TWI733446B - 後生元提取物的製備方法以及由該方法所得到的產物及其用於抑制生物膜形成與促進腸道健康之用途 - Google Patents

Abstract

本發明揭示一種用於製備一後生元提取物的方法，其包括：提供一具有範圍落在pH 1至pH 6內之第一等電點的第一物質，以及一具有範圍落在pH 4至pH 8內之第二等電點的第二物質，其中該第二等電點是高於該第一等電點，且它們具有一落在0.5至3之間的pH差值；令該第一物質與一益生菌混合於一具有一pH值高於該第二等電點的水中，而得到一混合物；將該第二物質添加至該混合物中，繼而調整該混合物的pH值，而使得該混合物的pH值落在該第一等電點與該第二等電點之間，而使得沉澱物被形成；以及將該沉澱物拿來進行細胞壁分離提取處理。

Description

後生元提取物的製備方法以及由該方法所得到的產物及其用於抑制生物膜形成與促進腸道健康之用途

本發明是有關於一種用於製備一後生元提取物(postbiotics extract)的方法以及由該方法所得到的產物。本發明亦有關於使用該後生元提取物來抑制生物膜形成(biofilm formation)以及促進腸道健康(gut health)。

益生菌(probiotics)是一群可藉由選擇性地刺激腸道中的原生細菌(native bacteria)的生長來改善腸道菌相(gut flora)並且藉由促進腸道細胞分泌轉變生長因子-β (transforming growth factor-β, TGF-β)而來改善腸道免疫(intestinal immunity)的微生物。益生菌已被廣泛地應用於食品與保健品中，目前常用的益生菌包括：乳桿菌屬( Lactobacillus)、雙歧桿菌屬( Bifidobacterium)、芽孢桿菌屬( Bacillus)、乳球菌屬( Lactococcus)、腸球菌屬( Enterococcus)、酵母菌屬( Saccharomyces)、鏈球菌屬( Streptococcus)等。

儘管益生菌對人體或動物的健康具有上述益處，但是益生菌在口服後會容易遭受到胃酸的破壞，而導致其無法在腸道發揮預期的功效。另外，益生菌是一種活的微生物食品成分(live microbial food ingredient)，因此由益生菌所製成的食品與保健品也存在有不易保存的問題。

近年來的研究發現，去活的益生菌(non-viable probiotics)以及益生菌的溶胞產物(lysate)、提取產物或分離部分[被稱為後生元(postbiotics)]具有相近於益生菌的功效，並且相較於益生菌具有更高的胃酸耐受性且更易於保存。後生元的功效被認為是來自於益生菌的細胞壁成分，其主要含有肽聚醣(peptidoglycan)、磷壁酸(teichoic acid)、脂壁酸(lipoteichoic acid)、多醣類(polysaccharide)以及蛋白質(protein)等成分。目前已有許多方法可供用於從益生菌的細胞壁中提取出後生元，但是這些方法普遍存在有提取效率不佳的問題。因此，本領域中仍然存在有一需要去發展能有效地提取出後生元的方法以滿足產業界所需。

經研究，申請人意外地發現：本發明的方法能夠有效地提升後生元的提取效率，並且依據本發明方法所製得的後生元提取物具有抑制生物膜形成(biofilm formation)及促進腸道健康(gut health)之效用。

發明概要

於是，在第一個方面，本發明提供一種用於製備一後生元提取物(postbiotics extract)的方法，其包含有下列步驟： 提供一第一物質以及一第二物質，其中該第一物質具有一範圍落在pH 1至pH 6內的第一等電點(first isoelectric point)，該第二物質具有一範圍落在pH 4至pH 8內且高於該第一等電點的第二等電點(second isoelectric point)，該第二等電點與該第一等電點具有一落在0.5至3之間的pH差值； 令該第一物質以及一益生菌混合於一具有一高於該第二等電點之pH值的水中，而得到一混合物； 將該第二物質添加至該混合物中，繼而調整該混合物的pH值，而使得該混合物的pH值落在該第一等電點與該第二等電點之間，而使得沉澱物被形成；以及 將該沉澱物拿來進行一細胞壁分離提取處理(cell wall isolation and extraction treatment)，藉此而得到該後生元提取物。

在第二個方面，本發明提供一種後生元提取物，它是藉由使用一如上所述的方法而被製得。

在第三個方面，本發明提供一種食品產品，其包含有一如上所述的後生元提取物。

在第四個方面，本發明提供一種如上所述的後生元提取物供應用於製備一用來抑制生物膜形成之組成物的用途。

在第五個方面，本發明提供一種如上所述的後生元提取物供應用於製備一用來促進腸道健康之組成物的用途。

發明的詳細說明

要被瞭解的是：若有任何一件前案刊物在此被引述，該前案刊物不構成一個下述承認：在台灣或任何其他國家之中，該前案刊物形成本技藝中的常見一般知識之一部分。

為了這本說明書之目的，將被清楚地瞭解的是：文字“包含有(comprising)”意指“包含但不限於”，以及文字“包括(comprises)”具有一對應的意義。

除非另外有所定義，在本文中所使用的所有技術性與科學術語具有熟悉本發明所屬技藝的人士所共同瞭解的意義。一熟悉本技藝者會認知到許多與那些被描述於本文中者相似或等效的方法和材料，它們可被用於實施本發明。當然，本發明決不受到所描述的方法和材料之限制。

在本發明中，申請人藉由實驗而發現：本發明的方法能夠有效地從益生菌細胞壁中提取出後生元(postbiotics)，且所製得的後生元提取物包含有較多含蛋白質的細胞組分。此外，該後生元提取物具有促進益生菌生長以及人類腸道細胞分泌TGF-β之效用，因而被預期能夠藉由恢復健康的腸道菌相(gut flora)及改善腸道免疫(intestinal immunity)來促進腸道健康(gut health)。

於是，本發明提供一種用於製備一後生元提取物的方法，其包含有下列步驟： 提供一第一物質以及一第二物質，其中該第一物質具有一範圍落在pH 1至pH 6內的第一等電點，該第二物質具有一範圍落在pH 4至pH 8內且高於該第一等電點的第二等電點，該第二等電點與該第一等電點具有一落在0.5至3之間的pH差值； 令該第一物質以及一益生菌混合於一具有一高於該第二等電點之pH值的水中，而得到一混合物； 將該第二物質添加至該混合物中，繼而調整該混合物的pH值，而使得該混合物的pH值落在該第一等電點與該第二等電點之間，而使得沉澱物被形成；以及 將該沉澱物拿來進行一細胞壁分離提取處理，藉此而得到該後生元提取物。

依據本發明，該益生菌是選自於由下列所構成之群組：芽孢桿菌屬物種( Bacillusspp.)、鏈球菌屬物種( Streptococcusspp.)、乳球菌屬物種( Lactococcusspp.)、營養缺陷菌屬物種( Abiotrophiaspp.)、氣球菌屬物種( Aerococcusspp.)、肉食桿菌屬物種( Carnobacteriumspp.)、腸球菌屬物種( Enterococcusspp.)、乳桿菌屬物種( Lactobacillusspp.)、腸膜明串珠菌屬物種( Leuconostocspp.)、酒球菌屬物種( Oenococcusspp.)、小球菌屬物種( Pediococcusspp.)、四聯球菌屬物種( Tetragenococcusspp.)、徘徊球菌屬物種( Vagococcusspp.)、魏斯氏菌屬物種( Weissellaspp.)、雙歧桿菌屬物種( Bifidobacteriumspp.)、酵母菌屬物種( Saccharomycesspp.)、克魯維酵母菌屬物種( Kluyveromycesspp.)、葡萄球菌屬物種( Staphylococcusspp.)、片球菌屬物種( Pediococcusspp.)、丙酸桿菌屬物種( Propionibacteriumspp.)，以及它們的組合。

較佳地，該益生菌是選自於由下列所構成之群組中的乳桿菌屬物種：植物乳桿菌( Lactobacillus plantarum)、嗜酸乳桿菌( Lactobacillus acidophilus)、乾酪乳桿菌( Lactobacillus casei)、鼠李糖乳桿菌( Lactobacillus rhamnosus)、副乾酪乳桿菌( Lactobacillus paracasei)，以及它們的組合。

較佳地，該益生菌是選自於由下列所構成之群組中的雙歧桿菌屬物種：兩歧雙歧桿菌( Bifidobacterium bifidum)、乳雙歧桿菌( Bifidobacterium lactis)、長雙歧桿菌( Bifidobacterium longum)、短雙歧桿菌( Bifidobacterium breve)、動物雙歧桿菌( Bifidobacterium animalis)，以及它們的組合。

較佳地，該益生菌是選自於由下列所構成之群組中的芽孢桿菌屬物種：凝結芽孢桿菌( Bacillus coagulans)、枯草芽孢桿菌( Bacillus subtilis)、克勞氏芽孢桿菌( Bacillus clausii)，以及它們的組合。

依據本發明，該益生菌可以是活菌或死菌、經濃縮的(concentrated)或未經濃縮的(non-concentrated)、液態(liquid)、糊狀(paste)、半固態(semi-solid)，或固態(solid)[例如，丸(pellet)、細顆粒(granule)或粉末(powder)]，並且可以是經熱去活的(heat-inactivated)、經冷凍的(frozen)、經乾燥的(dried)，或經冷凍-乾燥的(freeze-dried)[例如，可呈冷凍乾燥形式或噴霧/流化床乾燥(spray/fluid bed dried)形式]。在本發明的一個較佳具體例中，該益生菌是經熱去活並呈經噴霧乾燥的粉末形式。

依據本發明，該益生菌的熱去活可以藉由在60-140℃下加熱歷時1秒鐘至30分鐘來進行。在本發明的一個較佳具體例中，該益生菌的熱去活是在73±2℃下加熱歷時15秒來進行。

依據本發明，該第一物質是選自於由下列所構成之群組：脫脂乳粉(nonfat dry milk)、酪蛋白(casein)、乳清蛋白(whey protein)、大豆蛋白(soybean protein)、豌豆蛋白(pea protein)、雞蛋蛋白(egg protein)、米蛋白(rice protein)、水解蛋白(hydrolyzed protein)、玉米蛋白(corn protein)、小麥蛋白(wheat protein)、大麥蛋白(barley protein)、支鏈胺基酸(branched chain amino acid)、明膠(gelatin)、膠原蛋白(collagen)、胺基酸(amino acid)、幾丁聚醣(chitosan)、幾丁質(chitin)，以及它們的組合。在本發明的一個較佳具體例中，該第一物質是乳清蛋白。

依據本發明，該第二物質是選自於由下列所構成之群組：海藻酸鈉(sodium alginate)、洋菜膠(agar)、鹿角菜膠(carrageenan)、果膠(pectin)、阿拉伯膠(arabic gum)、三仙膠(xanthan gum)、刺槐豆膠(locust bean gum)、澱粉(starch)[例如修飾澱粉(modified starch)]、海藻糖(trehalose)、糊精(dextrin)[例如抗性糊精(resistant maltodextrin)]、糖漿(syrup)、關華豆膠(guar gum)、魔芋精粉(konjac powder)、植物纖維(vegetable fiber)、合成纖維(synthetic fiber)、半合成纖維(semi-synthetic fiber)，以及它們的組合。在本發明的一個較佳具體例中，該第二物質是糊精。

在本發明的一個較佳具體例中，該第二等電點與該第一等電點具有一為0.8的pH差值。

依據本發明，該沉澱物可藉由一選自於由下列所構成之群組中的固液分離(solid-liquid separation)處理來進行收取：離心、過濾、重力沉降(gravity settling)，以及它們的組合。在本發明的一個較佳具體例中，該固液分離處理是過濾。

如本文中所使用的，術語“細胞壁分離提取(cell wall isolation and extraction)”與“細胞壁萃取(cell wall extraction)”可被交換地使用，並且意指從細胞壁的組成部分中分離出(separated)原本存在於其上之一細胞壁組分(cell wall component)或一微生物代謝物(microbial metabolite)。

依據本發明，細胞壁分離提取的操作程序與條件可以採用熟習此項技藝者所詳知且慣用的技術來進行，例如，酸醇法(acid alcohol method)。在此方面，可以參考，例如，Pei-Jun Tian et al. (2015), Int. J. Mol. Sci., 16 (8): 20033–20049。

本發明亦提供一種後生元提取物，其是藉由如上所述的方法而被製得。該後生元提取物可被拿來與益生菌、益生元(prebiotics)或合生元(synbiotics)組合使用。

本發明亦提供一種食品產品，其包含有一如上所述的後生元提取物。

依據本發明，該後生元提取物可使用一具有本技藝中的通常技術者所熟知的標準技術而被添加至一可食性材料(edible material)中，例如，它可直接地被添加至可食性材料內，或者它可被用於製備一中間組成物(intermediate composition)[諸如，食品添加物(food additive)或預混料(premix)]，該中間組成物隨後被添加至可食性材料內。

依據本發明，該食品產品的種類包括，但不限於：發酵食品(fermented food)、加工食品(processed food)、健康食品(health foods)以及膳食補充品(dietary supplements)。

依據本發明，該食品產品可進一步包含有至少一種益生性微生物(probiotic microbes)。如本文中所使用的，術語“益生性微生物”與“益生菌(probiotics)”可被交換地使用，並且意指活性微生物(live microorganisms)的製劑(preparations)，當被一人類或動物攝食(ingested)之後，該等微生物可以維持(remain)並存活在胃腸道之中，而且能夠發揮所欲的效用(例如，腸道菌相調整的效用、預防或治療的效用等)。

適用於本發明的益生性微生物包括，但不限於：乳桿菌屬物種、腸球菌屬物種、鏈球菌屬物種、小球菌屬物種、芽孢桿菌屬物種、雙歧桿菌屬物種、酵母菌(yeasts)，以及它們的組合。

此外，依據本發明的食品產品可進一步包含其他額外的食品添加物，這包括，但不限於：澱粉(starch)、糊精(dextrin)、乳糖(lactose)、玉米粉(maize flour)、米麵粉(rice flour)、磷酸三鈣(tricalcium phosphate)、二氧化矽(silicon dioxide)、硬脂酸鎂(magnesium stearate)、碳酸鈣(calcium carbonate)、葡萄糖、蔗糖(sucrose)、果糖(fructose)、糖醇(sugar alcohol)、寡醣(oligosaccharide)、代糖(sugar substitute)、果汁粉(fruit juice powder)、酵母粉(yeast powder)、脫脂乳粉(nonfat dry milk)、酪蛋白(casein)、乳清蛋白(whey protein)、胺基酸(amino acid)、檸檬酸(citric acid)、檸檬酸鹽(citrate)、乳酸(lactic acid)、乳酸鹽(lactate)以及核苷酸(nucleotide)。

此外，依據本發明的後生元提取物亦可被製備成一藥學組成物的形式。

依據本發明，該藥學組成物可利用熟習此項技藝者所詳知的技術而被製造成一適合於非經腸道投藥(parenteral administration)、口服投藥(oral administration)或局部投藥(topical administration)之劑型(dosage form)，這包括，但不限於：無菌的粉末(aseptic powder)、錠劑(tablet)、片劑(troche)、口含錠(lozenge)、丸劑(pellet)、膠囊(capsule)、分散性粉末(dispersible powder)或細顆粒(granule)、溶液、懸浮液(suspension)、乳劑(emulsion)、糖漿(syrup)、酏劑(elixir)、濃漿(slurry)、凝膠(jelly)以及類似之物。

依據本發明，該藥學組成物可進一步包含有一被廣泛地使用於藥物製造技術之藥學上可接受的載劑(pharmaceutically acceptable carrier)。例如，該藥學上可接受的載劑可包含一或多種選自於下列的試劑：溶劑(solvent)、緩衝液(buffer)、乳化劑(emulsifier)、懸浮劑(suspending agent)、分解劑(decomposer)、崩解劑(disintegrating agent)、分散劑(dispersing agent)、黏結劑(binding agent)、賦形劑(excipient)、安定劑(stabilizing agent)、螯合劑(chelating agent)、稀釋劑(diluent)、膠凝劑(gelling agent)、防腐劑(preservative)、充填劑(filler)、潤濕劑(wetting agent)、潤滑劑(lubricant)、吸收延遲劑(absorption delaying agent)、脂質體(liposome)以及類似之物。有關這些試劑的選用與數量是落在熟習此項技術之人士的專業素養與例行技術範疇內。

本發明亦提供一種如上所述的後生元提取物供應用於製備一用來抑制生物膜形成(biofilm formation)之組成物的用途。此外，本發明亦提供一種用來抑制生物膜形成的方法，其包括對一有此需要的個體或物件(object)施用如上所述的後生元提取物。

如本文中所使用的，術語“生物膜形成(biofilm formation)”意指微生物附著於一表面上並隨後發展成多層細胞。

如本文中所使用的，術語“抑制(inhibition)”或“抑制(inhibiting)”意指減少生物膜相關的微生物形成和/或生長。該微生物可包括革蘭氏陽性(gram-positive)或革蘭氏陰性(gram-negative)的細菌、酵母菌以及真菌。

依據本發明，該物件可以是醫療裝置與儀器、敷料(dressing)、繃帶(bandage)、食品生產、加工與包裝的檯面、消費品、水處理系統、輸水系統，或通風系統。

在某些具體例中，該物件可以是一選自於由下列所構成之群組：牙科用儀器、假牙、口護套(mouth guard)、可黏性繃帶、乳製品生產線、水管、油管、氣管、HVAC系統的組件、水處理設備的組件、真空吸塵器的組件、集塵袋與濾網、空氣過濾器、冷卻塔的組件、玩具、窗戶、門、窗框、門框、浴室與廚房的瓷磚、醫院的桌椅與床、動物用水盤、洗衣機、洗碗機、毛巾、碟、盤、碗、器皿、杯子、刀、叉、匙、玻璃、砧板、餐具乾燥架、食物與飲料的儲存容器、食品工業加工儀器、化妝品容器、浴室裝置、渦流按摩浴缸(whirlpool bathtub)、水槽、馬桶、游泳池、魚池、水盆、栽植機(planter)、園藝膠管、乳製品生產線中的過濾器、用於食品與飲料製造的管線、游泳池的襯墊(liner)、撇渣器(skimmer)與過濾器、水龍頭與出水管、加濕器(humidifier)及其濾網、熱水盆管線及其過濾器、戶外池塘、洗衣機與洗碗機的襯墊、垃圾袋，以及檯面。

依據本發明，該生物膜形成可以是由一選自於由下列所構成之群組的微生物所造成的：曲狀桿菌屬物種( Campylobacterspp.)、產氣莢膜芽胞梭菌( Clostridium perfringens)、大腸桿菌( Escherichia coli)、單核球增多性李氏菌( Listeria monocytogenes)、霍亂弧菌( Vibrio cholerae)、沙門桿菌屬物種( Salmonellaspp.)、葡萄球菌屬物種( Staphylococcusspp.)，以及它們的組合。

較佳地，該微生物是選自於由下列所構成之群組中的葡萄球菌屬物種：金黃色葡萄球菌( Staphylococcus aureus)、表皮葡萄球菌( Staphylococcus epidermidis)、無乳葡萄球菌( Staphylococcus agalactiae)、腐生性葡萄球菌( Staphylococcus saprophyticus)、溶血葡萄球菌( Staphylococcus haemolyticus)、沃氏葡萄球菌( Staphylococcus warneri)、人葡萄球菌( Staphylococcus hominis)、模仿葡萄球菌( Staphylococcus simulans)、路鄧葡萄球菌( Staphylococcus lugdunensis)、施氏葡萄球菌( Staphylococcus schleiferi)、頭狀葡萄球菌( Staphylococcus capitis)、山羊葡萄球菌( Staphylococcus caprae)、巴氏葡萄球菌( Staphylococcus pasteuri)、科氏葡萄球菌( Staphylococcus cohnii)、木糖葡萄球菌( Staphylococcus xylosus)、解糖葡萄球菌( Staphylococcus saccharolyticus)，以及它們的組合。

本發明亦提供一種如上所述的後生元提取物供應用於製備一用來促進腸道健康之組成物的用途。此外，本發明亦提供一種用來促進腸道健康的方法，其包括對一有此需要的個體投予如上所述的後生元提取物。

如本文中所使用的，術語“促進腸道健康(improving gut health)”意指使用該後生元提取物治療後的個體表現出健康的腸道菌相，其有益於人類或動物的健康，並且適用於維持和/或改善該個體的消化(digestion)。這種健康的腸道菌相最終會有關於適當的營養吸收(nutrient absorption)、適當的生長、少絞痛(less colic)、少感染(less infection)、少腹瀉(less diarrhea)，以及最佳的腸道健康。

依據本發明，該腸道健康的促進包括下列至少一者：提升益生菌的生長、提升腸道免疫以及恢復健康的腸道菌相。較佳地，該益生菌是選自於由下列所構成之群組：乳桿菌屬物種(諸如植物乳桿菌、嗜酸乳桿菌、乾酪乳桿菌、鼠李糖乳桿菌以及副乾酪乳桿菌)、雙歧桿菌屬物種(諸如兩歧雙歧桿菌、乳雙歧桿菌、長雙歧桿菌、短雙歧桿菌以及動物雙歧桿菌)、芽孢桿菌屬物種(諸如凝結芽孢桿菌、枯草芽孢桿菌以及克勞氏芽孢桿菌)、鏈球菌屬物種、乳球菌屬物種，以及它們的組合。 較佳實施例之詳細說明

本發明將就下面的實施例來做進一步說明，但應瞭解的是，該等實施例僅是供例示說明用，而不應被解釋為本發明的實施上的限制。 實施例 一般實驗材料： 1.  在下面的實施例中所使用的益生菌菌株是得自於國立中興大學食品暨應用生物科技學系(Department of Food Science and Biotechnology at National Chung Hsing University)的微生物研究室，並且已被整合於下面的表1中。 表1.   各個益生菌菌株

菌屬	菌株
乳桿菌 ( Lactobacillus)	植物乳桿菌CB102 ( Lactobacillus plantarumCB102)
嗜酸乳桿菌JCM1132 ( Lactobacillus acidophilusJCM1132)
乾酪乳桿菌JCM1134 ( Lactobacillus caseiJCM1134)
雙歧桿菌 ( Bifidobacterium)	兩歧雙歧桿菌JCM1255 ( Bifidobacterium bifidumJCM1255)
乳雙歧桿菌JCM10602 ( Bifidobacterium lactisJCM10602)
長雙歧桿菌CB108 ( Bifidobacterium longumCB108)
芽孢桿菌 ( Bacillus)	凝結芽孢桿菌CB106 ( Bacillus coagulansCB106)

2.  人類結腸腺癌細胞株(human colon adenocarcinoma cell line) Caco-2的來源與培養：

在下面實施例中所使用的人類結腸腺癌細胞株Caco-2是得自於台灣的財團法人食品工業發展研究所(Food Industry Research and Development Institute, FIRDI)的生物資源保存及研究中心(Bioresource Collection and Research Center, BCRC)。

Caco-2細胞被培養於含有杜貝可氏改良的依格氏培養基(Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium, DMEM)(Thermo Fisher Scientific)[添加有10%胎牛血清(fetal bovine serum, FBS)]的10 cm培養皿(petri dish)中，並在培養條件被設定為37℃、5% CO ₂的培養箱中進行培養。之後，大約每隔2-3天更換新鮮的培養基。當細胞密度達到約80-90%匯聚(confluence)時，進行繼代培養(subculture)步驟如下：移除培養基並以磷酸鹽緩衝生理鹽水(phosphate buffered saline, PBS)(pH 7.4)來清洗細胞，接著加入胰蛋白酶-EDTA (trypsin-EDTA)以使細胞自培養皿的底部脫離。之後，加入新鮮的培養基來中和胰蛋白酶的活性並以定量吸管(pipette)反覆地吸沖培養基以充分打散細胞，然後將所形成的細胞懸浮液分配到新的培養皿中，並在培養條件被設定為37℃、5% CO ₂的培養箱中進行培養。 一般實驗方法： 1.  轉變生長因子-β (transforming growth factor-β, TGF-β)的含量測定：

在下面的實施例中，TGF-β含量是依據製造商的操作指南來使用ELISA套組(廠牌為BD Biosciences，貨號為559119)進行酵素結合免疫吸附分析法(enzyme-linked immunosorbent assay, ELISA)而被測定。 實施例 1. 製備本發明之後生元提取物 (postbiotics extract) 實驗方法：

首先，將上面“一般實驗材料”中的植物乳桿菌CB102、嗜酸乳桿菌JCM1132、乾酪乳桿菌JCM1134、兩歧雙歧桿菌JCM1255、乳雙歧桿菌JCM10602以及長雙歧桿菌CB108分別接種至MRS培養基(商品名為BD Difco Lactobacilli MRS Broth，貨號為DF0881-17-5)中，並於37℃環境下培養歷時16小時。接著，使用高溫短時間殺菌法(high temperature short time, HTST)(73±2℃，15秒)來對各個培養物進行熱去活。

接著，經熱去活的各個培養物在25℃下以10,000 rpm進行離心歷時15分鐘，繼而倒除上澄液，所得到的沉澱物(pellets)被拿來進行噴霧乾燥，藉此而得到各個菌株的乾燥菌粉。

各個乾燥菌粉是分別依照下面所示的步驟來進行一前處理：首先，將適量之等電點(isoelectric point)為pH 4.4的乳清蛋白(whey protein)(廠牌為NZMP，貨號為WPC 80)溶解於水中，以配製成濃度為10% (w/v, g/L)的乳清蛋白溶液，繼而以食品級碳酸鈉來將該溶液的pH值調整至7.5。在持續攪拌下，將適量的乾燥菌粉散浮於該溶液中至最終濃度為5% (w/v, g/L)，接著，緩慢地加入適量之等電點為pH 5.2的糊精(dextrin)(廠牌為ZHUCHENG DONGXIAO，貨號為Maltodextrin DE8-10)至濃度為6% (w/v, g/L)，同時緩慢地加入乳酸來將該溶液的pH值調整至約為4.8，當pH為4.8時，乳清蛋白以及糊精會達到電荷中和(charge neutralization)而析出。之後，持續攪拌直到沉澱物不再增加為止。之後，使用一孔徑為25 μm的濾紙來進行過濾以分離並收取沉澱物，繼而將所得到的沉澱物拿來進行噴霧乾燥，藉此而得到經前處理的菌粉。

各個菌株之經前處理的菌粉分別被拿來進行細胞壁分離提取(cell wall isolation and extraction)，其大體上是參考Pei-Jun Tian et al. (2015), Int. J. Mol. Sci., 16 (8): 20033–20049當中所述的方法來進行，並略作修改。簡言之，秤取50 mg之經前處理的菌粉，繼而加入1 mL的10%乳酸(lactic acid)並於80℃的水浴槽中加熱歷時60分鐘。之後，於10,000 g下進行離心歷時15分鐘，然後移除上澄液並加入1 mL之混合溶劑[含有4：10 (v/v)的0.5 M檸檬酸鹽溶液(citrate solution)以及乙醇，pH值為4.6]，繼而靜置隔夜。之後，於10,000 g下進行離心歷時20分鐘，然後移除上澄液並使用95%乙醇來清洗所形成的沉澱物數次，接著置於80℃的乾浴槽中加熱歷時約40分鐘以將乙醇完全移除，藉此而得到本發明之後生元提取物。

另外，各個菌株之未經前處理的菌粉亦被拿來進行相同的細胞壁分離提取處理以獲得後生元提取物(下稱習知的後生元提取物)。 實施例 2. 本發明之後生元提取物的成份分析

依據上面實施例1所得到的習知的後生元提取物以及本發明的後生元提取物被拿來進行下面的提取率的測定(determination of extraction rate)、蛋白質含量的測定(determination of protein content)以及蛋白質電泳分析(protein electrophoresis analysis)。 實驗方法： A. 提取率的測定：

提取率是藉由將上面實施例1中所得到的後生元提取物的重量代入下列公式(I)中而被計算出： 公式 (I) ： A ＝ B/50×100其中，A＝提取率(%) B＝後生元提取物之重量(mg) B. 蛋白質含量的測定：

蛋白質含量的測定是藉由將上面實施例1中所得到的後生元提取物溶解於磷酸緩衝溶液(含有8 g/L的NaCl、0.2 g/L的KCl、1.44 g/L的Na ₂HPO ₄以及0.24 g/L的KH ₂PO ₄，pH值為6.2)中並且依據製造商的操作指南使用Pierce™ BCA蛋白質分析套組(Pierce™ BCA Protein Assay Kit)(廠牌為Thermo Scientific，貨號為23225)來進行。 C. 蛋白質電泳分析：

對上面實施例1中所得到的後生元提取物各取1 g並分別溶解於20 mL的水中，接著使用Bio-Rad電泳系統並採用熟習此項技藝者所詳知且慣用的技術來進行SDS-聚丙烯醯胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis, SDS-PAGE)分析。 結果： A. 提取率的測定：

下面表2顯示依據本發明之含前處理的方法的提取率以及不含前處理的習知方法所具者。 表2.   依據本發明的方法與習知方法的提取率

菌株	提取率
本發明	習知
植物乳桿菌CB102	43.34%	21.40%
嗜酸乳桿菌JCM1132	44.14%	20.54%
乾酪乳桿菌JCM1134	43.94%	21.11%
兩歧雙歧桿菌JCM1255	30.97%	15.44%
乳雙歧桿菌JCM10602	31.24%	15.83%
長雙歧桿菌CB108	31.82%	16.75%

從表2可見，相較於習知方法，依據本發明的方法，將經前處理的菌粉拿來進行細胞壁分離提取可以獲得較高的後生元提取物之提取率。 B. 蛋白質含量的測定：

下面表3顯示依據本發明的方法與習知方法所得到的後生元提取物之蛋白質含量。 表3.  依據本發明的方法與習知方法所得到的後生元提取物之蛋白質含量

菌株	蛋白質含量
本發明	習知
植物乳桿菌CB102	0.39%	0.20%
嗜酸乳桿菌JCM1132	0.41%	0.21%
乾酪乳桿菌JCM1134	0.40%	0.20%
兩歧雙歧桿菌JCM1255	1.40%	0.69%
乳雙歧桿菌JCM10602	1.38%	0.67%
長雙歧桿菌CB108	1.35%	0.70%

從表3可見，本發明的後生元提取物中的蛋白質含量是明顯高於習知的後生元提取物所具者。 C. 蛋白質電泳分析：

圖1是一電泳膠片圖，它顯示本發明的後生元提取物與習知的後生元提取物的蛋白質電泳分析結果。從圖1可見，本發明的後生元提取物的蛋白質帶(protein band)是明顯多於習知的後生元提取物所具者。申請人據此而認為，依據本發明的方法所得到的後生元提取物含有較多的細胞壁成分，例如肽聚醣(peptidoglycan)、脂壁酸(lipoteichoic acid)、磷壁酸(teichoic acid)、醣蛋白(glycoprotein)以及蛋白聚醣(proteoglycan)等。

綜合以上的實驗結果可發現，本發明的方法能夠有效地從益生菌的細胞壁中提取出後生元提取物，並且由此所得到的後生元提取物含有較多的細胞壁蛋白質(cell wall protein)。 實施例 3. 本發明之後生元提取物在抑制金黃色葡萄球菌 ( Staphylococcus aureus) 的生物膜形成 (biofilm formation) 上的效用評估 實驗方法：

首先，將金黃色葡萄球菌接種至TSB培養基(商品名為BD Bacto Tryptic Soy Broth，貨號為DF0370-17-3)中並在37℃的條件下進行培養歷時16小時。接著，將所增殖的金黃色葡萄球菌分成1個對照組、8個比較實驗組(亦即比較實驗組L-1至L-4以及比較實驗組B-1至B-4)以及8個實驗組(亦即實驗組L-1至L-4以及實驗組B-1至B-4)，各組以1×10 ¹⁰CFU/L的菌數分別接種於96-井培養盤的各井中。接著依據下面表4所示者，將依據上面實施例1所得到的本發明的植物乳桿菌以及長雙歧桿菌的後生元提取物與習知的植物乳桿菌以及長雙歧桿菌的後生元提取物分別添加至各組中。 表4.   各組培養物所具有之後生元提取物的最終濃度

組別	提取物	最終濃度(mg/L)
對照組	－	0
比較實驗組L-1	習知的植物乳桿菌的後生元提取物	25
比較實驗組L-2	50
比較實驗組L-3	100
比較實驗組L-4	200
實驗組L-1	本發明的植物乳桿菌的後生元提取物	25
實驗組L-2	50
實驗組L-3	100
實驗組L-4	200
比較實驗組B-1	習知的長雙歧桿菌的後生元提取物	25
比較實驗組B-2	50
比較實驗組B-3	100
比較實驗組B-4	200
實驗組B-1	本發明的長雙歧桿菌的後生元提取物	25
實驗組B-2	50
實驗組B-3	100
實驗組B-4	200

各組培養物在37℃的條件下培養歷時24小時之後，將各井中的培養基去除，繼而使用PBS來稍微清洗各井數次，俾以將未形成生物膜之懸浮的金黃色葡萄球菌去除。接著，添加100 μL的95%乙醇至各井中歷時10分鐘俾以固定生物膜，繼而添加100 μL的0.1%結晶紫來進行染色歷時15分鐘。之後，將各井中的溶液去除，繼而使用PBS來清洗各井數次。添加200 μL的10%冰醋酸至各井中歷時10分鐘以溶解結晶紫，繼而以分光光度計測量590 nm的吸光值(OD ₅₉₀)，抑制率是藉由將各組所測得的吸光值(OD ₅₉₀)代入下列公式(II)中而被計算出： 公式 (II) ： C=(1 － D/E)×100其中：C＝抑制率(%) D＝各組所測得的OD ₅₉₀吸光值 E＝對照組所測得的OD ₅₉₀吸光值 結果：

下面表5顯示各組後生元提取物對於金黃色葡萄球菌的生物膜形成的抑制率。 表5.  各組後生元提取物對於金黃色葡萄球菌的生物膜形成的抑制率

組別	提取物	抑制率
對照組	－	0%
比較實驗組L-1	習知的植物乳桿菌的後生元提取物	6.9%
比較實驗組L-2	21.3%
比較實驗組L-3	40.5%
比較實驗組L-4	41.2%
實驗組L-1	本發明的植物乳桿菌的後生元提取物	10.2%
實驗組L-2	30.6%
實驗組L-3	61.2%
實驗組L-4	63.2%
比較實驗組B-1	習知的長雙歧桿菌的後生元提取物	0.7%
比較實驗組B-2	8.1%
比較實驗組B-3	19.7%
比較實驗組B-4	29.1%
實驗組B-1	本發明的長雙歧桿菌的後生元提取物	1.0%
實驗組B-2	10.2%
實驗組B-3	27.5%
實驗組B-4	36.6%

從表5可見，本發明的植物乳桿菌的後生元提取物對於金黃色葡萄球菌的生物膜形成的抑制率是明顯高於習知的植物乳桿菌的後生元提取物所具者。此外，本發明的長雙歧桿菌的後生元提取物亦展現類似的優異效用。這個實驗結果顯示：依據本發明的方法所得到的後生元提取物能有效地抑制生物膜形成。 實施例 4. 本發明之後生 元提取物在恢復健康的腸道菌相 (restoring healthy gut flora) 上的效用評估 實驗方法：

首先，將上面“一般實驗材料”中的植物乳桿菌CB102、嗜酸乳桿菌JCM1132、乾酪乳桿菌JCM1134、兩歧雙歧桿菌JCM1255、乳雙歧桿菌JCM10602、長雙歧桿菌CB108以及凝結芽孢桿菌CB106的每一者分別與金黃色葡萄球菌一起接種至TSB培養基中，繼而置於培養箱(37℃，5% CO ₂)中進行共培養(co-culture)歷時8小時，接著將所得到的共培養物(coculture)各自分成1個對照組、1個比較實驗組以及2個實驗組(亦即實驗組1以及2)。比較實驗組的培養物有被加入適量的菊糖(inulin)(購自於Cosucra)至最終濃度為5 g/L；實驗組1的培養物被加入適量的依據上面實施例1所得到的本發明的植物乳桿菌的後生元提取物至最終濃度為100 mg/L；實驗組2的培養物被加入適量的依據上面實施例1所得到的本發明的長雙歧桿菌的後生元提取物至最終濃度為200 mg/L；至於對照組的培養物則不作任何處理。

之後，各組共培養物被接種至TSB培養基中並在37℃的條件下來進行培養歷時8小時。接著，藉由平板菌落計數法(flat colony counting method)並使用MRS培養基來計算出各組共培養物中的益生菌菌數。 結果：

下面表6顯示各組共培養物中的益生菌增長菌數。 表6.   各組共培養物中的益生菌增長菌數

益生菌	增長菌數(log CFU/mL)
對照組	比較實驗組	實驗組1	實驗組2
嗜酸乳桿菌JCM1132	0.8	1.1	2.0	1.3
乾酪乳桿菌JCM1134	0.5	0.8	1.7	1.2
植物乳桿菌CB102	0.4	0.7	1.7	1.2
乳雙歧桿菌JCM10602	0.3	0.6	1.8	1.2
兩歧雙歧桿菌JCM1255	0.1	0.2	0.8	0.5
長雙歧桿菌CB108	0.1	0.3	0.5	0.4
凝結芽孢桿菌CB106	0.2	0.2	0.6	0.4

從表6可見，實驗組1與2的益生菌增長菌數皆是明顯高於比較實驗組與對照組所具者，這表示依據本發明的方法所得到的後生元提取物能減緩金黃色葡萄球菌對於益生菌生長的抑制作用，進而提升益生菌的菌數。因此，本發明之後生元提取物被預期具有恢復健康的腸道菌相的效用。 實施例 5. 本發明之後生元提取物在調節腸道免疫 (modulating gut immunity) 上的效用評估 實驗方法： A. 後生元提取物對於 Caco-2 細胞的 TGF-β 分泌量之影響：

首先，將依據上面“一般實驗材料”的第2項來進行繼代培養的Caco-2細胞分成25組，其中包括1個對照組、12個比較實驗組(亦即比較實驗組L-1至L-6以及比較實驗組B-1至B-6)以及12個實驗組(亦即實驗組L-1至L-6以及實驗組B-1至B-6)。將各組的Caco-2細胞以一為1×10 ⁴細胞/井的數量分別培養於含有200 μL的DMEM培養基的96-井培養盤的各井中，並在培養箱(37℃、5% CO ₂)中進行培養歷時24小時。接著，將各組的細胞培養物分別更換以新鮮的培養基，並依據下面表7所示者，將依據上面實施例1所得到的本發明的植物乳桿菌以及長雙歧桿菌的後生元提取物與習知的植物乳桿菌以及長雙歧桿菌的後生元提取物分別添加至各組中。 表7.   各組培養物所具有之後生元提取物的最終濃度

組別	提取物	最終濃度(mg/L)
對照組	－	0
比較實驗組L-1	習知的植物乳桿菌的後生元提取物	2.5
比較實驗組L-2	5
比較實驗組L-3	25
比較實驗組L-4	50
比較實驗組L-5	100
比較實驗組L-6	200
實驗組L-1	本發明的植物乳桿菌的後生元提取物	2.5
實驗組L-2	5
實驗組L-3	25
實驗組L-4	50
實驗組L-5	100
實驗組L-6	200
比較實驗組B-1	習知的長雙歧桿菌的後生元提取物	2.5
比較實驗組B-2	5
比較實驗組B-3	25
比較實驗組B-4	50
比較實驗組B-5	100
比較實驗組B-6	200
實驗組B-1	本發明的長雙歧桿菌的後生元提取物	2.5
實驗組B-2	5
實驗組B-3	25
實驗組B-4	50
實驗組B-5	100
實驗組B-6	200

各組培養物在37℃的條件下培養歷時24小時之後，依照上面“一般實驗方法”的第1項「TGF-β的含量測定」當中所述的方法來測定TGF-β的含量。 B. 在胃酸的存在下後生元提取物對於 Caco-2 細胞的 TGF-β 分泌量之影響：

首先，將人工胃酸(artificial gastric acid)(含有0.137 M的氯化鈉、0.0027 M的氯化鉀、0.01 M的磷酸氫二鈉以及0.0018 M的磷酸二氫鈉，pH值為2)與依據上面實施例1所得到的本發明的植物乳桿菌以及長雙歧桿菌的後生元提取物以及在上面實施例1中所使用的6種益生菌分別進行混合，並在37℃的條件下作用歷時3小時，藉此而得到2種經胃酸處理的後生元提取物以及6種經胃酸處理的益生菌。

接著，將依據上面“一般實驗材料”的第2項來進行繼代培養的Caco-2細胞分成16組，其中包括8個實驗組(亦即實驗組1至8)以及8個比較實驗組(亦即比較實驗組1至8)。將各組的Caco-2細胞以一為1×10 ⁴細胞/井的數量分別培養於含有200 μL的DMEM培養基的96-井培養盤的各井中，並在培養箱(37℃、5% CO ₂)中進行培養歷時24小時。接著，將各組的細胞培養物分別更換以新鮮的培養基，並依據下面表8所示者，將經胃酸處理的後生元提取物與益生菌、依據上面實施例1所得到的本發明的植物乳桿菌以及長雙歧桿菌的後生元提取物以及在上面實施例1中所使用的6種益生菌分別添加至各組中。 表8.   各組培養物所具有之後生元提取物或益生菌菌株的最終濃度

組別	益生菌	提取物	胃酸處理	濃度
比較實驗組1	嗜酸乳桿菌	－	－	1×10 10CFU/L
實驗組1	＋
比較實驗組2	乾酪乳桿菌	－	－
實驗組2	＋
比較實驗組3	植物乳桿菌	－	－
實驗組3	＋
比較實驗組4	乳雙歧桿菌	－	－
實驗組4	＋
比較實驗組5	兩歧雙歧桿菌	－	－
實驗組5	＋
比較實驗組6	長雙歧桿菌	－	－
實驗組6	＋
比較實驗組7	－	本發明的植物乳桿菌的後生元提取物	－	100 mg/L
實驗組7	＋
比較實驗組8	－	本發明的長雙歧桿菌的後生元提取物	－
實驗組8	＋

各組培養物在37℃的條件下培養歷時24小時之後，依照上面“一般實驗方法”的第1項「TGF-β的含量測定」當中所述的方法來測定TGF-β的含量。 C. 後生元提取物與益生菌的組合使用對於 Caco-2 細胞的 TGF-β 分泌量之影響：

首先，將依據上面“一般實驗材料”的第2項來進行繼代培養的Caco-2細胞分成21組，其中包括7個比較實驗組(亦即比較實驗組1至7)以及14個實驗組(亦即實驗組1-L至7-L以及實驗組1-B至7-B)。將各組的Caco-2細胞以一為1×10 ⁴細胞/井的數量分別培養於含有200 μL的DMEM培養基的96-井培養盤的各井中，並在培養箱(37℃、5% CO ₂)中進行培養歷時24小時。接著，將各組的細胞培養物分別更換以新鮮的培養基，並依據下面表9所示者，將上面“一般實驗材料”中的7種益生菌以及依據上面實施例1所得到的本發明的植物乳桿菌以及長雙歧桿菌的後生元提取物分別添加至各組中。 表9.   各組培養物所具有之後生元提取物或益生菌菌株

組別	益生菌 (1×10 10CFU/L)	本發明的植物乳桿菌的後生元提取物 (100 mg/L)	本發明的長雙歧桿菌的後生元提取物 (100 mg/L)
比較實驗組1	嗜酸乳桿菌	－	－
實驗組1-L	＋	－
實驗組1-B	－	＋
比較實驗組2	乾酪乳桿菌	－	－
實驗組2-L	＋	－
實驗組2-B	－	＋
比較實驗組3	植物乳桿菌	－	－
實驗組3-L	＋	－
實驗組3-B	－	＋
比較實驗組4	乳雙歧桿菌	－	－
實驗組4-L	＋	－
實驗組4-B	－	＋
比較實驗組5	兩歧雙歧桿菌	－	－
實驗組5-L	＋	－
實驗組5-B	－	＋
比較實驗組6	長雙歧桿菌	－	－
實驗組6-L	＋	－
實驗組6-B	－	＋
比較實驗組7	凝結芽孢桿菌	－	－
實驗組7-L	＋	－
實驗組7-B	－	＋

各組培養物在37℃的條件下培養歷時24小時之後，依照上面“一般實驗方法”的第1項「TGF-β的含量測定」當中所述的方法來測定TGF-β的含量。 結果： A. 後生元提取物對於 Caco-2 細胞的 TGF-β 分泌量之影響：

下面表10顯示各組培養物所測得的TGF-β含量。 表10. 各組培養物的TGF-β含量

組別	TGF-β (pg/mL)	組別	TGF-β (pg/mL)
對照組	5.1	比較實驗組B-1	10.1
比較實驗組L-1	10.4	比較實驗組B-2	10.2
比較實驗組L-2	25.6	比較實驗組B-3	37.4
比較實驗組L-3	42.6	比較實驗組B-4	59.1
比較實驗組L-4	56.4	比較實驗組B-5	76.8
比較實驗組L-5	58.5	比較實驗組B-6	77.6
比較實驗組L-6	58.7	實驗組B-1	20.7
實驗組L-1	20.8	實驗組B-2	20.8
實驗組L-2	48.5	實驗組B-3	75.2
實驗組L-3	81.2	實驗組B-4	119.8
實驗組L-4	102.0	實驗組B-5	152.5
實驗組L-5	103.5	實驗組B-6	153.9
實驗組L-6	103.6

從表10可見，本發明的植物乳桿菌的後生元提取物對於Caco-2細胞的TGF-β分泌量之促進效用是明顯優於習知的植物乳桿菌的後生元提取物所具者。此外，本發明的長雙歧桿菌的後生元提取物亦展現類似的優異效用。這個實驗結果顯示：依據本發明的方法所得到的後生元提取物能有效地促進Caco-2細胞分泌TGF-β。

另外，申請人進一步將本發明的植物乳桿菌以及長雙歧桿菌的後生元提取物置在40℃下存放歷時6個月後來進行相同的實驗，亦有觀察到類似的效用(數據未顯示)，這表示依據本發明的方法所得到的後生元提取物具有優異的儲存安定性。 B. 在胃酸的存在下後生元提取物對於 Caco-2 細胞的 TGF-β 分泌量之影響

下面表11顯示各組培養物所測得的TGF-β含量。 表11. 各組培養物的TGF-β含量

組別	TGF-β (pg/mL)	組別	TGF-β (pg/mL)
比較實驗組1	62.2	實驗組1	20.1
比較實驗組2	112.1	實驗組2	85.9
比較實驗組3	40.6	實驗組3	31.1
比較實驗組4	101.1	實驗組4	23.6
比較實驗組5	143.6	實驗組5	53.4
比較實驗組6	131.7	實驗組6	42.2
比較實驗組7	103.5	實驗組7	85.5
比較實驗組8	154.2	實驗組8	140.3

從表11可見，各個實驗組的TGF-β含量是明顯低於對應的比較實驗組所具者，這表示胃酸會抑制後生元提取物以及益生菌在促進Caco-2細胞分泌TGF-β上的能力。然而，實驗組7與8的TGF-β含量降低情形是顯著低於實驗組1至6所具者，這表示：相較於益生菌，依據本發明的方法所得到的後生元提取物在促進Caco-2細胞分泌TGF-β的能力上較不容易受到胃酸的影響，而具有良好的胃酸耐受性。 C. 後生元提取物與益生菌的組合使用對於 Caco-2 細胞的 TGF-β 分泌量之影響

下面表12顯示各組培養物所測得的TGF-β含量。 表12. 各組培養物的TGF-β含量

組別	TGF-β (pg/mL)	組別	TGF-β (pg/mL)
比較實驗組1	20.1	比較實驗組5	53.4
實驗組1-L	100.7	實驗組5-L	126.7
實驗組1-B	155.7	實驗組5-B	181.7
比較實驗組2	85.9	比較實驗組6	42.2
實驗組2-L	152.0	實驗組6-L	117.9
實驗組2-B	207.0	實驗組6-B	172.9
比較實驗組3	31.1	比較實驗組7	52.5
實驗組3-L	109.3	實驗組7-L	126.0
實驗組3-B	164.3	實驗組7-B	181.0
比較實驗組4	23.6
實驗組4-L	103.4
實驗組4-B	158.4

從表12可見，各個實驗組的TGF-β含量是明顯高於對應的比較實驗組所具者，這表示依據本發明的方法所得到的後生元提取物可以有效地提升益生菌在促進Caco-2細胞分泌TGF-β上的能力。

綜合以上各項實驗結果可知，本發明的方法能夠有效地從益生菌細胞壁中提取出後生元，且所製得的後生元提取物包含有較多含蛋白質的細胞組分，並且在抑制生物膜形成、促進益生菌生長以及促進Caco-2細胞分泌TGF-β上具有優異的效用，因而被預期能夠藉由恢復健康的腸道菌相以及改善腸道免疫力來促進腸道健康。另外，本發明的後生元提取物可與益生菌組合使用而不會對腸道產生不良的影響，且該後生元提取物具有絕佳的胃酸耐受性以及儲存安定性。因此，申請人認為：依據本發明的方法所得到的後生元提取物具有發展成為腸道保健產品的高潛力。

於本說明書中被引述之所有專利和文獻以其整體被併入本案作為參考資料。若有所衝突時，本案詳細說明(包含界定在內)將佔上風。

雖然本發明已參考上述特定的具體例被描述，明顯地在不背離本發明之範圍和精神之下可作出很多的修改和變化。因此意欲的是，本發明僅受如隨文檢附之申請專利範圍所示者之限制。

本發明的上述以及其它目的、特徵與優點，在參照以下的詳細說明與較佳實施例和隨文檢附的圖式後，將變得明顯，其中： 圖1是一電泳膠片圖，它顯示本發明的後生元提取物與習知的後生元提取物的蛋白質電泳分析結果。

Claims (9)

1. 一種用於製備一後生元提取物的方法，其包含有下列步驟：提供一第一物質以及一第二物質，其中該第一物質具有一範圍落在pH 1至pH 6內的第一等電點，該第二物質具有一範圍落在pH 4至pH 8內且高於該第一等電點的第二等電點，該第二等電點與該第一等電點具有一落在0.5至3之間的pH差值；令該第一物質以及一益生菌混合於一具有一高於該第二等電點之pH值的水中，而得到一混合物，其中該益生菌是乳桿菌目(Lactobacillales)和/或雙歧桿菌目(Bifidobacteriales)的物種；將該第二物質添加至該混合物中，繼而調整該混合物的pH值，而使得該混合物的pH值落在該第一等電點與該第二等電點之間，而使得沉澱物被形成；以及將該沉澱物拿來進行一細胞壁分離提取處理，藉此而得到該後生元提取物。
2. 如請求項1的方法，其中該第一物質是選自於由下列所構成之群組：脫脂乳粉、酪蛋白、乳清蛋白、大豆蛋白、豌豆蛋白、雞蛋蛋白、米蛋白、水解蛋白、玉米蛋白、小麥蛋白、大麥蛋白、支鏈胺基酸、明膠、膠原蛋白、胺基酸、殼聚醣、殼寡糖，以及它們的組合。
3. 如請求項1的方法，其中該第二物質是選自於由下列所構成之群組：海藻酸鈉、洋菜膠、鹿角菜膠、果膠、阿 拉伯膠、三仙膠、刺槐豆膠、澱粉、海藻糖、糊精、糖漿、關華豆膠、魔芋精粉、植物纖維、合成纖維、半合成纖維，以及它們的組合。
4. 如請求項1的方法，其中該益生菌是選自於由下列所構成之群組：鏈球菌屬物種、乳球菌屬物種、營養缺陷菌屬物種、氣球菌屬物種、肉食桿菌屬物種、腸球菌屬物種、乳桿菌屬物種、腸膜明串珠菌屬物種、酒球菌屬物種、小球菌屬物種、四聯球菌屬物種、徘徊球菌屬物種、魏斯氏菌屬物種、雙歧桿菌屬物種、片球菌屬物種，以及它們的組合。
5. 一種後生元提取物，它是藉由一如請求項1至4中任一項的方法而被製得。
6. 一種食品產品，其包含有一如請求項5的後生元提取物。
7. 一種如請求項5的後生元提取物供應用於製備一用來抑制金黃色葡萄球菌的生物膜形成之組成物的用途。
8. 一種如請求項5的後生元提取物供應用於製備一用來促進腸道健康之組成物的用途。
9. 如請求項8的用途，其中，該腸道健康的促進包括下列至少一者：提升益生菌的生長、提升腸道免疫以及恢復健康的腸道菌相。

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