los intercambiadores NHE incluye seis isoformas (NHE1-NHE6). La isoforma NHE1, que se localiza en la membrana citoplasmática se expresa ubicuamente y juega un papel central en los procesos reguladores del pH intracelular, volumen celular y homeostasis (Orlowski J, Grinstein S. 1997. J. Biol. Chem. 272: 22373-76; Counillon L, Pouysségur j. 2000. J Biol. Chem. 275: 1-4). En contraste, los intercambiadores NHE2, 3, 4 y 5 muestran una distribución tisular limitada y una
función más especializada. Así NHE2, 3 y 4 se expresan predominantemente en el riñon y en el tracto intestinal. En esos lugares, la localización celular de NHE2 es apical, e interviene principalmente en la reabsorción de iones Na+ (Tse CM, Levine SA et al. 1993. J Biol. Chem. 268: 11917-24). NHE2 puede actuar en colaboración con NHE4 que tiene una localización basolateral (Orlowski j, Kandasamy RA, Shull GE. 1992. J Biol. Chem. 267: 9331-39; Pizzonia JH, Biemesderfer D, Abu-Alfa AK et al. 1998. Am J. Physiol. 275: F510-17; Bookstein C, Xie Y et al. \991Am J. Physiol. 273: C1496- 505; Bai L, Collins JF, Muller YL, Xu H, Kiela PR, Ghishan FK, . 1999. Am J. Physiollll: Rl 112-19) para promover la osmoregulación de las células medulares internas renales. El intercambiador NHE3 se ha identificado en la membrana apical del epitelio del túbulo renal proximal (Biemesderfer D, Pizzonia j, et al. 1993. Am J. Physiol. 265: F736-42 ) y en las microvellosidades del epitelio intestinal maduro (Hoogerwerf WA, Tsa SC et al. 1996. Am J. Physiol. 270: G29-41; Bookstein C, DePaoli AM, et al. 1994. J. Clin. Investig. 93: 106-13). En el riñon, el NHE3 es importante en la reabsorción de Na+ y HCO3 ", contribuyendo significativamente al mantenimiento de la osmolaridad sanguínea y el balance ácido-base (Moe OW. 1999. J Am. Soc. Nephrol. 10: 2412-25). El intercambiador NHE5 se expresa predominantemente en el cerebro (Klanke CA, Su YR et al. 1995. Genomics 25: 615- 22; Baird NR, Orlowski j et al. 1999. J Biol: Chem. 21 A: 4377-82) y se piensa que regula el pH intracelular en neuronas (Raley-Susman KM, Cragoe EJ, Saplosky RM, Kopito RR. 1991. J Biol. Chem. 266: 2739-45). NHE6 es el miembro más reciente de la familia NHE. Esta molécula presenta la secuencia más divergente mostrando únicamente un 20 % de identidad con las otras isoformas. NHE6 se localiza exclusivamente en las mitocondrias, dándose la mayor expresión en los tejidos y órganos que presentan un metabolismo elevado, como son el corazón, cerebro y el músculo esquelético (Numata M, Petrecca K, Lake N, Orloski J. 1998. J Biol. Chem. 273: 6951-59).
La familia de genes NHE se ha conservado evolutivamente. Se han identificado genes que codifican para NHEs en toda clase de organismos vivos. En organismos procariotas desde arqueas como Halobacterium salinarum (Ng WV, Kennedy SP, et al. 2000. Proc, Nat. Acad. Sci. USA. 97: 12176-181) a las bacterias como Streptococcus faecalis (Harold FM, Papineau D. 1972. J Membr. Biol. 8: 45-62) y Escherichia coli
(genes nhaA y nhaB. Padan E, Maisler N, Taglicht D, Karpel R, Schuldiner S. 1989. J. Biol. Chem. 264: 20297-302), donde estos intercambiadores son electrogénicos y muestran muy poca homología con los NHE de organismos superiores. También se han identificado genes NHE en plantas, en concreto un homólogo de NHE5 en Arabidopsis thaliana (Apse MP, Aharon GS, Snedden WA, Blumwald E. 1999. Science. 285: 1256- 58) y en las levaduras Schizosaccharomyces pombe (gen sod2, Jia ZP, McCullogh N, Martel R, Hemingsen S, Young PG, 1992. EMBO J. 11: 1631-40) y Saccharomyces cerevisae (genes nhxl, nha2, Nass R, Cunningham KW, Rao R. 1997. J Biol. Chem. 272: 26145-52; Numata M, Petrecca K, Lake N, Orloski j. 1998. J Biol. Chem. 273: 6951-59). El producto del gen nhxl, la proteína Nhxlp, se localiza predominantemente en un compartimento prevacuolar y es importante en el proceso de tráfico endocítico (Bowers K, Levi BP, Patel FI, Stevens TH. 2000. Mol. Biol. Cell. 11 : 4277-94). También se han identificado genes de la familia NHE en Caenorhabditis elegans (Marra MA, Prasad SS, Baillie DL. 1993. Mol Gen. Genet. 236: 289-98) y en Drosophila melanogaster (Adams MD, Cleniker SE et al. 2000. Science 287: 2185-95), aunque no se han identificado las isoformas específicas ni se han caracterizado sus funciones. Finalmente, se han identificado genes NHE en un número de organismos superiores tales como diversos vertebrados incluyendo a los humanos (Klanke CA, Su YR et al. 1995. Genomics 25: 615-22; y 24), rata (Orlowski j, Kandasamy RA, Shull GE. 1992. J Biol. Chem. 267: 9331-39; Collins JF, Honda T, et al. 1993. Proc. Nat. Acad. Sci. USA 90: 3938-42), ratón (Praetorius j. Andreasen D, Jensen BL, Ainsworth MA, Friis UG, johansen T. 2000. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 278: G197-206), cerdo (Reilly RF, Hildebrandt F, et al. 1991. Am J. Physiol. 261: F1088- 94), Xenopus laevis (Busch S, Rosskopf D, Lang H-J, Weichert A, Siffert W. 1998. Pflugers Arch-Eur: J. Physiol. 436: 828-33), y en trucha (Borgese F, Sardet C,
Cappadoro M, Pouyséegur J., Motays R. 1992. Proc Nat. Acad. Sci. USA 89: 6765-69).
Recientemente, se ha determinado que el NHE también funciona como un anclaje de membrana para el citoesqueleto a través de actina y que esta función es independiente de la translocación de iones (Putney et al. Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 42: 527-552, 2002). Este carácter del NHE junto con los efectos sobre la regulación del pH intracelular, la homeostasis y el volumen celular, indican que el NHE regula un gran número de actividades celulares que incluyen adhesión, determinación
de la forma, migración y proliferación. La actividad normal del NHE es por tanto de importancia vital para la célula (Pouyssegur et al. 1984. Proc. Nati. Acad. Sci. USA, 81: 4833-37; Kapus et al, 1994 J Biol. Chem. 269: 23544-52; Delvaux et al 1990, Am. J. Physiol. 259: G842-49. Horvat et al. 1992, Eur. J Cáncer 29a: 132-37; Ritter et al, 1998. Br. J. Pharmacol. 124: 627-38).
Sin embargo, hay situaciones en las que existe un proceso anormal de hiperactividad del NHE que conducen a un proceso patológico. Desde el punto de vista tisular el NHE está implicado en diversos procesos fisiológicos y patológicos de vital importancia como la isquemia y por reperfusión, la diuresis, la hipertensión arterial, la división de las células tumorales, la acidez gástrica, el transporte epitelial, la activación de los macrófagos, etc (Rodríguez-Soriano 2000, Pediatr. Nephrol., 14: 1121-36; Sastrasinh et al 1995, Am. J. Phisiol. 268: C1227-34; Szabó et al, 2000 J. Biol. Chem. 275: 6302-7; Cournillon et al, 1993, Mol. Pharmacol. 44: 1041-45; Scholz et al, 1995, Cardiovasc. Res. 29: 260-68; Scholz et al. 1999, J Thromb. Thrombolysis, 8: 61-70,. Rolfe et al. 1992. Am J Respir. Cell. Mol. Biol. 6 (6): 576-582) han señalado que el NHE participa en la liberación de citokinas por parte de los macrófagos que tiene lugar en los procesos de activación inmunitaria. Asimismo, la actividad del NHE está aumentada en la hipertensión esencial en el humano y en los modelos animales de hipertensión (Canessa et al, 1991, Hypertension. 17 (3): 340-348; Rosskopf et al. 1993. Hypertension, 21 (5): 607-617). En patologías asociadas a la colesterolemia se describe un incremento de actividad del intercambiador NHE o un aumento del número de ellos en las células (Scholz W.; Albus U.; Linz W.; Schólkens BA. 1991. Effect of Na*/H* exchance inhibition in cardiac ischaemia. Ewr Herat J. 12 (Suppl.), 124 (Abstr.)). La asociación frecuente diabetes-hipertensión tendría como mecanismo común el aumento de la actividad de dicho intercambiador. La inhibición del intercambiador puede mejorar la resistencia a la insulina (Dudeya et al. 1992 Kidney Int. 42 (5): 1184-1190; Dudeja PK et al. 1991 J. Clin. Invest. 87 (5): 1755-1762; Dusing et al. 1993 Clin. Invest. 71 (2): 119-125). Por último, el NHΕ participaría en los procesos de reperfusión tras un periodo de isquemia. Durante la reperfusión del miocardio se produce un gradiente de H+ debido al aumento de pH extracelular frente al intracelular por efecto de lavado. Como consecuencia, se produce una acumulación de Na+ intracelular, que fuerza al intercambiador Na'VCa"1"1" a operar en sentido inverso, y se produce un aumento del Ca**
citosólico hasta niveles tóxicos que conducen a la muerte celular. La utilización de un buen bloqueador del intercambiador Na+/H+ puede mejorar dicho cuadro.
El tratamiento de todos estos procesos patológicos mencionados anteriormente podría verse mejorado en caso de disponer de un buen inhibidor del NHE. En la actualidad no se dispone de inhibidores fisiológicos de origen natural específicos del intercambiador NHE. Los NHE son inhibidos por compuestos sintéticos como el amiloride (Cragoe EJ Jr, Woltersdorf OW Jr, Bicking JB, Kwong SF, Jones JH. 1967 J Med Chem. Jan;10 (l):66-75) y sus análogos como el EIPA (Vigne P, Frelin C, Cragoe EJ Jr, Lazdunski M. 1983 Biochem Biophys Res Commun. 14;116(l):86-90) y los derivados de la benzoil guanidina como el cariporide (HOE 642) (Scholz, W., Albus, U., Counillon, L., Gógelein, H., Lang, H.J., Linz, W., Weichert, A. y Schδlkens 1995 B.A. Cardiovas. Res.; 29: 260-268; Hoechst AG, Cardiovascular Research H 821, 65926 Frankfurt/Main, Germany: Scholz, W., Albus, U., Gógelein, H., Lang, H.J., Linz, W., Weichert, A. y Schδlkens, B.A.; Centre de Biochimie, Université de Nice - Sophia Antipolis, Pare Valrose, Nice, France: L Counillon), el HOE 694 (Counillon, L., Scholz, W., Lang, H.J., Pouyssegur, 1993. J. Mol Pharmacol. Nov; 44(5):1041-5; Scholz, W., Albus, U., Lang, H.J., Linz, W., Martorana, P.A., Englert, H.C. y Schólkens, B.A. 1.993. Br. J. Pharmacol. 109(2): 562-568; Hoechst AG, Cardiovasc Research H 821, 65926 Frankfurt/Main, Germany: Scholz, W., Albus, U., Gógelein, H., Lang, H.J., Linz, W., Weichert, A. y Schδlkens, B.A), EMD 85131 (Baumgarth, M., Beier, N. y Gericke, R. 1.997.J Med. Chem. 40: 2017-2034) y otros como el zoniporide (Guzman-Perez, A., Wester, R.T., Alien, M.C., Brown, JA., Buchholz, A.R., Cook, E.R., Day, W.W., Hamanaka, E.S., Kennedy, S.P., Knight, D.R., Kowalczyk, P.J., Marala, R.B., Mularski, C.J., Novomisle, W.A., Ruggeri, R.B., Tracey, W.R. y Hill, R.J. 2001. Bioorg Med Chem Lett. Mar 26;ll(6):803-7).
Algunas de estas sustancias como el amiloride, inhiben el intercambiador NHE pero no lo hacen de forma específica, inhibiendo a la vez otros intercambiadores, como el Na+/Ca++ y los canales inespecíficos de Na+. A pesar de estas limitaciones el amiloride se está utilizando en terapéutica como diurético. No obstante, es grande el número de sus efectos secundarios. Por otra parte, algunos derivados de amiloride que han mostrado un efecto más específico sobre el intercambiador NHE, salvo alguna excepción, tienen el grave inconveniente de ser difíciles de revertir. Mayor
especificidad han mostrado el cariporide y el zoniporide, siendo éste ultimo además de mayor potencia.
La sensibilidad a todos estos fármacos varía enormemente entre las isoformas del NHE (Yu et al, 1993. J Biol. Chem., 268: 25536-41; Cournillon et al, 1993, Mol. Pharmacol. 44: 1041-45; Cournillon et al, 1993, Proc. Nati. Acad. Sci. USA, 90: 4508- 12; Scholz et al, 1995, Cardiovasc. Res. 29: 260-68; Scholz et al, 1999, J. Thromb. Thrombolysis, 8: 61-70; Baumgarth et al, 1997, J. Medicinal Chem. 40: 2017-34). Las afinidades aparentes de las isoformas de la membrana plasmática por un inhibidor puede variar en un rango de cuatro ordenes de magnitud, generalmente siguiendo el orden: NHEl > NHE 2 » NHE 3 > NHE 4 (Putney et al, 2002, Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 42: 527-552). En contraste, el NHE mitocondrial es relativamente insensible al amiloride, pero es inhibido muy efectivamente por su análogo benzamil (Sastrasinh et al, 1995, Am. J. Phisiol. 268: C1227-34; Brierley et al, Biochemistry, 28: 4347-54; Kapus et al, 1988, Biochim Biophys Acta, 944: 383-90). Otros agentes farmacológicos como la cimetidina, clonidina, y harmalina también exhiben diferentes afinidades por las isoformas del NHE. Sin embargo, estos compuestos, que no están relacionados químicamente con el amiloride o el cariporide, poseen una parte imidazólica o guanidínica que puede explicar alguna similitud estructural (Orlowski and Grinstein. 1997. J Biol. Chem. 272: 22373-22376,). Algunos de los inhibidores del NHE han mostrado ser efectivos en la disminución del tamaño de la zona de necrosis en el infarto de miocardio experimental (Gumina et al. 1998 J Pharm. Experim. Therapeutics , 286: 175-183; Miura et al. 1997. J Am. Coll. Cardiol. 29: 693-701; Munch-Ellingsen et al. 1998. Mol. Cell Biochem.186: 13-18; Otani et al. 2000. Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 27: 387-393). Algunos de ellos son objeto de patentes internacionales (p.e. WO0183470
"Sodium-hydrogen exchanger type 1 inhibitor", publicada el 8 de Noviembre de 2001, titulares: Chen Weichao George, Cox Eric David, PFIZER PROD LNC, Guzmán Pérez Ángel; Patente US6348476 "Pharmaceutical combination preparation of an inhibitor of the sodium/hydrogen exchanger and a medicament for the treatment of cardiovascular diseases").
Frente a estas sustancias de origen sintético, hasta la fecha, halocina H7 (antes H6), es la única sustancia conocida de origen biológico que muestra un efecto inhibidor
específico del NHE. La halocina H7 es una sustancia proteica que ha sido objeto de dos patentes previas (inventores: I Meseguer Soria, M Torreblanca Calvo, B Soria Escoms, F Colom Valiente e I Alba Carballo . N° de patentes: ES 2 094 695 y ES 2 094 696 publicadas ambas el 16 de enero de 1997, titular: Universidad de Alicante). Dicha halocina tiene un peso molecular de 30.500 + 500 D y se obtiene a partir del cultivo de la cepa CECT 4547 {protegida en la patente: ES 2 094 695) y se extrae utilizando procedimientos de purificación de proteínas tales como la cromatografía en columna con concanavalina A y la cromatografía de alta presión con columna de intercambio iónico. El proceso completo de purificación es largo, costoso y complejo. Las ventajas más destacables de la halocina H7 frente al resto de inhibidores del NHE son (como se describen en la patente ES 2 094 696):
Al ser un producto de naturaleza peptídica tiene reversibilidad de acción terapéutica y la facilidad para metabolizarse propia de las sustancias proteicas. - Es una sustancia natural de tipo antibiótico, su poder microbicida está basado en su acción inhibidora del intercambiador sodio-protón. Es un inhibidor específico, activo a concentraciones muy bajas lo que disminuye los efectos secundarios.
Puede operar en un gran rango de concentraciones de sales, temperatura y pH, lo que le convierte en el fármaco de elección en determinados procesos. - Es resistente a la acción de la tripsina, lo que permite su utilización en el tracto intestinal.
Al tratarse de un péptido sensible a pronasa su efecto puede terminarse cuando se desee.
La importancia de disponer de inhibidores del intercambiador sodio-protón (NHE), reside en las consecuencias que se derivan de la actividad de este mecanismo en diversos procesos patológicos. A excepción de la halocina H7, no se conoce ningún producto natural y/o de naturaleza peptídica capaz de inhibir el NHE. A pesar de que la halocina H7 ya presentaba una serie de ventajas respecto a los inhibidores de tipo sintético, la gran desventaja que podríamos destacar frente a ellos es que el proceso de
obtención y purificación es demasiado largo, complejo y caro, y, además, que al tratarse de una proteína de 30.5 kD, podría inducir respuesta inmunitaria.
El PINHE, objeto de esta patente, además de poseer todas las ventajas mencionadas anteriormente para la halocina H7 respecto al resto de inhibidores del NHE conocidos, presenta nuevas ventajas que permiten asegurar que nos encontramos ante una sustancia de elección y con mayor potencial desde el punto de vista aplicado.
Las principales ventajas que ofrece el PLNHE respecto a la halocina H7 son:
- Es un péptido de pequeño tamaño, con un peso molecular 11 veces menor que el de la Halocina H7, lo que podría implicar un menor riesgo de capacidad antigénica.
- Mayor facilidad de manipulación.
Aunque se obtiene a partir del cultivo del mismo microorganismo, tiene un proceso de purificación mucho más rápido, fácil y económico. Por lo que respecta a la actividad del PINHE, al igual que la halocina H7, inhibe de forma específica el NHE.
DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN Descripción breve
La presente invención describe un péptido (PLNHE), derivado de la halocina H7, de pequeño peso molecular y definido por su secuencia de aminoácidos u otra análoga que actúa como inhibidor fisiológico natural del intercambiador Na+/H+ (NHE) en eucariotas. El PINHE se obtiene por fraccionamiento (que incluye una precipitación con acetona en frío) y purificación del sobrenadante del cultivo de la haloarquea Haloferax gibbonsii alicante SPH7 que lo produce de forma natural o bien, sobre la base de su secuencia de aminoácidos, puede sintetizarse o modificarse y expresarse por técnicas moleculares o de ingeniería genética. El PLNHE es estable y activo en rangos amplios de concentraciones salinas, temperatura y pH, resistente a tripsina y sensible a pronasa y también puede ser liofilizado y reconstituido sin pérdida de actividad. El empleo de dicho péptido inhibidor de NHE, o sus sales farmacéuticamente aceptables, en la elaboración de una composición farmacéutica constituye otro objeto adicional de esta invención. De su acción reversible como inhibidor del intercambiador Na+/H+ de eucariotas tanto del péptido como de sus sales se deriva sus usos: (1) para el
tratamiento o profilaxis de patologías en mamíferos, preferente humanos, ocasionados por una hiperactividad o una actividad indeseada del NHE, tales como enfermedades cardiovasculares (p.e. hipertensión, infarto de miocardio, arritmias, angina de pecho, etc.), enfermedades cerebrales (p.e. infarto cerebral, edema cerebral, embolias, etc.), enfermedades renales (p.e. fallo renal), enfermedades metabólicas (p.e. diabetes mellitus, hiperlipidemias, etc.), enfermedades con hiperproducción de ácido clorhídrico de la mucosa gástrica, enfermedades con alteraciones en el transporte epitelial, enfermedades con alteraciones del volumen celular, procesos proliferativos patológicos (p.e. cáncer, tumores, fibrosis, etc.), y alteraciones asociadas a una actividad excesiva de células del sistema inmunitario (p.e. inflamación, hipersensibilidad) y también su uso en (2) otras enfermedades o patologías que cursen con isquemia y lesión por reperfusión post-isquémica debida a la hiperactividad del NHE, entre otros: isquemias por alteraciones vasculares primarias o secundarias en diversos tejidos y órganos anexos, por reperfusión post-infarto, por transplante de órganos o tejidos, por cirugía cardíaca y vascular, por isquemia en situaciones fisiológicas tales como ejercicio físico, embarazo, parto, menstruación, etc., por traumatismos, o cualquier patología que implique hipoperfusión tisular (choque hemorrágico, térmico, neurogénico, etc.) y en cualquier proceso quirúrgico en general. Otros usos, derivados de su actividad, son como contraceptivo (en mamíferos macho), antibiótico o agente inmunorregulador y en otro campo como modulador del estrés salino en plantas.
Descripción detallada
La invención proporciona un péptido de pequeño tamaño inhibidor del intercambiador Na+/H+, en adelante péptido inhibidor de NHE o PINHE, que comprende una secuencia de aminoácidos seleccionada entre: a) la secuencia de aminoácidos identificada como SEQ ID NO 1 (PINHE) o un fragmento de la misma; y b) una secuencia de aminoácidos análoga a la secuencia definida en a)
Tal como se utiliza en la presente invención, el término "NHE" se refiere a las distintas formas de NHE presentes en distintos organismos procariotas o eucariotas.
En el sentido utilizado en esta invención, el término "análoga" pretende incluir a cualquier secuencia de aminoácidos (aás.) que pueda ser aislada o construida en base a
la secuencia de aás. mostrada en la SEQ ID NO 1, por ejemplo, mediante la introducción de sustituciones de aás., incluyendo la inserción de uno o más aás., la adición de uno o más aás. en cualquiera de los extremos de la molécula o la delección de uno o más aás. en cualquier extremo o en el interior de la secuencia. En general, una secuencia de aás. análoga es sustancialmente homologa a la secuencia de aás. identificada como la SEQ ID NO 1. En el sentido utilizado en esta descripción, la expresión "sustancialmente homologa" significa que las secuencias de aás. en cuestión tienen un grado de identidad, a nivel de aá., de, al menos, un 40%, preferentemente de, al menos un 85%, o más preferentemente de, al menos, un 95%. El péptido PINHE de la presente invención es sintetizado por un microorganismo halófilo extremo perteneciente al Dominio Archaea también conocidos como haloarqueas. En concreto, el PINHE es producido por la cepa "alicante SPH7" de la haloarquea Haloferax gibbonsii, que fue depositad en la Colección Española de Cultivos Tipo (CECT), Universidad de Valencia, Edificio de Investigación, Campus de Burjasot, 46100 Burjasot, Valencia, España, correspondiéndole el número de depósito CECT 4547.
. La práctica totalidad de las haloarqueas producen sustancias peptídicas con actividad antagónica frente a otros miembros del grupo. Estas sustancias son denominadas genéricamente como halocinas (Rodriguez-V alera F, Juez G, Kushner DJ, 1982, Can. J. Microbiol. 28: 151-154) y hasta el momento solo se han estudiado un reducido número de ellas (O'Connor EM, Shand RF.J Ind Microbiol Biotechnol. 2002 28:23-31). Sólo se conoce la secuencia completa de la halocina H4 (Cheung j, Danna KJ, O'Connor EM, Price LB, Shand RF. 1997 J Bacteriol.il 9: 548-51 ) y de la halocina S8 (Price LB, Shand RF. 2000. J. Bacteriol. 182: 4951-8). Con relación al mecanismo de acción, únicamente se conoce el de la halocina H7 (antes H6, Meseguer I, Torreblanca M, Konishi T. 1995. J. Biol. Chem. 270: 6450-5) de la que deriva el PINHE objeto de esta invención.
Dada la amplia actividad antagónica de las haloarqueas y la fragilidad de estos microorganismos ante una inhibición de su intercambiador NHE, este constituye una diana perfecta para un mecanismo de competencia o antagonismo en la lucha por la supervivencia poblacional. Es por tanto más que probable que, entre la amplia gama de
halocinas, puedan encontrarse péptidos homólogos al PINHE que pueden estar o no, de forma natural.
En una realización particular, la molécula de aás. de la invención es una molécula de aás. de la cepa "alicante SPH7" de Haloferax gibbonsii de SEQ LD NO 1 (péptido PINHE). El PINHE es un péptido derivado de la halocina H7 que posee toda su actividad, por ello un aspecto importante de la invención es la relación existente entre la halocina H7 y el PINHE, y cómo se llega a obtener éste partiendo de la halocina. En la actualidad no existen más estudios sobre la halocina H7 o el PINHE que los realizados por los inventores y por el momento se desconoce la secuencia peptídica de la halocina H7, de la que únicamente se conoce el extremo amino terminal. También sabemos que las células excretan al medio una sustancia inhibidora del NHE en forma de halocina H7 y que el PINHE, como tal, no se detecta en el medio. Se sabe que el PLNHE de algún modo forma parte de la halocina H7, sin embargo, se desconoce si la halocina H7 es un monómero con una secuencia peptídica única que incluye la secuencia del PINHE o si se trata realmente de un dímero formado por dos péptidos, uno pequeño e hidrofóbico responsable de la actividad inhibidora del NHE, y otro de mayor tamaño e hidrofílico que actuaría como medio de transporte para el PINHE. Esta segunda opción sería la mas lógica teniendo en cuenta que el tratamiento para separar el PINHE, con acetona en frío, no es demasiado agresivo como para romper enlaces peptídicos. Cualquiera que sea el caso, la forma de obtención de la halocina o el PINHE tiene una serie de pasos en común (producción, obtención de la solución sin células, clarificación y concentración) hasta obtener un concentrado proteico que contiene la halocina H7 y luego en función del procedimiento de purificación empleado, se obtiene la halocina o el PINHE. El paso clave para la obtención de una u otro, como ya se ha mencionado, es la precipitación con acetona. La separación del PLNHE del resto de la molécula de halocina, requiere que la precipitación con acetona se haga en frío y durante un tiempo más o menos prolongado, preferiblemente varias horas. Sin el tratamiento de la acetona, u otro que permita la separación del PLNHE, se puede llegar a purificar la halocina H7 utilizando los procedimientos ya descritos (Torreblanca M, Meseguer I, Rodriguez-V alera F. 1989, J. Gen. Microbiol. 135: 2655-2661).
El PINHE es un péptido derivado de la halocina H7 que posee toda su actividad, por lo que se deduce que el PINHE se corresponde con la fracción peptídica en donde reside la actividad de la halocina H7.
El péptido PINHE de la invención procede de la cepa "alicante SPH7" de Haloferax gibbonsii y puede encontrarse en formas parecidas en otras especies de microorganismos, donde pueden estar de forma natural o en otro caso, también podrían estar como resultado de un proceso de transformación génica por el que el organismo transformado exprese dichos péptidos inhibidores de NHE. La molécula aminoacídica de la presente invención puede ser aislada, entre otros, mediante técnicas convencionales, a partir de extractos proteicos de microorganismos que la contengan, o mediante el empleo de anticuerpos mono- o policlonales, preparados gracias a la información de la secuencia de aás. proporcionada en esta invención.
El péptido inhibidor del NHE de la invención incluye los fragmentos del mismo que presentan dicha actividad inhibidora del intercambiador Na+/H+ y que pueden ser fácilmente identificados a partir de los conocimientos existentes en el sector de la técnica.
La molécula de aás. de la presente invención puede ser expresada, en general, mediante técnicas de ingeniería genética que permitan la expresión recombinante del péptido inhibidor de la presente invención mediante la utilización de un vector de expresión, que contenga una secuencia de nucleótidos codificante de la secuencia SEQ ID NO 1, en una amplia gama de células huésped. En general, dicho vector de expresión comprende, al menos, una secuencia de ADN codificante del péptido inhibidor de la presente invención y, al menos, un promotor que dirige la transcripción de dicha secuencia de nucleótidos de interés, al que está operativamente enlazado, y otras secuencias necesarias o apropiadas para la transcripción y su regulación adecuada en tiempo y lugar, por ejemplo, señales de inicio y terminación, sitios de corte, señal de poliadenilación, origen de replicación, activadores transcripcionales (enhancers), silenciadores transcripcionales (silencers), etc. Ejemplos de vectores de expresión apropiados pueden seleccionarse de acuerdo con las condiciones y necesidades de cada caso concreto entre plásmidos, cromosomas artificiales de levadura (YACs), cromosomas artificiales de bacteria (BACs), cromosomas artificiales basados en el bacteriófago Pl (PACs), cósmidos o virus, que pueden contener, además, un origen
bacteriano o de levadura de replicación para que pueda ser amplificado en bacterias o levaduras, así como un marcador utilizable para seleccionar las células transfectadas diferente al gen o genes de interés. Este vector puede ser obtenido por métodos convencionales conocidos por los técnicos en la materia (Sambroook, J., Russell DW 2001 Molecular Cloning: A laboratory manual. Tercera edición. Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor NY.).
La "síntesis artificial" significa la utilización de técnicas físico-químicas de síntesis que no impliquen la utilización de microorganismos u otros seres vivos para la obtención de un compuesto que contenga total o parcialmente la secuencia del péptido inhibidor de la presente invención y que tenga actividad inhibitoria sobre el NHE.
El término "procedimientos mixtos" tal como se utiliza en la presente invención significa la utilización conjunta de procedimientos de manipulación biológica y síntesis artificial para la obtención de un compuesto que contenga total o parcialmente la secuencia del péptido inhibidor de NHE de la presente invención y que tenga actividad inhibitoria sobre el NHE.
Dentro del alcance de esta invención se encuentran las sales farmacéuticamente aceptables del péptido inhibidor de NHE proporcionado por esta invención. El término "sales farmacéuticamente aceptables" incluye las sales habitualmente utilizadas para formar sales metálicas o sales de adición de ácidos. La naturaleza de la sal no es crítica, siempre y cuando sea farmacéuticamente aceptable. Dichas sales pueden obtenerse por métodos convencionales bien conocidos por los técnicos en la materia haciendo reaccionar el ácido o la base apropiados con el péptido inhibidor de NHE.
El péptido inhibidor de NHE de la presente invención, así como sus sales farmacéuticamente aceptables, pueden formar parte de diversos tipos de composiciones para su aplicación en el cuerpo de un mamífero, preferiblemente el ser humano. En una realización particular, dicha composición es una composición farmacéutica. La composición farmacéutica proporcionada por esta invención comprende una cantidad terapéuticamente eficaz de un péptido inhibidor de NHE junto con al menos un excipiente farmacéuticamente aceptable. El empleo de dicho péptido inhibidor de NHE, así como sus sales farmacéuticamente aceptables, en la elaboración de dicha composición farmacéutica constituye otro objeto adicional de esta invención.
Las composiciones farmacéuticas que contienen el péptido inhibidor de NHE pueden presentarse en cualquier forma de administración, por ejemplo, sólida o líquida, y pueden administrarse por cualquier vía apropiada, por ejemplo, por vía oral, parenteral, rectal o tópica, para lo cual incluirán los excipientes farmacéuticamente aceptables necesarios para la formulación de la forma de administración deseada.
Un objeto adicional de la presente invención es el empleo de dichas composiciones farmacéuticas en la elaboración de un medicamento para el tratamiento o profilaxis de procesos patológicos de mamíferos, preferiblemente humanos, ocasionados por una hiperactividad o una actividad indeseada del NHE, tales como, entre otros, enfermedades cardiovasculares (p.e. hipertensión, infarto de miocardio, arritmias, angina de pecho, etc.), enfermedades cerebrales (p.e. infarto cerebral, edema cerebral, embolias, etc), enfermedades renales (p.e. fallo renal, nefropatía diabética, etc), enfermedades metabólicas (diabetes mellitus, hiperlipidemias, etc), enfermedades con hipersecreción de ácido clorhídrico en la mucosa intestinal, enfermedades con alteraciones en el transporte epitelial, enfermedades con alteraciones del volumen celular, procesos proliferativos patológicos .(p.e. cáncer, tumores, fíbrosis, etc.), y alteraciones asociadas a una actividad excesiva de células del sistema inmunitario (p.e. inflamación, hipersensibilidad).
Un objeto particular de la presente invención es el empleo de dichas composiciones farmacéuticas en la elaboración de medicamentos para el tratamiento o profilaxis de procesos patológicos de mamíferos, preferiblemente humanos, que cursen con isquemia y lesión por reperfusión post-isquémica debida a la hiperactividad del NHE. Entre estos procesos patológicos se incluyen como destacables las lesiones isquémicas producidas por alteraciones vasculares (tanto primarias como secundarias) en tejidos pertenecientes a los sistemas cardiocirculatorio (corazón y vasos sanguíneos y linfáticos), respiratorio, digestivo, genito-urinario, nervioso (central y periférico), musculoesquelético, hemático, endocrino y piel, y en general todos los órganos anexos a los sistemas anteriormente mencionados, procesos isquémicos por reperfusión postinfarto, procesos isquémicos tras trasplante de órganos y/o tejidos y procesos isquémicos en situaciones fisiológicas tales como ejercicio físico, embarazo, parto, menstruación, etc. Por otro lado, estas composiciones farmacéuticas pueden administrarse como profilaxis de la isquemia o hipoxia que tiene lugar durante la cirugía
cardiaca y vascular (durante y posteriormente a dichas cirugías) y también como consecuencia de traumatismos incluyendo síndrome de aplastamiento y destrucción de miembros, así como en cualquier patología que implique hipoperfusión tisular (choque hemorrágico, cardiaco, térmico, neurogénico, anafiláctico, etc) Otro objeto particular y adicional de la presente invención es el empleo de la composición farmacéutica de la presente invención en la contracepció. El receptor alpha estrogénico es esencial para una adecuada función fértil en individuos del sexo masculino ya que su actividad es necesaria para el mantenimiento de la citoarquitectura en los conductos eferentes y para la concentración de esperma en la cabeza del epidídimo. Zhou et al. (PNAS 2001;98(24):14132-14137) han mostrado que el receptor alpha estrogénico es responsable de la expresión de una isoforma del intercambiador sodio-protón (Na+/H+) en los túbulos eferentes del sistema reproductor en ratones machos, y por tanto, influye en la reabsorción de sodio y transporte pasivo de agua, efectos éstos, necesarios para la concentración de esperma. Asimismo, estos autores sugieren que la interferencia en la función de este sistema intercambiador sodio-protón (Na+/H+), sería capaz de producir infertilidad en los machos, sin alterar la síntesis de testoterona y por tanto los efectos fisiológicos de ésta, tales como el mantenimiento de la libido. Así pues, la aplicación a la contracepción resultaría de excepcional importancia, entre otras situaciones, por la reversibilidad de efectos del citado compuesto.
Otro objeto particular de la presente invención es el empleo de la composición farmacéutica de la presente invención por su actividad antibiótica en la elaboración de un antibiótico para el tratamiento de enfermedades infecciosas, entre otras, las enfermedades infecciosas provocadas por microorganismos (p.e. Helicobacter pylori). Otro objeto particular de la presente invención es el empleo de cantidades efectivas del compuesto de la presente invención como modulador de la expresión del intercambiador Na+/H+ en plantas que tuvieran una sobreexpresión incrementada (constitutiva o no) del intercambiador Na+/H+ u otros similares. En los esfuerzos que se realizan para disponer de plantas tolerantes a la sal, podría servir para modular la expresión del intercambiador vacuolar Na+/H+ de plantas como el patentado por Eduardo Blumwald (Overexpression of a Vacuolar Na+/H+ Antiport in Arabidopsis. Apse MP, Aharon GS, Snedden WA, Blumwald E. Science. 1999 Aug
20;285(5431): 1256-8.), o cualquier otro, que realizando la misma función, fuera inhibido por el péptido objeto de la presente invención. En este sentido, la aplicación o no de este inhibidor del intercambiador Na+/H+ podría modular la expresión de dicho gen permitiendo una mayor o menor actividad enzimática de la proteína codificada por el mismo. Ello significaría que en condiciones en las que no existiera un exceso de CINa, la planta que sobreexpresara el transportador podría tener menores efectos indeseables (o carecer de ellos). Tales efectos indeseables se podrían producir, por ejemplo, por una excesiva acidificación del citoplasma. Aunque el intercambiador Na+/H+ utiliza Na+, no se puede descartar que una presencia elevada de este enzima pueda utilizar otros cationes, extruyendo protones al citoplasma. La utilización comercial podría residir en la adición de este inhibidor en cantidades controladas a plantas que tuvieran una expresión incrementada (constitutiva o no) del intercambiador de Na+ H+ vacuolar arriba mencionado o enzimas similares.
DESCRIPCIONES DE LAS FIGURAS
Figura 1 A - Electroforésis en SDS poliacrilamida (12%) de una muestra conteniendo el
PLNHE tras su purificación con acetona. Calle 1 y 2: Proteínas patrón. Calle 3: Muestra conteniendo el PINHE. Tinción con nitrato de plata.
Figura IB - Electroforésis en SDS-poliacrilamida (12%) de una muestra conteniendo H7 semipurificada en primer lugar por Hidroxiapatito y en segundo lugar por Sephadex
G50. Calle 1: proteínas patrón. Calle 2: Muestra conteniendo H7. Tinción con nitrato de plata.
Figura 1C - Purificación de H7 (antes H6) (figura publicada en Torreblanca M,
Meseguer I, Rodríguez- Valera F. 1989, J. Gen. Microbiol. 135: 2655-2661) Tinción con azul Comassie.
Figura 2. Halos de inhibición mostrando la actividad inhibitoria del PINHE sobre la cepa indicadora en doble capa.
Figura 3A. Microfotografía óptica de células de Halobacterium salinarum sin tratar (X
2000). Figura 3B. Microfotografía óptica de células de Halobacterium salinarum tratadas con
PLNHE (X 2000).
Figura 4.- Relación entre la medida citométrica de la acidez citoplasmática de células 293HEK (Ratio) y su pH intracelular. El ratio es la medida de la fluorescencia de BCECF en el citoplasma expresada como cociente entre la fluorescencia naranja (FL3) y verde (LF1) detectadas por el citómetro. El pH intracelular es el pH del medio donde se suspenden las células permeabilizadas con nigericina. Para ello las células (lxlO5 células por mi) se incubaron a 37 °C durante 15 minutos con medio DMEM con glucosa y sin bicarbonato que contenía a su vez FBS 10%, HEPES 25 mM y BCECF 2 μg/ml y cuyo pH se ajustó con HC1. El pH intracelular se equilibró con el externo mediante la presencia en el medio de 2 μg/ml de nigericina. Después de la incubación la fluorescencia se midió en el citómetro.
Figura 5.- Recuperación del pH intracelular de células 293HEK después de una acidificación con propionato sódico. El ensayo se realizó en presencia (derecha) y ausencia (izquierda) de 1000 U/ml del péptido inhibidor de NHE como se ha descrito en la Figura 4 pero sin la presencia de nigericina. En el eje de abscisas se representa el ratio y en ordenadas el tiempo transcurrido en el ensayo (el tiempo máximo reseñado en la figura,( 1023, equivale a 300 segundos).
EJEMPLOS DE REALIZACIÓN DE LA INVENCIÓN
Ejemplo 1: Procedimiento de obtención y purificación del PINHE. Comparación con la obtención y purificación de la halocina H7.
El PINHE al igual que la halocina H7 se obtiene a partir de la cepa CECT 4547 y siguiendo las mismas condiciones de cultivo que se describen en la patente ES 2 094 695. A continuación se eliminan las células, se concentra el sobrenadante y se dializa con agua destilada mediante técnicas de filtración y ultrafiltración tangencial siguiendo también el protocolo que allí se indica. Llegados a este punto, se tropezaba con el principal inconveniente que mostraba la halocina H7 que era el proceso de purificación, que constaba de varias etapas en las que se requerían técnicas lentas y costosas de purificación de proteínas.
A) Obtención del PLNHΕ: Se prepara un cultivo de la cepa productora SPH7 (CΕCT 4547) en un medio que contenga 2,66 M CINa, 0,13 M Cl2Mg x 6H2O, 0,16 M SO4Mg x 7H2O, 6,64 mM Cl2Ca, 53,3 mM C1K, 1,6 mM CO3HNa, 4,48 mM BrNa, suplementado con 0.5% de
extracto de levadura y pH de 7,2. Se incuba a 37°C con aireación hasta alcanzar una densidad óptica entre 0,9 y 1 a 600 nm. A continuación se separan las células mediante la utilización de un sistema de filtración tangencial con filtros de tamaño de poro de 0,45 m. Posteriormente se eliminan grandes macromoléculas mediante ultrafiltros de 100.000 Daltons. A continuación, el filtrado se concentra utilizando ultrafiltros de 1000 Daltons. El concentrado se dializa frente a agua destilada y se procede como sigue: Precipitación con tres o más volúmenes de acetona en frío durante 18-24 horas. El PINHE queda en el sobrenadante y se elimina el precipitado que contiene las impurezas por centrifugación. Se toma el sobrenadante y se elimina la acetona (p.e. mediante un rotavapor). Se comprueba el grado de pureza del PLNHE.
Si no se ha alcanzado un grado de pureza satisfactorio (aproximadamente del 90%) se repite de nuevo el proceso.
La determinación del grado de pureza de las muestras que contienen PINHE se realizó mediante análisis en geles de poliacrilamida en SDS (figura 1 A) siguiendo el protocolo descrito por Laemmli (Laemmli UK, 1973. J. Mol. Biol. 80: 575-599). El PINHE así obtenido es susceptible de ser tratado para obtener su secuencia peptídica que se indica en la SEQ ID NO 1. B) Obtención de la halocina H7:
A partir del concentrado dializado, podemos obtener halocina H7 siguiendo otro procedimiento que no incluya la precipitación con acetona. Así una muestra del concentrado se aplicó en una columna de hidroxiapatito en tampón conteniendo fosfato potásico 10 mM, 2'5 M NaCl, pH 7'2 y eluido utilizando un gradiente lineal de tampón fosfato potásico 10 - 400 mM, 2'5 M NaCl, pH 7'2. Se colectaron fracciones de 10 mi y de cada una se realizó un test para determinar su actividad inhibitoria. Las fracciones que contenían la mayor actividad inhibitoria fueron concentradas hasta un volumen final de 3 mi. Posteriormente se dializaron frente a agua destilada y se filtraron utilizando una columna de Sephadex G-50 previamente equilibrada en tampón 0'05 M TRIS / HCl, pH 6'7. Las fracciones de 1 mi se eluyeron en el mismo tampón. Aquellas que contenían la máxima actividad se juntaron y concentraron hasta un volumen de 1 '5 mi. En este punto el grado de la pureza de la muestra se determinó
mediante una electro foresis en gel de poliacrilamida en SDS (figura IB) siguiendo el protocolo descrito por Laemmli (Laemmli UK, 1973. J. Mol. Biol. 80: 575-599). Si se desea mayor grado de pureza hay que continuar el proceso utilizando otros métodos adicionales de purificación de proteínas. Utilizando cromatografía de alta presión, como se describe por ejemplo en Torreblanca y colaboradores (Torreblanca et al 1989, J Gen. Microbiol. 135: 2655-2661), se puede alcanzar un buen grado de pureza, si bien el rendimiento del proceso es bajo (la figura 1C se muestra el resultado de este procedimiento de purificación).
Características físico-químicas del PINHE:
Tiene un peso molecular de 2733.8 Daltons calculado por espectrometría de masas que se corresponde con el peso calculado como la suma de los pesos de los aminoácidos que lo componen.
A partir de su secuencia, se deduce que el PINHE es un péptido con carácter hidrofóbico. Esto está en concordancia con la dificultad que ha mostrado para disolverse en agua después de haber sido liofilizado.
Para estudiar otras propiedades físico-químicas, se tomaron muestras de PINHE, se determinó su actividad y se sometió a diversos tratamientos tras los cuales se determinó nuevamente la actividad remanente. Como resultado de ello se determinó lo siguiente: El PINHE es resistente a la desnaturalización térmica, siendo capaz de soportar 100°C durante varios minutos y es necesario un tratamiento de 10 min. a 121°C para destruir totalmente su actividad por calor.
El PINHE mantiene toda su actividad en un amplio rango de soluciones salinas que va desde el agua destilada hasta soluciones saturadas de sales. Asimismo mantiene su actividad en una gran diversidad de soluciones acuosas, no habiéndose encontrado hasta el momento pérdida de actividad por estos motivos en ningún caso.
El PINHE soporta un amplio rango de pH del disolvente, siendo activa al menos, a valores de pH comprendidos entre 5 y 9.
Proteasas como la tripsina no le afectan, sin embargo es sensible a otras enzimas tales como la pronasa.
Es susceptible de liofilización sin pérdida de actividad aunque para la rehidratación posterior requiere previamente disolución en un solvente como el DMSO.
Se trata además de una sustancia muy estable, capaz de conservar toda su actividad en soluciones acuosas estériles durante largos períodos de tiempo. De igual modo soporta bien las bajas temperaturas, incluso la congelación, aunque se ha observado una disminución parcial de su actividad tras sucesivas congelaciones y descongelaciones.
Ejemplo 2: Determinación de la actividad del PINHE.
La actividad del PINHE se determina del mismo modo que la de la halocina H7, utilizando el sistema denominado de dobles capas conteniendo la cepa indicadora.
Se prepara un medio de cultivo sólido tal que contiene los mismos componentes que el medio líquido indicado en el ejemplo 1 añadiendo un 2% de agar-agar. Se distribuye en placas Petri a razón de 10 mi por placa y se deja solidificar. Se preparan tubos con 5 mi del mismo medio que se mantienen a 50°C para evitar la solidificación. A estos tubos se les añade una suspensión microbiana conteniendo aproximadamente 106 células de la cepa indicadora de Halobacterium salinarum y rápidamente se vierte sobre las placas antes preparadas y se deja también solidificar, generando así la doble capa. Se preparan diluciones seriadas de la muestra de PINHE a ensayar. De estas diluciones se depositan 10 1 sobre la doble capa y se deja a temperatura ambiente hasta su completa absorción. Posteriormente se incuban las placas a 37°C durante cuatro días. La máxima dilución del PINHE que muestra un halo de inhibición detectable se considera que contiene 1 unidad arbitraria, es decir 100 unidades arbitrarias (UA) por mililitro (Figura 2).
Ejemplo 3: Efecto antibiótico sobre Halobacterium salinarum.
Se ha comprobado que el PINHE al igual que la halocina H7, tiene actividad antibiótica frente a microorganismos del grupo de las haloarchaeas. Estos microorganismos que habitan en ambientes hipersalinos (aprox. 4 M de Na+ en el medio externo frente a 2 M de Na+ intracelular), poseen un NHE unidireccional muy eficiente para sacar este ion del medio intracelular aprovechando la fuerza protón motriz. La inhibición del NHE es letal para estos microorganismos, ya que en un medio donde la concentración de Na+ es tan elevada, si no funciona el NHE, este ion se acumula intracelularmente provocando un desequilibrio osmótico. El agua entra al interior celular, la célula se hincha y finalmente se lisa y muere. Una forma de detectar este
efecto letal es por observación al microscopio de las células antes y después del tratamiento.
Para ello se prepara un cultivo de la cepa indicadora de Halobacterium salinarum, se centrifuga y se resuspende en una solución conteniendo la misma concentración de sales del ejemplo 1. Se cuantifican las proteínas y se ajusta hasta alcanzar la concentración de 1 mg de proteínas por mililitro. Se toman fotos de las células utilizando un microscopio de contraste de fases (figura 3A). Se añade PINHE purificado a una concentración final de 640 UA por miligramo de proteina. A distintos intervalos de tiempo se toman muestras para ser fotografiadas al microscopio. A partir de los diez minutos se observa una deformación e hinchazón de las células que aumenta progresivamente con el tiempo hasta producirse la lisis celular. Al cabo de 24 horas solo pueden observarse restos de envolturas celulares, denominados fantasmas (figura 3B).
Ejemplo 4: Efecto diurético y natriurético del PINHE en ratas. Un grupo de 6 ratas wistar se dividió en dos, tres para el grupo control y otras tres para ser tratadas. A este grupo le sería administrada intraperitonealmente una inyección única de PINHE purificado a una concentración de 125 UA por gramo de peso del animal. El grupo control fue tratado con suero salino. Los animales se introdujeron en jaulas metabólicas individuales. Tras la administración del PINHE se controló el peso del animal y la ingesta de alimento y de agua a las 24, 48 y 72 horas de la administración. Asimismo se recogía y medía el volumen de orina. Para controlar el efecto del PINHE sobre la natriuresis se determinó la concentración de sodio en la orina de las ratas. A las 24 horas se observó un incremento del volumen de la orina del orden del 89-98%o y un aumento de la concentración de sodio en la orina del orden del 39-43%) de las ratas tratadas con PINHE respecto a las ratas control, lo cual indica un efecto claramente diurético y natriurético del PINHE. Estos efectos son compatibles con una actividad inhibidora del PINHE sobre el NHE. El mecanismo podría ser una disminución de la tasa de reabsorción tubular. Los efectos indicados revierten de forma espontánea a las 48-72 horas del tratamiento.
Ejemplo 5.- Inhibición del NHE de células 293HEK (línea primaría de células de riñon de embriones humanos).
Las células 293HEK se cultivaron en medio de cultivo constituido por DMEM conteniendo 4 g/1 de glucosa y 3.7 g/1 de bicarbonato sódico y suplementado con 10% de suero fetal bovino, 2 mM L-glutamina, penicilina 1000 U/ml, estreptomicina 1000 μg/ml, anfotericina 2.5 μg/ml y gentamicina 50μg/ml. El cultivo se realizó a 37°C y en atmósfera de 5% de CO2. Las células se cultivaron hasta EL 80% de confluencia, entonces se recolectaron mediante incubación con tripsina 0.25-0.12%) y EDTA 0.01- 0.03% y centrifugación a 300g durante 10 minutos y el precipitado se resuspendió en medio DMEM sin bicarbonato, conteniendo 10% de suero fetal bovino (FBS) y 25 mM de Hepes. Se realizó un recuento del número de células vivas utilizando un hemocitómetro y un colorante vital (trypan blue dye). La suspensión celular se conservó en hielo hasta el ensayo. El efecto inhibidor del PLNHE sobre NHE de las células 293HEK se realizó mediante un ensayo con un citómetro de flujo, midiendo la recuperación del pH intracelular después de una acidificación con ácido propiónico 1M (pH 7-7.5) en presencia o ausencia (control) de PINHE. El ensayo contenía: lxlO5 células/ml, 10% de FBS, 2 μg/ml de BCECF (2*,7-bis(carboxyethyl)-5,6- carboxyfluoresceina) y hasta 1-2 mi de medio DMEM (Dulbecco's Modified Eagle Médium) con glucosa y sin bicarbonato, 10% FBS y 25mM de Hepes. Se incubó a 37°C durante 10 minutos y a los tubos correspondientes se les añadió PINHE a las concentraciones deseadas entre 0 y 3000 U/ml y se incubó hasta la estabilización del pH intracelular (5 - 30 minutos).
Se midió en un citómetro (EPICS XL-MCL de Beckman-Coulter) la fluorescencia de BCECF - medida como cociente entre las emisiones de fluorescencia verde (FL1) y naranja (FL3) - y a continuación se acidificó añadiendo ácido propiónico neutralizado con NaOH hasta pH 7 - 7.5 de una solución stock hasta conseguir una acidificación intracelular deseada desde 7.2 hasta 6.4, continuándose entonces la medida de fluorescencia de BCECF. La relación entre la fluorescencia de BCECF y pH interno de las células 293HEK se realizó en experimentos paralelos equilibrando el pH externo (utilizando distintos pH en la solución del ensayo) con el pH interno, para lo que se añadió a la solución de ensayo 2 μg/ml de nigericina para permeabilizar las células a los protones del medio extracelular. Un ejemplo de la relación entre la fluorescencia de BCECF - cociente FL3/FL1 - de las células y su pH interno se muestra en la Figura 4. Al producirse la acidificación con propiónico tiene lugar un descenso brusco del pH
interno de las células desde valores de equilibrio 7.3-7.6 hasta 7.1-6.4. En este momento la célula pone en marcha sus mecanismos de regulación de pH intracelular para restaurar el pH de equilibrio. Sin embargo, la ausencia de bicarbonato en el medio de ensayo inhabilita al intercambiador bicarbonato/cloruro (CO3H7C1") y además la presencia de Hepes en el medio inhibe el cotransportador NBS por lo que la recuperación del pH intracelular que tiene lugar después de la acidificación se debería casi exclusivamente al intercambiador NHE. En la Figura 5 se muestra un ejemplo de acidificación de células 293HEK en ausencia (control) y en presencia de PINHE (1000 U/ml). La acidificación con propionato sódico produjo una acidificación del citosol de las células desde un pH en el equilibrio de 7.4 hasta un valor de 7.04. Inmediatamente la célula comienza a restablecer el pH intracelular como se pone de manifiesto en la Figura 5, tanto en el caso control como en presencia de PINHE. A partir de los valores experimentales se realizó una estimación de la velocidad inicial de recuperación del pH intracelular sobre la base de un ajuste matemático de los datos experimentales a una curva y la obtención de su derivada a tiempo cero, lo que permite estimar valores iniciales de velocidades de recuperación del pH intracelular de 0.37exp(-2) ΔpH/s para el control y de 0.11exp(-2) ΔpH/s en el caso de la presencia de PINHE. Los resultados demuestran que el PINHE, tras la acidificación del citosol, inhibe la recuperación del pH intracelular debida al intercambiador de Na+/H+.