Claims (5)
ข้อถือสิทธฺ์ (ทั้งหมด) ซึ่งจะไม่ปรากฏบนหน้าประกาศโฆษณา :แก้ไข 6/3/2558 1. กรรรมวิธีการเตรียมเซลล์แขวนลอยบุกเพื่อผลิตกลูโคแมนแนน มีขั้นตอนดังนี้ ก. การเตรียมเนื้อเยื่อบุกปลอดเชื้อจากหน่อและส่วนหัวบนใบจำนวน 20 - 50 กรัมต่อ สารละลายสำหรับฟอก 100 มิลลิเมตร โดยการแช่ในสารละลายแอลกอฮอล์ที่มีความเข็มข้น 70 เปอร์เซ็นต์ (ปริมาตร/ปริมาตร) และฟอกฆ่าเชื้อด้วยสารละลายโซเดียมไฮเพอร์คลอไรต์ (NaOCl) ที่มี ความเข้มข้น 20 เปอร์เซ็นต์ (ปริมาตร/ปริมาตร) เป็นเวลา 20 และ25นาที ตามลำดับ จากนั้น เพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งพื้นฐานสูตร MS ที่มีความเป็นกรด-ด่าง 5.8 โดยการบ่มภายใต้สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน และอุณหภูมิ 25-27 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 7 วัน ดังตัวอย่างที่ 1 ข. การชักนำให้เนื้อเยื่อบุกปลอดเชื้อเกิดยอดและเพิ่มยอดทวีคูณของชิ้นส่วนหัวบนใบและ หน่อของบุก โดยการนำเนื้อเยื่อบุกที่ผ่านการฟอกฆ่าเชื้อแล้ว จำนวน 2 - 10 กรัม มาเพาะเลี้ยงบน อาหารแข็งสูตร MS มีค่าความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสารควบคุมการเจริญเติบโต 6-เบนซิลอะดีนีน (6- Benzyladenine; BA) ความเข้มข้น 2.0 มิลลิกรัมต่อลิตร โดยการบ่มภายใต้สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน และอุณหภูมิ 25-27 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 30-45 วัน นำหน่อสมบูรณ์ปลอดเชื้อของ บุกที่ได้ ตัดแบ่งจำนวน 2 - 10 กรัม (การตัดแบ่งสามารถบอกเป็นปริมาณได้หรือไม่คะ ว่ามีปริมาตร เท่าไหร่) เพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งพื้นฐานสูตร MS ที่มีความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสารควบคุมการ เจริญเติบโต BA ความเข้มข้น 0.5 - 2.5 มิลลิกรัมต่อลิตร บ่มที่อุณหภูมิ 25?2 องศาเซลเซียส ภายใต้ สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน เป็นเวลา 60 วัน เพื่อเพิ่มยอดทวีคูณ ดังตัวอย่างที่ 2 รูปที่ 2ค ค. การชักนำให้ชิ้นส่วนต่างๆ ของต้นบุกปลอดเชื้อเกิดแคลลัสและการเพิ่มจำนวนแคลลัสจาก ชิ้นส่วนของใบ ลำต้น และโคนต้น โดยเพาะเลี้ยงชิ้นส่วนต่างๆ บนอาหารแข็งพื้นฐานสูตร MS ที่มี ความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสารควบคุมการเจริญเติบโต 2,4-ไดคลอโรฟีนอกซีแอซีติก แอซิด (2,4- Dichlorophenoxy acetic acid; 2,4-D) โดยการบ่นภายใต้สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน หรือ สภาวะที่ไม่มีแสง อุณหภูมิ 25?2 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 60 วัน และนำไปใช้ในการชักนำให้เกิด ไฟรเอเบิลแคลลัส ดังตัวอย่างที่ 3 ง. การเพิ่มปริมาณแคลลัสจากแคลลัสที่เตรียมได้จากชิ้นส่วนของใบ ขำต้น และโคนต้น โดยตัด แบ่งชิ้นส่วนดังกล่าวมาเพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งพื้นฐานสูตร MS ที่มีความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสาร ควบคุมการเจริญเติบโต2,4-ไดคลอโรฟีนอกซีอะซีติก เอซิด โดยการบ่มภายใต้สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน อุณหภูมิ 25-27 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 60 วัน ดังตัวอย่างที่ 4 จ. การชักนำให้แคลลัสกลายเป็นไฟรเอเบิลแคลลัสโดยแบ่งแคลลัสที่เตรียมได้จากช้นส่วน และสูตรอาหารที่เหมาะสมข้างต้น ขนาดเส้นผ่านศูนย์กลางประมาณ 10 มิลลิเมตร เพาะเลี้ยงต่อบน อาหารแข็งพื้นฐานสูตร MS ที่มีสารควบคุมการเจริญเติบโต 2,4-ไดคลอโรฟีนอกซีอะซีติก เอซิด โดย การบ่มภายใต้สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน อุณหภูมิ 25 ? 2 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 60 วัน ดัง ตัวอย่างที่ 5 นอกจากนี้ ยังอาจมีการชักนำให้เกิดแคลลัสจากชิ้นส่วนของใบ ลำต้น และโคนต้นของบุกที่ปลอดเชื้อ โดยเพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งพื้นฐานสูตร MS ที่มีค่าความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสารควบคุมการ เจริญเติบโต แนฟทาลีนแอซีติก แอซิด (Napthalene Acetic Acid; NAA) โดยการบ่มภายใต้สภาวะ ที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน เป็นเวลา 30 วัน เพื่อชักนำให้เกิดแคลลัสและการเพิ่มจำนวนแคลลัสที่จะใช้ ในการชักนำให้เกิดไฟรเอเบิลแคลลัส ดังตัวอย่างที่ 6 ฉ. ทำการเพิ่มปริมาณไฟรเอเบิลแคลลัสโดยตัดแบ่งไฟรเอเบิลแคลลัสจำนวน 1 - 2 กรัม ที่ เตรียมได้จากข้อ ง. มาเพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งสูตร MS ที่มีสารควบคุมการเจริญเติบโต2,4-ไดคลอ โรฟีนอกซีอะซีติก เอซิด โดยการบ่มภายใต้สภาวะที่มีแสง ที่อุณหภูมิ 25-27 องศาเซลเซียส เป็น เวลา 60 วัน ดังตัวอย่างที่ 7 ช. การเพาะเลี้ยงเซลล์แขวนลอยของบุกจากไฟรเอเบิลแคลลัสในฟลาสก์ขนาด 250 มิลลิลิตร โดยเพาะเลี้ยงในอาหารเหลวพื้นฐานสูตร MS ที่มีค่าความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสารควบคุมการ เจริญเติบโต 2,4-D และน้ำตาลซูโครส ปริมาตรทำงาน 50 มิลลิลิตร โดยการบ่มบนเครื่องเขย่าที่มี ความเร็วรอบ 120 รอบต่อนาที อุณหภูมิ 25 ? 2 องศาเซลเซียส เปลี่ยนอาหารทุก 7 วัน เป็นเวลา 60 วัน ดังตัวอย่างที่ 8 2. กรรมวิธีการเตรียมเซลล์แขวนลอยบุกเพื่อผลิตกลูโคแมนแนน ตามข้อถือสิทธิ 1 ที่ซึ่ง สภาวะที่เหมาะสม คือ สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน อุณหภูมิ 25?2 องศาเซลเซียส 3. กรรมวิธีการเตรียมเซลล์แขวนลอยบุกเพื่อผลิตกลูโคแมนแนน ตามข้อถือสิทธิ 1-2 ข้อใดข้อหนึ่ง ที่ซึ่ง ในขั้นตอนการชักนำให้ชิ้นส่วนต่างๆ ของต้นบุกปลอดเชื้อเกิดแคลลัสนั้น สารควบคุมการเจริญเติบโตที่ใช้เลือกได้จาก 2,4-ไดคลอโรฟีนอกซีแอซีติก แอซิด และ/หรือ แนฟทา ลีน อะซีติก เอซิด (Napthalene Acetic Acid; NAA) อย่างใดอย่าง 4. กรรมวิธีการเตรียมเซลล์แขวนลอยบุกเพื่อผลิตกลูโคแมนแนน ตามข้อถือสิทธิ 1-3 ข้อใดข้อหนึ่ง ที่ซึ่ง ในขั้นตอนการเพาะเลี้ยงเซลล์แขวนลอยบุกนั้น อาหารเหลวสูตร MS ที่ใช้ อาจมีสาร 2,4-ไดคลอโรฟีนอกซีแอซีติก แอซิด ในปริมาณ 0.5 และ/ หรือ 0.75 มิลลิกรัมต่อลิตร 5. กรรมวิธีการเตรียมเซลล์แขวนลอยบุกเพื่อผลิตกลูโคแมนแนน ตามข้อถือสิทธิ 1-4 ข้อใดข้อหนึ่ง ที่ซึ่ง ในขั้นตอนการเพาะเลี้ยงเซลล์แขวนลอยบุกนั้น สามารถเพาะเลี้ยงในสภาวะที่มี หรือไม่มีแสงก็ได้ -------------------------------------------------------- แก้ไข 14/09/2558 1. กรรมวิธีการเตรียมเซลล์แขวนลอยบุกเพื่อผลิตกลูโคแมนแนน มีขั้นตอนดังนี้ ก. การเตรียมเนื้อเยื่อบุกปลอดเชื้อจากหน่อและส่วนหัวบนใบจำนวน 20-50 กรัมต่อ สารละลายสำหรับฟอก 100 มิลลิลิตร โดยการแช่ในสารสะลายแอลกฮอล์ที่มีความเข้มข้น 70 เปอร์เซ็นต์ (ปริมาตร/ปริมาตร) และฟอกฆ่าเชื่อด้วยสารละลายโซเดียมไฮเพอร์คลอไรต์ (NaOCL)ที่มี ความเข้มข้น 20 เปอร์เซ็นต์ (ปริมาตร/ปริมาตร) เป็นเวลา 20 และ 25นาที ตามลำดับ จากนั้น เพาะเลี้ยงยนอาหารแข็งขั้นพื้นฐานสูตร MS ที่มีความเป็นกรด-ด่าง 5.8 โดยการบ่มภายใต้สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน และอุณหภูมิ 25-27 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 7 วัน ข. การชักนำให้เนื้อเยื่อบุกปลอดเชื้อเกิดยอดและเพิ่มยอดทวีคูณของชิ้นส่วนหัวบนใบและ หน่อของบุก โดยการนำเยื่อบุกที่ผ่านการฟอกฆ่าเชื้อแลเว จำนวน 2 - 10 กรัม มาเพาะเลี้ยงบน อาหารแข็งสูตร MS มีค่าความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสารควบคุมการเจริญเติบโต 6-เบนซิลอะดีนีน (6- Benzyladenine; BA) ความเข้มข้น 2.0 มิลลิกรัมต่อลิตร โดนการบ่มภายใต้สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน และอุณหภูมิ 25-27 องศาเซลเซียล เป็นเวลา 30-45 วัน นำหน่อสมบูรณ์ปลอดเชื้อของ บุกที่ได้ ตัดแบ่งจำนวน 2-10 กรัม เพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งพื้นฐานสูตร MS ที่มีความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสารควบคุมการเจริญเติบโต BA บ่มที่อุณหภูมิ 25?2 องศาเซลเซียส ภายใต้สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน เป็นเวลา 60 วัน เพื่อเพิ่มยอดทวีคูณ ค. การชักนำให้ชิ้นส่วนต่างๆ ของต้นบุกปลอดเชื้อเกิดแคลลัสและการเพิ่มจำนวนแคลลัสจาก ชิ้นส่วนของใบ ลำต้น และโคนต้น โดยเฉพาะเลี้ยงชิ้นส่วนต่างๆ บนอาหารแข็งพื้นฐานสูตร MS ที่มี ความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสารควบคุมการเจริญเติบโต 2,4-ไดคลอโรฟีนอกซีแอซีติก แอซิด (2,4- Dichlorophenoxy acetic acid; 2,4-D) โดยการบ่มภายใต้สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน หรือ สภาวะที่ไม่มีแสง อุณหภูมิ 25+2 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 60 วัน และนำไปใช้ในการชักนำให้เกิด ไฟนเอเบิลแคลลัส ดังตัวอย่างที่ 3 ง. การเพิ่มปริมาณแคลลัสจากแคลลัสที่เตรียได้จากชิ้นส่วนของใบ ฃำต้น และโคนต้น โดย ตัดแบ่งชิ้นส่วนดังกล่าวมาเพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งพื้นฐานสูตร MS ที่มีความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มี สารควบคุมการเจริญเติบโต2,4-ไดคลอโรฟีนอกซีอะซีติก เอซิด โดยการบ่มภายใต้สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน อุณหภูมิ 25-27องศาเซลเซียส เป็นเวลา 60 วัน จ. การชักนำให้แคลลัสกลายเป็นไฟรเอเบิลแคลลัสโดยแบ่งแคลลัสที่เตรียมได้จากชิ้นส่วน และสูตรอาหารแข็งที่เหมาะสมข้างต้น ขนาดเส้นผ่านศูนย์กลางประมาณ 10 มิลลิเมตร เพาะเลี้ยงต่อบนอาหาร แข็งพื้นฐานสูตร MS ที่มีสารควบคุมการเจริญเติบโต 2,4-ไดคลอโรฟีนอกซีอะซิก เอซิด โดยการบ่ม ภายใต้สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน อุณหภูมิ 25?2 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 60 วัน นอกจากนี้ ยังอาจมีการชักนำให้เกิดแคลลัสจากชิ้นส่วนของใบ ลำต้น และโคนต้นของบุกที่ปลอดเชื้อ โดย เพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งพื้นฐานสูตร MS ที่มีค่าความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสารควบคุมการ เจริญเติบโต แนฟทาลีนแอซีติก (Napthalene Acetic Acid; NAA) โดยการบ่มภายใต้สภาวะ ที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน เป็นเวลา 30 วัน เพื่อชักนำให้เกิดแคลลัสและการเพิ่มจำนวนแคลลัสที่จะใช้ ในการชักนำให้เกิดไฟรเอเบิลแคลลัส ฉ. ทำการเพิ่มปริมาณไฟรเอเบิลแคลลัสโดยตัดแบ่งไฟรเอเบิลแคลลัสจำนวน 1-2 กรัม ที่ เตรียมได้จากข้อ ง. มาเพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งสูตร MS ที่มีสารควบคุมการเจริญเติบโต 2,4-ไดคลอ โรฟีนอกซีแอซีติก แอซิด โดยการบ่มภายใต้สภาวะที่มีแสง ที่อุณหภูมิ 25-27 องศาเซลเซียส เป็น เวลา 60 วัน ช. การเพาะเลี้ยงเซลล์แขวนลอยของบุกจากไฟรเอเบิลแคลลัสในฟลาสก์ขนาด 250 มิลลิลิตร โดยเพาะเลี้ยงในอาหารเหลวพื้นฐานสูตร MS ที่มีค่าความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสารควบคุมการ เจริญเติบโต 2,4-D และน้ำตาลซูโครส ปริมาตรทำงาน 50 มิลลิลิตร โดยการบ่นบนเครื่อเขย่าที่มี ความเร็วรอบ 120 รอบต่อนาที อุณหภูมิ 25?2 องศาเซลเซียส เปลี่ยนอาหารทุก 7 วัน เป็นเวลา 60 วัน 2. กรรมวิธีการเตรียมเซลล์แขวนลอยบุกเพื่อผลิตกลูโคแมนแนน ตามข้อถือสิทธิ 1 ที่ซึ่ง สภาวะที่เหมาะสม คือ สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวน อุณหภูมิ 25?2 องศาเซลเซียส 3. กรรมวิธีการเตรียมเซลล์แขวนลอยบุกเพื่อผลิตกลูโคแมนแนน ตามข้อถือสิทธิ 1-2 ข้อใดข้อหนึ่ง ที่ซึ่ง ในขั้นตอนการชักนำให้ชิ้นส่วนต่างๆ ของต้นบุกปลอดเชื้อเกิดแคลลัสนั้น สารควบคุมการเจริญเติบโตที่ใช้เลือกได้จาก 2,4-ไดคลอโรฟีนอกซีแอซีติก แอซิด และ/หรือ แนฟทา ลีน อะซีติก เอซิด (Napthalene Acetic Acid; NAA) อย่างใดอย่างหนึ่ง 4. กรรมวิธีการเตรียมเซลล์แขวนลอยบุกเพื่อผลิตกลูโคแมนแนน ตามข้อถือสิทธิ 1-3 ข้อใดข้อหนึ่ง ที่ซึ่ง ในขั้นตอนการเพาะเลี้ยงเซลล์แขวนลอยบุกนั้น อาหารเหลวสูตร MS ที่ใช้ อาจมีสาร 2,4-ไดคลอโรฟีนอกซีแอซีติก แอซิด ในปริมาณ 0.5และ/ หรือ 0.75 มิลลิกรัมต่อลิตร 5. กรรมวิธีการเตรียมเซลล์แขวนลอยบุกเพื่อผลิตกลูโคแมนแนน ตามข้อถือสิทธิ 1-4 ข้อใดข้อหนึ่ง ที่ซึ่ง ในขั้นตอนการเพาะเลี้ยงเซลล์แขวนลอยบุกนั้น สามารถเพาะเลี้ยงในสภาวะที่มี หรือไม่มีแสงก็ได้ -------------------------------------------------Disclaimer (all) which will not appear on the advertisement page: Amendments 6/3/2015 1. The method for preparing invasive cells to produce glucomannan The steps are as follows: a. Preparation of sterile konjac tissue from the shoots and head on the leaves in an amount of 20-50 g per 100 mm bleach solution by immersing in a 70% (vol / volume) alcohol solution and bleaching. Sterilized by 20% sodium hypochlorite (NaOCl) solution (volume / volume) for 20 and 25 minutes respectively, then cultured on solid base MS formula with 5.8 pH. The incubation was performed under 16 hours of light per day and temperature of 25-27 ° C for 7 days, as in Example 1 b. Induction of sterile konjac tissue to form shoots and multiply the head parts on the leaves and the plant. Konjac shoots by using 2-10 grams of sterile konjac tissue to cultivate on Solid MS formula has a pH of 5.8 with a growth regulator. 6- Benzyladenine (6- Benzyladenine; BA), concentration 2.0 mg / l. By incubation under 16 hours of light per day and temperature of 25-27 ° C for 30-45 days, the completely sterile shoots of the konjac were cut 2-10 g Is it possible to have the volume?) Cultured on the basic solid medium of MS formula with the pH 5.8 with the BA growth regulator at the concentration of 0.5 - 2.5 mg / l. Curing at 25? 2 ° C under lighting conditions for 16 hours per day for 60 days to multiply the peaks. For example 2, Fig. 2 c. Induction of parts Of sterile konjac plant calluses and callus proliferation caused by Parts of the leaves, stems and roots of the parts. On basic solid MS formula with pH 5.8 with growth regulator 2,4-Dichlorophenoxy acetic acid (2,4-Dichlorophenoxy acetic acid; 2,4-D) by murmuring under 16-hour light / day or no-light conditions, temperature. 25? 2 ° C for 60 days and applied to induce Fireable Callus For example 3 d. The increase of callus content from callus prepared from fragments of stem and stem leaves by cutting the parts to cultivate on solid MS formula with high strength. It was 5.8-pH with the growth regulator 2,4-dichlorophenoxyacetic acid by incubation under 16 h / day exposure to temperature 25-27 ° C for 60. Example 4: Induction of callus into fry calluses by dividing the callus prepared from the And the appropriate recipes above About 10 mm in diameter. Basic solid MS formula with growth regulators 2,4-dichlorophenoxyacetic acid was incubated under 16 h / day exposure at 25? 2 ° C for 60 days as example 5. Calluses are formed from sterile fragments of the konjac leaves, stems, and bases. It was cultured on basic solid MS formula with pH 5.8 with growth regulators, naphthalene acetic acid (NAA). There are 16 hours of light per day for 30 days to induce calluses and increase the number of calluses to use. In inducing fibrous calluses For example 6 f. Increase the amount of fibrous callus by dividing 1 - 2 grams of the fibrous callus prepared from d. To cultivate on solid MS formula. With growth regulator 2,4-dichlor The rophhenoxacetic acid was incubated under the light conditions at 25-27 ° C for 60 days. Example 7 h. The 250 ml flask was cultured in a basic liquid diet of MS formula with pH 5.8 with 2,4-D growth regulator and 50 ml functional sucrose. Incubated on a vibrator at a speed of 120 rpm, temperature 25? 2 degrees Celsius, changed the food every 7 days for 60 days as shown in Example 8 2. The preparation of invasive cell suspension to produce glucomannan According to claim 1, where optimum conditions are 16 hours of exposure per day, temperature 25? 2 degrees Celsius. 3. Preparation of invasive cell suspension to produce glucomannan. According to claims 1-2, any one that, in the process of inducing various parts Of the sterile konjac produces that callus The growth regulators used are selectable from In any case, 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and / or naphthalene acetic acid (NAA) in any way. 4. Preparation of invasive cell suspension for production. Glucomannan According to one of the claims 1-3, where in the culture of invasive cell suspension The MS formula liquid food used may contain 0.5 and / or 0.75 mg / l of 2,4-dichlorophenoxy acid. 5. The preparation of invasive cell suspension to produce glucomannan. A According to any one of the rights 1-4 that in the culture of invasive cell suspension Can be cultured in Or without light -------------------------------------------------- ------ Revised 14/09/2015 1. The preparation of invasive cell suspension to produce glucomannan The steps are as follows: A. Preparation of sterile konjac tissue from the shoots and heads on the leaves in an amount of 20-50 g per 100 ml of bleaching solution by soaking in a 70% alkaline solution (volume It was then sterilized with 20% sodium hyperchlorite (NaOCL) solution (volume / volume) for 20 and 25 minutes respectively. The pH 5.8 was incubated under 16 hours of photocatalytic conditions and temperature of 25-27 ° C for 7 days. B. Induction of sterile konjac tissue to form peaks and multiplication of tubers. The leaves and shoots of konjac by using 2-10 grams of konjac pulp that were sterilized and treated on Solid MS formula has a pH of 5.8 with a growth regulator. 6- Benzyladenine (6- Benzyladenine; BA), concentration 2.0 mg / l. It was incubated under 16 hours of light per day and temperature of 25-27 ° C for 30-45 days. Completely sterile shoots of 2-10 g of konjac were cultured on solid food basis. The MS formula with pH 5.8 with the BA growth regulator was incubated at 25? 2 ° C under 16 h / day light conditions for 60 days to increase the multiplicity. Different parts Of sterile konjac plant calluses and callus proliferation caused by Parts of the leaves, stems and roots, especially the parts. On basic solid MS formula with pH 5.8 with growth regulator 2,4-Dichlorophenoxy acetic acid (2,4-Dichlorophenoxy acetic acid; 2,4-D) was cured under 16-hour exposure per day or no-light condition. 25 + 2 ° C for 60 days and applied to induce Fine Callus For example 3 d. The increase in the amount of callus from callus obtained from parts of the stem and root by cutting the parts to cultivate on solid MS formula that The pH 5.8 with the growth regulator 2,4-dichlorophenoxyacetic acid was incubated under 16 h / day exposure to temperature 25-27 ° C. 60 days e. Induction of calluses to become fry calluses by dividing the prepared calluses from the parts. And the appropriate solid food recipes above About 10 mm in diameter, cultured on food Basic solid MS formulation with growth regulator. It was then cured under 16 h / day exposure at 25? 2 ° C for 60 days. Calluses may also be induced. The fragments of the leaves, stems and bases of sterile konjac were cultured on solid MS formula with pH 5.8 with naphthalene acetic growth regulator (Napthalene). Acetic Acid; NAA) by incubation under 16 hours photoday for 30 days to induce calluses and increase the number of calluses to be used. To induce the friable callus f. Increase the amount of fibrous callus by dividing 1-2 grams of the fibrous callus prepared from the D. It was cultured on solid MS formula containing 2,4-dichlorophenoxyacetic acid by incubation under light conditions at 25-27 ° C as 60 days h. Cell culture of konjac suspension from fibrous callus in 250 ml flask was cultured in basic liquid diet, MS formula with pH 5.8 with 2,4-D growth regulator and 50 ml working volume sucrose by grumbling on shaker at 120 rpm, temperature 25? 2 ° C, changing food every 7 days for 60 days 2. The process of preparing invasive cell suspensions to produce glucomannan According to claim 1, where optimum conditions are 16 hours exposure per loop temperature 25? 2 degrees Celsius. 3. Preparation of invasive cell suspension to produce glucomannan. According to claims 1-2, any one that in the process of inducing the parts Of the sterile konjac produces that callus The growth regulators used are selectable from 4. The preparation of invasive cell suspensions to Production of glucomannan According to one of the claims 1-3, where in the culture of invasive cell suspension The MS formula liquid food used may contain 0.5 and / or 0.75 mg / l of 2,4-dichlorophenyrene acid. A According to any one of the rights 1-4 that in the culture of invasive cell suspension Can be cultured in Or without light -------------------------------------------------
1. กรรมวิธีการเตรียมเซลล์แขวนลอยบุกเพื่อผลิตกลูโคแมนแนน มีขั้นตอนดังนี้ ก. การเตรียมเนื้อเยื่อบุกปลอดเชื้อจากหน่อและส่วนหัวบนใบจำนวน 20-50 กรัมต่อ สารละลายสำหรับฟอก 100 มิลลิลิตร โดยการแช่ในสารสะลายแอลกฮอล์ที่มีความเข้มข้น 70 เปอร์เซ็นต์ (ปริมาตร/ปริมาตร) และฟอกฆ่าเชื่อด้วยสารละลายโซเดียมไฮเพอร์คลอไรต์ (NaOCL)ที่มี ความเข้มข้น 20 เปอร์เซ็นต์ (ปริมาตร/ปริมาตร) เป็นเวลา 20 และ 25นาที ตามลำดับ จากนั้น เพาะเลี้ยงยนอาหารแข็งขั้นพื้นฐานสูตร MS ที่มีความเป็นกรด-ด่าง 5.8 โดยการบ่มภายใต้สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน และอุณหภูมิ 25-27 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 7 วัน ดังตัวอย่างที่ 1 ข. การชักนำให้เนื้อเยื่อบุกปลอดเชื้อเกิดยอดและเพิ่มยอดทวีคูณของชิ้นส่วนหัวบนใบและ หน่อของบุก โดยการนำเยื่อบุกที่ผ่านการฟอกฆ่าเชื้อแลเว จำนวน 2 - 10 กรัม มาเพาะเลี้ยงบน อาหารแข็งสูตร MS มีค่าความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสารควบคุมการเจริญเติบโต 6-เบนซิลอะดีนีน (6- Benzyladenine; BA) ความเข้มข้น 2.0 มิลลิกรัมต่อลิตร โดนการบ่มภายใต้สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน และอุณหภูมิ 25-27 องศาเซลเซียล เป็นเวลา 30-45 วัน นำหน่อสมบูรณ์ปลิดเชื้อของ บุกที่ได้ ตัดแบ่งจำนวน 2-10 กรัม (การตัดแบ่งสามารถบอกเป็นปริมานได้หรือไม่คะ ว่ามีปริมาตร เท่าไหร่) เพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งพื้นฐานสูตร MS ที่มีความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสารควบคุมการ เจริญเติบโต BA ความเข้มข้น 0.5-2.5 มิลลิลิตรต่อกรัม บ่มที่อุณหภูมิ 25+2 องศาเซลเซียส ภายใต้ สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน เป็นเวลา 60 วัน เพื่อเพิ่มยอกทวีคูณ ดังตัวอย่างที่2 รูปที่ 2ค ค. การชักนำให้ชิ้นส่วนต่างๆ ของต้นบุกปลอดเชื้อเกิดแคลลัสและการเพิ่มจำนวนแคลลัสจาก ชิ้นส่วนของใบ ลำต้น และโคนต้น โดยเฉพาะเลี้ยงชิ้นส่วนต่างๆ บนอาหารแข็งพื้นฐานสูตร MS ที่มี ความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสารควบคุมการเจริญเติบโต 2,4-ไดคลอโรฟีนอกซีแอซีติก แอซิด (2,4- Dichlorophenoxy acetic acid; 2,4-D) โดยการบ่มภายใต้สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน หรือ สภาวะที่ไม่มีแสง อุณหภูมิ 25+2 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 60 วัน และนำไปใช้ในการชักนำให้เกิด ไฟนเอเบิลแคลลัส ดังตัวอย่างที่ 3 ง. การเพิ่มปริมาณแคลลัสจากแคลลัสที่เตรียได้จากชิ้นส่วนของใบ ฃำต้น และโคนต้น โดยตัด แบ่งชิ้นส่วนดังกล่าวมาเพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งพื้นฐานสูตร MS ที่มีความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสาร ควบคุมการเจริญเติบโต2,4-ไดคลอโรฟีนอกซีอะซีติก เอซิด โดยการบ่มภายใต้สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน อุณหภูมิ 25-27องศาเซลเซียส เป็นเวลา 60 วัน และนำไปใช้การชักนำให้เกิด ไฟรเอเบิลแคลลัส ดังตัวอย่างที่ 3 จ. การชักนำให้แคลลัสกลายเป็นไฟรเอเบิลแคลลัสโดยแบ่งแคลลัสที่เตรียมได้จากช้นส่วน และสูตรอาหารแข็งที่เหมาะสมข้างต้น ขนาดเส้นผ่านศูนย์กลางประมาณ 10 มิลลิเมตร เพาะเลี้ยงต่อบน อาหารแข็งพื้นฐานสูตร MS ที่มีสารควบคุมการเจริญเติบโต 2,4-ไดคลอโรฟีนอกซีอะซิก เอซิด โดย การบ่มภายใต้สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวัน อุณหภูมิ 25+2 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 60 วัน ดัง ตัวอย่างที่ 5 นอกจากนี้ ยังอาจมีการชักนำให้เกิดแคลลัสจากชิ้นส่วนของใบ ลำต้น และโคนต้นของบุกที่ปลอดเชื้อ โดยเฉพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งพื้นฐานสูตร MS ที่มีค่าความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสารควบคุมการ จริญเติบโต แนฟทาลีนแอซีติก (Napthalene Acetic Acid; NAA) โดยการบ่มภายใต้สภาวะ ที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อัน เป็นเวลา 30 วัน เพื่อชักนำให้เกิดแคลลัสและการเพิ่มจำนวนแคลลสัสที่จพใช้ ในการชักนำให้เกิดไฟรเอเบิลแคลลัส ดังตัวอย่างที่ 6 ฉ. ทำการเพิ่มปริมาณไฟรเอเบิลแคลลัสโดยตัดแบ่งไฟรเอเบิลแคลลัสจำนวน 1-2 กรัม ที่ เตรียมได้จากข้อ ง. มาเพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งสูตร MS ที่มีสารควบคุมการเจริ?เตฺบโต 2,4-ไดคลอ โรฟีนอกซีแอซีติก แอซิด โดยการบ่มภายใต้สภาวะที่มีแสง ที่อุณหภูมิ 25-27 องศาเซลเซียส เป็น เวลา 60 วัน ดังตัวอย่างที่ 7 ช. การเพาะเลี้ยงเซลล์แขวนลอยของบุกจาไฟรเอเบิลแคลลัสในฟลาสก์ขนาด 2501 มิลลิลิตร โดยเพาะเลี้ยงในอาหารเหลวพื้นฐานสูตร MS ที่มีค่าความเป็นกรด-ด่าง 5.8 ที่มีสารควบคุมการ เจริญเติบโต 2,4-D และน้ำตาลซูโครส ปริมาตรทำงาน 50 มิลลิลิตร โดยการบ่นบนเครื่อเขย่าที่มี ความเร็วรอบ 120 รอบต่อนาที อุณหภูมิ 25+2 องศาเซลเซียส เปลี่ยนอาหารทุก 7 วัน เป็นเวลา 60 วัน ดังตัวอย่างที่ 81. The process of preparing invasive cells to produce glucomannan The steps are as follows: A. Preparation of sterile konjac tissue from the shoots and heads on the leaves in an amount of 20-50 g per 100 ml of bleaching solution by soaking in a 70% alkaline solution (volume It was then sterilized with 20% sodium hyperchlorite (NaOCL) solution (volume / volume) for 20 and 25 minutes respectively. The pH 5.8 was incubated under 16 hours of exposure per day and temperature 25-27 ° C for 7 days, as in Example 1 b. The head parts on leaves and shoots of konjac were carried out by using 2-10 grams of konjac pulp that was sterilized and treated on Solid MS formula has a pH of 5.8 with a growth regulator. 6- Benzyladenine (6- Benzyladenine; BA), concentration 2.0 mg / l. It was incubated under 16 hours of light per day and temperature of 25-27 Celsius for 30-45 days. How much is the volume?) Cultured on the MS formula basic solid food with 5.8 pH with the growth regulator BA at the concentration of 0.5-2.5 ml / g. Curing at 25 + 2 ° C under lighting conditions for 16 hours per day for 60 days in order to multiply. For example 2, Fig. 2 c. Induction of parts Of sterile konjac plant calluses and callus proliferation caused by Parts of the leaves, stems and roots, especially the parts. On basic solid MS formula with pH 5.8 with growth regulator 2,4-Dichlorophenoxy acetic acid (2,4-Dichlorophenoxy acetic acid; 2,4-D) was cured under 16-hour exposure per day or no-light condition. 25 + 2 ° C for 60 days and applied to induce Fine Callus For example 3 d. The increase in the amount of callus from callus obtained from parts of the stem and root by cutting the parts to cultivate on solid MS formula that The pH 5.8 with the growth regulator 2,4-dichlorophenoxyacetic acid was incubated under 16 h / day exposure to temperature 25-27 ° C. Time 60 days and apply induction Fireable Callus For example 3 e. Inducing callus into fry callus by dividing the callus prepared from the part And the appropriate solid food recipes above About 10 mm in diameter. Basic solid MS formula with growth regulators It was then cured under 16 h / day exposure at 25 + 2 ° C for 60 days as example 5. Calluses are formed from sterile fragments of konjac leaves, stems, and bases. In particular, it was cultured on basic solid MS formula with pH 5.8 with naphthalene acetic growth regulator (NAA). 16 hours of light for 30 days to induce calluses and increase the number of calories used. In inducing fibrous calluses For example 6 f. Increase the amount of fibrous callus by dividing 1-2 g of fibrous callus prepared from section D to cultivate on solid MS formula. There were 2,4-dichlorophenoxyacetic acid regulators by incubation under the light condition at 25-27 ° C for 60 days. 7 g. Cell culture suspension of konjac friable callus in 2501 ml flask was cultured in basic liquid MS formula with pH 5.8 with a controlled substance. The growth of 2,4-D and 50 ml working volume sucrose by complaining on a shaker at 120 rpm, temperature 25 + 2 ° C, changing food every 7 days for 60 days, as in example 8.
2. กรรมวิธีการเตรียมเซลล์แขวนลอยบุกเพื่อผลิตกลูโคแมนแนน ตามข้อถือสิทธิ 1 ที่ซึ่ง สภาวะที่เหมาะสม คือ สภาวะที่มีแสง 16 ชั่วโมงต่อวน อุณหภูมิ 25+2 องศาเซลเซียส2. The process of preparing invasive cells to produce glucomannan According to claim 1, where the optimum condition is 16 hours exposure per loop temperature 25 + 2 degrees Celsius.
3. กรรมวิธีการเตรียมเซลล์แขวนลอยบุกเพื่อผลิตกลูโคแมนแนน ตามข้อถือสิทธิ 1-2 ข้อใดข้อหนึ่ง ที่ซึ่ง ในขั้นตอนการชักนำให้ชิ้นส่วนต่างๆ ของต้นบุกปลอดเชื้อเกิดแคลลัสนั้น สารควบคุมการเจริญเติบโตที่ใช้เลือกได้จาก 2,4-ไดคลอโรฟีนอกซีแอซีติก แอซิด และ/หรือ แนฟทา ลีน อะซีติก เอซิด (Napthalene Acetic Acid; NAA) อย่างใดอย่างหนึ่ง3. The process of preparing invasive cells to produce glucomannan According to claims 1-2, any one that, in the process of inducing various parts Of the sterile konjac produces that callus The growth regulators used are selectable from Either 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and / or naphthalene acetic acid (NAA).
4. กรรมวิธีการเตรียมเซลล์แขวนลอยบุกเพื่อผลิตกลูโคแมนแนน ตามข้อถือสิทธิ 1-3 ข้อใดข้อหนึ่ง ที่ซึ่ง ในขั้นตอนการเพาะเลี้ยงเซลล์แขวนลอยบุกนั้น อาหารเหลวสูตร MS ที่ใช้ อาจมีสาร 2,4-ไดคลอโรฟีนอกซีแอซีติก แอซิด ในปริมาณ 0.5และ/ หรือ 0.75 มิลลิกรัมต่อลิตร4. Method for preparing invasive cell suspension to produce glucomannan According to one of the claims 1-3, where in the culture of invasive cell suspension The MS-based liquid diets may contain 0.5 and / or 0.75 mg / l of 2,4-dichlorophenoxyacetate.
5. กรรมวิธีการเตรียมเซลล์แขวนลอยบุกเพื่อผลิตกลูโคแมนแนน ตามข้อถือสิทธิ 1-4 ข้อใดข้อหนึ่ง ที่ซึ่ง ในขั้นตอนการเพาะเลี้ยงเซลล์แขวนลอยบุกนั้น สามารถเพาะเลี้ยงในสภาวะที่มี หรือไม่มีแสงก็ได้5. Method for preparing invasive cell suspension to produce glucomannan According to any one of the rights 1-4 that in the culture of invasive cell suspension Can be cultured in Or without light