TH115319A - TNFR-Ig production - Google Patents

TNFR-Ig production

Info

Publication number
TH115319A
TH115319A TH501004021A TH0501004021A TH115319A TH 115319 A TH115319 A TH 115319A TH 501004021 A TH501004021 A TH 501004021A TH 0501004021 A TH0501004021 A TH 0501004021A TH 115319 A TH115319 A TH 115319A
Authority
TH
Thailand
Prior art keywords
culture
glutamine
conditions
per unit
accumulated
Prior art date
Application number
TH501004021A
Other languages
Thai (th)
Other versions
TH65462B (en
TH115319B (en
Inventor
ดราโป นายเดนนิส
ล่วน นายเหยิน-ตุง
อาร์. เมอร์เซอร์ นายเจมส์
หวัง นายเวินกี
ลาสโก นายแดเนียล
Original Assignee
นางดารานีย์ วัจนะวุฒิวงศ์
นางสาวสนธยา สังขพงศ์
Filing date
Publication date
Application filed by นางดารานีย์ วัจนะวุฒิวงศ์, นางสาวสนธยา สังขพงศ์ filed Critical นางดารานีย์ วัจนะวุฒิวงศ์
Publication of TH115319B publication Critical patent/TH115319B/en
Publication of TH115319A publication Critical patent/TH115319A/en
Publication of TH65462B publication Critical patent/TH65462B/en

Links

Abstract

DC60 ระบบการผลิตโปรตีน และ/หรือ a-เบต้า ในการเพาะเลี้ยงเซลล์ในปริมาณมากที่ ได้รับการปรับปรุงให้ดีขึ้น โดยเฉพาะอย่างยิ่ง ในอาหารเลี้ยงเชื้อที่มีลักษณะเฉพาะหนึ่งหรือ มากกว่าต่อไปนี้ i) ความเข้มข้นกรดอะมิโนสะสมที่สูงกว่า 70 mM โดยประมาณ, ii) อัตราส่วน โมลาร์ของกลูตามีนสะสมต่อแอสพาราจีนสะสมที่น้อยกว่า 2 โดยประมาณ, iii) อัตราส่วนโมลาร์ ของกลูตามีนสะสมต่อกรดอะมิโนรวมสะสมที่น้อยกว่า 0.2 โดยประมาณ; iv) อัตราส่วนโมลาร์ ของไอออนอนินทรีย์สะสมต่อกรดอะมิโนรวมสะสม ระหว่าง 0.4 ถึง 1 โดยประมาณ หรือ v) ความเข้มข้นรวมของกลูตามีนสะสม และแอสพาราจีนสะสมระหว่าง 16 และ 36 mM โดยประมาณถูกจัดไว้ การใช้ระบบดังกล่าวอำนวยให้เกิดระดับการผลิตเบต้าที่สูง และลดการ สะสมของปัจจัยที่ไม่ต้องการบางประการ เช่น แอมโมเนียม และ/หรือ แลกเตท นอกจากนี้ วิธีการ เพาะเลี้ยงซึ่งรวมถึงการเปลี่ยนแปลงของอุณหภูมิครึ่งโดยปกติรวมถึงการลดอุณหภูมิ เมื่อได้ เพาะเลี้ยงถึง 20-80% โดยประมาณของความหนาแน่นของเซลล์สูงสุดถูกจัดไว้อีกทางเลือกหนึ่ง หรือนอกเหนือจากนี้ การประดิษฐ์ปัจจุบันจัดให้มีวิธีการลักษณะที่หลังจากบรรลุถึงระดับสูงสุด จะมีระดับแลกเตท และ/หรือ แอมโมเนียมในการเพาะเลี้ยงที่ลดลงอยู่ตลอดเวลา DC60 protein and / or a-beta production system in mass cell culture at Has been improved Especially In one characteristic medium or I) Accumulated amino acid concentrations above 70 mM approx., Ii) Molar ratio of accumulated glutamine to accumulated aspartame is approximately less than 2, iii) Mo ratios. Lar Of accumulated glutamine against total amino acids that are less than approximately 0.2; iv) Molar ratio Of the accumulated inorganic ions against the accumulated amino acid approximately 0.4 to 1, or v) the total concentration of accumulated glutamine. And asparagene accumulation between approximately 16 and 36 mM was provided. The use of such systems facilitates a high level of beta production and reduces the accumulation of some undesirable factors such as ammonium and / or lactate. In addition, the culture method, which includes the normal half temperature change Including a temperature reduction when cultured to approximately 20-80% of the maximum cell density was provided as an alternative. Or other than this The present invention provides a method of characteristics that, after achieving the highest degree There will be a constant decrease in lactate and / or ammonium levels in culture.

Claims (7)

ข้อถือสิทธฺ์ (ทั้งหมด) ซึ่งจะไม่ปรากฏบนหน้าประกาศโฆษณา :------22/03/2561------(OCR) หน้า 1 ของจำนวน 14 หน้า ข้อถือสิทธิ 1. วิธีการผลิต TNFR-Ig ในการเพาะเลี้ยงเซลล์ในการผลิตแบบปริมาณมากซึ่งประกอบรวม ด้วยขั้นตอนของ การจัดเตริยมการเพาะเลี้ยงเซลล์ซึ่งประกอบรวมด้วย เซลล์สัตว์เลี้ยงลูกด้วยนมที่ประกอบด้วยยีนที่เข้ารหัสเป็น TNFR-Ig, ซึ่งยีนถูกแสดงออก ภายใต้สภาพของการเพาะเลี้ยงเชลล์ และ อาหารเลี้ยงเชื้อที่ประกอบด้วยกลูตามีน และมีลักษณะเฉพาะพิเศษของอาหารเลี้ยงเชื้อที่ คัดเลือกได้จากกลุ่มที่ประกอบด้วย: (0 ปริมาณกรดอะมิโนสะสมต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 70 mM, (ii) อัตราส่วนโมลาร์ของกลูตามีนสะสมต่อแอสพาราจีนสะสมที่น้อยกว่า 2, (iii) อัตราส่วนโมลาร์ ของกลูตามีนสะสมต่อกรดอะมิโนรวมสะสมที่น้อยกว่า 0.2, (iv) อัตราส่วนโมลาร์ของไอออน อนินทริย์สะสมต่อกรดอะมิโนรวมสะสมระหว่าง 0.4 ถึง 1, (v) ปริมาณรวมสะสมของ กลูตามีน และแอสพาราจีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 16 mM และการรวมกันของพวกมัน การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวในเฟสการเติบโตเริ่มด้นภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่ หนงเป็นคาบเวลาที่หนํ่งที่พอเพียงต่อการให้เซลล์ดังกล่าวขยายพันธุจนถึงความหนาแน่นของเซลล์ที่ มีชีวิตในช่วง 20% - 80% ของความหนาแน่นเซลล์ที่มีชีวิตอยู่สูงสุดที่เป็นไปได้หากการเพาะเลี้ยง ดังกล่าวถูกเก็บรักษาไว้ภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่หนํ่ง การเปลี่ยนแปลงอย่างน้อยหนํ่งสภาพการเพาะเลี้ยง, เพื่อให้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่สองถูก ประยุกต์ใช้ การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวเป็นคาบเวลาที่สองภายใต้สภาพเซตที่สอง และเป็น คาบเวลาที่สองเพื่อให้ TNFR-Ig เกิดการสะสมในการเพาะเลี้ยงเซลล์ 2. วิธีการผลิต TNFR-Ig ในการเพาะเลี้ยงเซลล์ในการผลิตแบบ\'ปริมาณมากซึ่งประกอบด้วย รวมขั้นตอนของ การจัดเตริยมการเพาะเลี้ยงเซลล์ซึ่งประกอบรวมด้วย เซลล์สัตว์เลี้ยงลูกด้วยนมที่ประกอบด้วยยีนที่เข้ารหัสเป็น TNFR-Ig, ซึ่งยีนถูกแสดงออก ภายใต้สภาพของการเพาะเลี้ยงเซลล์ และ อาหารเลี้ยงเชื้อที่ประกอบด้วยปริมาณกรดอะมิโนสะสมต่อหน่วยปริมาตรมากกว่า 70 mM และ อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวซึ่งประกอบด้วยกลูตามีน และอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวซึ่งมีสอง ลักษณะเฉพาะพิเศษของอาหารเลี้ยงเชื้อที่อัดเลือกได้จากกลุ่มที่ประกอบด้วย: (0 อัตราส่วนโมลาร์ ของกลูตามีนสะสมต่อแอสพาราจีนสะสมที่น้อยกว่า 2, (ii) อัตราส่วนโมลาร์ของกลูตามีนสะสมต่อ กรดอะมิโนรวมสะสมที่น้อยกว่า 0.2, (iii) อัตราส่วนโมลาร์ของไอออนอนินทริย์สะสมต่อกรด หน้า 2 ของจำนวน 14 หน้า อะมิโนรวมสะสมระหว่าง 0.4 ถึง 1, (iv) ปริมาณรวมสะสมของกลูตามีนและแอสพาราจีนต่อหน่วย ปริมาตรที่มากกว่า 16 mM และการรวมกันของพวกมัน การเก็บรักษาการเพาะเลียงดังกล่าวในเฟสการเติบโตเริ่มต้นภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่ หนึ๋งเป็นคาบเวลาที่หนํ่งที่พอเพียงต่อการให้เซลล์ดังกล่าวขยายพันธุจนถึงความหนาแน่นของเชลล์ที่ มีชีวิตในช่วง 20% - 80% ของความหนาแน่นเซลล์ที่มีชีวิตอยู่สูงสุคที่เป็นไปไต้หากการเพาะเลี้ยง ดังกล่าวถูกเก็บรักษาไว้ภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่หนึ๋ง การเปลี่ยนแปลงอย่างน้อยหนํ่งสภาพการเพาะเลี้ยง, เพื่อให้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่สองถูก ประยุกต์ใช้ การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวเป็นคาบเวลาที่สองภายใต้สภาพเซตที่สอง และเป็น คาบเวลาที่สองเพื่อให้ TNFR-Ig เกิดการสะสมในการเพาะเลี้ยงเซลล์ 3. วิธีการผลิต TNFR-Ig ในการเพาะเลี้ยงเซลล์ในการผลิตแบบปริมาณมากซํ่งประกอบรวม ด้วยขั้นตอนของ การจัดเตรยมการเพาะเลี้ยงเซลล์ซื่งประกอบรวมด้วย เซลล์สัตว์เลี้ยงถูกด้วยนมที่ประกอบด้วยยีนที่เช้ารหัสเป็น TNFR-Ig ซํ่งยีนถูกแสดงออก ภายใต้สภาพของการเพาะเลี้ยงเซลล์ และ อาหารเลี้ยงเชื้อที่ประกอบด้วยอัตราส่วนโมลาร์ของกถูตามีนสะสมต่อแอสพาราจีนสะสมที่ น้อยกว่า 2 และ อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวชํ่งประกอบด้วยกลูตามีน และอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวชึ๋งมีสอง ลักษณะเฉพาะพิเศษของอาหารเลี้ยงเชื้อที่คัดเลือกได้จากกลุ่มที่ประกอบด้วย: (0 อาหารเลี้ยงเชื้อซํ่ง ประกอบด้วยปริมาณกรดอะมิโนสะสมต่อหน่วยปริมาตรมากกว่า 70 mM, (ii) อัตราส่วนโมลาร์ของ กลูตามีนสะสมต่อกรดอะมิโนรวมสะสมที่น้อยกว่า 0.2, (iii) อัตราส่วนโมลาร์ของไอออนอนินทรย์ สะสมต่อกรดอะมิโนรวมสะสมระหว่าง 0.4 ถึง 1, (iv) ปริมาณรวมสะสมของกลูตามีน และแอสพารา จีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 16 mM และการรวมกันของพวกมัน การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวในเฟสการเติบโตเริ่มด้นภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่ ห\'นงเป็นคาบเวลาที่หนงที่พอเพียงต่อการให้เซลล์ดังกล่าวขยายพันธุจนถึงความหนาแน่นของเซลล์ที่ มีชีวิตในช่วง 20% - 80% ของความหนาแน่นเซลล์ที่มีชีวิตอยู่สูงสูคที่เป็นไปได้หากการเพาะเลี้ยง ดังกล่าวถูกเก็บรักษาไว้ภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่หนํ่ง การเปลี่ยนแปลงอย่างน้อยหนํ่งสภาพการเพาะเลี้ยง, เพื่อให้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่สองถูก ประยุกต์ใช้ การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวเป็นคาบเวลาที่สองภายใต้สภาพเซตที่สอง และเป็น คาบเวลาที่สองเพื่อให้ TNFR-Ig เกิดการสะสมในการเพาะเลี้ยงเซลล์ 4. วิธีการผลิต TNFR-Ig ในการเพาะเลี้ยงเซลล์ในการผลิตแบบ\'ปริมาณมากซํ่งประกอบรวม ด้วยขั้นตอนของ หน้า 3 ของจำนวน 14 หน้า การจัดเตริยมการเพาะเลี้ยงเซลล์ซํ่งประกอบรวมด้วย เซลล์สัตว์เลี้ยงลูกด้วยนมที่ประกอบด้วยยีนที่เข้ารหัสเป็น TNFR-Ig, ซึ๋งยีนถูกแสดงออก ภายใต้สภาพของการเพาะเลียงเซลล์ และ อาหารเลี้ยงเชื้อที่ประกอบด้วยอัตราส่วนโมลาร์ของกลูตามีนสะสมต่อกรดอะมิโนรวมสะสม ที่น้อยกว่า 0.2 และ อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวซํ่งประกอบด้วยกลูตามีน และอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวซํ่งมีสอง ลักษณะเฉพาะพิเศษของอาหารเลี้ยงเชื้อที่คัดเลือกได้จาก.กลุ่มที่ประกอบด้วย: (i) อาหารเลี้ยงเชื้อซํ่ง ประกอบด้วยปริมาณกรดอะมิโนสะสมต่อหน่วยปริมาตรมากกว่า 70 mM, (ii) อัตราส่วนโมลาร์ของ กถูตามีนสะสมต่อแอสพาราจีนสะสมที่น้อยกว่า 2, (iii) อัตราส่วนโมลาร์ของไอออนอนินทริย์สะสม ต่อกรดอะมิโนรวมสะสมระหว่าง 0.4 ถึง 1, (iv) ปริมาณรวมสะสมของกลูตามีน และ แอสพาราจีน ต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 16 mM และการรวมกันของพวกมัน การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวในเฟสการเติบโตเริ่มด้นภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่ หนื่งเป็นคาบเวลาที่หนงที่พอเพียงต่อการให้เซลล์ดังกล่าวขยายพันธุจนถึงความหนาแน่นของเซลล์ที่ มีชีวิตในช่วง 20% - 80% ของความหนาแน่นเซลล์ที่มีชีวิตอยู่ลูงสุดที่เป็นไปได้หากการเพาะเลี้ยง ดังกล่าวถูกเก็บรักษาไว้ภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่หนํ่ง การเปลี่ยนแปลงอย่างน้อยหนํ่งสภาพการเพาะเลี้ยง, เพื่อให้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่สองถูก ประยุกต์ใช้ การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวเป็นคาบเวลาที่สองภายใต้สภาพเซตที่สอง และเป็น คาบเวลาที่สองเพื่อให้ TNFR-Ig เกิดการสะสมในการเพาะเลี้ยงเซลล์ 5. วิธีการผลิต TNFR-Ig ในการเพาะเลี้ยงเซลล์ในการผลิตแบบปริมาณมากซํ่งประกอบรวม ด้วยขั้นตอนของ การจัดเตริยมการเพาะเลี้ยงเซลล์ซํ่งประกอบรวมด้วย เซลล์สัตว์เลี้ยงลูกด้วยนมที่ประกอบด้วยยีนที่เข้ารหัสเป็น TNFR-Ig, ซงยีนถูกแสดงออก ภายใต้สภาพของการเพาะเลี้ยงเซลล์ และ อาหารเลี้ยงเชื้อที่ประกอบด้วยอัตราส่วนโมลาร์ของไอออนอนินทริย์สะสมต่อกรดอะมิโน รวมสะสมระหว่าง 0.4 ถึง 1 และ อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวชํ่งประกอบด้วยกลูตามีน และอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวซํ่งมีสอง ลักษณะเฉพาะพิเศษของอาหารเลี้ยงเชื้อที่คัดเลือกได้จากกลุ่มที่ประกอบด้วย: (0 อาหารเลียงเชือซึ๋ง ประกอบด้วยปริมาณกรดอะมิโนสะสมต่อหน่วยปริมาตรมากกว่า 70 mM, (ii) อัตราส่วนโมลาร์ของ กลูตามีนสะสมต่อแอสพาราจีนสะสมที่น้อยกว่า 2, (iii) อัตราส่วนโมลาร์ของกลูตามีนสะสมต่อ กรดอะมิโนรวมสะสมที่น้อยกว่า 0.2, (iv) ปริมาณรวมสะสมของกลูตามีนและแอสพาราจีนต่อหน่วย ปริมาตรที่มากกว่า 16 mM และการรวมคันของพวกมัน หน้า 4 ของจำนวน 14 หน้า การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวในเฟสการเติบโตเริ่มต้นภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่ หนี่งเป็นคาบเวลาที่หนี่งที่พอเพียงต่อการให้เซลล์ดังกล่าวขยายพันธุจนถึงความหนาแน่นของเซลล์ที่ มีชีวิตในช่วง 20% - 80% ของความหนาแน่นเชลล์ที่มีชีวิตอยู่สูงสุดที่เป็นไปไต้หากการเพาะเลี้ยง ดังกล่าวถูกเก็บรักษาไว้ภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่หนี่ง การเปลี่ยนแปลงอย่างน้อยหนงสภาพการเพาะเลี้ยง, เพื่อให้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่สองถูก ประยุกต์ใช้ การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวเป็นคาบเวลาที่สองภายใต้สภาพเซตที่สอง และเป็น คาบเวลาที่สองเพื่อให้ TNFR-Ig เกิดการสะสมในการเพาะเลี้ยงเซลล์ 6. วิธีการผลิต TNFR-Ig ในการเพาะเลี้ยงเซลล์ในการผลิตแบบ\'ปริมาณมากซํ่งประกอบรวม ด้วยขั้นตอนของ การจัดเตรยมการเพาะเลี้ยงเซลล์ซึ่งประกอบรวมด้วย เซลล์สัตว์เลี้ยงลูกด้วยนมที่ประกอบด้วยยีนที่เข้ารหัสเป็น TNFR-Ig, ซึ่งยีนถูกแสดงออก ภายใต้สภาพของการเพาะเลี้ยงเซลล์ และ อาหารเลี้ยงเชื้อที่ประกอบด้วยปริมาณรวมสะสมของกลูตามีน และแอสพาราจีนต่อหน่วย ปริมาตรที่มากกว่า 16 mM และ อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวซึ่งประกอบด้วยกลูตามีน และอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวซึ่งมีสอง ลักษณะเฉพาะพิเศษของอาหารเลี้ยงเชื้อที่คัดเลือกไต้จากกลุ่มที่ประกอบด้วย: (0 อาหารเลี้ยงเชื้อซึ่ง ประกอบด้วยปริมาณกรดอะมิโนสะสมต่อหน่วยปริมาตรมากกว่า 70 mM, (ii) อัตราส่วนโมลาร์ของก ลูตามีนสะสมต่อแอสพาราจีนสะสมที่น้อยกว่า 2, (iii) อัตราส่วนโมลาร์ของกลูตามีนสะสมต่อกรดอะ มิโนรวมสะสมที่น้อยกว่า 0.2, (iv) อัตราส่วนโมลาร์ของไอออนอนินทรีย์สะสมต่อกรดอะมิโนรวม สะสมระหว่าง 0.4 ถึง นเละการรวมกันของพวกมัน การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวในเฟสการเติบโตเริ่มด้นภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่ หนี่งเป็นคาบเวลาที่หนี่งที่พอเพียงต่อการให้เซลล์ดังกล่าวขยายพันธุจนถึงความหนาแน่นของเชลล์ที่ มีชีวิตในช่วง 20% - 80% ของความหนาแน่นเซลล์ที่มีชีวิตอยู่สูงสุดที่เป็นไปได้หากการเพาะเลี้ยง ดังกล่าวถูกเก็บรักษาไว้ภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่หนํ่ง การเปลี่ยนแปลงอย่างน้อยหนี่งสภาพการเพาะเลี้ยง เพื่อให้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่สองถูก ประยุกต์ใช้ การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวเป็นคาบเวลาที่สองภายใต้สภาพเซตที่สอง และเป็น คาบเวลาที่สองเพื่อให้ TNFR-Ig เกิดการสะสมในการเพาะเลี้ยงเซลล์ 7. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่สภาพการเพาะเลี้ยงเชลล์ดังกล่าวในขั้นตอนการ เปลี่ยนแปลงอย่างน้อยหนํ่งสภาพการเพาะเลี้ยงดังกล่าวคัดเลือกได้จากกลุ่มที่ประกอบด้วย: (i) อุณหภูมิ, (ii) pH, (iii) ออสโมลาร์ริตี้, (iv) ระดับการเหนี่ยวนำทางเคมี และการรวมกันของ พวกมัน หน้า5ของจำนวน14หน้า 8. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ความเข้มข้นกลูตามีนเริ่มต้นของอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมี ค่าน้อยกว่า หรือ เท่ากับ 13 mM 9. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ความเข้มข้นกลูตามีนเริ่มต้นของอาหารเลียงเชื้อดังกล่าวมี ค่าน้อยกว่า หรือ เท่ากับ 10 mM 51 0. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ความเข้มข้นกลูตามีนเริ่มต้นของอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าว มีค่าน้อยกว่า หรือ เท่ากับ 7 mM 1 1. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ความเข้มข้นกลูตามีนเริ่มต้นของอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าว มีค่าน้อยกว่า หรือ เท่ากับ 4 mM 1 2. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมสะสมต่อหน่วยปริมาตรของกลูตามีนของ อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวน้อยกว่า หรือ เท่ากับ 13 mM 1 3. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมสะสมต่อหน่วยปริมาตรของกลูตามีนของ อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวน้อยกว่า หรือ เท่ากับ 10 mM 1 4. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมสะสมต่อหน่วยปริมาตรของกลูตามีนของ อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวน้อยกว่า หรือ เท่ากับ 7 mM 1 5. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมสะสมต่อหน่วยปริมาตรของกลูตามีนของ อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวน้อยกว่า หรือ เท่ากับ 4 mM 1 6. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่กลูตามีนถูกจัดให้เพียงแค"ในอาหารเลี้ยงเชื้อเริ่มต้นที่ จุดเริ่มต้นของการเพาะเลี้ยงเซลล์ 1 7. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ความเข้มข้นของเหล็กที่ละลายไต้ในอาหารเลี้ยงเชื้อมีค่า มากกว่า 5 เบฬ 1 8. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ความหนาแน่นของเซลล์ที่มีชีวิตของการเพาะเลี้ยง ดังกล่าวถูกวัดบนพื้นฐานของคาบเวลา 1 9. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ความมีชีวิตของการเพาะเลี้ยงดังกล่าวถูกวัดเป็นระยะ 2 0. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ระดับแลกเตทดังกล่าวของการเพาะเลี้ยงดังกล่าวถูกวัด บนพื้นฐานของคาบเวลา 2 1. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ระดับแอมโมเนียมดังกล่าวของการเพาะเลี้ยงดังกล่าวถูก วัดบนพื้นฐานของคาบเวลา 2 2. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ไตเตอร์ดังกล่าวของการเพาะเลี้ยงดังกล่าวถูกวัดบน พื้นฐานของคาบเวลา 2 3. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ออสโมลาร์ริตี้ของการเพาะเลี้ยงดังกล่าวถูกวัดบน พื้นฐานของคาบเวลา 2 4. วิธีการของข้อใดข้อหนํ่งของข้อถือสิทธิที่ 18-23 โดยที่การวัดดังกล่าวถูกทำทุกวัน หน้า 6 ของจำนวน 14 หน้า 2 5. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ความหนาแน่นเริ่มต้นของเซลล์สัตว์เลี้ยงลูกด้วยนม ดังกล่าวเป็นอย่างน้อย 2x1 อ2 เชลล์/มิลลิลิตร 2 6. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ความหนาแน่นเริ่มต้นของเซลล์สัตว์เลียงลูกด้วยนม ดังกล่าวเป็นอย่างน้อย 2X103 เซลล์/มิลลิลิตร 52 7. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ความหนาแน่นเริ่มต้นของเซลล์สัตว์เลี้ยงลูกด้วยนม ดังกล่าวเป็นอย่างน้อย 2x104 เซลล์/มิลลิลิตร 2 8. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ความหนาแน่นเริ่มต้นของเซลล์สัตว์เลี้ยงลูกด้วยนม ดังกล่าวเป็นอย่างน้อย 2x105 เซลล์/มิลลิลิตร 2 9. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ความหนาแน่นเริ่มต้นของเซลล์สัตว์เลี้ยงลูกด้วยนม ดังกล่าวเป็นอย่างน้อย 2x106 เซลล์/มิลลิลิตร 3 0. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ความหนาแน่นเริ่มต้นของเซลล์สัตว์เลี้ยงลูกด้วยนม ดังกล่าวเป็นอย่างน้อย 5x106 เซลล์/มิลลิลิตร 3 1. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ความหนาแน่นเริ่มต้นของเซลล์สัตว์เลี้ยงลูกด้วยนม ดังกล่าวเป็นอย่างน้อย 1 Oxl 06 เชลล์/มิลลิลิตร 3 2. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ขั้นตอนการจัดเตรียมประกอบรวมด้วยการจัดเตรียมอย่าง น้อย 1000 ลิตรของการเพาะเลี้ยง 3 3. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ขั้นตอนการจัดเตรียมประกอบรวมด้วยการจัดเตรียมอย่าง น้อย 2500 ลิตรของการเพาะเลี้ยง 3 4. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ขั้นตอนการจัดเตรียมประกอบรวมด้วยการจัดเตรียมอย่าง น้อย 5000 ลิตรของการเพาะเลี้ยง 3 5. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ขั้นตอนการจัดเตรียมประกอบรวมด้วยการจัดเตรียมอย่าง น้อย 8000 ลิตรของการเพาะเลี้ยง 3 6. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ขั้นตอนการจัดเตรียมประกอบรวมด้วยการจัดเตรียมอย่าง น้อย 10000 ลิตรของการเพาะเลี้ยง 3 7. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ขั้นตอนการจัดเตรียมประกอบรวมด้วยการจัดเตรียมอย่าง น้อย 12000 ลิตรของการเพาะเลี้ยง 3 8. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่สภาพเซตที่หนํ่งดังกล่าวประกอบรวมด้วยช่วงอุณหภูมิที่ หนึ่งซํ่งโดยอยู่ที่ 30 ถึง 42 องศาเซลเซียส 3 9. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่สภาพเซตที่หนึ่งดังกล่าวประกอบรวมด้วยช่วงอุณหภูมิที่ หนึ่งซึ๋งโดยอยู่ที่ 32 ถึง 40 องศาเซลเซียส 4 0. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่สภาพเซตที่หนึ่งดังกล่าวประกอบรวมด้วยช่วงอุณหภูมิที่ หนึ่งซื่งโดยอยู่ที่ 34 ถึง 38 องศาเซลเซียส หน้า7ของจำนวน14หน้า 4 1. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่สภาพเซตที่หนงดังกล่าวประกอบรวมด้วยช่วงอุณหภูมิที่ หนี่งซํ่งโดยอยู่ที่ 36 ถึง 37 องศาเซลเซียส 4 2. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่สภาพเซตที่หนี่งดังกล่าวประกอบรวมด้วยช่วงอุณหภูมิที่ หนํ่งซื่งโดยอยู่ที่ 37 องศาเซลเซียส 4 3. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่สภาพเซตที่สองดังกล่าวประกอบรวมด้วยช่วงอุณหภูมิที่ สองซํ่งโดยอยู่ที่ 25 ถึง 41 องศาเซลเซียส 4 4. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่สภาพเซตที่สองดังกล่าวประกอบรวมด้วยช่วงอุณหภูมิที่ สองซํ่งโดยอยู่ที่ 27 ถึง 38 องศาเซลเซียส 4 5. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่สภาพเซตที่สองดังกล่าวประกอบรวมด้วยช่วงอุณหภูมิที่ สองซํ่งโดยอยู่ที่ 29 ถึง 35 องศาเซลเซียส 4 6. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่สภาพเซตที่สองดังกล่าวประกอบรวมด้วยช่วงอุณหภูมิที่ สองซํ่งโดยอยู่ที่ 29 ถึง 33 องศาเซลเซียส 4 7. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่สภาพเซตที่สองดังกล่าวประกอบรวมด้วยช่วงอุณหภูมิที่ สองซงโดยอยู่ที่ 30 ถึง 32 องศาเซลเซียส 4 8. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่สภาพเซตที่สองดังกล่าวประกอบรวมด้วยช่วงอุณหภูมิที่ สองซํ่งโดยอยู่ที่ 31 องศาเซลเซียส 4 9. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 ซํ่งประกอบรวมเพิ่มเติมด้วยขั้นตอนการเปลี่ยนแปลงที่สองต่อ จากการเปลี่ยนแปลงอย่างน้อยหนี่งสภาพการเพาะเลี้ยงดังกล่าวครั้งแรกซํ่งประกอบรวมด้วยการ เปลี่ยนแปลงอย่างน้อยหนี่งสภาพการเพาะเลี้ยง, เพื่อให้สภาพเซตที่สามถูกประยุกต์ใช้กับการ เพาะเลี้ยง 5 0. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 49 โดยที่ขั้นตอนการเปลี่ยนแปลงที่สองประกอบรวมด้วยการ เปลี่ยนแปลงอย่างน้อยหนี่งสภาพการเพาะเลี้ยงที่คัดเลือกได้จากกลุ่มที่ประกอบด้วย: (0 อุณหภูมิ, (ii) pH, (iii) ออสโมลาร์ริตี้, (iv) ระดับการเหนี่ยวนำทางเคมี และการรวมกันของพวกมัน 5 1. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 49 โดยที่สภาพเซตที่สามดังกล่าวประกอบรวมด้วยช่วงอุณหภูมิ ที่สามซํ่งโดยอยู่ที่ 25 ถึง 40 องศาเซลเซียส 5 2. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 49 โดยที่สภาพเซตที่สามดังกล่าวประกอบรวมด้วยช่วงอุณหภูมิ ที่สามซํ่งโดยอยู่ที่ 27 ถึง 37 องศาเซลเซียส 5 3. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 49 โดยที่สภาพเซตที่สามดังกล่าวประกอบรวมด้วยช่วงอุณหภูมิ ที่สามซํ่งโดยอยู่ที่ 29 ถึง 34 องศาเซลเซียส 5 4. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 49 โดยที่สภาพเซตที่สามดังกล่าวประกอบรวมด้วยช่วงอุณหภูมิ ที่สามซึ๋งโดยอยู่ที่ 30 ถึง 32 องศาเซลเซียส 5 5. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่คาบเวลาที่หนี่งอยู่ที่ระหว่าง 0-8 วัน 5 6. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1โดยที่คาบเวลาหนี่งอยู่ที่ระหว่าง 1-7วัน หน้า8ของจำนวน14หน้า 5 7. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่คาบเวลาหนํ่งอยู่ที่ระหว่าง 2-6 วัน 5 8. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่คาบเวลาหนํ่งอยู่ที่ระหว่าง 3-5วัน 5 9. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่คาบเวลาหนํ่งอยู่ที่ 4 วัน 6 0. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่คาบเวลาหนํ่งอยู่ที่ 5 วัน 6 1. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่คาบเวลาหนงอยู่ที่ 6 วัน 6 2. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่เวลารวมของคาบเวลาที่หนึ๋งดังกล่าว และคาบเวลาที่สอง ดังกล่าวเป็นอย่างน้อย 5 วัน 6 3. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ในขั้นตอนการเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวเป็น คาบเวลาที่สอง, ระดับแลกเตทลดลงต่อจากระดับแลกเตทในการเพาะเลี้ยงที่ถึงระดับสูงสุด 6 4. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ในขั้นตอนการเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวเป็น คาบเวลาที่สอง, ระดับแอมโมเนียมลดลงต่อจากระดับแอมโมเนียมในการเพาะเลี้ยงที่ถึงระดับสูงสุด 6 5. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมดังกล่าวของ TNFR-Ig ที่ผลิตขึ้นดังกล่าวเป็น อย่างน้อย 1.5 เท่าสูงกว่าปริมาณ TNFR-Ig ที่ผลิตขึ้นภายใต้สภาพที่เหมือนกัน หรือในอาหารเลี้ยงเชื้อ ที่เหมือนกันที่ปราศจากลักษณะเฉพาะพิเศษของอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าว 6 6. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมดังกล่าวของ TNFR-Ig ที่ผลิตขึ้นดังกล่าวเป็น อย่างน้อย 2 เท่าสูงกว่าปริมาณ TNFR-Ig ที่ผลิตขึ้นภายใต้สภาพที่เหมือนกัน หรือในอาหารเลี้ยงเชื้อที่ เหมือนกันที่ปราศจากลักษณะเฉพาะพิเศษของอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าว 6 7. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่การเพาะเลี้ยงเซลล์ดังกล่าวถูกจัดให้เพิ่มเติมด้วย ส่วนประกอบเสริม 6 8. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 67 โดยที่ส่วนประกอบเสริมดังกล่าวคัดเลือกไต้จากกลุ่มที่ ประกอบด้วยฮอร์โมน และ/หรือ โกรตแฟกเตอร์, ไอออนเฉพาะ (เช่น โซเดียม, คลอไรด์, แคลเซียม, แมกนีเซียม และฟอสเฟต), บัฟเฟอร์, วิตามิน, นิวคลิโอไซด์ หรือ นิวคลิโอไทด์, สารอาหารรอง (สารประกอบอนินทรีย์โดยปกติมีอยู่ที่ความเข้มข้นสุดท้ายตามาก), กรดอะมิโน, ลิปีด หรือกลูโคส 6 9. วิธีการผลิต TNFR-Ig ในการเพาะเลี้ยงเซลล์ในการผลิตแบบ\'ปริมาณมากซํ่งประกอบรวม ด้วยขั้นตอนของ การจัดเตรยมการเพาะเลี้ยงเซลล์ซึ๋งประกอบรวมด้วย เซลล์สัตว์เลี้ยงลูกด้วยนมที่ประกอบด้วยยีนที่เข้ารหัสเป็น TNFR-Ig, ซํ่งยีนถูกแสดงออก ภายใต้สภาพของการเพาะเลี้ยงเชลล์ และ อาหารเลี้ยงเชื้อที่กำหนดซํ่งประกอบด้วยกลูตามีน และมีอย่างน้อยสองลักษณะเฉพาะพิเศษ ของอาหารเลี้ยงเชื้อที่คัดเลือกได้จากกลุ่มที่ประกอบด้วย: i) ความเข้มข้นกรดอะมิโนเริ่มด้นที่มากกว่า 70 mM, ii) อัตราส่วนโมลาร์ของกลูตามีนต่อแอสพาราจีนที่น้อยกว่า 2, iii) อัตราส่วนโมลาร์ของ กลูตามีนต่อกรดอะมิโนรวมที่น้อยกว่า 0.2, iv) อัตราส่วนโมลาร์ของไอออนอนินทรีย์ต่อกรดอะมิโน รวมระหว่าง 0.4 ถึง 1 และ v) ความเข้มข้นรวมของกลูตามีนและแอสพาราจีนที่มากกว่า 16 mM หน้า 9 ของจำนวน 14 หน้า การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวในเฟสการเติบโตเริ่มต้นภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่ หนํ่งเป็นคาบเวลาที่หนํ่งที่พอเพียงต่อการให้เซลล์ดังกล่าวขยายพันธุในช่วง 20% - 80% ของความ หนาแน่นเซลล์ที่มีชีวิตอยู่สูงสุดที่เป็นไปไต้หากการเพาะเลี้ยงดังกล่าวถูกเก็บรักษาไว้ภายใต้สภาพการ เพาะเลี้ยงเซตที่หนํ่ง การเปลี่ยนแปลงอย่างน้อยหนงสภาพการเพาะเลี้ยง, เพื่อให้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่สองถูก ประยุกต์ใช้ การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวเป็นคาบเวลาที่สองภายใต้สภาพเซตที่สอง และเป็น คาบเวลาที่สองเพื่อให้ TNFR-Ig เกิดการสะสมในการเพาะเลี้ยงเซลล์ 7 1.ความเข้มข้นกรดอะมิโนเริ่มต้นที่มากกว่า 70 mM, ii) อัตราส่วนโมลาร์ของกลูตามีนต่อแอสพาราจีนที่น้อยกว่า 2, iii) อัตราส่วนโมลาร์ของ กลูตามีนต่อกรดอะมิโนรวมที่น้อยกว่า 0.2, iv) อัตราส่วนโมลาร์ของไอออนอนินทริย์ต่อกรดอะมิโน รวมระหว่าง0.4ถึง 1 และ v) ความเข้มข้นรวมของกลูตามีนและแอสพาราจีนที่มากกว่า 16 mM การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวในเฟสการเติบโตเริ่มต้นภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่ หนํ่งเป็นคาบเวลาที่หนํ่งที่พอเพียงต่อการให้เซลล์ดังกล่าวขยายพันธุในช่วง 20% - 80% ของความ หนาแน่นเซลล์ที่มีชีวิตอยู่สูงสุดที่เป็นไปไต้หากการเพาะเลี้ยงดังกล่าวถูกเก็บรักษาไว้ภายใต้สภาพการ เพาะเลี้ยงเซตที่หนง การเปลี่ยนแปลงอย่างน้อยหนึ๋งสภาพการเพาะเลี้ยง, เพื่อให้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่สองถูก ประยุกต์ใช้ การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวเป็นคาบเวลาที่สองภายใต้สภาพเซตที่สอง และเป็น คาบเวลาที่สองเพื่อให้ TNFR-Ig เกิดการสะสมในการเพาะเลี้ยงเชลล์ 7 1. วิธีการผลิต TNFR-Ig ในการเพาะเลี้ยงเซลล์ในการผลิตแบบปริมาณมากซํ่งประกอบรวม ด้วยขั้นตอนของ การจัดเตรยมการเพาะเลี้ยงเซลล์ซํ่งประกอบรวมด้วย เซลล์สัตว์เลี้ยงลูกด้วยนมที่ประกอบด้วยยีนที่เข้ารหัสเป็น TNFR-Ig ซํ่งยีนถูกแสดงออก ภายใต้สภาพของการเพาะเลี้ยงเซลล์ และ อาหารเลี้ยงเชื้อที่กำหนดซํ่งประกอบด้วยกถูตามีน และมีอย่างน้อยสี่ลักษณะเฉพาะพิเศษของ อาหารเลี้ยงเชื้อที่คัดเลือกไต้จากกลุ่มที่ประกอบด้วย: i) ความเข้มข้นกรดอะมิโนเริ่มต้นที่มากกว่า 70 หน้า 10 ของจำนวน 14 หน้า mM, ii) อัตราส่วนโมลาร์ฃองกลูตามีนต่อแอสพาราจีนที่น้อยกว่า 2, iii) อัตราส่วนโมลาร์ของ กลูตามีนต่อกรดอะมิโนรวมที่น้อยกว่า 0.2, iv) อัตราส่วนโมลาร์ของไอออนอนินทริยํต\'อกรดอะมิโน รวมระหว่าง 0.4 ถึง 1 และ v) ความเข้มข้นรวมของกลูตามีนและแอสพาราจีนที่มากกว่า 16 mM การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวในเฟสการเติบโตเริ่มต้นภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่ หนํ่งเปีนคาบเวลาที่หนํ่งที่พอเพียงต่อการให้เชลล์ดังกล่าวขยายพันธุในช่วง 20% - 80% ของความ หนาแน่นเซลล์ที่มีชีวิตอยู่สูงสุดที่เปีนไปไต้หากการเพาะเลี้ยงดังกล่าวถูกเก็บรักษาไว้ภายใต้สภาพการ เพาะเลี้ยงเซตที่หนํ่ง การเปลี่ยนแปลงอย่างน้อยหนํ่งสภาพการเพาะเลี้ยง, เพื่อให้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่สองถูก ประยุกต์ใช้ การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวเปีนคาบเวลาที่สองภายใต้สภาพเซตที่สอง และเปีน คาบเวลาที่สองเพื่อให้ TNFR-Ig เกิดการสะสมในการเพาะเลี้ยงเซลล์ 7 1.ความเข้มข้น กรดอะมิโนเริ่มต้นที่มากกว่า 70 mM, ii) อัตราส่วนโมลาร์ของกลูตามีนต่อแอสพาราจีนที่น้อยกว่า 2, iii) อัตราส่วนโมลาร์ของกลูตามีนต่อกรดอะมิโนรวมที่น้อยกว่า 0.2, iv) อัตราส่วนโมลาร์ของ ไอออนอนินทรย์ต่อกรดอะมิโนรวมระหว่าง 0.4 ถึง 1 และ v) ความเข้มข้นรวมของกลูตามีนและ แอสพาราจีนที่มากกว่า 16 mM การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวในเฟสการเติบโตเริ่มต้นภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่ หนํ่งเป็นคาบเวลาที่หนํ่งที่พอเพียงต่อการให้เซลล์ดังกล่าวขยายพันธุในช่วง 20% - 80% ของความ หนาแน่นเซลล์ที่มีชีวิตอยู่สูงสุดที่เป็นไปไต้หากการเพาะเลี้ยงดังกล่าวถูกเก็บรักษาไว้ภายใต้สภาพการ เพาะเลี้ยงเซตที่หนํ่ง การเปลี่ยนแปลงอย่างน้อยหนํ่งสภาพการเพาะเลี้ยง, เพื่อให้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่สองถูก ประยุกต์ใช้ การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวเป็นคาบเวลาที่สองภายใต้สภาพเซตที่สอง และเป็น คาบเวลาที่สองเพื่อให้ TNFR-Ig เกิดการสะสมในการเพาะเลี้ยงเซลล์ 7 3. วิธีการผลิต TNFR-Ig ในการเพาะเลี้ยงเซลล์ในการผลิตแบบปริมาณมากซึ๋งประกอบรวม ด้วยขั้นตอนของ การจัดเตรยมการเพาะเลี้ยงเซลล์ซํ่งประกอบรวมด้วย หน้า 11ของจำนวน 14หน้า เซลล์สัตว์เลี้ยงลูกด้วยนมที่ประกอบด้วยยีนที่เข้ารหัสเป็น TNFR-Ig, ซื่งยีนถูกแสดงออก ภายใต้สภาพของการเพาะเลี้ยงเซลล์ และ อาหารเลียงเชื้อซํ่งประกอบด้วยกลูตามีน และมีปริมาณรวมสะสมของกลูตามีน และ แอสพาราจีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 16 mM การเก็บรักษาการเพาะเลียงดังกล่าวในเฟสการเติบโตเริ่มด้นภายใต้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่ หนึ่งเป็นคาบเวลาที่หนึ่งที่พอเพียงต่อการให้เซลล์ดังกล่าวขยายพันธุในช่วง 20% - 80% ของความ หนาแน่นเซลล์ที่มีชีวิตอยู่สูงสุดที่เป็นไปได้หากการเพาะเลี้ยงดังกล่าวถูกเก็บรักษาไข้กายใต้สภาพการ เพาะเลี้ยงเซตที่หนึ่ง การเปลี่ยนแปลงอย่างน้อยหนึ่งสภาพการเพาะเลี้ยง, เพื่อให้สภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่สองถูก ประยุกต์ใช้ การเก็บรักษาการเพาะเลี้ยงดังกล่าวเป็นคาบเวลาที่สองภายใต้สภาพเซตที่สอง และเป็น คาบเวลาที่สองเพื่อให้ TNFR-Ig เกิดการสะสมในการเพาะเลี้ยงเชลล์ 7 4. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวประกอบรวมด้วยอาหารเลี้ยงเชื้อ ชื่งประกอบด้วยกลูตามีน และมีลักษณะเฉพาะพิเศษของอาหารเลี้ยงเชื้อที่คัดเลือกได้จากกลุ่มที่ ประกอบด้วย: (0 ความเข้มข้นกรดอะมิโนเริ่มด้นที่มากกว่า 70 mM, (ii) อัตราส่วนโมลาร์\'ของกลูตามีน เริ่มด้นต่อแอสพาราจีนเริ่มด้นที่น้อยกว่า 2, (iii) อัตราส่วนโมลาร์ของกลูตามีนเริ่มด้นต่อกรดอะมิโน รวมเริ่มด้นที่น้อยกว่า 0.2, (iv) อัตราส่วนโมลาร์ของไอออนอนินทรย์เริ่มด้นต่อกรดอะมิโนรวม เริ่มต้นระหว่าง 0.4 ถึง 1, (v) ความเข้มข้นรวมของกลูตามีนเริ่มด้น และแอสพาราจีนเริ่มด้นที่มากกว่า 16 mM และการรวมกันของพวกมัน 7 5. วิธีการของข้อใดข้อหนึ่งของข้อถือสิทธิ 1-6 หรือ 69-74 โดยที่ ระดับแลกเตทตากว่าระดับที่สังเกตได้ภายใต้สภาพที่เหมือนกันในอาหารเลี้ยงเชื้อที่ เหมือนกันที่ปราศจากลักษณะเฉพาะพิเศษของอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าว ระดับแอมโมเนียตรกว่าระดับที่สังเกตได้ภายใต้สภาพที่เหมือนกันในอาหารเลี้ยงเชื้อที่ เหมือนกันที่ปราศจากลักษณะเฉพาะพิเศษของอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าว และ ปริมาณรวมของ TNFR-Ig ที่ผลิตขึ้นอย่างน้อยสูงเท่ากับปริมาณที่สังเกตได้ภายใต้สภาพที่ เหมือนกันในอาหารเลี้ยงเชื้อที่เหมือนกันที่ปราศจากลักษณะเฉพาะพิเศษของอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าว 7 6. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่การเพาะเลี้ยงดังกล่าวไม่ได้เสริมด้วยส่วนประกอบ เพิ่มเติมตลอดช่วงการผลิต TNFR-Ig ดังกล่าว 7 7. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่การเพาะเลี้ยงดังกล่าวไม่ได้เสริมด้วยกลูตามีนเพิ่มเติม ตลอดช่วงการผลิต TNFR-Ig ดังกล่าว 7 8. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ความเข้มข้นของกลูตามีนในการเพาะเลี้ยงดังกล่าวลด น้อยลงไปอย่างเด่นชัด ก่อนขั้นตอนการเปลี่ยนแปลงไปเป็นสภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่สองดังกล่าว หน้า 12 ของจำนวน 14 หน้า 7 9. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ความเข้มข้นของกลูตามีนในการเพาะเลี้ยงดังกล่าวลด น้อยลงไปอย่างเด่นชัด ที่เวลาเดียวกันกับขั้นตอนการเปลี่ยนแปลงไปเป็นสภาพการเพาะเลี้ยงเซตที่ สองกังกล่าว 8 0. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ไกลซิลกสูตามีนถูกนำมาแทนที่กลูตามีนในการเพาะเลี้ยง กังกล่าว 8 1. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่อาหารเลี้ยงเชื้อกังกล่าวประกอบด้วย (0 ปริมาณกรด อะมิโนสะสมต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 70 mM, (ii) อัตราส่วนโมลาร์ของกลูตามีนสะสมต่อ แอสพาราจีนสะสมที่น้อยกว่า 2, (พ) อัตราส่วนโมลาร์ของกลูตามีนสะสมต่อกรดอะมิโนรวมสะสมที่ น้อยกว่า 0.2, (iv) อัตราส่วนโมลาร์ของไอออนอนินทริย์สะสมต่อกรดอะมิโนรวมสะสมระหว่าง 0.4 ถึง l,(v) ปริมาณรวมสะสมของกสูตามีนและแอสพาราจีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 16 mM 8 2. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่อาหารเลี้ยงเชื้อกังกล่าวที่ประกอบด้วย (i) ปริมาณกรด อะมิโนสะสมต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 70 mM, (ii) อัตราส่วนโมลาร์ของกลูตามีนสะสมต่อกรด อะมิโนรวมสะสมที่น้อยกว่า 0.2, (iii) อัตราส่วนโมลาร์ของไอออนอนินทรย์สะสมต่อกรดอะมิโน รวมสะสมระหว่าง 0.4 ถึง นเละ (iv) ปริมาณรวมสะสมของกลูตามีนและแอสพาราจีนต่อหน่วย ปริมาตรที่มากกว่า 16 mM 8 3. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมสะสมของฮีสติดีน, ไอโซลูซีน, ลูซีน, เมทไธโอโอนีน, ที!นิลอะลานีน, ทริปโตฟาน, ไธโรซีน และโพรลีนต่อหน่วยปริมาตรในอาหารเลี้ยง เชื้อกังกล่าวมีค่ามากกว่า 25 mM 8 4. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมสะสมของฮีสติดีน, ไอโซลูซีน, รุ)ซีน, เมทไธโอโอนีน, ที!นิลอะลานีน, ทริปโตฟาน, ไธโรซีน และโพรลีนต่อหน่วยปริมาตรในอาหารเลี้ยง เชื้อกังกล่าวมีค่ามากกว่า 35 mM 8 5. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมเริ่มด้นของฮีสติดีน, ไอโซลูซีน, ลูซีน, เมทไธโอโอนีน, ที!นิลอะลานีน, ทริปโตฟาน, ไธโรซีน และโพรลีนต่อหน่วยปริมาตรในอาหารเลี้ยง เชื้อกังกล่าวมีค่ามากกว่า 25 mM 8 6. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมเริ่มด้นของฮีสติดีน, ไอโซลูซีน, ลูซีน, เมทไธโอโอนีน, ที!นิลอะลานีน, ทริปโตฟาน, ไธโรซีน และโพรลีนต่อหน่วยปริมาตรในอาหารเลี้ยง เชื้อกังกล่าวมีค่ามากกว่า 35 mM 8 7. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่อาหารเลี้ยงเชื้อกังกล่าวมีลักษณะเฉพาะพิเศษของอาหาร เลี้ยงเชื้อที่คัดเลือกได้จากกลุ่มที่ประกอบด้วย: (0ปริมาณรวมสะสมของฮีสติดีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 1.7 mM (ii) ปริมาณรวมสะสมของไอโซลูชีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 3.5 mM (iii) ปริมาณรวมสะสมของถูซีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 5.5 mM (iv) ปริมาณรวมสะสมของไมไธโอนีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 2.0 mM หน้า 13 ของจำนวน 14 หน้า (v) ปริมาณรวมสะสมของฟนิลอะลานีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 2.5 rnM (vi) ปริมาณรวมสะสมของโพรลีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 2.5 mM (vii) ปริมาณรวมสะสมของทริปโตฟานต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 1.0 mM (viii) ปริมาณรวมสะสมของไธโรซีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 2.0 mM และ (ix) ปริมาณรวมสะสมของโพรลีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 2.5 mM 8 8. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีลักษณะเฉพาะพิเศษของอาหาร เลี้ยงเชื้อที่ดัดเลือกได้จากกลุ่มที่ประกอบด้วย: (0 ปริมาณเริ่มด้นของอิสติดีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 1.7 mM (ii) ปริมาณเริ่มด้นของไอโซลูซีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 3.5 mM (iii) ปริมาณเริ่มด้นของลูซีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 5.5 mM (iv) ปริมาณเริ่มด้นของเมไธโอนีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 2.0 mM (v) ปริมาณเริ่มด้นของพินิลอะลานีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 2.5 mM (vi) ปริมาณเริ่มด้นของโพรลีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 2.5 mM (vii) ปริมาณเริ่มด้นของทริปโตฟานต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 1.0 mM (viii) ปริมาณเริ่มด้นของไธโรซีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 2.0 mM (ix) ปริมาณเริ่มด้นของโพรลีนต่อหน่วยปริมาตรที่มากกว่า 2.5 mM 8 9. วิธีการของข้อลือสิทธิที่ 1 โดยที่\'ปริมาณรวมสะสมของซรนต่อหน่วยปริมาตรในอาหาร เลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 7 mM 9 0. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมสะสมของซรนต่อหน่วยปริมาตรในอาหาร เลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 10 mM 9 1. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่\'ปริมาณรวมสะสมของแอสพาราจีนต่อหน่วยปริมาตรใน อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 8 mM 9 2. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมสะสมของแอสพาราจีนต่อหน่วยปริมาตรใน อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 12 mM 9 3. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมเริ่มด้นของแอสพาราจีนต่อหน่วยปริมาตรใน อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 8 mM 9 4. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่\'ปริมาณรวมเริ่มด้นของแอสพาราจีนต่อหน่วยปริมาตรใน อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 12 mM 9 5. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมสะสมของฟอสฟอรัสต่อหน่วยปริมาตรใน อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 2.5 mM 9 6. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมสะสมของฟอสฟอรัสต่อหน่วยปริมาตรใน อาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 5 mM หน้า 14 ของจำนวน 14 หน้า 9 7. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมสะสมของกลตาเมตต่อหน่วยปริมาตรใน / J " อาหารเลียงเชอดังกล่าวมีค่านอยกว่า 1 mM 9 8. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่\'ปริมาณรวมสะสมของแคลเซียมแพนโธทีเนตต่อหน่วย ปริมาตรในอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 8 mg/L 59 9. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมสะสมของแคลเซียมแพนโธทีเนตต่อหน่วย ปริมาตรในอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 20 mg/L 10 0. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่\'ปริมาณรวมสะสมของนิโคตินาไมด์ต่อหน่วยปริมาตร ในอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 7 mg/L 10Disclaimer (all) which will not appear on the advertisement page. : ------ 22/03/2018 ------ (OCR) Page 1 of 14 pages Disclaimer 1. Production method TNFR-Ig in cell culture in mass production which Assembled included With the steps of Arrangement, cell culture, which includes A mammalian cell containing a gene encoded as TNFR-Ig, in which the gene is expressed. Under the conditions of Shell culture and glutamine-containing media. And has the special characteristics of the medium that Selected from a group consisting of: (0 amino acid content per unit volume greater than 70 mM, (ii) the molar ratio of cumulative glutamine to cumulative aspartine less than 2, (iii)). Molar ratio The accumulated glutamine to total amino acids was less than 0.2, (iv) the molar ratio of the ions. Accumulated inorganic amino acids between 0.4 and 1, (v) cumulative total content of glutamine and aspartame per unit volume greater than 16 mM and their combinations. Such cultures were maintained in the insetting phase under the set culture conditions. This is a period of time sufficient for such cells to multiply to the density of the Live in the range of 20% - 80% of the highest living cell density possible if culture It was preserved under the preservation conditions of the first set. Changes at least one of the cultures conditions, so that the second set of cultures conditions were applied, the preservation of such cultures was a second time under the second and second set conditions to allow TNFR-Ig is accumulated in cell culture. 2. TNFR-Ig production method in cell culture in \ 'mass production consisting of Included steps of Arrangement, cell culture, which includes A mammalian cell containing a gene encoded as TNFR-Ig, in which the gene is expressed. Under the conditions of cell culture and culture media containing accumulated amino acids per unit volume greater than 70 mM and such medium containing glutamine. And there are two The special characteristics of the injectable media are selected from a group that includes: (0 Molar Ratio Of cumulative glutamine per cumulative aspartate less than 2, (ii) the molar ratio of cumulative glutamine to Total amino acids accumulated at less than 0.2, (iii) Molar ratio of accumulated inorganic ions to acid P 2 of 14 p. Total amino accumulated between 0.4 to 1, (iv) total accumulated volume. Of glutamine and aspartame per unit Volumes greater than 16 mM and their combination Such cultivation was maintained in the initial growth phase under set culture conditions. One is a period of time sufficient for the cell to reproduce to the density of the affected shell. Live in the range of 20% - 80% of the highest living cell density is possible if cultured. It was preserved under one of the cultured conditions. Changes at least one of the cultures conditions, so that the second set of cultures conditions were applied, the preservation of such cultures was a second time under the second and second set conditions to allow TNFR-Ig is accumulated in cell culture. 3. Method for producing TNFR-Ig in cell culture in mass-composite production. With the steps of A cell culture arrangement which includes The mammalian cells containing the genes coded as TNFR-Ig were expressed. Under the conditions of cell culture and culture media containing accumulated molar ratios to accumulated aspartame less than 2, and such medium contained glutamine. And there are two such culture media The characteristics of the culture media were selected from the group consisting of: It consists of accumulated amino acids per unit volume greater than 70 mM, (ii) the molar ratio of The accumulated glutamine to total amino acids was less than 0.2, (iii) the molar ratio of the ioninanthol. Accumulated to amino acids accumulated between 0.4 and 1, (iv) cumulative total amounts of glutamine and asparagene per unit volume greater than 16 mM and their combinations. Such cultures were maintained in the insetting phase under the set culture conditions. Y \ 'n is a period of time sufficient for the cell to multiply to the density of the Live in the range of 20% - 80% of the living cell density as high as possible if cultured It was preserved under the preservation conditions of the first set. Changes at least one of the cultures conditions, so that the second set of cultures conditions were applied, the preservation of such cultures was a second time under the second and second set conditions to allow TNFR-Ig is accumulated in cell culture. 4. The production method of TNFR-Ig in cell culture is in the mass production of \ 'total composition. With the steps of page 3 of 14 pages, the cell culture arrangement includes A mammalian cell containing a gene encoded as TNFR-Ig, where the gene is expressed. Under the conditions of cell culture and culture media containing accumulated molar ratio of glutamine to total amino acids of less than 0.2, and such medium containing glutamine. And there are two such culture media. Characteristics of the culture media selected from. Groups consisting of: (i) Song culture medium. It consists of accumulated amino acids per unit volume greater than 70 mM, (ii) the molar ratio of The accumulated inorganic asparagene was less than 2, (iii) the molar ratio of the accumulated inorganic ions. (Iv) cumulative total amounts of glutamine and aspartine per unit volume greater than 16 mM and their combinations Such cultures were maintained in the insetting phase under the set culture conditions. It is a period of time sufficient for the cell to multiply to the density of the Live in the range of 20% - 80% of the maximum viable cell density if cultured. It was preserved under the preservation conditions of the first set. Changes at least one of the cultures conditions, so that the second set of cultures conditions were applied, the preservation of such cultures was a second time under the second and second set conditions to allow TNFR-Ig is accumulated in cell culture. 5. Production method TNFR-Ig in cell culture in mass-composite production. With the steps of The preparation of cell culture includes A mammalian cell containing a gene encoded as TNFR-Ig, the zong gene is expressed. Under the conditions of cell culture and culture medium containing the molar ratio of accumulated inorganic ions to amino acids. The total accumulated between 0.4 and 1 and the above medium contains glutamine. And there are two such culture media. The special characteristics of the culture media were selected from the group consisting of: It consists of accumulated amino acids per unit volume greater than 70 mM, (ii) the molar ratio of Cumulative glutamine per cumulative aspartate less than 2, (iii) molar ratio of cumulative glutamine to Total accumulated amino acids less than 0.2, (iv) cumulative total content of glutamine and aspartame per unit. Volumes greater than 16 mM and their rod aggregation, page 4 of the number of 14 pages, such culture retention in the initial growth phase under set cultures conditions. One is a period of time sufficient for the cell to multiply to the density of the Live in the range of 20% - 80% of the highest living shell density possible if cultured. It was preserved under one set of cultured conditions. Changes at least some of the culture conditions, so that the second set of cultures conditions were applied, the preservation of such cultures was a second time under the second and second set conditions to allow TNFR. -Ig is accumulated in cell culture 6. Method for producing TNFR-Ig in cell culture in the mass production of \ 'total composition. With the steps of A cell culture arrangement which includes A mammalian cell containing a gene encoded as TNFR-Ig, in which the gene is expressed. Under the conditions of cell culture and culture media containing accumulated amounts of glutamine. And Aspara Gene per unit Volumes greater than 16 mM and the above medium containing glutamine And there are two The characteristics of the culture media selected from the group consisting of: (0 Culture media which It consists of accumulated amino acids per unit volume greater than 70 mM, (ii) the molar ratio of Accumulated glutamine per aspartame is less than 2, (iii) the molar ratio of accumulated glutamine to amorphous acids. The total accumulated amino acid is less than 0.2, (iv) the molar ratio of the accumulated inorganic ions to the total amino acid accumulated between 0.4 and their combination. Such cultures were maintained in the insetting phase under the set culture conditions. This is a period of time sufficient for the cell to reproduce up to the density of the shell. Live in the range of 20% - 80% of the highest living cell density possible if culture It was preserved under the preservation conditions of the first set. At least one change in the culture conditions In order for the second set of cultures conditions to be applied, the preservation of such cultures was a second time under the second set of conditions and as a second period to allow TNFR-Ig to accumulate in cell culture 7. Method of claim 1, whereby such shell culture conditions in the process At least one change in culture conditions was selected from a group consisting of: (i) temperature, (ii) pH, (iii) osmolarity, (iv) degree of chemical induction. 8. Method of claim 1, where the initial glutamine concentration of such culture medium is less than or equal to 13 mM. 9. Method Clause 1, where the initial glutamine concentration of such media is less than or equal to 10 mM 51 0. Method of claim 1 where the glutamine concentration Start of the above medium Is less than or equal to 7 mM 1 1. Method of claim 1 where the initial glutamine concentration of the culture medium was Is less than or equal to 4 mM 1 2. Method of claim 1 where the total cumulative volume per unit volume of glutamine of Such medium is less than or equal to 13 mM 1 3. Method of claim 1 where the total cumulative amount per unit volume of glutamine Such culture media is less than or equal to 10 mM 1 4. Method of claim 1 where the cumulative total volume per unit volume of glutamine Such culture media is less than or equal to 7 mM 1 5. Method of claim 1 whereby the cumulative total volume per unit volume of glutamine Such medium is less than or equal to 4 mM 1 6. Method of claim 1 where glutamine is provided only "in" in the starting medium at Beginning of cell culture 1 7. Method of claim 1 where the dissolved iron concentration in the culture medium is greater than 5 mm 1 8. Method of claim 1 by At the density of the live cells of the culture The viability of claim 1 is measured on the basis of period 1 9. The viability of said aquaculture is measured at intervals of 2 0. The method of claim 1, where The said state of such culture is measured. On the basis of period 2 1. Method of claim 1, whereby the ammonium level of the said culture was Measured on the basis of period 2 2. Method of claim 1 whereby the aforementioned titer of such culture is measured on Periodic Fund 2 3. Method of claim 1 where the osmolarity of such culture is measured on Period Fundamentals 2 4. Method of Clause 18-23 where such measure is taken every day page 6 of the number 14 Page 2 5. Method of Clause 18-23. 1 whereby the initial density of the mammalian cells Therefore, it is at least 2x1 or 2 shells / ml 2 6. Method of claim 1 wherein the initial density of mammalian cell Such is at least 2X103 cells / ml. 52 7. Method of claim 1 whereby the initial density of mammalian cells. Such is at least 2x104 cells / ml. 2. 8. Method of claim 1 whereby the initial density of mammalian cells. Such is at least 2x105 cells / ml 2. 9. Method of claim 1 whereby the initial density of mammalian cells. Such is at least 2x106 cells / ml 3. 0. Method of claim 1, whereby the initial density of mammalian cells. Such is at least 5x106 cells / ml. 3. 1. Method of claim 1 whereby the initial density of mammalian cells. Such as at least 1 Oxl 06 shell / ml 3 2. Method of claim 1 where the preparation process includes at least 1000 liters of aquaculture. Claim No. 1, where the preparation process includes at least 2500 liters of aquaculture preparation 3 4. Method of claim 1 where the preparation process includes preparation of at least 2500 liters of culture. At least 5000 liters of culture 3 5. Method of claim 1 where the preparation process includes at least 8000 liters of aquaculture 3 6. Method of claim 1 Where the preparation process includes the preparation of at least 10 000 liters of culture 3 7. Method of claim 1, where the preparation process includes at least 12,000 liters of preparation Culture 3 8. Method of claim 1 where the condition of the above set consists of the temperature range at which The condition of claim 1, where the condition of the first set consists of the temperature range at 1, where 32 to 40 degrees Celsius 4 0. Method of claim 1 where the condition of the first set consists of the temperature range that 34 to 38 degrees Celsius. Page 7 of number 14 Page 4 1. Method of claim 1 where the condition set above includes the temperature range at The condition of this set consists of the temperature range at 36 to 37 ° C. 4 2. Method of claim 1. The condition of the second set consists of the temperature range at 37 ° C. 4 3. Method of claim 1. The second condition is 25 to 41 degrees Celsius. 4 4. Method of claim 1 where the condition of the second set consists of the temperature range that The second condition is 27 to 38 degrees Celsius 4 5. Method of claim 1 where the condition of the second set consists of the temperature range that The second condition is 29 to 35 degrees Celsius. 4 6. Method of claim 1 where the condition of the second set consists of the temperature range that The second condition is 29 to 33 degrees Celsius. 4 7. Method of claim 1 where the condition of the second set consists of the temperature range that The second set of conditions is 30 to 32 degrees Celsius. 4 8. Method of claim 1 where the condition of the second set consists of the temperature range at The second is at 31 degrees Celsius. 4 9. The method of claim 1 is supplemented by a second change procedure to From at least one of the above-mentioned changes in cultivation conditions, which consisted of Change at least one culture condition, so that the third set condition is applied to culture 5 0. The method of claim 49 where the second transformation step consists of Change at least one of the cultured conditions selected from a group consisting of: (0 temperature, (ii) pH, (iii) osmolarity, (iv) degree of chemical induction). 5 1. Method of claim 49 where the third conditional set consists of the temperature range. The third condition is 25 to 40 degrees Celsius 5 2. Method of claim 49 where the condition of the third set consists of the temperature range. The third condition is 27 to 37 ° C 5 3. Method of claim 49 where the condition of the third set consists of the temperature range. The third condition is 29 to 34 degrees Celsius 5 4. Method of claim 49 where the condition of the third set consists of the temperature range. Third, which is 30 to 32 degrees Celsius 5 5. Method of claim 1 where the period is between 0-8 days 5 6. The method of claim that 1 where the period is between 1-7 days, page 8, number 14, page 5 7. Method of claim 1, where the time period is between 2-6 days 5 8. Method Clause 1, where the duration is 3-5 days. 5. 9. Method of claim 1, where the forward period is 4 days. 6 0. Clause 1. Clause 1 is held with a 5-day duration. 6 1. Method of claim 1 where the period is 6 days. 6 2. Method of claim 1, whereby the time period is 6 days. Total of one such period And the second period The said treatment is at least 5 days. 6 3. Method of claim 1, where in the process of preserving the said culture is The second period, the exchange level decreases from the lactate level in culture to the maximum level 6 4. The method of claim 1, where in the culture preservation process is The second period, the ammonium level was further reduced from the cultured ammonium level to the highest level 6 5. Clause 1 method where the total content of TNFR-Ig produced was At least 1.5 times higher than the amount of TNFR-Ig produced under the same conditions. Or in culture media 6 6. Method of claim 1 where the total content of the said TNFR-Ig produced is at least 2 times higher than the TNFR-Ig content. Ig produced under the same conditions. Or in culture media that 6 7. Method of claim 1, where cell culture is additionally provided. Supplementary Ingredients 6 8. Method of claim 67 whereby the ancillary components are selectable from the group that is Contains hormones and / or growth factors, specific ions (such as sodium, chloride, calcium, magnesium and phosphate), buffers, vitamins, nucleosides or nucleotides, micronutrients. (Inorganic compounds normally present at large final concentrations), amino acids, lipids or glucose 6 9. TNFR-Ig production method in cell culture in the production of \ 'quantity. Total With the steps of Arrangement of cell culture, which includes Mammal cells containing the genes encoded as TNFR-Ig, whose genes were expressed. Under the conditions of shell culture and the specified media containing glutamine. And there are at least two special characteristics Of the culture medium selected from a group containing: i) the initial amino acid concentration greater than 70 mM, ii) the molar ratio of glutamine to aspartine less than 2, iii). The molar ratio of Glutamine to total amino acids that is less than 0.2, iv) the molar ratio of inorganic ions to total amino acids between 0.4 to 1 and v) total glutamine concentrations and Asparagene greater than 16 mM page 9 of the 14 pages, such culture was maintained in the initial growth phase under the cultured conditions. The period of time that is sufficient for such cell reproduction is in the range of 20% - 80% of the maximum living cell density possible if such culture is maintained. Under the condition Cultured set at the maturity Changes at least some of the culture conditions, so that the second set of cultures conditions were applied, the preservation of such cultures was a second time under the second and second set conditions to allow TNFR. -Ig accumulated in cell culture 7 1. Initial amino acid concentration greater than 70 mM, ii) Molar ratio of glutamine to aspartine less than 2, iii) ratio. Molar of Glutamine to total amino acids less than 0.2, iv) the molar ratio of inorganic ions to amino acids. The total concentrations of glutamine and aspartame were greater than 16 mM. Such cultures were maintained in the initial growth phase under cultured conditions. The period of time that is sufficient for such cell reproduction is in the range of 20% - 80% of the maximum living cell density possible if such culture is maintained. Under the condition Culture set at the nong To change at least one culture condition, so that the second set of cultivation conditions was applied, such preservation was a second period under the second set condition and the second period to allow TNFR-Ig is accumulated in shell culture 7 1. Production method TNFR-Ig in cell culture in mass-composite production. With the steps of The preparation of cell culture includes Mammal cells containing the TNFR-Ig gene encoded as genes were expressed. Under the conditions of the designated cell culture and culture media, which consist of a tarmacet. And there are at least four unique characteristics of The medium was selected from a group containing: i) amino acid concentrations starting at more than 70 pages 10 of the 14 mM, ii) the molar ratio of glutamine to aspartine at Less than 2, iii) the molar ratio of Glutamine to total amino acids is less than 0.2, iv) the molar ratio of total inorganic ions \ 'total amino acids between 0.4 to 1 and v) total glutamine concentration. Amine and asparagene at greater than 16 mM, such cultivation was maintained in the initial growth phase under the cultured conditions. It is a sufficient time for the shell to reproduce in the range of 20% - 80% of the maximum viable cell density possible if the culture is properly fertilized. Kept under Cultured set at the maturity At least one change in the culture conditions, so that the second set of cultivation conditions were applied, the preservation of such culture was maintained for a second period under the second set condition and the second period. For TNFR-Ig to accumulate in cell culture 7 1. Concentration Amino acids starting at greater than 70 mM, ii) the molar ratio of glutamine to aspartine is less than 2, iii) the molar ratio of glutamine to total amino acids at Less than 0.2, iv) the molar ratio of The ionic ion to total amino acids is between 0.4 and 1 and v) the total concentration of glutamine and Asparagene at greater than 16 mM, such cultured retention in the initial growth phase under set culture conditions. The period of time that is sufficient for such cell reproduction is in the range of 20% - 80% of the maximum living cell density possible if such culture is maintained. Under the condition Cultured set at the maturity Changes at least one of the cultures conditions, so that the second set of cultures conditions were applied, the preservation of such cultures was a second time under the second and second set conditions to allow TNFR-Ig is accumulated in cell culture. 7 3. Production method TNFR-Ig in cell culture mass production, which includes With the steps of The reconstructive cell culture arrangement consists of 11 pages of the 14 pages. Mammal cells containing the TNFR-Ig gene, which are expressed in genes, are carried out. Under the conditions of cell culture and culture media containing glutamine. The cumulative total content of glutamine and asparagene per unit volume was greater than 16 mM. Such cultured storage in the initial growth phase under set-up culture conditions was observed. The first is a period of time sufficient for the cell to reproduce in the range of 20% - 80% of the highest living cell density possible if the culture is maintained under the condition. The Culture set one Changing at least one of the cultures conditions, so that the second set of cultures conditions were applied, the preservation of such cultures was a second time under the second set condition and the second period to provide TNFR- Ig accumulation in Shell culture 7 4. Method of claim 1 where the above medium is composed of culture medium. Name contains glutamine And the characteristics of the culture medium were selected from groups containing: (0 amino acid concentrations greater than 70 mM, (ii) molar \ 'ratio of glutamine). Initial glutamine per aspartate is less than 2, (iii) molar ratio of glutamine intrinsic to amino acids. Total intracutaneously less than 0.2, (iv) the molar ratio of the intrinsic anonin to total amino acids. Beginning between 0.4 and 1, (v) total glutamine concentrations begin. And asparagene starts at over 16 mM and their combination 7 5. Method of either Clause 1-6 or 69-74 where the exchange level is greater than the observed level. Can be under the same conditions in the medium that Same without the special characteristics of such culture medium The ammonia level was greater than the observed level under the same conditions in the medium at The same without the specific characteristics of the culture medium and the total amount of TNFR-Ig produced is at least as high as the observed quantity under conditions that 7 6. Method of claim 1, where such culture is not supplemented by the constituents of the same culture media. 7 7. Method of claim 1, without which the culture was not supplemented with additional glutamine. During the aforementioned TNFR-Ig production period 7 8. Method of claim 1 where the glutamine concentration in such cultures decreased. Noticeably less Before the transition to the second set of cultures conditions, page 12 of the number 14, page 7 9. Method of claim 1, wherein the concentration of glutamine in such cultures decreased. Noticeably less At the same time as the transition to the second set of cultures, Kang said, 8 0. Method of claim 1 where glycyl glutamine was replaced by glutamine in the culture. Lieng Kang said 8 1. Method of claim 1, wherein culture medium consisted of (0 amino acid content per unit volume greater than 70 mM, (ii) the molar ratio of glutamine). Continue to accumulate Asparagene accumulated less than 2, (Wed) the molar ratio of accumulated glutamine to total amino acids was less than 0.2, (iv) the molar ratio of accumulated inorganic ions. (V) the cumulative total content of gutamine and aspartine per unit volume greater than 16 mM 8 2. Method of claim 1 where food There were (i) accumulated amino acids per unit volume greater than 70 mM, (ii) molar ratio of accumulated glutamine to acids. The total amino accumulated less than 0.2, (iii) the molar ratio of the accumulated anionic ions to the amino acids. The cumulative total is between 0.4 and the sludge (iv) the cumulative total content of glutamine and aspartame per unit. Volumes greater than 16 mM 8 3. Method of claim 1 wherein the cumulative total content of histidine, isoleucine, lucene, methionine, t! Nylalanine, Tryptophan, thyrosine and proline per unit volume in feed Kungung is greater than 25 mM 8 4. Method of claim 1 where the cumulative total content of histidine, isoleucine, ru) zine, methionine, t! Lanine, tryptophan, thyrosine and proline per unit volume in feed Kangung is greater than 35 mM 8 5. Method of claim 1 where total intrinsic amounts of histidine, isoleucine, lucene, methionine, T! Lanine, tryptophan, thyrosine and proline per unit volume in feed Kungung is greater than 25 mM. 8 6. Method of claim 1 where total initial concentrations of histidine, isoleucine, lucene, methionine, T! Lanine, tryptophan, thyrosine and proline per unit volume in feed The said species is greater than 35 mM. 8 7. Method of claim 1 wherein the said culture has the characteristics of the food. The cultures were selected from groups containing: (0 cumulative total volume of histidine per unit volume greater than 1.7 mM (ii) cumulative total volume of isoleucine per unit volume greater than 3.5 mM (iii) volume. Total cumulative volume of rubzine per unit volume greater than 5.5 mM (iv) Cumulative total volume of mithionine per unit volume greater than 2.0 mM page 13 of the number 14 page (v) Cumulative total volume of phenylalanine. Per unit volume greater than 2.5 rnM (vi) Cumulative total volume of proline per unit volume greater than 2.5 mM (vii) Cumulative total tryptophan per unit volume greater than 1.0 mM (viii) Cumulative total volume Of thyrosine per unit volume greater than 2.0 mM and (ix) the cumulative total volume of proline per unit volume greater than 2.5 mM. Specialties of food Variable cultures were obtained from groups consisting of: (0 isolucine intrinsic volume per unit volume greater than 1.7 mM (ii) isolein initiated per unit volume greater than 3.5 mM (iii) volume. Intrinsic to lucene per unit volume greater than 5.5 mM (iv) initial volume of methionine per unit volume greater than 2.0 mM (v) pinillalanine initiation per unit volume greater than 2.5. mM (vi) Proline intrinsic volume per unit volume greater than 2.5 mM (vii) Tryptophan initiation per unit volume greater than 1.0 mM (viii) Thyroxine initiation per unit volume. Volumes greater than 2.0 mM (ix) Proline intrinsic volume per unit volume greater than 2.5 mM 8 9. Method of claim 1 where \ 'the total accumulated volumes of Xr per unit volume in food. The above culture was greater than 7 mM 9 0. Method of claim 1 wherein the total accumulated content of Sron per unit volume in the food. Such cultures were greater than 10 mM. 9 1. Method of claim 1 where \ 'the cumulative total volume of asparagene per unit volume in Such culture media was greater than 8 mM. 9 2. Method of claim 1 whereby the cumulative total content of asparagene per unit volume in Such culture media is greater than 12 mM. 9 3. Method of claim 1 wherein the total initial volume of asparagene per unit volume in Such medium is greater than 8 mM 9 4. Method of claim 1 where \ 'the total initial volume of asparagene per unit volume in Such culture media was greater than 12 mM 9 5. Method of claim 1 whereby the accumulated total content of phosphorus per unit volume in The above culture medium was greater than 2.5 mM 9 6. Method of claim 1 where the total accumulated content of phosphorus per unit volume in Such culture media is greater than 5 mM, page 14 of the number 14, page 9 7. Clause 1 Method, where the total accumulated volumes of the gutamate per unit volume in / J. Less than 1 mM 9 8. Claim Method 1 where \ 'the cumulative total volume of calcium pantothenate per unit. The volume in the culture medium is greater than 8 mg / L 59 9. Method of claim 1 where the total cumulative amount of calcium pantothenate per unit The volume in the culture medium is greater than 20 mg / L 10 0. Claim Method 1 where \ 'the cumulative total volume of nicotinamide per unit volume. In the medium above 7 mg / L 10. 1. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมสะสมของนิโคตินาไมด์ต่อหน่วยปริมาตร ในอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 25 mg/L 101. Method of claim 1 whereby the cumulative total volume of nicotinamide per unit volume In the medium above 25 mg / L 10. 2. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่\'ปริมาณรวมสะสมของไพริดอกซีน และไพริดอกซอล ต่อหน่วยปริมาตรในอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 5 mg/L 102. Method of claim 1 where \ 'the cumulative total volume of pyridoxine. And pyridoxol The per unit volume of such culture media is greater than 5 mg / L 10. 3. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่\'ปริมาณรวมสะสมของไพริดอกซีน และไพริดอกซอล ต่อหน่วยปริมาตรในอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 35 mg/L 103. Method of claim 1 where \ 'the cumulative total volume of pyridoxine. And pyridoxol The per unit volume of such culture media is greater than 35 mg / L 10. 4. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมสะสมของไรโบเฟลวินต่อหน่วยปริมาตร ในอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 1.0 mg/L 104. Method of claim 1 whereby the cumulative total volume of riboflavin per unit volume In such medium is greater than 1.0 mg / L 10. 5. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่\'ปริมาณรวมสะสมของไรโบเฟลวินต่อหน่วย\'ปริมาตร ในอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 2.0 mg/L 105. Method of claim 1, where \ 'cumulative total volume of riboflavin per unit \' volume. In the medium above 2.0 mg / L 10. 6. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมสะสมของไธอะมีนไฮโดรคลอไรด์ต่อ หน่วยปริมาตรในอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 7 mg/L 106. Method of claim 1 whereby the cumulative total content of thiamine hydrochloride per The unit volume in such culture medium is greater than 7 mg / L 10. 7. วิธีการของข้อถือสิทธิที่ 1 โดยที่ปริมาณรวมสะสมของไธอะมีนไฮโดรคลอไรด์ต่อ หน่วยปริมาตรในอาหารเลี้ยงเชื้อดังกล่าวมีค่ามากกว่า 35 mg/L ------------7. Method of claim 1 whereby the cumulative total content of thiamine hydrochloride per The unit volume in such culture medium is greater than 35 mg / L ------------
TH501004021A 2005-08-26 TNFR-Ig production TH65462B (en)

Publications (3)

Publication Number Publication Date
TH115319B TH115319B (en) 2012-07-31
TH115319A true TH115319A (en) 2012-07-31
TH65462B TH65462B (en) 2018-10-10

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2458988C2 (en) PRODUCING RECOMBINANT PROTEIN rTNF-lg
RU2418858C2 (en) Obtaining antibodies against amiloid beta
TWI235177B (en) L-glutamic acid-producing bacterium and method for producing L-glutamic acid
JP2011521660A5 (en)
CN102911897B (en) Cultural method for paracoccus denitrificans and application of same to purifying aquaculture water
CN103724218A (en) New crystallization technology of lysine hydrochloride
CN112322673B (en) Fermentation method of glutamic acid
CN103693779B (en) A kind for the treatment of process of lysine fermentation liquor Waste water concentrating liquid and the method for fermentative production Methionin
TH115319A (en) TNFR-Ig production
TH65462B (en) TNFR-Ig production
CN101591616B (en) Culture method of beneficial microorganism flora
CN103992964A (en) High pH value tolerant bacterial strain and novel fermentation method for producing lysine
US3329577A (en) Fermentative preparation of proline
CN111621462A (en) Strain growth promoter for efficiently removing nitrogen in water environment and preparation method thereof
CN110878325A (en) Optimized glutamic acid fermentation medium
CN111349578A (en) Preparation method of lactobacillus solid microbial inoculum
WO2013067850A1 (en) Chemically defined culture medium for fermentation to produce succinic acid and application thereof
RU2220570C1 (en) Method for enriching supplementary feeding for bees
WO2007067005A1 (en) Fermentation process for preparing l-lysine
KR900000938B1 (en) Process for preparing l-glutamic acid by fermentation
KR900000523B1 (en) Process for preparing l-glutamic acid of zymotechnics
JPS60141284A (en) Novel microorganism and production of l-proline using the same
JPH0789875B2 (en) Rotifer feed
RU2007108719A (en) PRODUCTION OF POLYPEPTIDES
CN116024139A (en) Culture solution suitable for culturing microcystis, preparation method and culture method