Claims (1)
ข้อถือสิทธฺ์ (ทั้งหมด) ซึ่งจะไม่ปรากฏบนหน้าประกาศโฆษณา :------28/06/2561------(OCR) หน้า 1 ของจำนวน 3 หน้า ข้อถือสิทธิ 1. วิธีการเตรียมองค์ประกอบแขวนลอยเซลล์เพื่อการตรวจวัดความเป็นพิษของตัวอย่างด้วย เทคนิควิธีไดอิเล็กโตรโฟเรซีส ขันตอนการเตรียมเริ่มด้นโดยการผสมเซลล์กับตัวอย่างที่ต้อง การวิเคราะห์ แล้วทำการบ่มของผสมดังกล่าวเพื่อการตอบสนองของเซลล์ต่อสารพิษที่มีในตัวอย่าง จากนั้นทำการแยกเซลล์ออกจากของผสมในการบ่มเซลล์ ซึ่งจะได้เซลล์ที่พร้อมนำไปใช้ใน การวิเคราะห์ด้วยเทคนิควิธีไดอิเล็กโตรโฟเรซีสต่อไป 2. วิธีการของข้อถือสิทธิข้อ 1 ซึ่งประกอบรวมเพิ่มเติมด้วยสารละลายที่ใช้เพื่อ การแขวนลอยเซลล์ ได้แก่สารละลายที่ช่วยรักษาสภาพเซลล์ไม่ให้เซลล์บวมหรือเหี่ยว (isotonic) ขณะ ทำการชะหรือแขวนลอยเซลล์ โดยที่สารละลายนีอาจใช้เป็นบัฟเฟอร์เพื่อการวิเคราะห์ไดอิเล็กโตร โฟเรซีสด้วยก็ได้ สารละลายตังกล่าวนี้ประกอบไปด้วย นี้าตาลซูโครส (sucrose) 8.5% (นำหนักต่อ ปริมาตร) และ นำตาลเด็ซ\'โตรส (dextrose) 0.3% (นำหนักต,อปริมาตร) ละลายด้วยนำบริสุ\'ทธ คุณภาพสูง (ultrapure grade) และมค่าออสโมลาริต (osmolarity) เปน 300 mOs 3. วิธีการของข้อถือสิทธิข้อ 1 ซึ่งเซลล์ที่กล่าวถึงเป็นเซลล์ที่ได้จากสัตว์เลียงลูกด้วยนม และ ถูกนำมาเลียงในภาชนะเลียงเซลล์ที่ทำการควบคุมสภาพแวดล้อมอย่างเหมาะสมเพื่อให้เซลล์มี การเจริญเติบโตและแบ่งเชลล์ตามวงจรชีวิตของเซลล์ 4. วิธีการของข้อถือสิทธิข้อ 1 ซึ่งประกอบรวมเพิ่มเติมด้วยสารละลายเสริมประสิทธิภาพ เซลล์ ได้แก่สารละลายที่ช่วยให้เซลล์มีการตอบสนองต่อสารพิษได้ดีขึ้น ซึ่งประกอบรวมด้วย ส่วนประกอบอย่างน้อยหนึ่งชนิดที่เลือกจากกลุ่มที่ประกอบด้วยองค์ประกอบอิออนและเกลือแร,; ตัวกำหนดพีเอช; องค์ประกอบที่ใช้ตัดสินค่าคงที่ไดอิเล็กติก (dielectric); องค์ประกอบทาง โภชนาการ; องค์ประกอบสารช่วยการเจริญและองค์ประกอบสารช่วยการส่งสัญญาณ (growth and signaling factor components); โปรออกซิแดนทและแอนติออกซแดนท (pro- and antioxidant) และ องคประกอบรดอกซ (redox components); โปรไบโอตก (probiotic), แอนทิไบโอตก (antibiotic), แอนทีมัยโคติก (antimycotic), และองค์ประกอบทางการบำบัดอื่น ๆ (other therapeutic components); องค์ประกอบที่ซึมผ่านเมมเบรนได้ และองค์ประกอบเปลี่ยนแปลงแชนเนลของเยื่อทุ้มเซลล์ (membrane permeability and membrane channel modulator components); องคประกอบเอนไชม; องคประกอบของตัวเปลยนแปลงประจุเยอทุ้มเซลล (membrane charge modifier components); องคประกอบของตัวเปลยนแปลงไขมันเยือทุ้มเซลล (membrane lipid modifier components); องคประกอบออนโคติกและองคประกอบออสโมติก (oncotic and osmotic components); และ, หน้า 2 ของจำนวน 3 หน้า องค์ประกอบทางภูมิคุ้มกันและเอ็นทิบอดี (immune and antibody components) องค์ประกอบเหล่านี จะถูกผสมรวมเข้ากับของผสมในการบ่ม (incubation mixture) ในสัดส่วนไม่เกิน 1% โดยปริมาตร 5. วิธีการของข้อถือสิทธิข้อ 1 ซึ่งประกอบรวมเพิ่มเติมด้วยความเป็นพิษต่อเซลล์ซึ่งเป็น ผลให้เกิดการเปลี่ยนแปลงทางด้านองค์ประกอบและพื้นที่ของเยื้อหุ้มเซลล์ที่เป็นผลมาจากสารพิษ แล้วทำให้ค่าการเก็บประจุไฟฟ้า (capacitance) (Cmem) และความนำไฟฟ้า (conductance) (Gme11) ของ เยื่อหุ้มเซลล์เปลี่ยนไปจากที่เป็นอยู่ของเซลล์ปกติ 6. วิธีการของข้อถือสิทธิข้อ 1 ซึ่งประกอบรวมเพิ่มเติมด้วยตัวอย่างที่ด้องการทดสอบ ซึ่ง อยู่ในสภาพของเหลว หรือของแข็งที่ถูกทำให้ละลายในตัวทำละลาย โดยอาจเป็นตัวอย่างที่ได้จาก สิ่งแวดล้อมโดยตรงหรือได้จากการผสมหรือละลายสารเคมีหรือยาด้วยตัวทำละลายที่เหมาะสม 7. วิธีการของข้อถือสิทธิข้อ 1 ซึ่งประกอบรวมเพิ่มเติมด้วยองค์ประกอบของสารละลาย อาหารเลี้ยงเซลล์เข้มข้นคืออาหารเลี้ยงเชลล์ 10.4 กรัม ของ RPMI 1640 ละลายในนาบริสุทธ คุณภาพสูงจำนวน 100มิลลิลิตรเพิ่มเติมด้วย 10%โดยปริมาตรของซีรัมของตัวอ่อนลูกวัว (fetal bovine), 0.2 Mo l.L 1 L-กลูตามีน (L-glutamine), 0.02 Mo l.L1 HEPES และ 0.4% โดยปริมาตรของ เจนทามัยชิน ซัลเฟต (Gentamicin sulfate) แล้ว องค์ประกอบทังหมดถูกทำให้อยู่ในสภาพปลอดเชือ 8. วิธีการของข้อถือสิทธิข้อ 1 ซึ่งประกอบรวมเพิ่มเติมด้วยขันตอนในการเตรียมตัวอย่าง ก่อนการผสมเซลล์ ด้วยการผสมตัวอย่างกับสารละลายอาหารเลียงเซลล์เข้มข้นในอัตราส่วนตัวอย่าง 90% โดยปริมาตรต่อสารละลายอาหารเลี้ยงเซลล์เข้มข้น 10% โดยปริมาตร จากนั้นทำการกรอง ของผสมดังกล่าวเพื่อคัดแยกอนุภาคที่ไม่ต้องการออก และทำให้อยู่ในสภาพปลอดเชื้อ การกรอง ดังกล่าวจะกระทำก่อนหรือหลังการผสมตัวอย่างกับสารละลายอาหารเลียงเซลล์เข้มข้นก็ได้ 9. วิธีการของข้อถือสิทธิข้อ 8 ซึ่งประกอบรวมเพิ่มเติมด้วยการกรองด้วยตัวกรองขนาด 0.2 ไมโครเมตร 1 0. วิธีการของข้อถือสิทธิข้อ 1 ซึ่งประกอบรวมเพิ่มเติมด้วยการผสมเซลล์ที่กล่าวไว้ใน ข้อถือสิทธิข้อที่ 3 กับของผสมดังกล่าวในข้อถือสิทธิข้อที่ 8 เพื่อให้ได้ของผสมในการบ่ม ที่อยู่ใน สภาพพร้อมสำหรับการบ่มเซลล์โดยมีสัดส่วน1ในการผสมตังนี ปริมาตรเซลล์ที่ผสมกับตัวอย่างตาม ข้อถือสิทธิข้อ 8 ไม่เกิน 30% โดยปริมาตรรวม 1 1. วิธีการของข้อถือสิทธิข้อ 1 ซึ่งประกอบรวมเพิ่มเติมด้วยการบ่มของผสมในการบ่มเซลล์ เพื่อการตอบสนองของเซลล์ต่อสารพิษในตัวอย่าง โดยจัดให้เซลล์อยู่ในสภาวะที่กำหนดคือ ที่ หน้า 3 ของจำนวน 3 หน้า อุณหภูมิในช่วง 36 ถึง 38 องศาเซลเซียส ซึ่งที่ควรใช้ คือ 37 องศาเซลเซียส, ส่วนผสมของอากาศต่อ คาร์บอนไดออกไซด์เป็น 95%:5% ใช้เวลาในการบ่มนาน 30 ถึง 150 นาที 1 2. วิธีการของข้อถือสิทธิข้อ 1 ซึ่งประกอบรวมเพิ่มเติมด้วยการแยกเซลล์ออกจากของผสม ในการบ่มด้วยการปีนเหวี่ยงของผสมในการบ่มดังกล่าวที่ความเร็วรอบในช่วง 1400 ถึง 1600 รอบต่อ นาที (rpm) ซึ่งที่ควรใช้คือ 1500 rpm เป็นเวลานาน 10 นาที แล้วรินส่วนที่ใสเหนือตะกอนเซลล์ทิงไป แต่เก็บตะกอนเซลล์ไว้ 1 3. วิธีการของข้อถือสิทธิข้อ 12 ซึ่งประกอบรวมเพิ่มเติมด้วยการแยกเซลล์ออกจากของผสม ในการบ่มด้วยการกรองด้วยตัวกรองปลอดเชือขนาด 0.2 ไมโครเมตร (เป็นอีกทางเลือกนอกเหนือจาก การปีนเหวี่ยง) 1 4. วิธีการของข้อลือสิทธิข้อ 12 ซึ่งประกอบรวมเพิ่มเติมด้วยการทำให้เชลล์กลับมาอยู่ใน สภาพแขวนลอยด้วยสารละลายตามที่กล่าวถึงในข้อถือสิทธิข้อ 2 โดยการเติมสารละลายดังกล่าว ปริมาตร 1 มิลลิลิตร ลงในตะกอนเซลล์ตามข้อลือสิทธิข้อที่ 12 แล้วทำการผสมให้ตะกอนเซลล์ แขวนลอย แล้วทำการปรับค่าการนำไฟฟ้า (conductivity) ให้ เป็น 30 mS.m"1 ด้วยสารละลายฟอสเฟต บัฟเฟอร์ (phosphate buffer solution) (PBS) โดยการอ่านค่าด้วยเครื่องวัดค่าการนำไฟฟ้า 1 5. วิธีการของข้อถือสิทธิข้อ 14 ซึ่งประกอบรวมเพิ่มเติมด้วยส่วนประกอบของสารละลาย PBS โดยการละลาย 0.8% (น,\'ไหนักต่อปริมาตร) ของ NaCl, 0.02% (นำหนักต่อปริมาตร) ของ KC1, 0.12% (นํ้าหนักต\'อปริมาตร) ของ NajHPO,, และ 0.02% (นํ้าหนักต่อปริมาตร) ของ KH2P04 ในนำ บริสุทธิ"คุณภาพสูง 1 6. วิธีการของข้อถือสิทธิข้อ 13 ซึ่งประกอบรวมเพิ่มเติมด้วยการทำให้เซลล์กลับมาอยู่ใน สภาพแขวนลอยด้วยสารละลายตามที่กล่าวถึงในข้อถือสิทธิข้อ 2 โดยการชะเซลล์ที่ติดอยู่บนตัวกรอง ออกสู่ภาชนะเก็บเซลล์แล้วทำให้เซลล์แขวนลอยด้วยสารละลายตามที่กล่าวถึงในข้อถือสิทธิข้อ 2 ปริมาตร 1 มิลลิลิตร ------------Disclaimer (all) which will not appear on the advertisement page. : ------ 28/06/2018 ------ (OCR) Page 1 of 3 pages Disclaimer 1. Method of preparation of cell suspension components for the determination of toxicity of samples. Dielectrophoresis technique The preparation process begins by mixing the cells with the sample to be analyzed and then incubating the mixture to the cell's response to the toxin present in the sample. The cells were then separated from the compound for cell incubation. Which will get cells ready to be used in Further analysis of the dielectrophoresis technique 2. Method of claim 1, which is supplemented with solutions used for Cell suspension These are solutions that help maintain cell conditions so that cells do not swell or wilt (isotonic) while washing or suspended cells. Where this solution may be used as a buffer for dielectric analysis. Forecies, too. This solution contains 8.5% sucrose (weight by volume) and 0.3% dextrose (dextrose) dissolved with high quality pure water (ultrapure). grade) and osmolarity of 300 mOs 3. Method of claim No. 1 in which the cells mentioned are mammalian cells and are conveyed in vessels. Properly regulated cells in the environment to provide Growth and division of the shell according to the cell life cycle 4. Method of claim 1, which is complemented by a cell enhancement solution, is a solution that improves the cell's response to toxins. Which includes One or more components selected from the group containing ionic elements and salt; PH determinant; Elements used to judge the dielectric constant (dielectric); Nutritional composition; Growth and signaling factor components; Pro- and antioxidant and redox components; Probiotic (probiotic), antibiotic, antimycotic (antimycotic), and other therapeutic components; Membrane permeable elements And membrane permeability and membrane channel modulator components; Entanglement elements; Components of membrane charge modifier components; Components of the membrane lipid modifier components; Oncotic and osmotic components; And, page 2 of the number 3 pages of immune and antibody components. Will be mixed with incubation mixture in proportion not more than 1% by volume 5. Method of Clause 1, which includes additional cytotoxicity which is This results in a change in the composition and area of the membrane resulting from the toxin. And then make the electric charge (capacitance) (Cmem) and conductivity. The conductance (Gme11) of the cell membrane is changed from that of the normal cell. 6. Method of claim 1, which is supplemented with the test sample in a liquid state. Or solids that have been dissolved in a solvent Which could be an example obtained from The environment is directly or obtained by mixing or dissolving chemicals or drugs with an appropriate solvent. 7. Method of Clause 1, which is supplemented by the composition of the solution. The concentrated cell culture is 10.4 g of shell medium RPMI 1640, soluble in pure water. High quality quantity 100 ml more too 10% by volume of fetal bovine, 0.2 Mo lL, 1 L-glutamine (L-glutamine), 0.02 Mo l.L1 HEPES and 0.4% by volume of gentamycin sulfate ( Gentamicin sulfate), and all components were treated in a safe condition. 8. Method of Clause 1, which included additional sample preparation procedures. Before fusing cells The samples were mixed with a 90% v / v 10% vc concentrated feed solution and then filtered. The mixture to separate the unwanted particles. Such filtration can be performed either before or after mixing the sample with a concentrated cellular feed solution 9. Method of claim 8, which is supplemented by filtration with a 0.2 μm filter 1. 0. Method of claim 1, which is supplemented by mixing the cells referred to in Claim No. 3 applies to the mix in claim No. 8 to obtain a curing mixture in a state ready for cell curing with a proportion of 1 in this mix. Cell volume mixed with sample according to Clause 8 Not more than 30% by total volume 1 1. Method of claim No. 1 which is supplemented by incubation of cell curing mixtures. To the response of cells to the toxin in the sample The cells are placed in the specified conditions, ie at page 3 of 3 pages, temperature in the range of 36 to 38 degrees Celsius, which should be used is 37 degrees Celsius, the air mixture per Carbon Dioxide to 95%: 5%, incubation time 30 to 150 minutes 1 2. Method of claim 1, which is supplemented by cell separation from the mixture. In centrifugal incubation, the curing mixture was at a speed range of 1400 to 1600 rpm (rpm), preferably 1500 rpm for 10 minutes, and then poured a clear portion over the cell sludge. Go But cell pellets were kept. 1 3. Method of claim No. 12, which was supplemented by the separation of cells from the mixture. In curing filtration with a 0.2 μm non-sterile filter (as an alternative to 1 4. Method of claim No. 12, which is supplemented by restoring Shell to The suspension with the aqueous solution referred to in claim 2 by adding 1 ml of the aforementioned solution to the cell pellet according to claim 12, then mixing the suspended cell pellet and adjusting the conductivity. Conductivity is given to 30 mS.m "1 with a phosphate buffer solution (PBS) by reading the values with a conductivity meter 1 5. Method of claim No. 14, which is supplemented with additional components. Dissolution of PBS by dissolving 0.8% (N, \ 'volume) of NaCl, 0.02% (weight-to-volume) of KC1, 0.12% (wt \' volume) of NajHPO ,, and 0.02%. (Weight-to-volume) of KH2P04 in high-quality "pure water" 1. 6. Method of claim 13, which is supplemented by restoring cells to a higher concentration of cells. The suspension with aqueous solution referred to in claim 2 by flushing of the trapped cells on the filter. The cells are then suspended with the solution described in Clause 2, volume 1 ml ------------
1. วิธีการเตรียมองค์ประกอบแขวนลอยเซลล์เพื่อการตรวจวัดความเป็นพิษของตัวอย่างด้วย เทคนิควิธีไดอิเล็กทรอโฟรีซีซ ขั้นตอนการเตรียมเริ่มต้นโดยการผสมเซลล์กับตัวอย่างที่ต้องการ วิเคราะห์ แล้วทำการบ่มของผสมดังกล่าวเพื่อการตอบสนองของเซลล์ต่อสารพิษที่มีในตัวอย่าง จาก นั้นทำการแยกเซลล์ออกจากของผสมในการบ่มเซลล์ ซึ่งจะได้เซลล์ที่พร้อมนำไปใช้ในการวิเคราะห์ ด้วยเทคนิควิธีไดอิเล็กทรอโฟรีซีซต่อไป1. Methods of preparation of cell suspension components for the determination of toxicity of samples are also used. Dielectrophoresis technique The preparation process begins by mixing the cells with the sample to be analyzed, then incubating the mixture for the cellular response to the toxin contained in the sample, and then separating the cells from the cell-curing mix. This will get cells that are ready for analysis. With the technique of dielectrophoresis