WO2003057865A1 - Composicion y procedimiento para crear, regenerar y reparar tejidos mediante implante biologico portador de celulas y enriquecido con concentrado de plaquetas mas suplementos. - Google Patents

Composicion y procedimiento para crear, regenerar y reparar tejidos mediante implante biologico portador de celulas y enriquecido con concentrado de plaquetas mas suplementos. Download PDF

Info

Publication number
WO2003057865A1
WO2003057865A1 PCT/ES2002/000007 ES0200007W WO03057865A1 WO 2003057865 A1 WO2003057865 A1 WO 2003057865A1 ES 0200007 W ES0200007 W ES 0200007W WO 03057865 A1 WO03057865 A1 WO 03057865A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
cells
biological
supplements
enriched
platelet concentrate
Prior art date
Application number
PCT/ES2002/000007
Other languages
English (en)
French (fr)
Other versions
WO2003057865A8 (es
Inventor
Alberto Gorrochategui Barrueta
Josu Simon Elizundia
Original Assignee
Derbiotek, S.L.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Derbiotek, S.L. filed Critical Derbiotek, S.L.
Priority to AT02716089T priority Critical patent/ATE512218T1/de
Priority to US10/475,866 priority patent/US20040151709A1/en
Priority to PCT/ES2002/000007 priority patent/WO2003057865A1/es
Priority to AU2002226426A priority patent/AU2002226426A1/en
Priority to EP02716089A priority patent/EP1464697B1/en
Priority to ES02716089T priority patent/ES2370012T3/es
Publication of WO2003057865A1 publication Critical patent/WO2003057865A1/es
Publication of WO2003057865A8 publication Critical patent/WO2003057865A8/es
Priority to US11/704,784 priority patent/US20070141036A1/en

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/3604—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix characterised by the human or animal origin of the biological material, e.g. hair, fascia, fish scales, silk, shellac, pericardium, pleura, renal tissue, amniotic membrane, parenchymal tissue, fetal tissue, muscle tissue, fat tissue, enamel
    • A61L27/3616—Blood, e.g. platelet-rich plasma
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/14—Blood; Artificial blood
    • A61K35/19—Platelets; Megacaryocytes
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/18—Growth factors; Growth regulators
    • A61K38/1858—Platelet-derived growth factor [PDGF]
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/36—Blood coagulation or fibrinolysis factors
    • A61K38/363—Fibrinogen
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L24/00—Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices
    • A61L24/0005—Ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L24/00—Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices
    • A61L24/04—Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices containing macromolecular materials
    • A61L24/10—Polypeptides; Proteins
    • A61L24/106—Fibrin; Fibrinogen
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L26/00—Chemical aspects of, or use of materials for, wound dressings or bandages in liquid, gel or powder form
    • A61L26/0009—Chemical aspects of, or use of materials for, wound dressings or bandages in liquid, gel or powder form containing macromolecular materials
    • A61L26/0028—Polypeptides; Proteins; Degradation products thereof
    • A61L26/0042—Fibrin; Fibrinogen
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L26/00—Chemical aspects of, or use of materials for, wound dressings or bandages in liquid, gel or powder form
    • A61L26/0057—Ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/38—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
    • A61L27/3839—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells characterised by the site of application in the body
    • A61L27/3843—Connective tissue
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0018—Culture media for cell or tissue culture
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/05—Inorganic components
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/30—Organic components
    • C12N2500/36—Lipids
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/30—Organic components
    • C12N2500/38—Vitamins
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/30—Organic components
    • C12N2500/42—Organic phosphate, e.g. beta glycerophosphate
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/70—Undefined extracts
    • C12N2500/80—Undefined extracts from animals
    • C12N2500/84—Undefined extracts from animals from mammals
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/01—Modulators of cAMP or cGMP, e.g. non-hydrolysable analogs, phosphodiesterase inhibitors, cholera toxin
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/30—Hormones
    • C12N2501/33—Insulin
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/30—Hormones
    • C12N2501/335—Glucagon; Glucagon-like peptide [GLP]; Exendin
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/30—Hormones
    • C12N2501/38—Hormones with nuclear receptors
    • C12N2501/39—Steroid hormones
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/30—Hormones
    • C12N2501/38—Hormones with nuclear receptors
    • C12N2501/395—Thyroid hormones
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Definitions

  • the invention now advocated consists of a composition and method for creating, regenerating and repairing tissues by means of a cell-carrying biological implant and enriched with platelet concentrate plus supplements, among all those compositions for the regeneration of tissues from various conventional cell cultures. , which come from both heterologous and autologous cells.
  • the culture medium that nourishes the different cell lines incorporates high doses of different supplements, in order to increase the amount of cells obtained in the shortest possible time.
  • These supplements are basically: nucleosides, hormones, cytosines, amino acids and vitamins, even when mineral salts, lipids and others are also incorporated.
  • the platelets added to the culture medium to which these high doses of supplements are incorporated provide the platelet derived growth factors (PDGFs) necessary to optimize the establishment, maintenance and prolong proliferation, being able to use the supernatant resulting from its activation after supplement with calcium glucobionate.
  • PDGFs platelet derived growth factors
  • these platelets, together with the fibrinogen they contain can be applied as a support for cells from previously established cell cultures, or as constituents of the biological implant, biological glue and / or filler material.
  • the coagulated platelet concentrate will be called "biological implant” with the presence of: fibrinogen, fibronectin, cell culture calcium and platelet ionized calcium, ATP and ADP, as activators of said activity, enriched by various other biological supplements and that will be a carrier of cell cultures.
  • biological tail will be applied to the first minutes of the biological implant and may or may not carry established cell lines. This biological tail has the particularity of promoting healing due to the growth factors present in it and that can act on the wound cells inducing multiplication, differentiation or cellular chemotactism. Platelets are the only source of growth factors present in this biological tail.
  • the newly formed thrombus in the culture medium that is subsequently frozen and / or lyophilized and / or pulverized in order to fill osteoarticular defects will be called "filling material.”
  • composition according to the invention for obtaining the cell culture, part of the cell culture medium routinely used in the usual procedures of this type of cultures; supplemented with high doses of supplements in order to improve the yield of cell cultures and enhance the properties Biological des of this culture medium.
  • cell cultures come from autologous or heterologous cells. They include chondrocytes, fibroblasts, osteoblasts, retinal pigment epithelium, hepatocytes, pilosebaceous unit cells, among others, as well as embryonic cells.
  • Platelet extracts have a high mitogenic activity, and their healing effect is known; DM Carter et al., In “Growth factors and other aspects in Wound Healing", Barbul. Pines, Cadwell Hunt Eds, Alan R. Liss Inc., New York 1998, pages 303-317; US 4,760,131 and PCI patent applications W086 / 03 122, WO
  • Exogenous proteins such as thrombin, or plasmin inhibitors such as alpha 2-antiplasmin or aprotinin are not added, the presence of prothrombin and other coagulation factors in the biological tail of the invention can be exploited, and either activates the extrinsic pathway, or the intrinsic pathway of coagulation.
  • the preferred working temperature is 37 ° C.
  • fibrinogen is also not added which, like them, acts as a hemostatic material (see patent FR 2 448 900, of Immuno AG für Chemisch-Medizinische Kunststoff).
  • the present invention relates to the culture medium obtained for the establishment, obtaining, maintenance, propagation and freezing (with 10% DMSO) that is used in both human and animal cell lines in the examples made herein, characterizing this culture medium high concentrations of supplements and growth factors from the platelet concentrate, of heterologous or autologous origin.
  • - Cell culture medium routinely used in the usual procedures of this type of culture, supplemented with 10% platelet concentrate (the preferred variation is estimated between 1 and 30%), stabilized for 24 hours in the oven culture.
  • growth factors such as: IGF-I, IGF-II, TGF-b, although any other growth factors that demonstrate facilitating cell proliferation can be incorporated.
  • b growth factors
  • adenosine triphosphate between 1 and 10 mg / l
  • sodium bicarbonate between 1.2 and 5 g / 1
  • citicoline between histidine-5 - choline diphosphate
  • ethanolamine between 10 and 50 mg / l
  • phosphoethanolamine between 5 and 25 mcg / l
  • glucagon between 1 and 5 mg / l
  • 1-glutamine between 2 and 10 mM
  • sodium heparin between 10,000 and 50,000 IU / 1
  • hydrocortisone between 10 and 100 mg / l
  • recombinant human insulin between 100 and 1,000 Ul / 1
  • levothyroxine between 50 and 200 mcg / l
  • linoleic acid between 10 and 50 mcg / l
  • oleic acid between 10 and 50 mcg / /
  • the culture medium was evaluated by the standard: Biological evaluatio ⁇ of medical devices. Part 5: Test for cytotoxicity: in vitro methods. (ISO 10993-5: 1992).
  • the assay was performed on 3T3 A31 cells, which is a cell line from the Swiss albino mouse, (ATCC CRL 1658). Cell culture is carried out in culture bottles, in an environment suitable for cell proliferation.
  • the platelets used in this procedure are obtained as follows:
  • Platelet concentrates are prepared from whole blood by means of large refrigerated centrifuges. The high gravitational forces generated by these devices result in the blood separating into liquid plasma and its different cellular elements.
  • centrifugation is performed at room temperature; on the other hand, for the other blood components it is carried out at temperatures between 1 and 6 ° C. It is important to balance the material on opposite sides of the centrifuge head, which is easily done using rubber discs of different weights. It is very useful to have a protective plastic bag around the container with blood, because of the possibility of breakage. Portholes and tubes attached to the bag must also be protected against breakage. The centrifuge should not be manually stopped as this alters the contents of the blood bag. All safety instructions must be followed scrupulously.
  • the protocol described is the one most frequently followed in blood banks to separate blood components.
  • plasma rich in platelets PRP
  • the PRP is squeezed into an attached satellite bag, which leaves the erythrocytes in the main bag.
  • the two joined bags are centrifuged again, this time at high speed, whereby a button of platelets added from the PRP is obtained. Approximately 200 ml of platelet-poor plasma is removed and 50 ml of it is left with the platelet button.
  • Those 200 ml of plasma can be used to make well recovered plasma, or fresh frozen plasma (PFC),
  • the bag containing the platelet button and the 50 ml of plasma is separated from the erythrocyte primary bag, and left at rest for
  • the platelets are then placed in a mechanical rotor, to gently resuspend the platelet button. Most platelets in the whole blood unit are present in the platelet concentrate. To keep the platelets in optimal functional state it is necessary to keep them in constant agitation at room temperature.
  • Multiple donor platelets are obtained from whole blood, 6 or 8 hours after collection (depending on the manufacturer of the bag and the type of anticoagulant used), by low speed centrifugation to obtain a platelet rich plasma.
  • This plasma is transferred to a satellite bag, after which it is subjected to intense centrifugation to form a platelet aggregate button and a platelet-poor plasma.
  • Plasma is removed, with the exception of 50 ml, to achieve a platelet concentrate.
  • the remaining 200 ml of platelet-poor plasma can then be added to the red blood cells to form modified whole blood, or they can be frozen to obtain PFC or used as recovered plasma for further processing.
  • This platelet concentrate is allowed to stand for 1 hour to allow the platelet button to disintegrate smoothly.
  • the platelets are then subjected to a gentle and constant stirring process at room temperature (20-24 ° C) for a storage period of up to 5 days. It is important to ensure that platelets maintain their pH at 6 or more so that they do not lose their functionalism, and that there is a minimum dose of 5.5 x 10 10 platelets in 75% of the units investigated.
  • the platelets obtained can be activated by the following protocol: For example, 9 milliliters of platelet concentrates are collected whatever their origin, they are added between one or two milliliters of calcium glucobionate (1 milliliter provides 4.5 milligrams of calcium element) this solution is brought to 37 ° C, obtaining a serum rich in
  • PDGFs Growth Factors Derived from Platelets ⁇ P ⁇ ate-let-Derived Growth Factors (PDGFs) ⁇ and a thrombus that can be used as the filler material.
  • This serum rich in PDGFs can be used as a contribution to the means of cell culture or as a solution on skin, osteoarticular or other etiology defects in order to accelerate the healing of lesions.
  • the serum can also be frozen and / or lyophilized to prolong its preservation until it is used.
  • Biotin between 1 mg / l and 10 mg / l
  • dexamethasone between 1 and 10 mg / l
  • Basic fibroblast growth factor (bFGF) (between 10 and 1,000 mcg / l)
  • theophylline between 1 and 100 mg / l
  • 1-ascorbic acid between 20 and 100 mg / l
  • recombinant human calcitonin between 100 and 10,000 IU / 1
  • calcitriol between 0.1 and 10 mcg / l
  • dexamethasone between 1 and 10 mg / l
  • inorganic salts such as anhydrous monobasic potassium phosphate (between 100 and 500 mg / l) and anhydrous dibasic sodium phosphate (between
  • Biotin between 1 mg / l and 10 mg / l
  • dexamethasone between 1 and 10 mg / l
  • bFGF Basic fibroblast growth factor
  • theophylline between 1 and 100 mg / l.
  • bFGF Basic fibroblast growth factor
  • - To chondrocytes and osteoblasts 1-ascorbic acid (between 20 and 100 mg / l), recombinant human calcitonin (between 100 and 10,000 IU / 1), calcitriol (between 0.1 and 10 mcg / l), dexamethasone (between 1 and 10 mg / l), inorganic salts, such as anhydrous monobasic potassium phosphate (between 100 and 500 mg / l) and anhydrous dibasic sodium phosphate (between 1,000 and 2,500 mg / l) or equivalent.
  • inorganic salts such as anhydrous monobasic potassium phosphate (between 100 and 500 mg / l) and anhydrous dibasic sodium phosphate (between 1,000 and 2,500 mg / l) or equivalent.
  • recombinant human leukemia inhibitor factor 100-10,000 Ul / ml
  • nucleosides adenosine triphosphate (between 1 and 10 mg / l), thymidine (between 5 and 10 mg / l), guanosine (between 10 and 50 mg / l), cytidine (between 10 and 50) mg / l), uridine (between 10 and 50 mg / l), 2-b-mercaptoethanol (between 10 and 100 mcg / l), forscolin (between 0.1 and 10 mg / l).
  • the culture medium was prepared with the components specified above.
  • the antibiotics were used in solution with the following final doses: penicillin 100,000 IU / 1, streptomycin 100 mcg / l and amphotericin B 2.5 mcg / l:
  • the pH was adjusted to 7.40 and the osmolarity for human cells of the culture was 290 mOsm / Kg, assumed as the ideal for in vitro maintenance, while for other species such as the mouse the osmolarity of the initial cultures was 310 mOsm / kg.
  • the cells were kept in 25 cm 2 or 75 cm 2 culture bottles in a routine culture medium with all supplements and platelet degranulation products, in an oven at 37 ° C with a 5% C0 2 atmosphere.
  • the cells contained in a culture flask are adhered to the surface of it forming a monolayer (exponential growth phase), the cells are obtained by the following procedure:
  • the maintenance of a long-term cell stock was performed by freezing in liquid nitrogen of the cells in culture.
  • the procedure used for freezing was as follows: When the cells in culture begin their exponential growth phase, cell viability is calculated by staining with Trypan Blue.
  • DMSO dimethylsulfoxide
  • the culture medium is conditioned or not by STO, STO SNL 76/7 or VERO cells for 48 hours and up to 40% of this conditioned medium is used for cell cultures.
  • STO SNL 76/7 McMahon and Bradley, 1990
  • VERO cells are used, in the form of mitotically inactivated monolayers (Evans and Kaufmann., 1981), used routinely in the usual procedures of this type of crops (Nagy et al., 1993).
  • These monolayers can secrete embryotrophic substances such as TGF-a (Transforming growth factor-a), TGF- b (Transforming growth factor-b), PDGT-a (Growth factors derived from platelets) and IGF-I and II
  • Recombinant human LIF Recombinant human leukemia inhibitory factor
  • Recombinant human leukemia inhibitory factor can also be provided at a dose for example between 100 and 10,000 units / ml (Kitamura et al. 1989) for the maintenance of the pluripotent phenotype of the stem cells. In order to achieve levels that allow the formation of niche stem cells that remain undifferentiated
  • the cells used can be pluripotent or totipotent from different sources, such as the bone marrow, but embryonic or differentiated cells from the patient can also be used.
  • the cells are isolated by enzymatic processing with trypsin, and / or dispase / collagenase according to the cell type.
  • the cell lines are taken to a 25 cm2 surface bottle, subcultures are performed when the presence of embryoid bodies or the disappearance of monolayer cells is observed, being kept in the culture stove subjected to a routine pass every 48 hours. Subsequently, they can be introduced into the biological tail, which later becomes the biological implant.
  • Said biological implant can be kept in the oven for more than 90 days, its cells being viable, and from which a new cell pass can be re-established, provided that the culture conditions of each cell line are maintained.
  • the cells that are used both in the biological glue and in the biological implants are obtained, for example, in the following way: the trypsinization of the cell line is carried out, the trypsin is inactivated by means of an inactivator, centrifuged at 200 g. The supernatant is removed and the pellet is resuspended in 1 ml of culture medium. An aliquot containing 10 x 10 6 cells is prepared for a final volume of 10 ml taking into account that 1 ml is of platelet concentrate. All this procedure is performed at 37 ° C.
  • Isoleucine is the amino acid necessary to maintain the growth of keratinocytes, although the increase in the other amino acids has beneficial effects on the proliferative potential of different cell lines.
  • variable sheets are produced in which calcification can be induced. in varying degrees in order to cover or fill bone defects.
  • the extracellular matrix that is produced by osteoblasts in cultures performed in vitro has a variable degree of mineralization, which allows its introduction into osteoarticular defects with the cells themselves (autograft) or after the elimination of these (allograft).
  • the platelet factors released both to the culture medium and inside the biological tail or implant achieve an increase in cell proliferation by promoting growth, and at the same time preventing degradation of the adhesion product to the exposed surfaces.
  • protease inhibitors such as epsilonaminocaproic acid (200-400 mcg / ml gel) and tranexamic acid (200-400 mcg / ml gel) was not considered necessary, and the contribution of other types of proteases was ruled out.
  • Bioimplants can be used in the following ways:
  • the freshly prepared biological glue can serve as a material for adhesion directly on the site of the lesion, as in the case of retinal detachment with cells directly from the cultures or those preserved in liquid nitrogen. With this tail you can proceed to fill the osteoarticular defect, or at least serve as filler material for much of that defect.
  • the injured place or defect can be soaked with the biological tail, then the implant is compressed in the injured place. In 48 hours cell proliferation is observed, and in three weeks calcification nodules are seen if the cells are osteoblasts.
  • the chondrocytes are adhered to the injured surfaces as well as other cell types such as fibroblasts implanted in the dermal or hypodermic region or the pigment epithelial cells in the retina.
  • This last case requires special attention, since the final volume of the biological tail at the formation of the thrombus is almost negligible (1 cubic millimeter per milliliter of medium) and, given the regenerative power of said cells (due to their pluripotent character) on the cells retinal nerves
  • the field of retinal regeneration would open in cases such as retinitis pigmentosa and retinal detachment.
  • culture medium biological glue
  • biological implant and filler material can be used in the treatment of traumatic or surgical wounds, in bone implants or osteoarticular reconstructions, graft maintenance (skin, bones, among others) and maintenance to Long-term biological implants in vitro.
  • the same glue can also be used to fix prosthesis pieces, including bone prostheses, osteosynthesis pieces and dental prostheses, and also for fixation and to give cohesion to bone filling materials, such as calcium carbonate, hydroxyapatite or biodegradable polymers such as poly (lactic acid).
  • the basic composition to be added to the specific cell culture is embodied in a single complex of supplements, prepared in advance to facilitate and expedite the operation detailed herein, as well as use them live with lines.
  • adenosine triphosphate 1 mg / l
  • amino acids 1-histidine 2 mg / l
  • L-isoleucine 4 mg / l 1-methionine 1 mg / l
  • 1-phenylalanine 2 mg / l 1-tryptophan 1 mg / l
  • 1-tyrosine 2 mg / l antibiotics (penicillin 100,000 IU / 1, streptomycin 100 mcg / l and amphotericin B 2.5 mcg / l), sodium bicarbonate 1.2 g / 1)
  • ethanolamine 10 mg / l phosphoethanolamine 5 mg / l
  • glucagon 1 mg / l linoleic acid 10 mc / 1, oleic acid 10 mcg / l, 1-glutamine 2mM, sodium heparin 10,000
  • 100 mg / l human albumin and 10 mg / l human transferrin are incorporated, the following supplements: recombinant human calcitonin (1,000 IU / 1), Recombinant human leukemia inhibitor factor (1,000 Ul / ml ), vitamins (D-
  • Biotin (1 mg / l), dexamethasone (1 mg / l), basic fibroblast growth factor (b-FGF) (10 mcg / l), theophylline
  • Example 1 Creation of dermocutaneous substitute with the ability to develop hair follicles.
  • the cell lines of a cutaneous punch of variable diameter or of the follicular unit or pilosebacea are obtained. They are divided into three parts according to the thickness of each of them and, from the epidermis, keratinocytes and melanocytes are obtained, from the dermis the fibroblasts and from the hypodermis the adiposites that are maintained with the following supplements are obtained; vitamins (D-Biotin (1 mg / l), dexamethasone (1 mg / l), each group being cultured separately.
  • the culture medium used in this example essentially corresponds to that used in the stem cells.
  • adipocytes are obtained by enzymatic processing with dispase / collagenase.
  • 10 x 10 6 are resuspended in 5 ml of fresh culture medium with 10% platelet concentrate by adding the following specific supplements :; it is sown in a 75 cm 2 jar, it is expected to clot on the stove for 1 hour.
  • Fibroblasts are extracted in the same way, finally keratinocytes that have been cultured with their specific medium as it is; inhibitory factor of 1,000 Ul / ml recombinant human leukemia, 0.1 mg / l forscolin, to maintain the specificity of the cutaneous stem cells: with the same procedure and then, changes are made with the enriched medium for 15 days to increase the thickness of the layer of keratinocytes
  • a skin substitute is obtained which, after being subjected to a keratinization process due to exposure to air, can be used in daily clinical practice.
  • Example 2 Biological implant containing osteoblasts.
  • the cell line of the trabecular bone or the bone crest or bone puncture is obtained. Wash thoroughly to remove bone marrow or periosteum remains.
  • the cells are obtained in the same manner as in Example 1, respecting the growth characteristics of this cell line and resuspended in 10 ml end of culture medium and 10% platelet concentrate in addition to the following specific supplements: 1-ascorbic acid (20 mg / l), calcitriol (0.5 mcg / l), recombinant human calcitonin (1,000 Ul / 1), inorganic salts such as anhydrous monobasic potassium phosphate 200 mg / l and anhydrous dibasic sodium phosphate 1,100 mg / equivalent. They are taken to the stove for retraction of the platelet thrombus in a tube of 10 centimeters per 1 centimeter of inner diameter, leaving a cylinder 10 millimeters long and 1 millimeters in diameter.
  • Example 3 Implant and / or biological glue containing chondrocytes.
  • chondrocyte culture of the articular cartilage by processing with dispasa / collagenase. Maintenance of the cell line with the following specific supplements; 1-ascorbic acid (20 mg / l), calcitriol (0.5 mcg / l), inorganic salts such as anhydrous monobasic potassium phosphate 200 mg / l and anhydrous dibasic sodium phosphate 1,100 mg / equivalent, and subsequent recovery with the same enzymatic processing . 10 x 10 6 cell / ml of culture medium is resuspended as in the previous cases. By arthroscopic surgery, the damaged cartilage is reached, preparing the intervention bed and filling said defect at the moment the cell suspension and the biological tail is prepared. It coagulates quickly.
  • Example 4. Biological glue for the repair of retinal detachment and / or regeneration in case of pigmentary retinitis.
  • Retinal pigment epithelium cells are cultured, with demonstrated ability to regenerate the retina.
  • the culture medium used is the standard medium. It is resuspended in the same manner as in Example 3 and the detached area is filled. It should be remembered that 1 milliliter of this medium finally occupies 1 cubic millimeter in the experiences carried out in the laboratory.
  • the development of the culture medium is supplementary tado with growth factors obtained from the platelet concentrate, of autologous or heterologous origin. Routinely it can have a concentration of 1%. Other growth factors (IGF-I, IGF-II and TGF-b, among others) and supplements are added according to the cell type to be maintained in vitro. For the maintenance of the stem cells, recombinant human leukemia inhibitor factor is required.
  • the biological implant comes from the activation of the platelet concentrate, its coagulation and retraction, induced by the calcium present in the cell culture medium.
  • the biological tail originates in the first minutes of platelet activation and is used as filler for any type of lesions.
  • the filling material is obtained from the thrombus caused by platelet retraction in order to fill osteoarticular defects.
  • the pilosebacea unit is based on the routine maintenance in culture of the stem cells, based on those obtained in general, of 12 pilosebaceous units for a culture bottle of 25 cm 2 of surface, the subcultures are made when we reach the cellular subconfluence and the specific culture medium is always used. If we do not use the latter, the cells lose capacity and we will develop a skin that can be used as a skin substitute.
  • Osteoblasts are obtained by cell culture. Osteoarticular defects of any of the known etiologies are cleaned and it gives them a geometric configuration (cylindrical, cuboidal or other) according to the implant material to be used; said biological implants, incorporate cultured osteoblasts; They can adhere much better using the freshly prepared biological glue. It can be filled with frozen, lyophilized and / or powdered material. Small osteoarticular defects can be filled with the newly prepared biological tail containing or not previously established cell lines. In any case, the biological tail may or may not contain cells at the time of application. Any type of implant and / or dressing can be submerged and / or soaked in the so-called biological glue, as well as the place of implantation or coverage.
  • the preferred cell line is cultured, such as the retinal pigment epithelium.
  • the cells of the culture are obtained, resuspended and the platelet concentrate is added, creating the biological tail with which to fill the retinal defects.
  • the biological tail can be introduced directly with or without cells, while in the case of major defects, implants that replace the bone with the appropriate shape can be used, covering it with the biological tail or the pulverized material.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Surgery (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

La composición incorpora, junto al concentrado de plaquetas que aporta fibrinógeno y concentraciones de factores de crecimiento plaquetarios (PDGFs), otras concentraciones de suplementos biológicos tales como: trifosfato de adenosina, aminoácidos, citocinas (LIF), hormonas, lípidos, nucleosidos, sales minerales y vitaminas, con lo que se consigue establecer, mantener y prolongar la proliferación de líneas celulares del tipo de epitelio pigmentario de retina, fibroblastos, hepatocitos, así como líneas tumorales y otras equivalentes, en tanto que otras líneas celulares específicas, tales como adipocitos, condrocitos y osteoblastos y células madre son objeto de la adición de otros nuevos suplementos extra.

Description

COMPOSICIÓN Y PROCEDIMIENTO PARA CREAR, REGENERAR Y
REPARAR TEJIDOS MEDIANTE IMPLANTE BIOLÓGICO PORTADOR DE
CÉLULAS Y ENRIQUECIDO CON CONCENTRADO DE PLAQUETAS MÁS
SUPLEMENTOS
DESCRIPCIÓN
OBJETO DE LA INVENCIÓN
La invención ahora propugnada consiste en una composición y procedimiento para crear, regenerar y reparar tej idos mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, de entre todas aquellas composiciones para la regeneración de tejidos que parten de cultivos celulares convencionales diversos, que proceden tanto de células heterólogas como autólogas .
El medio de cultivo que nutre a las diferentes líneas celulares incorpora dosis elevadas de diferentes suplementos, con la finalidad de aumentar la cantidad de células obtenidas en el menor tiempo posible. Estos suplementos son, fundamentalmente: nucleósidos, hormonas, citosinas, aminoácidos y vitaminas, aún cuando se incorpo- ren también sales minerales, lípidos y otros.
Las plaquetas añadidas al medio de cultivo al que se incorporan estas dosis elevadas de suplementos, aportan los factores de crecimiento derivados de las plaquetas (PDGFs) necesarios para optimizar el establecimiento, mantenimiento y prolongar la proliferación, pudiéndose emplear el sobrenadante resultante de su activación tras suplementarle con glucobionato calcico. Así mismo estas plaquetas, junto con el fibrinógeno que contienen, se pueden aplicar como soporte de las células procedentes de los cultivos celulares previamente establecidos, o como constituyentes del implante biológico, cola biológica y/o material de relleno.
En la presente solicitud se denominará "implante biológico" al concentrado de plaquetas coagulado con la presencia de: fibrinógeno, fibronectina, el calcio del cultivo celular y el calcio ionizado de las plaquetas, el ATP y ADP, como activadores de dicha actividad, enriquecido por otros diversos suplementos biológicos y que será portador de los cultivos celulares.
La denominación de "cola biológica" se aplicará a los primeros minutos del implante biológico y puede o no llevar las líneas celulares establecidas. Esta cola biológica tiene la particularidad de favorecer la cicatrización por los factores de crecimiento en ella presentes y que pueden actuar sobre las células de la herida induciendo la multiplicación, diferenciación o el quimiotactismo celular. Las plaquetas son la única fuente de factores de crecimiento presentes en esta cola biológica.
Se denominará "material de relleno" al trombo recién formado en el medio de cultivo que posteriormente es congelado y/o liofilizado y/o pulverizado con el fin de rellenar defectos osteoarticulares .
ANTECEDENTES DE LA INVENCIÓN
La composición según la invención, para la obtención del cultivo celular, parte del medio de cultivo celular utilizado de manera rutinaria en los procedimientos habituales de este tipo de cultivos; complementado con altas dosis de suplementos con el fin de mejorar el rendi- miento de los cultivos celulares y potenciar las propieda- des biológicas de este medio de cultivo.
Estos cultivos celulares proceden de células autólogas o heterólogas. Incluyen condrocitos, fibroblas- tos, osteoblastos, epitelio pigmentario de retina, hepato- citos, células de la unidad pilosebácea, entre otros, así como células embrionarias.
Se emplean los factores de crecimiento provenien- tes de la degranulación plaquetaria y entre los que se encuentran: en los granulos densos "serotonina, catecolami- nas, ATP y ADP, iones calcio" y en los granulos alfa se encuentra "albúmina, beta-tromboglobulina, osteonectina, osteocalcina, factor 4 activador de las plaquetas, endote- lial factor de crecimiento endotelial derivado de las plaquetas, factor de crecimiento epidérmico" (Hudson- Goodmafl et al 1990) ; "factor inhibidor de la alfa-plasmi- na, fibrinogeno, proacelerina, fibronectina, peptido III activador del tejido conectivo, factor-beta de crecimiento transformante, factor de crecimiento tipo insulina" (Martín et al 1992) ; "quininogeno de alto peso molecular, factor de von Willebrand, trombospondina, fosfolipido, inhibidor de la Cl-esterasa, factor de crecimiento de hepatocitos, factores de crecimiento derivados de las plaquetas " (Miyazono y Takaku 1989., Miyazono y Takaku 1989), (H.L. Wong and 5. M. Wahl, en "Peptide Growth Factors and their Receptors" Sporn and Roberts Eds . , Springer-Verlag. Berlín, p.5 10., Terkeltaub and M. H. Ginsberg, en "The Molecular and Cellular Biology of Wound Repair", Clark & Henson Eds, Plenum Press, New York, p. 38.) .
Los extractos plaquetarios presentan una actividad mitógena elevada, y su efecto cicatrizante es conocido; D.M. Cárter y col., In "Growth factors and other aspects in Wound Healing" , Barbul . Pines, Cadwell Hunt Eds, Alan R. Liss Inc., New York 1998, páginas 303-317; patente US 4.760.131 y solicitudes de patente PCI W086/03 122, WO
Figure imgf000005_0001
No se añaden proteínas exógenas como trombina, ni inhibidores de plasmina como alfa 2-antiplasmina ni aprotinina, se puede aprovechar la presencia de protrombina y de otros factores de la coagulación en la cola biológica de la invención, y activar bien sea la vía extrínseca, o la vía intrínseca de la coagulación. La temperatura preferente de trabajo es de 37 °C. Además de estas proteínas coagulables, tampoco se añade fibrinógeno que, como ellas, actúa como material hemostático (véase la patente FR 2 448 900, de Immuno AG für Chemisch-Medizinische Produkte) .
Antecedente remoto del estado de la técnica sería, además, es la patente N° W= 90/07931, de Curatech Inc., acerca de la recuperación de folículos pilosos mediante factores de crecimiento plaquetarios, que son inductores de la angiogénesis, de origen sanguíneo y de procedencia bien humana o bien de otros mamíferos, con incorporación de suplementos del tipo de la trombina, adenosin difosfato y colágeno.
DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN
La presente invención se refiere al medio de cultivo obtenido para el establecimiento, obtención, mantenimiento, propagación y congelación (con DMSO al 10%) que se emplea en las líneas celulares tanto humanas como animales en los ejemplos realizados en la presente memoria, caracterizando a este medio de cultivo altas concentraciones de suplementos y factores de crecimiento procedentes del concentrado de plaquetas, de procedencia heteróloga o autóloga. A.- Composición principal y su procedimiento : A.I.- De la composición a) . - Medio de cultivo celular utilizado de manera rutinaria en los procedimientos habituales de este tipo de cultivos, suplementado con concentrado de plaquetas al 10% (la variación preferente se estima entre el 1 y el 30%) , estabilizado durante 24 horas en la estufa de cultivo. A este medio se le añadió factores de crecimiento como: IGF- I, IGF-II, TGF-b, si bien pueden incorporársele cualesquiera otros factores de crecimiento que demuestren facilitar la proliferación celular. b) . - Al medio de cultivo celular se le añaden los siguientes suplementos, destinados al mantenimiento de las diversas líneas celulares : trifosfato de adenosina (entre 1 y 10 mg/l) , bicarbonato sódico (entre 1,2 y 5 g/1) , citicolina (histidina-5 - difosfato de colina) (entre 10 y 100 mg/l) , etanolamina (entre 10 y 50 mg/l) , fosfoetanolamina (entre 5 y 25 mcg/l) , glucagón (entre 1 y 5 mg/l) , 1-glutamina (entre 2 y 10 mM) , heparina sódica (entre 10.000 y 50.000 UI/1) , hidrocortisona (entre 10 y 100 mg/l) , insulina humana recombinante (entre 100 y 1.000 Ul/1) , levotiroxina (entre 50 y 200 mcg/l) , ácido linoleico (entre 10 y 50 mcg/l) , ácido oleico (entre 10 y 50 mcg/l) , piruvato sódico (entre 50 y 150 mg/l) , seleniato sódico (entre 10 y 50 mg/l) , toxina colérica (entre 0.1 y 1 mg/l), Antibióticos (penicilina 100.000 Ul/1, estreptomicina 100 mcg/l y anfotericina B 2.5 mcg/l); colina {entre 1 y 30 mg/l}; ácido fólico {entre 1 y 10 mg/l}; mio-inositol {entre 1 y 40 mg/l}; niacinamida {entre 1 y 10 mg/l}; ácido p-amino benzoico {entre 1 y 10 mg/l}; ácido D-pantoténico {entre 1 y 15 mg/l}; piridoxina {entre 1 y 10 mg/l}; riboflavina {entre 2 y 20 mg/l}; tiamina {entre 1 y 5 mg/l}; vitamina B-12 {entre 1 y 10 mcg/l}) y aminoácidos (1-histidina {entre 2 y 20 mg/l}) ; L-isoleucina {entre 4 y 50 mg/l}; 1- metionina {entre 1 y 25 mg/l}; 1-fenilalanina {entre 2 y 20 mg/l}; 1-triptophano {entre 1 y 5 mg/l}; 1-tirosina {entre 2 y 10 mg/l} y, opcionalmente, albúmina humana (entre 100 y 1000 mg/l) y transferrina humana (entre 10 y 50 mg/l) .
c) Concentrado de plaquetas.
A.2.- Procedimiento
El medio de cultivo fue evaluado mediante la norma: Biological evaluatioή of medical devices. Part 5: Test for cytotoxicity: in vitro methods . (ISO 10993- 5:1992). El ensayo se realizó sobre las células 3T3 A31, que es una línea celular procedente del ratón Swiss albino, (ATCC CRL 1658) . El cultivo celular se realiza en frascos de cultivo, en un ambiente adecuado para la proliferación celular.
Las plaquetas empleadas en este procedimiento son obtenidas de la siguiente manera:
A.2.1.- Mediante extracción por venopunción del paciente :
Empleando tubos de 5 mililitros que contienen 10% de citrato trisódico como anticoagulante. Los tubos se centrifugaron a 200 G durante 10 minutos. La sangre se separa en sus tres componentes: plasma en la parte superior, células blancas como una tenue línea en la parte media y los eritrocitos en la parte inferior. Se procede a retirar de la capa de plasma un 80% aproximadamente de dicho volumen y el restante 20% es el que destina por su alta concentración en plaquetas a suplementar el medio de cultivo. Estas plaquetas son activadas por la presencia de calcio en el medio de cultivo, formándose un trombo que puede ser retirado y que es el que se ha denominado material de relleno. Esta activación plaquetar es la responsable de la liberación de los factores de crecimiento plaquetario (PDGFs) al medio de cultivo.
A.2.2.- Del banco de sangre, mediante el siguiente protocolo:
A.2.2.1.- Preparación del concentrado de plaquetas
Los concentrados de plaquetas se preparan a partir de la sangre total por medio de grandes centrífugas refrigeradas . Las elevadas fuerzas gravitatorias generadas por estos aparatos dan lugar a que la sangre se separe en plasma líquido y sus diferentes elementos celulares.
Para preparar los concentrados de plaquetas, la centrifugación se realiza a temperatura ambiente; en cambio, para los demás componentes sanguíneos se lleva a cabo a temperaturas entre 1 y 6 °C . Es importante equilibrar el material en los lados opuestos de la cabeza de la centrífuga, lo que se realiza fácilmente mediante discos de goma de diferentes pesos. Es muy útil disponer un bolsa protectora de plástico en torno al recipiente con la sangre, a causa de la posibilidad de roturas. Los portillos y los tubos unidos a la bolsa deben protegerse también contra roturas . No debe frenarse manualmente la centrífuga ya que ello altera el contenido de la bolsa de sangre. Hay que seguir escrupulosamente todas las instrucciones de seguridad.
El protocolo que se describe es el que se sigue con mas frecuencia en los bancos de sangre para separar los componentes sanguíneos. Con el centrifugado a baja veloci- dad de la unidad de sangre se obtiene plasma rico en plaquetas (PRP) en la parte superior y eritrocitos en la inferior. El PRP se exprime hacia una bolsa satélite adjunta, lo que deja los eritrocitos en la bolsa principal.
Las dos bolsas unidas se centrifugan de nuevo, esta vez a alta velocidad, con lo que se obtiene un botón de plaquetas agregadas a partir del PRP. Se eliminan aproximadamente 200 mi de plasma pobre en plaquetas y se dejan 50 mi del mismo con el botón plaquetario.
Esos 200 mi de plasma pueden emplearse para elaborar bien plasma recuperado, bien plasma fresco congelado (PFC) ,
0 bien se añaden a los eritrocitos para conseguir sangre total modificada. Al mismo tiempo, la bolsa que contiene el botón plaquetario y los 50 mi de plasma se separa de la bolsa primaria eritrocitaria, y se deja en reposo durante
1 hora a temperatura ambiente, con el fin de favorecer la desagregación plaquetaria.
Las plaquetas se colocan luego en un rotor mecánico, para resuspender suavemente el botón plaquetario . La mayoría de las plaquetas de la unidad de sangre total se hallan presentes en el concentrado plaquetario. Para conservar las plaquetas en estado funcional óptimo es necesario mantenerlas en agitación constante a temperatura ambiente .
A.2.2.2.- Preparación del concentrado de plaquetas de donantes múltiples.
Las plaquetas de donantes múltiples se obtienen a partir de sangre total, 6 u 8 horas después de la recogida (según el fabricante de la bolsa y el tipo de anticoagulante usado) , mediante centrifugación a baja velocidad para obtener un plasma rico en plaquetas. Este plasma se transfiere a una bolsa satélite, tras lo cual se somete a centrifugación intensa para formar un botón de agregado plaquetario y un plasma pobre en plaquetas. Se elimina el plasma, a excepción de 50 mi, para lograr un concentrado de plaquetas. Los 200 mi restantes de plasma pobre en plaquetas pueden añadirse luego a los hematíes para formar así sangre total modificada, o bien pueden congelarse para obtener PFC o usarse como plasma recuperado, para posterior elaboración.
Este concentrado de plaquetas se deja en reposo durante 1 hora para permitir que se desintegre suavemente el botón plaquetario. A continuación se someten las plaquetas a un proceso de agitación suave y constante a temperatura ambiente ( 20-24 °C) durante un plazo de conservación hasta de 5 días . Es importante cerciorarse de que las plaquetas mantengan su pH a 6 o más para que no pierdan su funcionalismo, y que exista una dosis mínima de 5,5 x 1010 plaquetas en el 75% de las unidades investigadas.
A.2.3.- Preparación de suero con alta concentración de PDGFs .
Las plaquetas obtenidas, ya sea por venopunción del propio paciente y las procedentes del banco de sangre pueden ser activadas mediante el siguiente protocolo : Por ejemplo, se recogen 9 mililitros de los concentrados de plaquetas cualesquiera que sea su procedencia, se añaden entre uno o dos mililitros de glucobionato calcico (1 mililitro aporta 4.5 miligramos de calcio elemento) esta solución se lleva a 37 ° C, obteniéndose un suero rico en
Factores de Crecimiento Derivados de las Plaquetas {Píate- let-Derived Growth Factors (PDGFs) } y un trombo que puede ser empleado como el material de relleno. Este suero rico en PDGFs puede ser empleado como aporte a los medios de cultivo celular o como solución sobre los defectos cutáneos, osteoarticulares o de otra etiología con el fin de acelerar la curación de las lesiones. El suero también puede congelarse y/o liofilizarse para prolongar su conservación hasta el momento de su utilización.
A.3.- Otros suplementos específicos
De forma complementaria a la composición principal y para líneas celulares distintas a las del tipo de epitelio pigmentario de retina, fibroblastos, hepatocitos, líneas tumorales y sus equivalentes, se establecen las siguientes adiciones de alguno, algunos o la totalidad de los siguientes suplementos extra : Biotina (entre 1 mg/l y 10 mg/l, dexametasona (entre 1 y 10 mg/l) , Factor básico de crecimiento de fibroblastos (bFGF) (entre 10 y 1.000 mcg/l), teofilina (entre 1 y 100 mg/l) , ácido 1-ascorbico (entre 20 y 100 mg/l) , calcitonina humana recombinante (entre 100 y 10.000 UI/1) , calcitriol (entre 0.1 y 10 mcg/l), dexameta- sona (entre 1 y 10 mg/l) , sales inorgánicas, tales como el fosfato potásico monobásico anhidro (entre 100 y 500 mg/l) y el fosfato sódico dibásico anhidro (entre 1.000 y 2.500 mg/l) u otras sales equivalentes, factor inhibidor de la leucemia humano recombinante (100-10.000 Ul/ml) , timidina (entre 5 y 10 mg/l) , guanosina (entre 10 y 50 mg/l) , citidina (entre 10 y 50) mg/l) , uridina (entre 10 y 50 mg/l) , 2-b-mercaptoetanol (entre 10 y 100 mcg/l) , forscoli- na (entre 0.1 y 10 mg/l), 2-b-mercaptoetanol (entre 10 y 100 mcg/l) , trifosfato de adenosina (entre 1 y 10 mg/l) y factor inhibidor de la leucemia humano recombinante (100- 10.000 Ul/ml) .
B.- Otras composiciones específicas y su procedimiento :
Estos suplementos específicos se incorporan de la siguiente manera :
B.I.- De la composición
- A los adipocitos: Biotina (entre 1 mg/l y 10 mg/l, dexametasona (entre 1 y 10 mg/l) .
- A los melanocitos : Factor básico de crecimiento de fibroblastos (bFGF) (entre 10 y 1.000 mcg/l), teofilina (entre 1 y 100 mg/l) . - A los condrocitos y osteoblastos : ácido 1-ascorbico (entre 20 y 100 mg/l) , calcitonina humana recombinante (entre 100 y 10.000 UI/1) , calcitriol (entre 0.1 y 10 mcg/l) , dexametasona (entre 1 y 10 mg/l) , sales inorgánicas, tales como el fosfato potásico monobásico anhidro (entre 100 y 500 mg/l) y el fosfato sódico dibásico anhidro (entre 1.000 y 2.500 mg/l) o equivalentes.
A las células madre : factor inhibidor de la leucemia humano recombinante (100-10.000 Ul/ml), nucleósidos; trifosfato de adenosina (entre 1 y 10 mg/l) , timidina (entre 5 y 10 mg/l) , guanosina (entre 10 y 50 mg/l) , citidina (entre 10 y 50) mg/l) , uridina (entre 10 y 50 mg/l) , 2-b-mercaptoetanol (entre 10 y 100 mcg/l) , forscoli- na (entre 0.1 y 10 mg/l) .
B.2.- Cultivo y mantenimiento de estas líneas celulares.
El medio de cultivo fue preparado con los componentes anteriormente especificados. Los antibióticos se emplearon en solución con las siguientes dosis finales: penicilina 100.000 UI/1, estreptomicina 100 mcg/l y anfotericina B 2.5 mcg/l: El pH fue ajustado a 7.40 y la osmolaridad para las células humanas del cultivo fue de 290 mOsm/Kg, asumida como la ideal para el mantenimiento in vitro, en tanto que para otras especies como el ratón la osmolaridad de los cultivos iniciales fue de 310 mOsm/kg. Las células se mantuvieron en frascos de cultivo de 25 cm2 ó 75 cm2 en medio de cultivo rutinario con todos los suplementos y los productos de la degranulación plaquetar, en estufa a 37 °C con atmósfera de C02 al 5%.
Cuando las células contenidas en un frasco de cultivo se encuentran adheridas a la superficie del mismo formando una monocapa (fase de crecimiento exponencial) , se procede a la obtención de las células mediante el siguiente procedimiento :
Decantado del medio de cultivo del frasco.
Lavado con tampón salino fosfato (pH: 7,3 a 4 °C) , y posterior decantación. Adición de EDTA-PBS (entre 1 y 10 ttiM) y agitar enérgicamente con el fin de soltar las células adheridas al fondo del frasco.
Adición de 3 mi de tampón salino fosfato para llegar a 10 mi finales y resuspender. Seguidamente centrifugación (Minifuge T Heraeus Christ) en tubo cónico de 50 mi. A 200 g durante 5 minutos a 37 °C.
Decantado del sobrenadante, mientras que el pellet se resuspende en un volumen conocido de PBS, procediéndose al estudio de viabilidad celular por el método de exclusión con Azul tripán al 0,1% en cámara cuentaglóbulos tipo Burker. Si el número de células viables es mayor del 95% se resuspenden nuevamente en el volumen necesario para obtener la concentración celular adecuada. La concentración celular empleada en este trabajo ha sido de 5 x 105 células en 0,1 mi de PBS.
Todos los pasos reseñados se llevaron a cabo en condiciones de estricta esterilidad, utilizando para ello cámaras de flujo laminar estéril Gelaire BSB4. Con el fin de detectar posibles contaminaciones de micoplasmas se sometieron periódicamente los cultivos a un test de detección de micoplasmas por fluorescencia siguiendo el siguiente protocolo: Las células que están siendo mantenidas en cultivo se fijan en Metanol-Acético (3:1) y se sumergen en una solución Tampón-Hoechst 33258 (bisbenzimidazol) preparada a partir de una solución stock estéril constituida por 100 mi de PBS y 15 mg. de Hoechst 33258 y posterior dilución 1:500 en PBS durante 30 min en oscuridad y a temperatura ambiente. Se observan las células al microscopio de fluorescencia. En caso de contaminación por micoplasmas, estos se observan como pequeños cuerpos fluorescentes en el espacio extranu- clear e intercelular.
B.3.- Mantenimiento a bajas temperaturas de las líneas celulares.
El mantenimiento de un stock de células a largo plazo se realizó mediante congelación en nitrógeno líquido de las células en cultivo. El procedimiento utilizado para la congelación fue el siguiente: Cuando las células en cultivo comienzan su fase de creci- miento exponencial, se calcula la viabilidad celular mediante tinción con Azul tripán.
Si es mayor del 95%, se resuspenden de nuevo en una solución del medio de cultivo completo y DMSO (dimetilsul- fóxido) al 10%. Se ajusta a una concentración de 2xl06 cel/ml. Esta suspensión se introduce en ampollas de congelación y se sumergen en nitrógeno líquido. Posteriormente, se almacenan en cámara de congelación a -180 °C. La descongelación de las células se realiza calentando las ampollas, sumergiéndolas en un baño a 37 °C y centrifugando después, con el fin de eliminar el DMSO. El pellet se resuspende en medio de cultivo completo, y se siembra en un frasco de cultivo introduciéndose de esta manera en estufa de incubación a 37 °C.
B.4.- Mantenimiento de las células madre.
Una vez realizada la selección de las células madre de origen embrionario, fetal o de adulto, mediante procesado enzimático, o por cultivo celular de tejido o por ovocitos, para el mantenimiento de estas células madre o Stem Cell, el medio de cultivo se condiciona o no por células STO, STO SNL 76/7 o VERO durante 48 horas y se utiliza hasta un 40% de este medio condicionado para cultivos celulares. Es conocido que, en ocasiones, se emplean células STO SNL 76/7 (McMahon and Bradley, 1990) o VERO, en forma de monocapas mitóticamente inactivadas (Evans and Kaufmann. , 1981), utilizadas de manera rutinaria en los procedimientos habituales de este tipo de cultivos (Nagy et al., 1993). Estas monocapas pueden secretar sustancias embriotróficas como el TGF-a (Factor de crecimiento transformante-a) , TGF- b (Factor de crecimiento transformante-b) , PDGT-a (Factores de crecimiento derivado de las plaquetas) e IGF-I y II
(Factores de crecimiento tipo insulina) y de esta forma soportar el desarrollo tanto embrionario como el mantenimiento de las células madre. También puede aportarse LIF humano recombinante (Factor inhibitorio de la leucemia humano recombinante) a una dosis por ejemplo de entre 100 y 10.000 units/ml (Kitamura et al. 1989) para el manteni- miento del fenotipo pluripotente de las células madre. Con el fin de conseguir niveles que permitan la formación de nichos de células madre que se mantienen indiferenciados
(Rathjen et al., 1990), este factor puede por si solo mantener y servir en el aislamiento de células madre (Ernst et al ., 1994; Nagy et al., 1993). Las células madre de la unidad pilosebacea mantenidas in vitro presentan actividad fosfatasa alcalina demostrable directamente al igual que en los blastocistos (Johnson et al. 1977) . Esta característica permite utilizar un mareaje histoquímico para detectar las células madre, así como poner de manifiesto el estado indiferenciado de las mismas (Piquet-Pellorce et al., 1994). (WO90/08188: PCT/AU89/00330 , mediante marcado positivo para fosfatasa alcalina de los cuerpos embrioides y de las células madre.
Las células utilizadas pueden ser pluripotentes o totipotentes de diversa procedencia, como es el caso de la médula ósea, pero también se pueden emplear células embrionaria o las diferenciadas procedentes del propio paciente. Estas últimas al igual que las obtenidas de la médula ósea por tener un origen autólogo no presentan la capacidad de generar respuesta autoinmune .
A tales fines, las células se aislan mediante procesa- do enzimático con tripsina, y/o dispasa/colagenasa según el tipo celular. Las líneas celulares se llevan a un frasco de 25 cm2 de superficie, realizándose los subcultivos al observarse la presencia de cuerpos embrioides o la desaparición de las células de la monocapa, manteniéndose en la estufa de cultivo sometidas a pase rutinario cada 48 horas. Posteriormente se pueden introducir en la cola biológica que, con posterioridad, se convierte en el implante biológico.
Dicho implante biológico se puede mantener en la estufa durante un tiempo superior a 90 días, siendo sus células viables, y de las cuales se puede reestablecer un nuevo pase celular, siempre que se mantengan las condiciones de cultivo de cada línea celular. Las células que se emplean tanto en la cola biológica como en los implantes biológicos se obtienen, por ejemplo, de la siguiente manera : se procede al tripsinizado de la línea celular, se inactiva la tripsina mediante inactivador se centrífuga a 200 g. Se retira el sobrenadante y el pellet es resuspendido en 1 mi de medio de cultivo. Se prepara una alícuota que contenga 10 x 106 células para un volumen final de 10 mi teniendo en cuenta que 1 mi es de concentrado de plaquetas . Todo este procedimiento se realiza a 37 °C.
Si se emplea como cola biológica presenta una excelente adhesión a los tejidos o materiales protésicos; si se desea mantener como implante biológico se lleva a la estufa donde obtendremos dos variantes : tras la retracción de los 10 mi de cola biológica en un tubo de ensayo, con una luz interior de 10 milímetros, a las 24 horas se presenta un cilindro de 10 x 1 milímetro, en experiencia realizada por triplicado.
Si se emplea sobre frascos de cultivo o se multiplica a partir de cultivo de 6 pocilios, no se produce retracción por lo que se presenta como el medio ideal para lograr formar lamina .
Se obtienen parches compuestos por fibroblastos y queratinocitos, superpuestos sobre los que recuerdan la dermoepidermis. La isoleucina es el aminoácido necesario para mantener el crecimiento de los queratinocitos, aunque el incremento de los otros aminoácidos tiene efectos beneficiosos en el potencial proliferativo de las diferentes líneas celulares.
En el caso de los osteoblastos se producen láminas variables en las cuales se puede inducir la calcificación en grado variable con el fin de cubrir o rellenar defectos óseos . La matriz extracelular que es producida por los osteoblastos en los cultivos realizados in vitro, presenta un grado variable de mineralización, lo que permite su introducción en los defectos osteoarticulares con las propias células (autoinjerto) o tras la eliminación de estas (aloinjerto) .
Como cola biológica se puede emplear en los casos de desprendimiento de retina llegando incluso a portar células de epitelio pigmentario de dicha retina.
Los factores plaquetarios liberados tanto al medio de cultivo como en el interior de la cola o implante biológi- co, logran un aumento en la proliferación celular fomentando el crecimiento, y evitando al mismo tiempo la degradación del producto de adhesión a las superficies expuestas .
No se consideró necesario el empleo de inhibidores de proteasas como el ácido epsilonaminocaproico (200-400 mcg/ml de gel) y ácido tranexámico (200-400 mcg/ml de gel) y, se descartó la aportación de otros tipos de proteasas
(yema de huevo de gallina, de Sigma Co., tipo III).
C- Empleo de los bioimplantes
Los bioimplantes se pueden emplear de los siguientes modos :
a.- La cola biológica recién preparada puede servir de material para la adhesión directamente sobre el lugar de la lesión como en los casos de desprendimiento de retina con células procedentes directamente de los cultivos o de las conservadas en nitrógeno líquido. Con esta cola se puede proceder a rellenar el defecto osteoarticular, o al menos servir de material de relleno de gran parte de dicho defecto.
b. -Cuando se va a emplear el implante biológico, el lugar lesionado o defecto se puede empapar con la cola biológica, posteriormente se comprime el implante en el lugar lesionado. En 48 horas se observa proliferación celular, y en tres semanas se aprecian nodulos de calcificación si las células son osteoblastos.
Como cola biológica, dada la rapidez con que se produce el trombo, los condrocitos quedan adheridos a las superficies lesionadas al igual que otros tipos celulares como fibroblastos implantados en la región dérmica o hipodérmica o las células del epitelio pigmentario en la retina. Este ultimo caso requiere especial atención, puesto que el volumen final de la cola biológica al formarse el trombo es casi despreciable (1 milímetro cúbico por mililitro de medio) y, dado el poder regenerativo de dichas células (por su carácter pluripotente) sobre las células nerviosas retinianas. Se abriría el campo de la regeneración retiniana en casos como la retinitis pigmentaria y el desprendimiento retiniano.
Una de las principales ventajas de dicho procedimiento es la ausencia de aporte exógeno de proteínas, la ausencia de sueros animales, lo cual reduce los riesgos de contaminación accidental .
c- Como material de relleno, resulta obvio que este producto congelado, desecado y/o liofilizado presenta una durabilidad superior a los tres años. Tanto los productos desecados como el implante deben ser irrigados con la cola biológica, así mismo, se debe aplicar dicha solución sobre el lugar lesionado que va a ser reparado. El procedimiento de la invención está por consiguiente particularmente adaptado a las necesidades actuales de utilización de productos autólogos.
Estos productos: medio de cultivo, cola biológica, implante biológico y material de relleno pueden ser utilizados en los tratamientos de heridas traumáticas o quirúrgicas, en los implantes óseos o reconstrucciones osteoarticulares, mantenimiento de injertos (piel, huesos, entre otros) y mantenimiento a largo plazo de los implantes biológicos in vitro. La misma cola puede igualmente ser utilizada para fijar piezas de prótesis, comprendidas prótesis óseas, piezas de osteosíntesis y prótesis dentales, y también para la fijación y para dar cohesión a materiales de relleno óseo, como carbonato de calcio, de hidroxiapatita o de polímeros biodegradables como el poli (ácido láctico) .
Por lo que respecta a la industrialización del producto, la composición básica a añadir al cultivo celular específico está materializada en un complejo único de suplementos, preparado de antemano para facilitar y agilizar la operativa detallada en la presente memoria, así como usarlos en directo con líneas celulares que no requieren suplementos extra, dejando para cada caso concreto la incorporación de los dos suplementos opcionales : albúmina y transferrina humanas .
Igual ocurre con los suplementos extra, destina- dos a líneas celulares que requieren la adición de éstos :
Para cada línea celular concreta se dispone ya de la mezcla previa correspondiente al conjunto adecuado de estos suplementos extra, a idénticos fines de facilitar la operativa concreta. REALIZACIÓN PREFERENTE DE LA INVENCIÓN
Composición básica.
Incorpora los suplementos biológicos siguientes: trifosfato de adenosina 1 mg/l) , aminoácidos (1-histidina 2 mg/l) ; L-isoleucina 4 mg/l ; 1-metionina 1 mg/l; 1- fenilalanina 2 mg/l; 1-triptofano 1 mg/l; 1-tirosina 2 mg/l) , antibióticos (penicilina 100.000 UI/1, estreptomici- na 100 mcg/l y anfotericina B 2.5 mcg/l), bicarbonato sódico 1.2 g/1) , citicolina (histidina-5 λ -difosfato de colina) 10 mg/l, etanolamina 10 mg/l, fosfoetanolamina 5 mg/l, glucagón 1 mg/l, ácido linoleico 10 mc/1, ácido oleico 10 mcg/l, 1-glutamina 2mM, heparina sódica 10.000 Ul/1, hidrocortisona 10 mg/l, insulina humana recombinante 100 UI/1, levotiroxina 50 mg/l, piruvato sódico 50 mg/l, ácido selenioso 10 mcg/l, toxina colérica 0.1 mg/l y vitaminas (d-biotina 1 mg/l; colina 1 mg/l; ácido folico 1 mg/l; mio-inositol 1 mg/l; niacinamida 1 mg/l; ácido p- amino benzoico 1 mg/l; ácido D-pantotenico 1 mg/l; pirido- xina 1 mg/l; riboflavina 2 mg/l; tiamina 1 mg/l; vitamina B-12 1 mcg/l) .
Otros suplementos específicos.
En determinados casos se incorporan, además de las opcionales, albúmina humana 100 mg/l y transferrina humana 10 mg/l, los siguientes suplementos : calcitonina humana recombinante (1.000 UI/1) , Factor inhibidor de la leucemia humano recombinante (1.000 Ul/ml), vitaminas (D-
Biotina (1 mg/l) , dexametasona (1 mg/l) , factor básico de crecimiento de fibroblastos (b-FGF) (10 mcg/l) , teofilina
(1 mg/l), ácido 1-ascorbico (20 mg/l), calcitriol (0.5 mcg/l) , sales inorgánicas tales como el fosfato potásico monobásico anhidro 200 mg/l y el fosfato sódico dibásico anhidro 1.100 mg/l o equivalentes, forscolina 0.1 mg/l, nucleósidos; adenosina 10 mg/l, timidina 5 mg/l, guanosina 10 mg/l, citidina 10 mg/l, uridina 10 mg/l, 2-b-mercaptoe- tanol 10 mcg/l.
En cuanto a los ejemplos que a continuación se describen, éstos se emplean para ilustrar de modo adicional la invención y constituyen el mejor modo de llevarla a la práctica. Estos ejemplos se prepararon y se ensayaron como a continuación se describe :
Ejemplo 1.- Creación de sustituto dermocutáneo con capacidad de desarrollar folículos pilosos.
Se obtienen las líneas celulares de un punch cutáneo de diámetro variable o de la unidad folicular o pilosebacea. Se seccionan en tres partes según el espesor de cada una de ellas y, de la epidermis se obtienen queratinocítos y melanocitos, de la dermis los fibroblastos y de la hipodermis se obtienen los adipositos que se mantienen con los siguientes suplementos; vitaminas (D- Biotina (1 mg/l) , dexametasona (1 mg/l) , cultivándose cada grupo por separado. El medio de cultivo empleado en este ejemplo se corresponde en esencia con el utilizado en las células madre.
Posteriormente se van obteniendo mediante procesado enzimático con dispasa/colagenasa los adipocitos. Se resuspenden 10 x 106 en 5 mi de medio de cultivo fresco con un 10% de concentrado de plaquetas añadiendo los siguientes suplementos específicos:; se siembra en un frasco de 75 cm2, se espera a que coagule en la estufa durante 1 hora. Se extraen los fibroblastos de igual manera, finalmente los queratinocitos que se han cultivado con su medio específico como es; factor inhibidor de la leucemia humano recombinante 1.000 Ul/ml, forscolina 0.1 mg/l, para mantener la especificidad de las células madre cutáneas: con el mismo procedimiento y, luego, se procede a cambios con el medio enriquecido durante 15 días para aumentar el espesor de la capa de queratinocitos .
De este nodo se obtiene un sustituto cutáneo que, tras ser sometido a un proceso de queratinización por exposición al aire, puede ser empleado en la practica clínica diaria.
Ejemplo 2.- Implante biológico que contiene osteoblastos.
Se obtiene la línea celular de hueso trabecular o del procedente de cresta ósea o punción ósea. Se lava abundantemente para retirar restos de médula ósea o de periostio. Se obtienen las células de igual manera que en el ejemplo 1 respetando las particularidades de crecimiento de esta línea celular y resuspendiéndose en 10 mi finales de medio de cultivo y 10% concentrado de plaquetas además de los siguientes suplementos específicos: ácido 1-ascorbi- co (20 mg/l), calcitriol (0.5 mcg/l), calcitonina humana recombinante (1.000 Ul/1) , sales inorgánicas tales como el fosfato potásico monobásico anhidro 200 mg/l y el fosfato sódico dibásico anhidro 1.100 mg/l o equivalentes. Se llevan a la estufa para que se produzca la retracción del trombo plaquetar en un tubo de 10 centímetros por 1 centímetro de diámetro interior, quedando un cilindro de 10 milímetros de longitud por 1 milímetro de diámetro.
Ejemplo 3.- Implante y/o cola biológica que contiene condrocitos .
Obtención del cultivo de condrocitos del cartíla- go articular mediante procesado con dispasa/colagenasa. Mantenimiento de la linea celular con los siguientes suplementos específicos; ácido 1-ascorbico (20 mg/l) , calcitriol (0.5 mcg/l), sales inorgánicas tales como el fosfato potásico monobásico anhidro 200 mg/l y el fosfato sódico dibásico anhidro 1.100 mg/l o equivalentes, y posterior recuperación con igual procesado enzimático. Se resuspende 10 x 106 célula/ml de medio de cultivo como en los casos anteriores. Por cirugía artroscópica se llega al cartílago dañado, preparando el lecho de la intervención y se procede a rellenar dicho defecto en el instante que se prepara la suspensión celular y la cola biológica. Coagula con rapidez.
Ejemplo 4.- Cola biológica para la reparación del desprendimiento de retina y/o regeneración en caso de retinitis pigmentaria.
Se cultivan las células del epitelio pigmentario de retina, con demostrada capacidad de regeneración de la retina. El medio de cultivo empleado es el medio estándar. Se resuspende de igual manera que en el ejemplo 3 y se rellene la zona desprendida. Debe recordarse que 1 mililitro de este medio ocupa finalmente 1 milímetro cúbico en las experiencias llevadas a cabo en el laboratorio.
Estos procedimientos que se realizan a pié de quirófano presentan la ventaja de aportar grandes cantidades de factores de crecimiento plaquetario en la zona de la lesión al activarse la plaquetas tras su puesta en contacto con el medio de cultivo.
Procedimiento general
El desarrollo del medio de cultivo es suplemen- tado con factores de crecimiento obtenido del concentrado de plaquetas, de procedencia autóloga o heteróloga. De manera rutinaria puede tener una concentración del 1%. Otros factores de crecimiento (IGF- I, IGF-II y TGF-b, entre otros) y suplementos, se añaden según el tipo celular a mantener in vitro. Para el mantenimiento de las células madre se precisa de Factor inhibidor de la leucemia humano recombinante .
El implante biológico proviene de la activación del concentrado de plaquetas, su coagulación y retracción, inducido por el calcio presente en el medio de cultivo celular. La cola biológica se origina en los primeros minutos de activación plaquetar y se emplea como relleno de cualquier tipo de lesiones. El material de relleno se obtiene del trombo originado por la retracción plaquetar con el fin de rellenar defectos osteoarticulares .
Procedimiento especifico 1.
La unidad pilosebacea tiene como base el mantenimiento rutinario en cultivo de las células madre, partiendo de las obtenidas en general, de 12 unidades pilosebaceas para un frasco de cultivo de 25 cm2 de superficie, los subcultivos se realizan cuando llegamos a la subconfluencia celular y siempre se emplea el medio de cultivo específico. Si no empleamos este último, las células pierden capacidades y desarrollaremos una piel que se puede emplear como sustituto cutáneo.
Procedimiento específico 2.
Se procede a la obtención de osteoblastos mediante cultivo celular. Los defectos osteoarticulares de cualesquiera de las etiologías conocidas se limpian y se les da una configuración geométrica (cilindrica, cuboidal u otra) acorde con el material de implante a utilizar; dichos implantes biológicos, llevan incorporados los osteoblastos cultivados; pueden adherirse mucho mejor mediante la cola biológica recién preparada. Se puede rellenar con el material congelado, liofilizado y/o pulverizado. Los pequeños defectos osteoarticulares pueden ser rellenados con la cola biológica recién preparada conteniendo o no las líneas celulares previamente estable- cidas. En cualquier caso la cola biológica puede o no contener células en el momento de su aplicación. Cualquier tipo de implante y/o aposito, se puede sumergir y/o empapar en la denominada cola biológica, al igual que el lugar de implantación o cobertura.
Procedimiento específico 3
En el caso de desprendimiento de retina o en la retinitis pigmentaria se procede al cultivo de las línea celular preferente como puede ser el caso del epitelio pigmentario de retina. Se obtienen las células del cultivo, se resuspenden y se añade el concentrado de plaquetas creándose la cola biológica con la que rellenar los defectos retiñíanos.
Procedimiento específico 4. -
En los desgarros osteotendinosos se puede introducir directamente la cola biológica con o sin células, mientras que en el caso de los grandes defectos se pueden utilizar implantes que sustituyan el hueso con la forma apropiada, revistiéndolo con la cola biológica o el material pulverizado.
Procedimiento específico 5. - En el caso de los melanocitos, el procedimiento se inicia por el procesado enzimático con tripsina de 12 unidades pilosebáceas, obteniéndose células de la unión dermoepidérmica, constituidas en su mayoría por melanocitos, entre otros, siendo estas células las que se incorporan a un frasco de 25 cm2 de superficie, realizándose los subcultivos al alcanzar la subconfluencia celular y empleándose siempre el medio de cultivo específico, para evitar que las células pierdan capacidades y se desarrollen, hasta el momento de ser reintroducidas en las zonas lesionadas.
Las diversas alternativas y modificaciones que se propongan, quedan sujetas a las formas y variaciones que estén comprendidas en lo descrito.

Claims

REIVINDICACIONES
Io.- Composición para crear, regenerar y reparar tejidos mediante implante biológico portador de células y enrique- cido con concentrado de plaquetas más suplementos, de entre todas aquellas composiciones para la regeneración de tej idos que parten de cultivos celulares convencionales diversos, que proceden tanto de células heterólogas como autólogas, humanas o animales, incorporando determinados suplementos, así como plaquetas y factores de crecimiento plaquetarios (PDGFs) , caracterizada porque sin incorporar material hemostásico de ningún tipo, junto al concentrado de plaquetas (entre el 1 y el 30%) que aporta fibrinógeno y concentraciones de factores de crecimiento plaquetarios (PDGFs) , al menos de IGF-I, IGF-II, TGF-b, incorpora otras concentraciones 'de suplementos biológicos' tales como : trifosfato de adenosina, aminoácidos, citocinas (LIF) , hormonas (calcitonina, insulina) , lípidos (citicolina, ácido linoleico, ácido oleico) , nucleosidos (adenosina, citosina, guanosina, timidina, uridina) , sales minerales, vitaminas, incrementando la cantidad de células obtenidas en el cultivo celular y reduciendo el tiempo de duración del procedimiento de obtención, con lo que se consigue establecer, mantener y prolongar la proliferación de líneas celulares del tipo de epitelio pigmentario de retina, fibroblastos, hepatocitos, así como líneas tumorales y otras equivalentes .
2a.- Composición para crear, regenerar y reparar tejidos mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según la reivindicación primera, caracterizada porque ese incremento de la cantidad de células obtenidas en el cultivo celular en el menor tiempo posible, en base a incorporar altas concentraciones de los suplementos biológicos, tiene lugar
HOJA DE SUSTITUCIÓN (REGLA 26) según los rangos siguientes : trifosfato de adenosina
(entre 1 y 10 mg/l), bicarbonato sódico (entre 1,2 y 5 g/1) , citicolina (histidina-5 v -difosfato de colina) (entre
10 y 100 mg/l) , etanolamina (entre 10 y 50 mg/l) , fosfoetanolamina (entre 5 y 25 mcg/l) , glucagón (entre 1 y
5 mg/l) , 1-glutamina (entre 2 y 10 mM) , heparina sódica
(entre 10.000 y 50.000 UI/1) , hidrocortisona (entre 10 y
100 mg/l), insulina humana recombinante (entre 100 y 1.000
UI/1) , levotiroxina (entre 50 y 200 mcg/l) , ácido linoleico (entre 10 y 50 mcg/l) , ácido oleico (entre 10 y 50 mcg/l) , piruvato sódico ' (entre 50 y 150 mg/l) , seleniato sódico
(entre 10 y 50 mg/1) , "toxina colérica (entre 0.1 y 1 mg/l) , antibióticos (penicilina 100.000 UI/1, estreptomicina 100 mcg/l y anfotericina B 2.5 mcg/l); colina {entre 1 y 30 mg/l}; ácido fólico {entre 1 y 10 mg/l}; mio-inositol '{entre' 1 y 40 mg/1}; niacinamida" {entre 1 y 10 mg/.l}; ácido p-amino benzoico {entre 1 y 10 mg/l}; ácido D-pantoténico
{entre 1 y 15 mg/l}; piridoxina {entre 1 y 10 mg/l}; riboflavina {entre 2 y 20 mg/l}; tiamina {entre 1 y 5 mg/l}; vitamina B-12 {entre 1 y 10 mcg/l}) y aminoácidos
(1-histidina {entre 2 y 20 mg/l}); L-isoleucina {entre 4 y
50 mg/l}; 1-metionina {entre 1 y 25 mg/l}; 1-fenilalanina
{entre 2 y 20 mg/l}; 1-triptófano {entre 1 y 5 mg/l}; 1- tirosina {entre 2 y 10 mg/l}.
3a.- Composición para crear, regenerar y reparar tejidos mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindicaciones anteriores Ia y 2a, caracterizada porque complementariamente a la composición principal, se incorporan uno o ambos de los siguientes suplementos : albúmina humana (entre 100 y 1000 mg/l) ; transferrina humana (entre 10 y 50 mg/l) .
4a.- Composición -para crear, • egenerar y reparar tejidos
HOJA DE SUSTITUCIÓN (REGLA 26) mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindicaciones 1 a 3, caracterizada porque, junto a la totalidad o parte de los suplementos indica- dos, en otros tipos de células a cultivar, el medio de cultivo contiene adiciones de algunos de los siguientes suplementos extra Biotina (entre 1 mg/l y 10 mg/l, dexametasona (entre 1 y 10 mg/l), Factor básico de crecimiento de .fibroblastos (bFGF) (entre 10 y l.OOÓ mcg/l), teofilina (entre 1 y 100 mg/l) ( ácido 1- ascorbico (entre 20 y 100 mg/l), calcitonina humana recombinante (entre 100 y 10.000 UI/1) , calcitriol
(entre 0.1 y 10 mcg/l), dexametasona (entre 1 y 10 mg/l) , sales inorgánicas, tales como el fosfato potásico nionobásico anhidro (entre 100 y 500 mg/l) y el fosfato sódico dibásico anhidro, (entre 1.000 y 2.500 mg/l) u otras sales equivalentes, factor inhibidor de la leucemia humano recombinante (100-10.000 Ul/ml), timidina (entre 5 y 10 mg/l), ~uanosina (entre 10 y 50 mg/l), citidina (entre 10 y 50) mg/l), uridina (entre 10 y 50 mg/l) ( 2-b-mercaptoetanol (entre 10 y 100 mcg/l), forscolina (entre 0.1 y 10 mg/l)/ 2-b-mercaptoetanol
(entre 10 y 100 mcg/1) , trifosfato de adenosina (entre 1 y 10 mg/l) y factor inhibidor de la leucemia humano recombinante (100-10.000 Ul/ml) .
5.- Procedimiento para crear, regenerar y > eparar tejidos mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplemen- tos, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 4 caracterizado porque tanto el concentrado de plaquetas, junto con el fibrinógeno que contienen, como las concentraciones citadas de factores de crecimiento plaqueta- rios (PDGFs),. se. aplican como, soporte de las células procedentes de los cultivos celulares previamente esta-
HOJA DE SUSTITUCIÓN (REGLA 26) blecidos, o como constituyentes del implante biológico, cola biológica y/o material de relleno.
6.- Procedimiento para crear, regenerar y reparar teji- 5 dos . mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindicaciones 1 a la 5, caracterizado por la retirada posterior del trombo formado por la fibrina y plaquetas provenientes del concentrado de 10 plaquetas.
7.- Procedimiento para crear, regenerar y reparar tejidos mediante implante' biológico portador de células ' y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplemen- 15. tos, según las reivindicaciones 1 a la.6, caracterizado por utilizar el sobrenadante resultante de su activación tras la suplementación con glucobionato calcico.
8.- Procedimiento para crear, regenerar y reparar teji- 20 dos mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 7, caracterizado porque comprende las etapas de:
- Cultivo , de poblaciones celulares procedentes de diver- 25 sas localizaciones ya sean de embrión, o autólogas o de otra procedencia, para restaurar zonas alteradas del receptor.
- Manipulaciones de mantenimiento de dichas lineas celulares, con medio de cultivo suplementado a altas
30 concentraciones y/o concentrado de plaquetas.
- Recolección, congelación e introducción !de las lineas, celulares tanto en la cola biológica, en el material de relleno o en el de cobertura.
5
HOJA DE SUSTITUCIÓN (REGLA 26)
9.- Procedimiento para crear, regenerar y reparar tejidos mediante implante biológico portador c~e células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 8, caracterizado como medio de cultivo celular para células procedentes de tejido embrionario, del propio paciente o de otra procedencia, por:
- La obtención, proliferación, purificación y manipulación de las diferentes poblaciones celulares. - El mantenimiento in vitro durante los pases rutinarios posteriores de los cultivos celulares establecidos.
- La posterior incorporación, en una cantidad de lOxlO6 células/ml a la cola biológica constituida por un medio de cultivo con una alta cantidad de suplementos y con un 10% (del 1 al .30%) de concentrado de plaquetas, o
- Como material de relleno o cobertura cutánea con una concentración celular de hasta 5 x 106 células/ml.
Obtención de cultivos primarios de fibroblastos, hepatocitos, células tumorales y epitelio pigmentario de retina.
10.- Procedimiento para crear, regenerar y reparar tejidos mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplemen- tos, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 9 caracterizado por la formación de una malla de concentrado de plaquetas, fibrina y medio de cultivo altamente enriquecido que puede ser empleado: a.- Como material de relleno en los casos de fractura osteoarticular o de relleno en caso de pérdida de sustancia. b.- Como material que alberga en su interior las células procedentes del cultivo según la reivindicación 1, y que pueden ser inoculadas antes de la retracción del trombo. c- Como material con contenido celular que puede ser
HOJA DE SUSTITUCIÓN (REGLA 26) empleado para relleno tras su retracción, en casos de pérdida de sustancia osteoarticular, desprendimiento de retina, cobertura cutánea u otros tipos de intervenciones que aprovechen cualquiera de los procedimientos desarrollados en la invención.
11.- Composición para crear, regenerar y reparar tejidos mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las . reivindicaciones anteriores 1 a la 10, caracterizada porque el medio de cultivo se emplea como aporte de nutrición o relleno en las fracturas osteoarticulares, cola biológica, aposito en caso de lesión cutánea, trombo de relleno por el contenido en fibrina y plaquetas o material, de . relleno, con células procedentes del propio paciente o de otros orígenes.
12.- Procedimiento para crear, regenerar y reparar tejidos mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 11, caracterizado porque las células obtenidas de los cultivos in vitro son congeladas en el medio de cultivo con DMSO (dimetil sulfoxido) al 10%, se almacenan en condi- ciones de baja temperatura en el medio conservante anteriormente descrito, conservando la viabilidad celular para, posteriormente, ser implantadas mediante el empleo del medio de cultivo fresco como cola biológica.
13.- Procedimiento para crear, regenerar y reparar tejidos mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas -más suplementos, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 12, caracterizado .porque el trombo, procedente del medio de cultivo puede ser congelado, liofilizado y pulverizado,
HOJA DE SUSTITUCIÓN (REGLA 26) para posteriormente emplearlo como material de relleno en defectos óseos.
14.- Composición para crear,' regenerar y reparar tejidos mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindicaciones 1 a la 13, caracterizada porque, junto a la totalidad o parte de los suplementos indicados, en otros tipos de células a cultivar, el medio de cultivo contiene adiciones de algunos de los siguientes suplementos extra : Biotina (entre 1 mg/l y 10 mg/l, dexametasona (entre 1 y 10. g/l), Factor básico de crecimiento de fibroblastos (bFGF) (entre 10 y 1.000 mcg/l), teofilina (entre 1 y 100 mg/l) ( ácido 1- ascorbico .. (entre 20. y 100 .mg/l)., calcitonina, humana recombinante (entre 100 y 10.000 UI/1), calcitriol
(entre 0.1 y 10 mcg/l), dexametasona (entre 1 y 10 mg/l), sales inorgánicas, tales como el fosfato potásico monobásico anhidro (entre 100 y 500 mg/l) y el fosfato sódico dibásico anhidro (entre 1.000 y 2.500 mg/l> u otras sales equivalentes, factor inhibidor de la leucemia humano recombinante (100-10.000 111/ml) , timidina (entre 5 y 10 mg/l), guanosina (entre 10 y 50 mg/l), citidina (entre 10 y 50) mg/l), uridina (entre 10 y 50 mg/l), 2-b-mercaptoetanol (entre 10 y 100 mcg/l), fors- colina (entre 0.1 y 10 mg/l), 2-b-mercaptoetanoi (entre 10 y 100 mcg/l)-, trifosfato de adenosina (entre 1 y 10 mg/l) y factor inhibidor de la leucemia humano recombinante (100-10.000 Ul/ml) .
15.- Composición para establecer, mantener y prolongar la proliferación de las células madre, mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas, más suplementos, ...según las reivindi- caciones anteriores 1 a la 14, caracterizada porque
HOJA DE SUSTITUCIÓN (REGLA 26) junto a las referidas concentraciones de los suplementos biológicos: trifosfato de adenosina, aminoácidos, antibióticos, bicarbonato sódico, citicolina (histidína-5 - difosfato de colina) ( 1-glutamina, heparina sódica, hidrocortisona, insulina humana reco binante, levotiroxina, piruvato sódico, toxina colérica y vitaminas, se incorporan también el factor inhibidor de la leucemia humano recombinante y 2-b-mercaptoetanol, todos ellos en los rangos previstos.
16.- Procedimiento para establecer, mantener y prolongar la proliferación de las células madre, mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindi- caciones anteriores 1 a la 15, caracterizado por la selección de las células madre de origen embrionario, fetal o de adulto mediante procesado enzimático o por cultivo celular de tejido o de ovocitos, su cultivo posterior mediante el medio de cultivo especifico para las células madre, condicionado o no por células STO, STO SNL 76/7 o VERO, entre otras, las cuales pueden estar mitóticamente inactivadas para su empleo como monocapas y, 'para ello, se llevan estas células a un frasco de 25 cm2 de superficie, realizándose los subcul- tivos al observarse la presencia de cuerpos embrioídes o la desaparación de las células de la monocapa, con lo que las células madre mantienen capacidades pluripoten- tes o totipotentes. y se desarrollan en las diferentes líneas celulares requeridas, para ser reintroducidas en las zonas lesionadas.
17.- Procedimiento para establecer, mantener y prolongar la proliferación de las células del epitelio pigmentario de retina, mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más
HOJA DE SUSTITUCIÓN (REGLA 26) suplementos, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 14, caracterizado porque, en el caso de desprendimiento de retina o en la retinitis pigmentaria, se procede al cultivo de las linea celular preferente, como puede ser el caso del epitelio pigmentario de retina, se obtienen las células del cultivo, se resuspenden y se añade el concentrado de plaquetas, creándose la cola biológica con la que rellenar los defectos retiñíanos.
18.- Composición para establecer, mantener y prolongar la proliferación de los adipocitos mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 16, caracterizada porque junto . a las citadas concentraciones d los suplementos biológicos adenosina trifosfato, aminoácidos, antibióticos, bicarbonato sódico, citicolina (histidina-5 - difosfato de colina) , 1-glutamina, heparina sódica, hidrocortisona, insulina humana recombinante, ievoti- roxina, piruvato sódico, -toxina colérica y vitaminas, se incorporan también biotina y dexametasona, todos ellos en los rangos previstos.
19.- Procedimiento para establecer, mantener y prolongar la proliferación de los adipocitos mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos,, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 16 y la 18, caracterizado porque la unidad pilosebácea tiene como base el manteni- miento rutinario en cultivo de las células madre, partiendo de las obtenidas en general, de 12 unidades pilosebáceas para un frasco de cultivo de 25 cm2 de superficie, realizándose los subcultivos . al alcanzar la subconfluencia. celular y empleando .siempre el medio de cultivo específico, para evitar que las células pierdan
HOJA DE SUSTITUCIÓN (REGLA 26) capacidades y se desarrolle una piel que no se pueda emplear como sustituto cutáneo.
20.- Composición para (establecer, mantener y prolongar 5 la proliferación de los) melanocitos mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 14, caracterizada porque junto a las referidas concentraciones de los suplementos
10 biológicos adenosina trifosfato, aminoácidos, antibióticos, bicarbonato sádico, citicolina (histidina-5 "- difosfato de colina) , 1-glutamina, heparina sádica, hidrocortisona, insulina humana recombinante, levotiroxina, piruvato sádico, toxina colérica y vitaminas, se
15. incorporan-, -también factor básico de- crecimiento .. de fibroblastos, teofilina y factor de crecimiento epidérmico, todos ellos en los rangos previstos.
21.- Procedimiento para (establecer, mantener y prolon- 20 gar la proliferación de los) mel nocitos mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 14 y la 20, caracterizado por el procesado enzimático con tripsina- de 12 25 unidades pilosebáceas, obteniéndose células de la unión dermoepidérmica, constituidas en su mayoría por melanocitos, entre otros, siendo estas células las que se incorporan a un frasco de 25 cm2 de superficie, realizándose los subcultivos al alcanzar la subconfluencia 30 - celular y empleándose siempre el medio de cultivo específico, para evitar que las células pierdan- capacidades y se desarrollen, hasta el momento de ser reintroducidas en las zonas lesionadas.
5 22.- Composición para, establecer, mantener y prolongar
HOJA DE SUSTITUCIÓN (REGLA 26) la proliferación de los osteoblastos y/o condrocitos, mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 14, carac- terizada porque junto a las citadas concentraciones de los suplementos biológicos adenosina trifosfato, aminoácidos, antibióticos, bicarbonato sádico, citicolina (histidina-5-*-difosfato de colina), 1-glutamina, hepari- na sádica, hidrocortisona, insulina humana recombinante, levotiroxina, piruvato sádico, toxina colérica y vitaminas, se incorporan también ácido 1-ascorbico, calcitonina humana recombinante, calcitriol, dexametasona; así como sales inorgánicas, tales como el fosfato potásico monobásico anhidro y fosfato sádico dibásico anhidro u otras sales, equivalentes, todos ellos en los rangos previstos.
23.- Procedimiento para establecer, mantener y prolongar la proliferación de los osteoblastos y/o condrocitos, mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 14 y la 22, caracterizado porque en el caso de los osteoblastos se producen láminas variables en las cuales se puede indu- ' cir la calcificación en grado variable con el fin de cubrir o rellenar defectos óseos, de modo que la matriz extracelular que es producida por los osteoblastos en los cultivos realizados in vitro, presenta un grado variable de mineralización, lo que permite su introduc- ción en los defectos osteoarticulares con las propias células (autoinjerto) o tras la eliminación de estas (aloinjerto) .
24.- Procedimiento. para establecer, mantener y prolongar la proliferación de los osteoblastos y/o condrocitos,
HOJA DE SUSTITUCIÓN (REGLA 26) mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 14, y la 22 a la 23, caracterizado porque, una vez obtenidos los osteoblastos mediante cultivo celular, se procede a limpiar los defectos osteoarticulares de cualesquiera de las etiologías conocidas y, luego, a darles una configuración geométrica (cilindrica, cuboidal u otra) acorde con el material de implante a utilizar, llevando incor- porados dichos implantes biológicos los osteoblastos cultivados, incrementándose la adherencia mediante la cola biológica recién preparada.
25.- Procedimiento para establecer, mantener y prolongar la proliferación.... de.... los,„psteoblastos y/o, , condrocitos, mediante - implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 14 y la 22 a la 24, caracterizado porgue el implante se rellena con el material congelado, liofilizado y/o pulverizado, mientras que los pequefios defectos osteoarticulares se rellenan con la cola biológica recién preparada conteniendo o no las líneas celulares previamente establecidas, incorporando o no la cola biológica células en .el momento de su aplicación.
26.- Procedimiento para establecer, mantener y prolongar •la prolíferagión de los osteoblastos y/o condrocitos, mediante implante biológico portador de células y enri- quecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 14 y la 22 a la 25, caracterizado porque cualquier tipo de implante y/o aposito, se sumerge y/o empapar en la denominada cola biológica, al igual que . el propio lugar de su implantación o para su_ cobertura.
HOJA DE SUSTITUCIÓN (REGLA 26)
27.- Procedimiento para establecer, mantener y prolongar la proliferación de los osteoblastos y/o condrocitos, mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, 5 según las reivindicaciones anteriores 1 a la 14, y la 22, a la 26, caracterizado porque en los desgarros osteotendinosos se introduce directamente la cola biológica con o sin células.
10 28.- Procedimiento para establecer, mantener y prolongar la proliferación de los osteoblastos y/o condrocitos, mediante implante biológico portador de células y enriquecido con concentrado de plaquetas más suplementos, según las reivindicaciones anteriores 1 a la 14 y la 22
15. a la 27, caracterizado porque en el--caso de ios grandes- defectos se utilizan implantes con la forma apropiada, que sustituyen al „ hueso, revistiéndolo con la cola biológica o el material pulverizado.
20
25
30
35
HOJA DE SUSTITUCIÓN (REGLA 26)
PCT/ES2002/000007 2002-01-09 2002-01-09 Composicion y procedimiento para crear, regenerar y reparar tejidos mediante implante biologico portador de celulas y enriquecido con concentrado de plaquetas mas suplementos. WO2003057865A1 (es)

Priority Applications (7)

Application Number Priority Date Filing Date Title
AT02716089T ATE512218T1 (de) 2002-01-09 2002-01-09 Zusammensetzung zur herstellung, regeneration und reparatur von geweben unter verwendung eines zellentragenden biologischen implantats, das mit einem blutplättchenkonzentrat und supplementen angereichert ist
US10/475,866 US20040151709A1 (en) 2002-01-09 2002-01-09 Composition and method of creating, regenerating and repairing tissues using a cell-carrying biological implant which is enriched with a platelet concentrate and supplements
PCT/ES2002/000007 WO2003057865A1 (es) 2002-01-09 2002-01-09 Composicion y procedimiento para crear, regenerar y reparar tejidos mediante implante biologico portador de celulas y enriquecido con concentrado de plaquetas mas suplementos.
AU2002226426A AU2002226426A1 (en) 2002-01-09 2002-01-09 Composition and method of creating, regenerating and repairing tissues using a cell-carrying biological implant which is enriched with a platelet concentrate and supplements
EP02716089A EP1464697B1 (en) 2002-01-09 2002-01-09 COMPOSITION for CREATING, REGENERATING AND REPAIRING TISSUES USING A CELL-CARRYING BIOLOGICAL IMPLANT WHICH IS ENRICHED WITH A PLATELET CONCENTRATE AND SUPPLEMENTS
ES02716089T ES2370012T3 (es) 2002-01-09 2002-01-09 Composición para la creación, regeneración y reparación tisular mediante un implante biológico que porta células enriquecido con concentrado de plaquetas y complementos.
US11/704,784 US20070141036A1 (en) 2002-01-09 2007-02-09 Composition and procedure for tissue creation, regeneration and repair by a cell-bearing biological implant enriched with platelet concentrate and supplements

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PCT/ES2002/000007 WO2003057865A1 (es) 2002-01-09 2002-01-09 Composicion y procedimiento para crear, regenerar y reparar tejidos mediante implante biologico portador de celulas y enriquecido con concentrado de plaquetas mas suplementos.

Publications (2)

Publication Number Publication Date
WO2003057865A1 true WO2003057865A1 (es) 2003-07-17
WO2003057865A8 WO2003057865A8 (es) 2003-10-23

Family

ID=8244417

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/ES2002/000007 WO2003057865A1 (es) 2002-01-09 2002-01-09 Composicion y procedimiento para crear, regenerar y reparar tejidos mediante implante biologico portador de celulas y enriquecido con concentrado de plaquetas mas suplementos.

Country Status (6)

Country Link
US (1) US20040151709A1 (es)
EP (1) EP1464697B1 (es)
AT (1) ATE512218T1 (es)
AU (1) AU2002226426A1 (es)
ES (1) ES2370012T3 (es)
WO (1) WO2003057865A1 (es)

Families Citing this family (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20060039990A1 (en) * 2004-08-20 2006-02-23 Barrueta Alberto G Biological tissue regenerative agent and method for preparing same
EP1820852A4 (en) * 2004-11-19 2007-11-14 Jms Co Ltd HUMAN SERUM FOR CELL CULTURE
EP1764117A1 (en) 2005-09-20 2007-03-21 Zimmer GmbH Implant for the repair of a cartilage defect and method for manufacturing the implant
ITTO20060282A1 (it) * 2006-04-14 2007-10-15 Univ Degli Studi Torino Mezzo di coltura e composizione farmaceutica per la rigenerazione del tessuto cartilagineo relativo procedimento relativi usi e prodotti
WO2008022651A1 (en) 2006-08-21 2008-02-28 Antoine Turzi Process and device for the preparation of platelet rich plasma for extemporaneous use and combination thereof with skin and bone cells
EP2334785B2 (en) 2008-09-16 2019-08-14 Mayo Foundation For Medical Education And Research Compositions containing platelet contents
GB201004072D0 (en) * 2010-03-11 2010-04-28 Turzi Antoine Process, tube and device for the preparation of wound healant composition
WO2011139132A2 (ko) * 2010-05-07 2011-11-10 한국생명공학연구원 줄기세포로부터 생성된 배아체를 대량 증식 및 유지하는 방법
US20140170748A1 (en) * 2012-12-14 2014-06-19 DePuy Synthes Products, LLC Nutrient Enriched Media for hUTC Growth
EP4328299A3 (en) 2014-05-16 2024-05-29 Mayo Foundation for Medical Education and Research Cell culture media compositions for primary cells
US10791730B2 (en) 2016-01-14 2020-10-06 DePuy Synthes Products, Inc. Composition and methods for cryopreservation of hUTC
WO2020154305A1 (en) 2019-01-21 2020-07-30 Eclipse Medcorp, Llc Methods, systems and apparatus for separating components of a biological sample

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1990007931A1 (en) * 1989-01-10 1990-07-26 Curatech, Inc. Method of promoting hair growth by applying a blood platelet extract
WO1992009301A1 (en) * 1990-11-27 1992-06-11 The American National Red Cross Tissue sealant and growth factor containing compositions that promote accelerated wound healing
US5618663A (en) * 1992-06-05 1997-04-08 Inoteb Device for producing a supernatant of activated thrombocytes, method for implementing the device and supernatant obtained

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5197985A (en) * 1990-11-16 1993-03-30 Caplan Arnold I Method for enhancing the implantation and differentiation of marrow-derived mesenchymal cells
US5972703A (en) * 1994-08-12 1999-10-26 The Regents Of The University Of Michigan Bone precursor cells: compositions and methods
US5908782A (en) * 1995-06-05 1999-06-01 Osiris Therapeutics, Inc. Chemically defined medium for human mesenchymal stem cells
US6723131B2 (en) * 2001-02-28 2004-04-20 The Cleveland Clinic Foundation Composite bone marrow graft material with method and kit

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1990007931A1 (en) * 1989-01-10 1990-07-26 Curatech, Inc. Method of promoting hair growth by applying a blood platelet extract
WO1992009301A1 (en) * 1990-11-27 1992-06-11 The American National Red Cross Tissue sealant and growth factor containing compositions that promote accelerated wound healing
US5618663A (en) * 1992-06-05 1997-04-08 Inoteb Device for producing a supernatant of activated thrombocytes, method for implementing the device and supernatant obtained

Also Published As

Publication number Publication date
US20040151709A1 (en) 2004-08-05
EP1464697A1 (en) 2004-10-06
ATE512218T1 (de) 2011-06-15
EP1464697B1 (en) 2011-06-08
WO2003057865A8 (es) 2003-10-23
ES2370012T3 (es) 2011-12-12
AU2002226426A1 (en) 2003-07-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US20070141036A1 (en) Composition and procedure for tissue creation, regeneration and repair by a cell-bearing biological implant enriched with platelet concentrate and supplements
US8784863B2 (en) Particulate cadaveric allogenic cartilage system
US5197985A (en) Method for enhancing the implantation and differentiation of marrow-derived mesenchymal cells
US11771804B2 (en) Bone grafts including osteogenic stem cells, and methods relating to the same
WO2003057865A1 (es) Composicion y procedimiento para crear, regenerar y reparar tejidos mediante implante biologico portador de celulas y enriquecido con concentrado de plaquetas mas suplementos.
US20210213166A1 (en) Cartilage-derived implants and methods of making and using same
US9486483B2 (en) Bone grafts including osteogenic stem cells, and methods relating to the same
TWI842663B (zh) 細胞片及其製造方法
US20210128628A1 (en) Methods for generating multipotent stem cells from tonsillar biopsies
TW202417615A (zh) 細胞片的製造方法
Cornelissen et al. Osteogenic cultures representative to study cell/biomaterial interactions
JP2004208666A (ja) 軟骨細胞の培養方法

Legal Events

Date Code Title Description
AK Designated states

Kind code of ref document: A1

Designated state(s): AE AG AL AM AT AU AZ BA BB BG BR BY BZ CA CH CN CO CR CU CZ DE DK DM DZ EC EE ES FI GB GD GE GH GM HR HU ID IL IN IS JP KE KG KP KR KZ LC LK LR LS LT LU LV MA MD MG MK MN MW MX MZ NO NZ OM PH PL PT RO RU SD SE SG SI SK SL TJ TM TN TR TT TZ UA UG US UZ VN YU ZA ZM ZW

AL Designated countries for regional patents

Kind code of ref document: A1

Designated state(s): GH GM KE LS MW MZ SD SL SZ TZ UG ZM ZW AM AZ BY KG KZ MD RU TJ TM AT BE CH CY DE DK ES FI FR GB GR IE IT LU MC NL PT SE TR BF BJ CF CG CI CM GA GN GQ GW ML MR NE SN TD TG

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2002716089

Country of ref document: EP

121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application
CFP Corrected version of a pamphlet front page
CR1 Correction of entry in section i

Free format text: IN PCT GAZETTE 29/2003 ADD (71) APPLICANT (FOR ALLDESIGNATED STATES EXCEPT US): "DERBIOTEK, S. L. [ES/ES]; GENERAL EGUIA 1, 1 , E-48010 BILBAO (ES)."

WWP Wipo information: published in national office

Ref document number: 2002716089

Country of ref document: EP

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: JP

WWW Wipo information: withdrawn in national office

Country of ref document: JP