TWI565801B - 用於製備多醣纖維之新穎組成物 - Google Patents

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Description

用於製備多醣纖維之新穎組成物
本申請案為PCT申請案並根據35 U.S.C.§119(e)主張於2011年10月5日申請之美國臨時專利申請案序號61/543,423及於2011年10月5日申請之美國臨時專利申請案序號61/543,428之優先權權益。前述申請案之揭露以引用方式將其全體併入。
本發明係關於一種用於從在水及N-甲基嗎福林-N-氧化物的混合物中之聚(α(1→3)葡聚糖)溶液將聚(α(1→3)葡聚糖)溶液紡絲之方法及關於溶液本身。所採用的聚(α(1→3)葡聚糖)係藉由酵素的作用合成。
多醣自文明的曙光出現以來即為已知的，主要呈纖維素的形式，即藉由天然方法經由β(1→4)醣苷鍵從葡萄糖形成的聚合物；參見例如Applied Fibre Science,F.Happey,Ed.,Chapter 8,E.Atkins,Academic Press,New York,1979。眾多其他多醣聚合物亦揭露於其中。
在許多已知的多醣中只有纖維素作為纖維已達到商業顯著。具體而言，棉是天然產生纖維素的高純形式，在紡織應用上的有利屬性為所熟知的。
進一步已知纖維素在溶液中展現足夠的鏈伸長及主鏈剛性以形成液體結晶溶液；參見例如O'Brien美國專利第4,501,886號。現有技藝之教示建議足夠的多醣鏈伸長僅在β(1→4)鍵聯多醣中可達成及從主鏈幾何的 任何顯著偏差會使分子高寬比率降低至低於規律相形成所需。
最近葡聚糖聚合物，特徵在於α(1→3)醣苷鍵，已藉由將蔗糖水溶液與從唾液鏈球菌單離之GtfJ葡萄糖基轉移酶接觸而單離，Simpson等人，Microbiology，第141期，第1451-1460頁(1995)。α(1→3)-D-葡聚糖的高度結晶、高度定向、低分子量膜已製造用於x-射線繞射分析的目的，Ogawa等人，Fiber Diffraction Methods，47，第353-362頁(1980)。在Ogawa中，將不溶性葡聚糖聚合物乙醯化，使乙醯化的葡聚糖溶解於三氯甲烷中形成5%溶液及將溶液鑄造成膜。然後使該膜於150℃在甘油中經受拉伸，其將該膜定向並將其拉伸至溶液鑄造膜原始長度的6.5倍長度。在拉伸之後，使該膜去乙醯化並藉由在壓力容器中於140℃在過熱水中退火而結晶。在現有技藝中熟知將多醣曝露於如此熱的水溶液環境中導致鏈斷裂及分子量的損失以及機械性質的伴隨退化。
以葡萄糖為主的多醣及葡萄糖本身因為其在光合作用與代謝過程中的顯著角色而特別重要。纖維素及澱粉，兩者皆以聚脫水葡萄糖的分子鏈為主，是地球上最豐富的聚合物及具有重大的商業重要性。該聚合物提供在其整個生命週期為環境友善及為從可再生能源建構的材料及原料來源。
術語「葡聚糖」為技藝術語，其指稱包含β-D-葡萄糖單體單元之多醣，其以八種可能方式鍵聯，纖維素是一種葡聚糖。
在葡聚糖聚合物中，重複單體單元會按照匹配連接模式以各種組態鍵聯。當醛己醣環關閉形成半縮醛，匹配連接模式的本質一部分取決於環如何關閉。葡萄糖的開鏈形式(醛己醣)有四個不對稱中心(參見下文)。因此有24或16種可能的開鏈形式，D及L葡萄糖為其中二種。當環是關閉的時候，在C1上創造了新的不對稱中心，因此製造5個不對稱碳。取決於環如何關閉，對葡萄糖而言，在進一步縮合成聚合物後可形成α(1→4)-鍵聯聚合物，例如澱粉，或β(1→4)-鍵聯聚合物，例如纖維素。在聚合物C1上的組態決定其是否為α或β鍵聯聚合物，及接在α或β後之括號中的數字指稱匹配連接發生所透過的碳原子。
葡聚糖聚合物所展現的性質係藉由匹配連接模式決定。例如纖維素及澱粉之非常不同的性質係藉由其各自的匹配連接模式本質而決定。澱粉或直鏈澱粉由α(1→4)鍵聯葡萄糖組成並且不形成纖維因為其被水膨潤或溶解。在另一方面，纖維素由β(1→4)鍵聯葡萄糖組成並使很好的結構材料同時為結晶性及疏水性，及常作為棉纖維用於紡織應用，以及用於呈木材形式的結構。
類似其他天然纖維，棉已經發展至受到制約，其中多醣結構及物理性質已針對紡織用途最佳化。具體而言，棉纖維具有短纖維長度，在截面上受限的變化量及纖維細度及係在高勞力與土地密集方法下製造。
O'Brien在美國專利第7,000,000號中揭露一種從乙醯化聚(α(1→3)葡聚糖)的液體結晶溶液製備纖維之方法。然後將如此製備的纖維去乙醯化而得到聚(α(1→3)葡聚糖)的纖維。
本文之方法累積了可觀的效益，其藉由從本文之新穎溶液將纖維溶液紡絲而提供高度定向及結晶的聚(α(1→3)葡聚糖)纖維，且無分子量的犧牲。
在一個態樣中，本發明關於包含N-甲基嗎福林-N-氧化物(NMMO)、水及聚(α(1→3)葡聚糖)(PAG)的溶液，其中相對於溶液總重量，聚(α(1→3)葡聚糖)的濃度在5至20重量百分比的範圍；及其中NMMO對水的重量比率在12至1.6的範圍。
在一實施例中，溶液是等向的。
在另一個態樣中，本發明係關於用於製備聚(α(1→3)葡聚糖)纖維之方法，包含下列步驟：所得溶液總重量5至20重量百分比的聚(α(1→3)葡聚糖)(PAG)(特徵在於至少10,000 Da的數目平均分子量(Mn))溶解於N-甲基嗎福林-N-氧化物(NMMO)及水的混合物中而形成溶液，其中在該溶液中NMMO對水的重量比率在12至 1.6的範圍；使該溶液流過紡嘴藉此形成纖維，使用液體凝聚劑以從如此形成的纖維萃取NMMO。
在一實施例中，溶液是等向的。
當於本文中提及一數值範圍時，除非另有說明，否則此範圍包含其端點值。本文所使用之數值具有其數字有效位數之精確度，其係遵循化學之有效數字標準協定，如於ASTM E29-08 Section 6所述要點。舉例來說，數字40涵蓋從35.0至44.9之範圍，而數字40.0涵蓋從39.50至40.49之範圍。
術語「固體含量」為技藝術語。其在本文用於指稱聚(α(1→3)葡聚糖)在本文之NMMO/水溶液中的重量百分比。其由下式計算 其中SC代表「固體含量」及Wt(G)、Wt(NMMO)及Wt(水)分別為聚(α(1→3)葡聚糖)、NMMO及水的重量。術語「固體含量」與相對於溶液的總重量之以重量計聚(α(1→3)葡聚糖)的濃度同義。
重量百分比由術語「wt-%」代表。
當術語「葡聚糖」指稱聚合物時，其亦涵蓋不適合纖維形成的寡聚物及低分子量聚合物。出於本發明之目 的，適合其實施的聚合物應被稱做為「聚(α(1→3)葡聚糖)。」
聚合物，包括葡聚糖及尤其聚(α(1→3)葡聚糖)，係由複數個所謂重複單元彼此共價鍵聯所製成。在聚合物鏈中的重複單元為雙自由基，該自由基形式在重複單元間提供化學鍵結。出於本發明之目的，術語「葡萄糖重複單元」應指稱葡萄糖的雙自由基形式，其鍵聯至在聚合物鏈中的其他雙自由基，藉此形成該聚合物鏈。
在一個態樣中，本發明提供包含N-甲基嗎福林-N-氧化物(NMMO)、水及聚(α(1→3)葡聚糖)(PAG)的溶液，其中相對於溶液總重量，聚(α(1→3)葡聚糖)的濃度在5至20重量百分比的範圍；及其中NMMO對水的重量比率在12至1.6的範圍。
在一實施例中，溶液是等向的。
出於本發明之目的，術語「等向溶液」指稱展現不規律形態之溶液。等向溶液相對比於如美國專利第7,000,000號描述之展現規律區之液體結晶溶液的形態。已經令人驚奇地發現，為等向之本文溶液的實施例可用於使用諸如現有技藝中已知的常見溶液紡絲方法製備纖維。
適合用於本發明之聚(α(1→3)葡聚糖)(PAG)為特徵在於至少10,000 Da的Mn之葡聚糖，其中在聚合物中至少90 mol-%的重複單元是葡萄糖重複單元及在葡萄糖重複單元之間至少50%的鍵是α(1→3)醣苷鍵。較佳至少95 mol-%，最佳100 mol-%的重複單元是葡萄糖重 複單元。較佳至少90%，最佳100%在葡萄糖單元之間的鍵是α(1→3)醣苷鍵。
各種多醣的單離及純化係描述於例如The Polysaccharides,G.O.Aspinall,Vol.1,Chap.2,Academic Press,New York,1983。用於製造適合本發明呈令人滿意的產率及90%純度的α(1→3)多醣之任何手段是適合的。在一個揭露於美國專利第7,000,000號這樣的方法中，聚(α(1→3)-D-葡萄糖)係藉由將蔗糖水溶液與根據現有技藝所教示的方法從唾液鏈球菌單離之gtfJ葡萄糖基轉移酶接觸而形成。在另一種這樣的方法，gtfJ係藉由基改的大腸桿菌產生，詳細描述如下。
適合用於本發明的聚(α(1→3)葡聚糖)可進一步包含藉由α(1→3)以外之醣苷鍵鍵聯的重複單元，包括α(1→4)、α(1→6)、β(1→2)、β(1→3)、β(1→4)或β(1→6)或其任何組合。根據本發明，在聚合物中至少50%的醣苷鍵為α(1→3)醣苷鍵。較佳至少90%，最佳100%在葡萄糖單元之間的鍵是α(1→3)醣苷鍵。
根據本發明，在本文溶液中NMMO對水以重量基礎的比率在12至1.6的範圍，如從下式決定：比率=(Wt.NMMO)/Wt.H2O)
本文的溶液係藉由結合NMMO、H2O及聚(α(1→3)葡聚糖)，攪動以得到徹底混合而製備。在溶液中聚(α(1→3)葡聚糖)的量相對於溶液總重量範圍從5至20重量百分比。在低於5重量百分比的聚(α(1→3)葡聚糖) 的濃度下，溶液形成纖維的能力大幅度退化。高於16重量百分比的溶液濃度對於形成有愈來愈多的問題。在16至20重量百分比的範圍中，經常要求愈來愈精細的溶液形成技術。
在一實施例中，聚(α(1→3)葡聚糖)的濃度在10至15重量百分比的範圍。
在任何給出的實施例中，聚(α(1→3)葡聚糖)的溶解度極限是分子量、NMMO/水比率、混合期間、當其正形成時的溶液黏度、溶液經受的剪切力及混合發生時的溫度之函數。一般而言，其他條件相等時，較低分子量的聚(α(1→3)葡聚糖)比較高分子量更為可溶。一般來說，較高的剪切混合、較長的混合時間及較高的溫度將伴隨較高的溶解度。混合的最高溫度受限於溶劑的沸點及穩定度。NMMO/水的最佳比率可取決於在混合方法中的其他參數而改變。
在另一個態樣中，本發明係關於用於製備聚(α(1→3)葡聚糖)纖維之方法，包含下列步驟：所得溶液總重量5至20重量百分比的聚(α(1→3)葡聚糖)(PAG)其特徵在於至少10,000 Da的數目平均分子量(Mn)溶解於N-甲基嗎福林-N-氧化物(NMMO)及水的混合物中而形成紡絲溶液，其中在該溶液中NMMO對水的重量比率在12至1.6的範圍；使該溶液流過紡嘴藉此形成纖維；及使用液體凝聚劑以從如此形成的纖維萃取NMMO。在一實施例中，紡絲溶液為等向的。
雖然在實施本發明時未嚴格要求，在加入葡聚糖聚合物之前先合併水及NMMO是高度所欲的。將水加入 NMMO使NMMO的熔點降低至可安全使用不會爆炸分解之點。
在進一步實施例中，等向紡絲溶液進一步包含聚(α(1→3)葡聚糖)，其中100%的其重複單元是葡萄糖及在葡萄糖重複單元之間100%的鍵是α(1→3)醣苷鍵。
為了達成穩定纖維形成，在紡絲溶液中所要求之聚(α(1→3)葡聚糖)的最低固體含量根據特定分子形態及聚(α(1→3)葡聚糖)的分子量以及NMMO/水的比率而變化。在實施本發明時發現5%固體含量為穩定纖維形成所需濃度的近似下限。具有至少10%固體含量的溶液係較佳的。範圍從約10%至約15%之固體含量係更佳的。較佳的是聚(α(1→3)葡聚糖)特徵在於約50,000至70,000道耳吞的數目平均分子量。對此具體聚合物的最佳紡絲性能在於NMMO/水之混合物中以約10至約12%固體含量達成，其中NMMO對水的重量比率在12至1.6的範圍。
從NMMO/水溶液紡絲可藉由現有技藝已知的手段及在前文所引用的O'Brien中所述的手段達成。藉由諸如活塞的推動或泵的作用之手段可使黏質紡絲溶液穿過單孔或多孔紡嘴或其他形式的模。紡嘴孔可為任何截面形狀，包括圓形、平的、多葉形及其類似者，如現有技藝中所已知。所擠出的絲股然後可藉由普通的手段傳至凝聚浴中，其中含有液體凝聚劑，其使NMMO溶解但不使聚合物溶解，因此使高度定向聚合物凝聚成根據本發明之纖維。
適合的液體凝聚劑包括但不限於冰醋酸或NMMO/水混合物(特徵在於至少75重量百分比的水濃度)。在一實施例中，液體凝聚劑的溫度維持在20至100℃的範圍。
在一實施例中，凝聚浴包含醋酸。在實施本發明時發現藉由採用過量的冰醋酸作為凝聚劑液體達成令人滿意的結果。在紡絲過程期間，當初生纖維通過凝聚劑浴時，冰醋酸同時吸收NMMO及水。
在某些情況下，當所擠出的絲股在引入至凝聚浴中之前，首先通過惰性非凝聚層，通常為氣隙，可達成極優異的結果。當惰性層為氣隙時，紡絲方法被稱為氣隙紡絲。在其他情況下，直接擠入凝聚浴中係較佳的，被稱為濕紡絲。
圖1為適合用於本文纖維紡絲方法之裝置的示意圖。渦輪驅動1以控制速率驅動一撞鎚2至活塞3上，活塞係安裝至紡絲室4。紡絲室4可含有過濾組件5。適合的過濾組件包括100及325篩目之不銹鋼網。其他適合的過濾組件包括Dynalloy X5，10微米燒結金屬過濾器(Pall Corporation，Deland，FL)。紡絲盒6含有紡嘴及視需要含有不銹鋼網作為紡嘴的預過濾器。將自其製造所擠出的絲7視需要引導通過惰性非凝聚層(典型為氣隙)及至液體凝聚浴9中。可將但不必將擠出物在導件8之間來回引導通過浴，導件一般由Teflon® PTFE製造。僅通過浴一次顯示於圖1。當退出凝聚浴9時，可視需要將所得驟冷絲11引導通過拖拉區，該區使用獨立驅動輥10，所得驟冷絲係纏繞於其上。然後使用 纏繞器12將所得之製備絲收集在塑膠或不銹鋼線軸上，纏繞器較佳地提供有橫動機制以將纖維平均分配在線軸上。在一實施例中，該方法包含複數個獨立驅動輥。
在一實施例中，複數絲被擠出通過多孔紡嘴及將如此產生的絲聚集形成紗。在進一步實施例中，該方法進一步包含複數個多孔紡嘴使得複數紗可同時被製備。
實例 材料
分子量
分子量係藉由尺寸篩析層析法(SEC)測定，利用GPCV/LS 2000TM(Waters Corporation,Milford,MA)層析儀，其配備有二支Zorbax PSM Bimodal-s矽膠管柱(Agilent,Wilmington,DE)，使用來自J.T Baker,Phillipsburg,NJ的DMAc，以3.0%的LiCl(Aldrich,Milwaukee,WI)作為流動相。將樣品溶解在具有5.0% LiCl的DMAc中。顯示於表2的聚合程度是根據數目平均分子量。
葡萄糖基轉移酶(gtfJ)酵素的製備 種培養基
種培養基是用於生長發酵槽之起始培養液，其含有：酵母萃取物(Amberex 695，每升5.0克，g/L)、K2HPO4(10.0 g/L)、KH2PO4(7.0 g/L)、檸檬酸鈉二水合物(1.0 g/L)、(NH4)2SO4(4.0 g/L)、MgSO4七水合物(1.0 g/L)及檸檬酸鐵銨(0.10 g/L)。使用5N NaOH或H2SO4將培養基的pH調整至6.8及使培養基在燒瓶中滅菌。後滅菌添加包括葡萄糖(20 mL/L的50% w/w溶液)及胺苄青黴素(4 mL/L的25 mg/mL儲備溶液)。
發酵槽培養基
用於發酵槽的生長培養基含有：KH2PO4(3.50 g/L)、FeSO4七水合物(0.05 g/L)、MgSO4七水合物(2.0 g/L)、檸檬酸鈉二水合物(1.90 g/L)、酵母萃取物(Amberex 695，5.0 g/L)、Suppressor 7153消泡劑(每升0.25毫升，mL/L)、NaCl(1.0 g/L)、CaCl2二水合物(10 g/L)及NIT微量元素溶液(10 mL/L)。NIT微量元素溶液含有檸檬酸單水合物(10 g/L)、MnSO4水合物(2 g/L)、NaCl(2 g/L)、FeSO4七水合物(0.5 g/L)、ZnSO4七水合物(0.2 g/L)、CuSO4五水合物(0.02 g/L)及NaMoO4二水合物(0.02 g/L)。後滅菌添加包括葡萄糖(12.5 g/L的50% w/w溶液)及胺苄青黴素(4 mL/L的25 mg/mL儲備溶液)。
葡萄糖基轉移酶(gtfJ)酵素表現菌株的建構
來自唾液鏈球菌(ATCC 25975)之編碼成熟葡萄糖基轉移酶酵素(gtfJ；EC 2.4.1.5；GENBANK® AAA26896.1,SEQ ID NO：3)之基因係使用對大腸桿菌(DNA 2.0,Menlo Park CA)表現最佳化之密碼子合成。核酸產物(SEQ ID NO：1)係次選殖成pJexpress404®(DNA 2.0，Menlo Park CA)以產生標識為pMP52(SEQ ID NO：2)之質體。質體pMP52係用來轉換大腸桿菌MG1655(ATCC 47076TM)產生標識為MG1655/pMP52之菌株。用於建構葡萄糖基轉移酶酵素表現菌株的所有程序是現有技藝所熟知的及不需過度實驗可由相關現有技藝中技術熟練者操作。
在發酵中重組gtfJ的生成
重組gtfJ酵素在發酵槽中的生成藉由製備表現gtfJ酵素之大腸桿菌菌株MG1655/pMP52的預種(pre-seed)培養液而啟動，建構係描述如下。將10 mL等分試樣的種培養基加入至125 mL拋棄式三角瓶中及將其以1.0 mL於20%甘油之大腸桿菌MG1655/pMP52培養液接種。使該培養液於37℃同時以300每分鐘轉速(rpm)振盪3小時生長。
用於起動發酵槽之種培養液係藉由將0.5 L的種培養基裝入2 L振盪燒瓶而製備。將1.0 mL的預種培養液無菌轉移至燒瓶中的0.5 L種培養基並於37℃及300 rpm下培育5小時。於37℃，在550 nm(OD550)>2之光 學密度將種培養液轉移至14 L發酵槽(Braun,Perth Amboy,NJ)，發酵槽含有8 L的上述發酵槽培養基。
使大腸桿菌MG1655/pMP52的細胞在發酵槽中生長及當培養基中的葡萄糖濃度降低至0.5 g/L時，使葡萄糖進料(含有1% w/w MgSO4．7H2O之50% w/w葡萄糖溶液)啟動。進料以0.36克進料每分鐘(g feed/min)的速度開始並每小時分別逐步增加至0.42、0.49、0.57、0.66、0.77、0.90、1.04、1.21、1.41、1.63、1.92、2.2 g feed/min。當葡萄糖濃度超過0.1 g/L時，藉由減慢或暫時停止葡萄糖進料將之後速率維持固定。培養基中的葡萄糖濃度係使用YSI葡萄糖分析儀(YSI，Yellow Springs，Ohio)監控。
當細胞OD550達到70，添加9 mL的0.5 M IPTG(異丙基β-D-1-硫代半乳糖吡喃糖苷)啟動葡萄糖基轉移酶酵素活動的誘發。將溶氧(DO)濃度控制在25%的空氣飽和度。DO首先以葉輪攪拌速率(400至1200 rpm)控制及之後由通氣速率(2至10標準升每分鐘，slpm)控制。將pH控制在6.8。NH4OH(14.5%重量/體積，w/v)及H2SO4(20% w/v)是用於pH調控。將反壓維持在0.5巴。在不同區間(20、25及30小時)，將5 mL的Suppressor 7153消泡劑加入至發酵槽中以抑制泡沫。藉由離心8小時後IPTG添加將細胞收成並將其儲存在-80℃作為細胞糊。
自細胞糊製備gtfJ粗酵素萃取物
將如上得到的細胞糊以150 g/L懸浮在50 mM磷酸鉀緩衝液(pH 7.2)以製備漿料。使漿料在12,000 psi(Rannie型機器，APV-1000或APV 16.56)均質化及使勻漿冷卻至4℃。以中度劇烈攪拌，每升細胞勻漿加入50 g的絮凝物溶液(Aldrich no.409138，5%於50 mM磷酸鈉緩衝液pH 7.0)。攪動降低至輕微攪拌15分鐘。然後藉由於5至10℃在4500 rpm離心3小時使細胞勻漿澄清。以30千道耳吞(kDa)截留膜將含有粗gtfJ酵素萃取物的上澄液濃縮(接近5X)。在gftJ酵素溶液的蛋白質濃度是藉由二喹啉甲酸(BCA)蛋白質分析法(Sigma Aldrich)測定為4至8 g/L。
實例1至3及比較例A至D 實例1至3 聚合物P1：
藉由合併3000 g的蔗糖(呈15 wt-%水溶液的形式)、60 g的聚葡萄糖T-10、2 L的未變性乙醇及1 L的1M KH2PO4而製備二十升的水溶液。藉由添加10% KOH將pH調整至pH 6.8至7.0。然後加入去離子水使體積增加至20 L。在所製備溶液中的緩衝液濃度為50 mM。
然後使所製備之pH-調整溶液裝入200 ml如上製備的酵素萃取液及使其於環境溫度靜置144小時。將所得葡聚糖固體收集在布氏漏斗上，使用325篩目網在40微米濾紙上。將濾餅再次懸浮在去離子水中並如上過濾二次以上以移除蔗糖、果糖及其他低分子量、可溶 的副產物。最終以甲醇實施二次額外洗滌，使濾餅在漏斗上徹底擠壓及於室溫真空乾燥。產量為403克的白色片狀固體。如此製備的聚合物在本文中定名為P1。
數目及重量平均分子量實測分別為64,863及168,120道耳吞。
將25至30 mg的聚合物溶解在1 mL的氘化DMSO。13C NMR光譜(Bruker Avance 500 MHz NMR光譜儀，配備有CPDul低温探测器)顯示由於聚葡萄糖引子的併入在98.15、73.57、71.63、70.17、65.79及60.56 ppm處共振峰的存在及符合聚(α(1→3)葡聚糖)六個預期的分離的碳原子在99.46、81.66、72.13、71.09、69.66及60.30 ppm之共振。這些共振符合含有約5%聚葡萄糖之聚(α(1→3)葡聚糖)的存在。
聚(α(1→3)葡聚糖)紡絲溶液的製備
在乾燥箱中，在100 mL廣口玻璃瓶裝入8 g的聚合物P1及46 g的無水N-甲基嗎福林N氧化物(NMMO)。在如此形成之混合物中加入21 g的去離子水，其含有0.344 g的五倍子酸丙酯及0.086 g的硫酸二羥胺。該容器裝有蓋子，聚丙烯攪棒透過蓋子穿過墊片而安裝。然後將內容物加熱至110℃歷經6小時伴隨每小時操作約5分鐘間歇的手動混合。在1小時之後，施加真空以移除水同時內容物持續混合。在6小時之後，0.6 g的水已被移除，得到10.75%聚(α(1→3)葡聚糖)固體的形成纖維之淡琥珀溶液，其在如下所示之條件下能擠出成為纖維。
聚(α(1→3)葡聚糖)纖維紡絲
如上文所述在圖1所描繪的裝置藉由從絲路徑移除驅動輥10而修改。紡絲拉伸係藉由使纏繞器以比噴射速度更快地運轉而達成。將所製備的紡絲溶液以0.30 ml/min的速率進料通過紡絲盒至單孔紡嘴(直徑為0.003吋)，紡絲盒具有由100及325篩目網組成的過濾組件。在被浸沒入及橫越2.5呎長含有冰醋酸的凝聚浴(在表1所指出之溫度)之前，將所擠出的絲傳送通過1.75吋(實例1及2)或0.75吋(實例3)的氣隙。當從凝聚浴中移除時，所凝聚的絲以顯示於表1之纏繞器速度被引導至具有橫動桿之拉力控制纏繞器。
例如韌度、伸長度及初始模數之物理性質係使用符合ASTM Standard D 2101-82方法及設備量測，除了測試標本長度是一吋之外。
表1顯示所製備之絲的性質。這些包括所生成之纖維的丹尼及例如韌度(T)(單位為克每丹尼(gpd))、斷裂伸長度(E，%)、及初始模數(M)(單位是gpd)之物理性質，其係使用符合ASTM Standard D 2101-82方法及設備量測，除了測試標本長度是一吋之外。顯示於表1的結果為3至5個個別絲測試的平均。
比較例A至D 纖維素紡絲溶液的製備
在乾燥箱中，在100 ml廣口玻璃瓶裝入5 g的纖維素(來自撕碎的Whatman #1濾紙)及54 g的無水 NMMO。在如此形成之混合物中加入7.6 g的去離子水，其含有0.13 g的五倍子酸丙酯及0.033 g的硫酸二羥胺。該容器裝有蓋子，聚丙烯攪棒透過蓋子穿過墊片而安裝。然後將內容物加熱至115℃歷經4小時伴隨偶爾(5至10分鐘/小時)手動混合。在完全溶解的時刻，產生形成纖維之淡琥珀溶液(7.5%纖維素固體)其在顯示如下的條件下可被擠出成為纖維。
纖維素纖維紡絲
纖維素絲係使用如上文所述在實例1至3採用的裝置及程序而製備，除了紡絲溶液至紡嘴的進料速率為0.2 ml/min及氣隙為1.25吋(比較例A至C)或1.75吋(比較例D)以外。凝聚浴為4.8呎長且僅含水。如圖1所描繪將凝聚的纖維素纖維纏繞在驅動輥10上。其餘條件顯示於表1。
物理性質係如在實例1至3中所測定。結果係示於表1。
實例4至17及比較例E至M 紡絲溶液的製備 溶解度測定
溶解度係在如下所述實例之溶解程序完成之後，藉由目視檢驗小瓶中的溶液而測定。如果藉由目視檢驗，沒有觀察到顆粒或朦朧狀，認為聚(α(1→3)葡聚糖)是完全溶解。察覺任何顆粒或霧狀被認為是一個不完全的溶解度的指示。
從製備適合纖維紡絲的溶液的立場，藉由完全溶解度所給予的均勻性係高度較佳的。
在下文的數據表中，溶解度係藉由「S」指示，意謂完全溶解，或「N」指示，意謂並未完全溶解。
聚合物合成 聚合物P2
在容器中合併含有15%蔗糖的、9 g的聚葡萄糖T-10、300 ml的未變性乙醇及50 ml的1莫耳KH2PO4 pH 6.8至7.0的三升水溶液。以10% KOH調整pH及以去離子水使體積增加至3 L。然後將溶液裝入20.1 ml(.67體積百分比)如上製備的酵素及使其於環境溫度靜置144小時。將所得葡聚糖固體收集在布氏漏斗上，使用325篩目網在40微米濾紙上。將濾餅懸浮在去離子水中並如上過濾二次以上以移除蔗糖、果糖及其他低分子量、可溶的副產物。最終以甲醇實施二次額外洗滌，使濾餅在漏斗上擠壓及在室溫下真空乾燥。產量為25.5 克的白色片狀固體。如此製備的聚合物在本文中定名為P2。
P3
含有15%蔗糖的三升的水溶液在容器中合併9 g的聚葡萄糖T-10、300 ml的未變性乙醇及150 ml使用10% KOH調整至pH 6.8至7.0的磷酸鉀緩衝液。以去離子水使體積增加至3 L。然後將溶液裝入30 ml(1 vol%)如上製備的酵素及使其於環境溫度靜置72小時。將所得葡聚糖固體收集在布氏漏斗上，使用325篩目網在40微米濾紙上。將濾餅懸浮在去離子水中並如上過濾二次以上以移除蔗糖、果糖及其他低分子量、可溶的副產物。最終以甲醇實施二次額外洗滌，使濾餅在漏斗上擠壓及於室溫真空乾燥。產量為55.4克的白色片狀固體。如此製備的聚合物在本文中定名為P3。
P4 葡聚糖引子
在500 ml錐形瓶中，伴隨磁攪拌子將25克的基態(ground)聚合物P3懸浮在500 ml的37% HCl(EMD HX0603-4)中及使其水解2小時。在冰浴中冷卻的同時，使用NaOH固體緩慢地將酸中和以及加入50 ml的水以維持溶液中的水解葡聚糖。然後使用500 MW截留膜(Specta/Por Biotech Cellulose Ester(CE)MWCO 500-1,000D)以及在低水平下流動的自來水將溶液透析 隔夜以移除鹽。然後將溶液置於旋轉蒸發儀及將材料於室溫在真空下乾燥。如此製備之材料本文定名為P3-H
重複製備聚合物P1採用的材料及程序，除了採用4.6 g的P3-H及省略聚葡萄糖以外。如此製備的聚合物在本文定名為P4。產量為309克的白色片狀固體。
P5
在有攪拌及溫度控制的150加侖的搪玻璃反應器中，藉由在容器中結合75 kg的蔗糖、500 g的聚葡萄糖T-10、3.4 kg使用10% KOH調整至pH 7.0的磷酸鉀緩衝液及50升的未變性乙醇製備接近394 kg的水溶液。然後將溶液裝入32單元/升如上製備的酵素，接著額外1升的去離子水。將所得溶液於25℃下溫和混合72小時。將所得葡聚糖固體轉移至Zwag過濾器將母液移除。透過以接近150 kg的水以水置換3次洗滌濾餅。最終以100升的甲醇實施二次額外置換洗滌。在60℃套管將材料在真空下乾燥。產量：6.6 kg白色片狀固體。如此製備的聚合物本文定名為P5
P6
重複製備聚合物P3採用的材料及程序，除了採用2.0 g的P3-H及省略聚葡萄糖以外。產量為68克的白色片狀固體。如此製備的聚合物在本文中定名為P6。
實例4
將0.5 g的聚合物P2加入至藉由合併8 g的以重量計50/50無水NMMO與水的混合物以及0.15 ml的五倍子酸丙酯(0.08 M)及硫酸二羥胺(0.026 M)水溶液形成的混合物。將所合併的成分裝入40 ml玻璃小瓶中。在裝入之後，將小瓶以矽膠墊片加蓋及將小瓶秤重。然後將攪棒裝至墊片。將小瓶放至預加熱達110℃之加熱塊中及將其維持30分鐘伴隨偶爾手動攪拌。在30分鐘之後，施加真空同時於110℃持續加熱以移除水至表2所示的程度。最終水含量藉由將所蒸出的量秤重而測定。NMMO的蒸發是可忽略的。聚合物係充分溶解及為淡琥珀色。最終固體含量為8.9%。
實例5
將1.0 g的聚合物P4懸浮在8.5 g的以重量計50/50無水NMMO與水的混合物，以及將0.15 ml的五倍子酸丙酯(0.016 M)及硫酸二羥胺(0.005 M)水溶液加入於其中。將該成分裝入40 ml裝有矽膠墊片之玻璃小瓶。在裝入小瓶之後，將其含量秤重。然後將攪棒插過墊片。然後將小瓶放至預加熱達110℃之加熱塊中及將其維持60分鐘伴隨偶爾手動攪拌。在60分鐘之後，施加真空同時在110℃持續加熱以移除水至表2所示的程度。聚合物係充分溶解及為淡琥珀色。最終固體含量為8.1 wt-%。
實例6
將8.0 g的聚合物P1懸浮在含有46 g無水NMMO及21 ml的五倍子酸丙酯(0.08 M)及硫酸二羥胺(0.026 M)的水溶液之混合物中。將該成分裝入100 ml廣口玻璃小瓶中。在進料之後，以墊片/攪拌器將小瓶加蓋及將組件秤重。然後將混合物在110℃加熱30分鐘伴隨偶爾手動混合。在30分鐘之後，施加真空同時在110℃持續加熱以移除水至表2所示的程度。聚合物係充分溶解及為淡琥珀色。最終固體含量為10.9%。
比較例E
實例6的材料及程序，除了10.0 g的聚合物P1係懸浮在NMMO/水溶液混合物之外。聚合物未充分溶解。最終固體含量為13.7%。
比較例F
複製實例6的材料及程序，除了將NMMO/H2O比率調整至如表2所示之不同值外。所得溶液為淡琥珀色。一些粒狀物的存在指示聚合物未充分溶解。最終固體含量為11.0%。
比較例G
複製實例6的材料及程序，除了將NMMO/H2O比率調整至如表2所示之不同值外。所得溶液為淡琥珀色。一些粒狀物的存在指示聚合物未充分溶解。最終固體含量為10.8%。
比較例H
複製實例6的材料及程序，除了將NMMO/H2O比率調整至如表2所示之不同值外。此外，將水真空蒸餾後，將真空關掉，以氮氣將混合物包覆及使其在110℃持續加熱額外60分鐘伴隨偶爾混合。所得溶液為淡琥珀色。一些粒狀物的存在指示聚合物未充分溶解。最終固體含量為10.8%。
實例7
使0.5 g的聚合物P3懸浮在含有6 g的NMMO及6 ml的五倍子酸丙酯(0.08 M)與硫酸二羥胺(0.026 M)之水溶液的混合物。將該成分裝入裝有矽膠墊片及攪棒的40 ml玻璃小瓶。在進料之後，將小瓶及其內容物加蓋及秤重。然後將混合物在110℃加熱30分鐘伴隨偶爾手動混合。在30分鐘之後，施加真空同時在110℃加熱以移除水至表中所示的程度。在水的真空萃取之後，將真空關掉，以氮氣將混合物包覆及使其在110℃持續加熱額外3小時伴隨偶爾混合。所得溶液係完全澄清及為淡琥珀色。最終固體含量為5.6%。
實例8
將0.5 g的聚合物P3懸浮在含有5 g NMMO及5 ml的五倍子酸丙酯(0.08 M)與硫酸二羥胺(0.026 M)之水溶液的混合物。重複實例7的設備及程序。所得溶液係完全澄清及為淡琥珀色。最終固體含量為6.3%。
實例9
將0.5 g的聚合物P3懸浮在含有4 g NMMO及4 ml的五倍子酸丙酯(0.08 M)與硫酸二羥胺(0.026 M)之水溶液的混合物。重複實例7的設備及程序。所得溶液係完全澄清及為淡琥珀色。最終固體含量為8.7%。
比較例I
將0.5 g的聚合物P3懸浮在含有3 g NMMO及3 ml的五倍子酸丙酯(0.08 M)與硫酸二羥胺(0.026 M)之水溶液的混合物。重複實例7的設備及程序。在3小時之後，葡聚糖聚合物類似凝膠具有粒狀物並為淡琥珀色。最終固體含量為10.1%。
實例10
將3.17 g的97% NMMO轉移至配衡20×125 mm組織培養管。將1.63 g(過量)去離子水加入管中。將該管以墊片加蓋，及一塑膠攪棒係插入通過預鑽孔Teflon®-塗覆之矽膠墊片。將如此形成的混合物攪拌接近1分鐘。在攪拌之後，將0.12 ml的安定水溶液(含有0.4 wt%硫酸二羥胺及1.7 wt%五倍子酸丙酯)加入管中及進一步執行混合2至5分鐘。將0.25 g的聚合物P5加入管中及將所得混合物於室溫混合額外的2至5分鐘形成漿料。
在玻璃屏蔽後面，在50℃將該管放在Pierce Reacti-therm加熱模組(Pierce Biotechnology，Rockford，IL)。以氮氣將管的內容物包覆，氮氣係透過 插過墊片的針進入。將管因此在加熱塊中於50℃加熱30至45分鐘，每5至10分鐘由手間歇地攪拌。觀察到聚合物固體已徹底濕了。然後歷經15分鐘將溫度提高到100℃及然後維持在100℃ 30至60分鐘至開始溶解同時間歇地混合。維持攪拌，然後將溫度增加至115℃及在真空下間歇地攪拌移除過量水至表2所示之濃度及至溶液完全的形成。最終組成物係示於表2。聚合物係完全溶解。藉由水的重量損失驗證6.84 wt%的固體含量及藉由GC-MS確認餾出液含有可忽略量的NMMO。
實例11至17及比較例J至P
重複實例10採用的材料及程序以及表2所指出的改變。結果如表2所示。
1‧‧‧渦輪驅動
2‧‧‧撞鎚
3‧‧‧活塞
4‧‧‧紡絲室
5‧‧‧過濾組件
6‧‧‧紡絲盒
7‧‧‧絲
8‧‧‧導件
9‧‧‧凝聚浴
10‧‧‧輥
11‧‧‧驟冷絲
12‧‧‧纏繞器
圖1為裝置的示意圖，其適合己醣聚合物的液體結晶溶液的氣隙或濕紡絲以形成多醣纖維。
<110> DuPont John,O'Brien P Kathleen,Opper
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<130> CL5408 WO PCT
<160> 3
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
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<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 來自唾液鏈球菌之編碼最佳化的gtfj基因
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<210> 2
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<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 質體pMP52
<400> 2
<210> 3
<211> 1518
<212> PRT
<213> 唾液鏈球菌
<400> 3
1‧‧‧渦輪驅動
2‧‧‧撞鎚
3‧‧‧活塞
4‧‧‧紡絲室
5‧‧‧過濾組件
6‧‧‧紡絲盒
7‧‧‧絲
8‧‧‧導件
9‧‧‧凝聚浴
10‧‧‧輥
11‧‧‧驟冷絲
12‧‧‧纏繞器

Claims (12)

  1. 一種溶液，其包含N-甲基嗎福林-N-氧化物(NMMO)、水及聚(α(1→3)葡聚糖)，其中聚(α(1→3)葡聚糖)的濃度相對於溶液總重量在5至20重量百分比的範圍，其中聚(α(1→3)葡聚糖)特徵在於數目平均分子量(Mn)為至少10,000Da；及其中NMMO對水的重量比率在12至1.6的範圍；其中前述溶液係呈等向溶液(isotropic solution)的形式。
  2. 如請求項1所述之溶液，其中在該聚(α(1→3)葡聚糖)中，在該聚合物中至少90mol-%的重複單元為葡萄糖重複單元及在葡萄糖重複單元之間至少50%的鍵為α(1→3)醣苷鍵。
  3. 如請求項2所述之溶液，其中在該聚(α(1→3)葡聚糖)中，在該聚合物中100mol-%的重複單元為葡萄糖重複單元及在葡萄糖重複單元之間至少100%的鍵為α(1→3)醣苷鍵。
  4. 如請求項1所述之溶液，其中該聚(α(1→3)葡聚糖)的濃度係在10至15重量百分比的範圍。
  5. 如請求項1所述之溶液，其中該聚(α(1→3)葡聚糖)的數目平均分子量在50,000至70,000道耳吞的範圍。
  6. 一種用於製備聚(α(1→3)葡聚糖)纖維之方法，包含下列步驟：將所得溶液總重量5至20重量百分比的聚(α(1→3)葡聚糖)溶解於N-甲基嗎福林-N-氧化物(NMMO)及水的混 合物中而形成溶液，其中該聚(α(1→3)葡聚糖)特徵在於數目平均分子量(Mn)為至少10,000Da，其中在該溶液中NMMO對水的重量比率在12至1.6的範圍；使該溶液流過紡嘴藉此形成纖維，使用液體凝聚劑以從如此形成的纖維萃取NMMO；其中前述溶液係呈等向溶液(isotropic solution)的形式。
  7. 如請求項6所述之方法，其中在該聚(α(1→3)葡聚糖)中，至少90mol-%的重複單元為葡萄糖重複單元及在葡萄糖重複單元之間至少50%的鍵為α(1→3)醣苷鍵。
  8. 如請求項7所述之方法，其中在該聚(α(1→3)葡聚糖)中，至少100mol-α%的重複單元為葡萄糖重複單元及在葡萄糖重複單元之間至少100%的鍵為α(1→3)醣苷鍵。
  9. 如請求項6所述之方法，其中在該溶液中聚(α(1→3)葡聚糖)的濃度係在10至15重量百分比的範圍。
  10. 如請求項6所述之方法，其中在該溶液中聚(α(1→3)葡聚糖)的數目平均分子量在50,000至70,000道耳吞的範圍。
  11. 如請求項6所述之方法，其中該液體凝聚劑為冰醋酸。
  12. 如請求項6所述之方法，其中該液體凝聚劑為N-甲基嗎福林N氧化物及水的混合物，具有至少75重量百分比的水濃度。
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