SU984405A3 - Method of producing d-alpha-aminoacids - Google Patents

Method of producing d-alpha-aminoacids Download PDF

Info

Publication number
SU984405A3
SU984405A3 SU802919350A SU2919350A SU984405A3 SU 984405 A3 SU984405 A3 SU 984405A3 SU 802919350 A SU802919350 A SU 802919350A SU 2919350 A SU2919350 A SU 2919350A SU 984405 A3 SU984405 A3 SU 984405A3
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
hydrolysis
hydroxyphenyl
phenyl
hydantoin
pseudomonas
Prior art date
Application number
SU802919350A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Жиллонье Клод
Гиварш Марсель
Original Assignee
А.Е.Ц.Сосьете Де Шими Органик Э.Биоложик (Фирма)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by А.Е.Ц.Сосьете Де Шими Органик Э.Биоложик (Фирма) filed Critical А.Е.Ц.Сосьете Де Шими Органик Э.Биоложик (Фирма)
Application granted granted Critical
Publication of SU984405A3 publication Critical patent/SU984405A3/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P41/00Processes using enzymes or microorganisms to separate optical isomers from a racemic mixture
    • C12P41/006Processes using enzymes or microorganisms to separate optical isomers from a racemic mixture by reactions involving C-N bonds, e.g. nitriles, amides, hydantoins, carbamates, lactames, transamination reactions, or keto group formation from racemic mixtures
    • C12P41/009Processes using enzymes or microorganisms to separate optical isomers from a racemic mixture by reactions involving C-N bonds, e.g. nitriles, amides, hydantoins, carbamates, lactames, transamination reactions, or keto group formation from racemic mixtures by reactions involving hydantoins or carbamoylamino compounds

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

D- alpha -Aminoacids are prepared by the hydrolysis of a 5-substituted hydantoin, a corresponding hydantoic acid or a mixture thereof using an enzyme obtained by cultivating the novel microorganism Pseudomonas sp. HM-40 (CBS 259.79).

Description

Изобретение относитс  к усовер шенствованному способу получени  0-с(гаминокислот-общей формулы (I)The invention relates to an improved method for the preparation of 0-c (amino acid-general formula (I)

R-CH-COOHR-CH-COOH

ШзShz

где R-2-метилмеркаптоэтильна , фенильна . бензильна , 2-м(гтилпропильна , пропильна , индолилметильна , 4-оксифенильна , З-оксифенильна  или 3-цианопропильна  группы, использующихс  в фармацевтической промышлёН- . кости. . .where R-2-methylmercaptoethyl, phenyl. benzyl, 2-m (gtilpropyl, propyl, indolylmethyl, 4-hydroxyphenyl, 3-hydroxyphenyl or 3-cyanopropyl groups used in the pharmaceutical industry.).

Наиболее близким к предлагаемому  вл етс  способ получени  природных 0-с аминокислот микробиологическим гидролизом соответствующих гидантоинов с помощью микроорганизмов, например , . Pseudomonas solanacearum АЗ 11149, Pseudomonas caryophHli : A3 11150. Выходрл целевых продуктов составл ют в среднем 20% 1.The closest to the present invention is a method of obtaining natural 0-c amino acids by microbiological hydrolysis of the corresponding hydantoins using microorganisms, for example. Pseudomonas solanacearum AZ 11149, Pseudomonas caryophHli: A3 11150. The target product output averages 20% 1.

Недостатком известного способа  вл етс  низкий выход целевых продуктов .The disadvantage of this method is the low yield of the target products.

Целью изобретени   вл етс  повьаиение выхода целевых продуктов.The aim of the invention is to increase the yield of the target products.

Указанна  цель достигаетс  тем, ; что согласно способу получени  D-oi: -аминокислот вьх1}еуказанной общей фор;мулы (1), где R - имеет вышеуказанное значение, микробиологическим гидролизом гидантоина общей формулы (II)This goal is achieved by; that according to the method of producing D-oi: -amino acids bx1} of the indicated general form; mules (1), where R - has the above value, by microbiological hydrolysis of hydantoin of the general formula (II)

,,c-jra it- «,, c-jra it- "

10ten

N-с Ns

Н 7 II ноH 7 II but

где R - вышеуказанные значени  с помощью микроорганизма Pseudomonas where R is the above values by the microorganism Pseudomonas

15 Sp., НМ-40 (CBS 259.79) и образовавшуюс  О-о/.-аминокислоту выдел ют хроматографией на ионообменной смоле Dowex - 50 или осаждением в изоэлектрической точке.15 Sp., HM-40 (CBS 259.79) and the resulting O-o /. Amino acid is isolated by chromatography on Dowex-50 ion-exchange resin or by precipitation at an isoelectric point.

2020

Выходы целевых продуктов составл ют 80-92,5%.The yields of the desired products are 80-92.5%.

Отличием предлагаемого способа  вл етс  то, что гидролиз осуществл ют микроорганизмом Pseudomonas sp. The distinction of the proposed method is that the hydrolysis is carried out by the microorganism Pseudomonas sp.

25 (CBS 259.79).25 (CBS 259.79).

Положительным эффектом предлагаемого способа  вл етс  значительное увеличение выхода целевых продуктов р 20% до 80-92,5%.The positive effect of the proposed method is a significant increase in the yield of the target products p 20% to 80-92.5%.

Пример 1, а. Получение ферментной композиции.Example 1, a. Obtaining an enzyme composition.

Готов т культуральную среду следующего состава, г/л:Prepare a culture medium of the following composition, g / l:

Глюкоза20Glucose20

Однозамещенный фосфат кали  3 Дв у 3 амеще н ный фосфат кали  7 Сульфат магни  0,7 Сульфат марганца 0,02. Сульфат железа (II) О, 02 Хлорид натри  1 Гидантоин D, L -метионина3Potassium monosubstituted phosphate 3 Dv 3 potassium phosphate 7 substituted magnesium sulfate 0.7 Manganese sulfate 0.02. Iron (II) sulfate O, 02 Sodium chloride 1 Hydantoin D, L-methionine 3

Среду разливают в скл нки емкостью |250 см израсчета 50 см на скл нку стерилизуют в течение 15 температуре 120с, После посева штамма Pseudomonas .:Sp. на избирательной среде с агаром С1 л нки перемеш .ивают (.250 od/мин) в течение 48 ч при температуре .The medium is poured into a flask with a capacity of 250 cm of a cost of 50 cm per bottle is sterilized for 15 temperature of 120 s. After seeding the strain Pseudomonas.: Sp. on a selective medium with agar C1 l Nki mix (.250 od / min) for 48 h at a temperature.

Продуктивное выращивание осуществл ют в ферментере емкостью 2 л, содержащем 1-л вышеуказанной культуральной среды и 1 см противопенного агента. Засевают скл нки штаммом, приготовленным как указано выше. Культуру выращивают при температуре 30°С в течение 48 ч при переметиваНИИ турбинной мешалкой (скорость вращени  500 об/мин) и при аэрации стерильным воздухом с расходом 1 л/мин,Productive growth is carried out in a 2 liter fermenter containing 1 liter of the above culture medium and 1 cm of antifoaming agent. The flasks are seeded with the strain prepared as described above. The culture was grown at a temperature of 30 ° C for 48 hours with turbine stirring at a turbine stirrer (rotation speed of 500 rpm) and with aeration with sterile air at a flow rate of 1 l / min,

К концу роста клеточную массу отдел ют центрифугированием и суспендйруют в 50 см дистиллированной воды. Данна  суспензи  содержит 7,б сухого экстракта на 100 см.By the end of growth, the cell mass is separated by centrifugation and suspended in 50 cm of distilled water. This suspension contains 7, b dry extract per 100 cm.

в. Гидролиз D,L-фенилаланингвдантоина . аat. Hydrolysis of D, L-Phenylalaningvdantoina. but

К 200 СМ дистиллированной воды добавл ют 5 г D,L-фенилаланингидантоина . Нагревают с целью частичного растворени  гида нтоина, затем среду охлаждают до 37°С. Довод т рН до 7,8 путем добавлени  1н. раствора едкого натра. После этого добавл ют 25 см клеточной суспензии, полученной раньше. Довод т объем реакционной смеси до 250 см, а рН довод т до 7,8.5 g of D, L-phenylalanine idantoin are added to 200CM distilled water. Heated to partially dissolve the hydroin, then the medium is cooled to 37 ° C. The pH is adjusted to 7.8 by the addition of 1N. caustic soda solution. Thereafter, 25 cm of the cell suspension obtained earlier is added. The volume of the reaction mixture was adjusted to 250 cm and the pH was adjusted to 7.8.

Реакционную смесь помещают в атмосферу азота, поддерживают температуру 37°С, поддерживают рН 7,8 путем постепенного добавлени  1н. раствора едкого натра.The reaction mixture is placed under an atmosphere of nitrogen, the temperature is maintained at 37 ° C, the pH is maintained at 7.8 by gradually adding 1N. caustic soda solution.

После умеренного перемешивани  в течение 24 ч весь гидантоин переходит в раствор.After moderate stirring for 24 hours, all the hydantoin goes into solution.

Реакционную смесь осветл ют центрифугированием , затем пропускают через ионообменную смолу (смола Dowex 50, форма Н),.элюиру  2н. раствором аммиака.. Щелочные фракции упаривают досуха. Получают 3,98 г D-фенилаланиThe reaction mixture was clarified by centrifugation, then passed through an ion exchange resin (Dowex 50 resin, Form H), eluting with 2N. ammonia solution .. Alkaline fractions are evaporated to dryness. 3.98 g of D-phenylalani are obtained.

на (выход 92,5%) со следующимиon (yield 92.5%) with the following

свойствами. 2Оproperties. 2O

Id3-i3 29,2 ±2° (с 1, вода)Id3-i3 29.2 ± 2 ° (s 1, water)

(%) 8,63 (по теории 8,48)(%) 8.63 (according to theory 8.48)

NN

Потенциометричёское титрование: 93,3%.Potentiometric titration: 93.3%.

Оптическа  чистота полученного 0-фенилаланина превышает 93%.The optical purity of the obtained 0-phenylalanine exceeds 93%.

Пример 2. К 150 см дистиллированной воды добавл ют 4 г D,L-метионингидантоина и 8 см клеточной суспензии, содержащей 0,6 г сухого экстракта (полученного в услови х , описанных в примере 1).Example 2. To 150 cm of distilled water, 4 g of D, L-methioningidantoin and 8 cm of cell suspension containing 0.6 g of dry extract (prepared under the conditions described in example 1) are added.

Довод т рН до 7,8 путем добавлени  1н. раствора едкого натра. Объем реакционной смеси довод т до 200 см путемдобавлени  дистиллированной воды . Реакцию провод т в течение 24 ч при температуре 37°С, поддержива  рН 7,8 путем постепенного добавлени  1н. раствора едкого натра..The pH is adjusted to 7.8 by the addition of 1N. caustic soda solution. The volume of the reaction mixture was adjusted to 200 cm by the addition of distilled water. The reaction is carried out for 24 hours at a temperature of 37 ° C, maintaining the pH at 7.8 by gradually adding 1N. caustic soda solution ..

Содержание D-метионина в реакционной смеси определ ют по методу Штейн и Мура: его концентраци  составл ет 17 г/л, что соответствует 100% превращени  в расчете на вз тый D,1-метионингидантоин.The content of D-methionine in the reaction mixture is determined by the method of Stein and Moore: its concentration is 17 g / l, which corresponds to 100% conversion calculated on the basis of taken D, 1-methioningidantoin.

Реакционную смесь осветл ют центрифугированиел затем пропускают через ионообменную смолу (смола Dowex 50, форма Н) ; Получают 2,7 г D-метионина (выход 80%) со следующими свойствами:The reaction mixture was clarified by centrifuging the gel and then passed through an ion exchange resin (Dowex 50 resin, Form H); 2.7 g of D-methionine are obtained (yield 80%) with the following properties:

2, -19,3° (с 1; 5н. хлористоводородна  кислота) N 1%) 9,36-9,42 (теоретическое: 9,39)2, -19.3 ° (with 1; 5n. Hydrochloric acid) N 1%) 9.36-9.42 (theoretical: 9.39)

Оптическа  чистота полученного D-метионина близка к 90%.The optical purity of the obtained D-methionine is close to 90%.

Пример 3. а. Получение ферментной композиции.Example 3. a. Obtaining an enzyme composition.

Готов т культуральную среду сле дующего состава,г/л:Prepare the culture medium of the following composition, g / l:

Глюкоза .20Glucose .20

Дрожжевой экстракт 10 Бактопептон10Yeast Extract 10 Baktopepton 10

Среду разливают в скл нки емкостью 250 см из расчета 50-см на скл нку и стерилизуют в течение 15 мин при температуре 120 С. После посева щтамма Pseudomoinas Sp. НМ-40 скл нки перемешивают (25Ооб/мин) в течение 24 ч при температуре .The medium is poured into 250 cm bottles at a rate of 50 cm per bottle and sterilized for 15 minutes at a temperature of 120 C. After sowing, the Pseudomoinas Sp. HM-40 Flasks are stirred (25Ob / min) for 24 hours at temperature.

Содержимое одной скл нки используют дл  обсеменени  фер-ментера емкостью 2 л, содержащего 1 л вышеуказанной среды. Культуру выращивают в течение 24 ч при температуре при перемешивании турбинной мешалкой со скоростью вращени  500 об/мин и аэрацией стерильным воздухом с расходом 1 л/мин.The contents of one flask are used to seed a 2-liter fermenter containing 1 l of the above medium. The culture was grown for 24 hours at a temperature with stirring with a turbine mixer with a rotation speed of 500 rpm and aeration with sterile air at a flow rate of 1 l / min.

К концу выращивани  микробную массу отдел ют центрифугированием и суспендируют в 100 см дистиллированно воды, эта суспензи  содержит 8,9 г сухого клеточного экстракта. в. Ферментный гидролиз метионингидантоина . Раствор ют 5 г D-r -метионингидан тонна в 200 см дистиллированной во ды. Довод т рН до 7,5 путем добавле ни  0,1 н. раствора „едкого натра, з тем добавл ют 20 см полученной ран клеточной суспензии, объем довод т до 250 см, реакционную смесь помещ ют в атмосферу азота, температура р акционной смеси 37°С. После проведени  процесса в тече ние 5 ч содержание метионина в сред определ ют хроматографическим методом по методике Штейна и Мура. Опре дел ют гидантионазную активность клеточной суспензии (количество мол метионина, продуцирова1«ного на 1 мг сухого клеточного экстракта в 1 ч ферментативной реакции) она составл ет 4 , 5 ... 1 После проведени  процесса в тече;ние 22 ч реакционную смесь осветл ют центрифугированием. Образовавшийс  метионин отдел ют пропусканиемчерез ионообменную смолу (Dowex 50, форма н), элюиру  2н. раствором аммиака. Элюат выпаривают досуха и сушат, получают 3,9 г D-метионина (выход 91%) со следующими свойствами: N (%) 9,4 (теоретическое содержание 9,33%J 23°(С 1, 5н. хлористоводородна  кислота). Потенциометрическое титрование 98%. Пример 4. Ферментативный гидролиз L-оксйфенилглицингидантоина Готов т. 100 см,суспензии , содержащей 8,9 г сухого клеточного экстракта в услови х, описанных в примере 3 а. Раствор ют 5 г 4-оксифенилглицинпу рантоина в 250 см дистиллированной воды. Довод т рН до 7,5 путем добавлени  0,1 н.раствора едкого натра и добавл ют 20 см клеточной суспензии. Объем довод т до 250 см реакционную смесь помещают в атмосферу азота,температура реакционной смеси 31°С. После проведени  процесса в течение 5 ч определ ют содержание 4-оксифенилглицина . Гидантоиназна  активность составл ет 1, 8 М аминокислоты на 1 мг сухого клеточного экстракта в 1 ч протекани  ферментативной реакции. После проведени  процесса в течение 22 ч 4-оксифенилглицин отдел ют пропусканием через ионообменную смолу (Dowex 50, форма Н) . Получают 3,78 г D-(4-оксифенил)-глицина (выход 87%). оказавшегос  однородным при хроматографии, со следующими свойствами: N (%) 7,6 (теоретическое содержание 8,4) Ы3%° -135 (С 1, 5н. хлористоводородна  кислота) Потенциометрическое титрование 110%. Пример 5. Выращивают штамм Pseudomonas Sp, НМ-40 в следующих услови х: Состав культуральной среды , г/л: Глюкоза20 Двузамещенный фосфат кали 7 Однозамещенный фосфат кали 3 Сульфат магни  0,7 Сульфат марганца 0,02 Сульфат железа 0,02 Хлорид натри . 1 D-L-метионингидантоин3 Дрожжевой экстракт 2 Предварительное выращивание. Первое предварительное выращивание выполнено в скл нке емкостью 250 см, содержащей 50 см среды, в течение 24 ч. Второе предварительное выращивание посева, сделанного из предыдущей скл нки,. осуществлено . тоже в течение 24 ч в ферментере емкостью 2.л, содержащем 1 л культуральной среды. Продуцирующа  культура. Содержимое двухлитрового ферментера используют дл  обсеменени  ферментера емкостью 7,5 л, содержащего 5 л среды. Культуру выращивают в течение 24 ч при температуре при аэрации .стерильным воздухом с расходом 5 л/мин и перемешивании турбинной мешалкой со скоростью 500 об/мин. Полученна  в таких услови х биомасса составл ет 3,8 г сухого экстракта на 1 л культуральной среды. Ферментативна  реакци . По окончании выращивани  микробную массу отдел ют от среды центрифугированием и суспендируют в 250 см дистиллированной воды. Суспендируют 10 г D,L-фенилглицинг гидантоина в 400 см дистиллированной воды и довод т рН до 7,5 путем добавлени  0,1 н. раствора едкого натра. Добавл ют 50 см вышеописанной клеточной суспензии и реакционный объем довод т до 500 см добавлением воды. Помещают в атмосферу азота при температуре , поддержива  рН 7,5 в течение 17 «. После протекани  процесса в течение 17 ч реакционную смесь осветл ют центрифугированием, упаривают до 1/5 первоначального объема и подкисл ют до/рН 1 путем добавлени  кон центрированной сол ной кислоты. Образующийс  осадок отдел ют фильтрованием и сушат. Хроматографи ческий анализ показывает, что он предс-тавл ет собой фенилглицингидан тоиновую кислоту со следующими свойствами: N {%) 13,9% (теоретическое содержание 14,4%} ГоЗ 15° -1370 (с 1; 1% амВыход полученной Оггидантоиновой кислоты 6,3% по отношению к вз тому гидантоину. Маточный раствор снова упаривают и довод т.- до рН 5 путем добавлени едкого натра, выпавший в осадок D-фенилглицин отдел ют фильтрованием промывают водой и этиловым спиртом, сушат. Получают 7,6 г -О-фенилглицин ( выход 88%) со следующими свойствами: , .N (%) 9,2 (теоретическое содержание 9,3) Hd - -148 (С 1; 5н. хлористоводородна  кислота) Пример 6. Выращивают культуру Pseudomonas Sp., НМ-40 в услови х примера 5. После центрифугировани  микробную массу суспендируют в О,1 М фосфатом буферном растворе при рН 7,8, эту суспензий используют в качестве катализатора гидролиза различных гидантоинов, услови  реакции следующие: начальна  концентраци  гидантоина 20 г/л в 0,1 М фосфатном буферном растворе при рН 7,8; примененна  биомасса составл ет 6,5 г (в расчете на сухой экстракт) на 1 л реакционной смеси температура реакции продолжительность реакции 5 ч. Затем определ ют содержание в реакционной смеси образукнцейс  аминокислоты и по ней вычисл ют ферментативную активность клеточного экстракта . Вычисленна  таким образом активность представлена в таблице в микромол х аминокислоты, образовавшейс  на 1 мг сухого ферментного экстракта в 1 ч реакционного времени, i Результаты представлены в табли це .By the end of the growth, the microbial mass is separated by centrifugation and suspended in 100 cm of distilled water, this suspension contains 8.9 g of dry cell extract. at. Enzyme hydrolysis of methioningidantoin. 5 g of D-r-methioningidine ton are dissolved in 200 cm of distilled water. The pH is adjusted to 7.5 by the addition of 0.1 n. sodium hydroxide solution, then 20 cm of the obtained wound of the cell suspension is added, the volume is brought to 250 cm, the reaction mixture is placed in a nitrogen atmosphere, the temperature of the reaction mixture is 37 ° C. After carrying out the process for 5 hours, the content of methionine in the media is determined by the chromatographic method according to the method of Stein and Moore. The hydanthionase activity of the cell suspension (the amount of mole of methionine produced per 1 mg of the dry cell extract per 1 hour of the enzymatic reaction) is determined to be 4, 5 ... 1 After the process has been performed; for 22 hours, the reaction mixture is clarified by centrifugation. The formed methionine is separated by passing through an ion exchange resin (Dowex 50, Form N), eluting with 2N. ammonia solution. The eluate is evaporated to dryness and dried, to obtain 3.9 g of D-methionine (yield 91%) with the following properties: N (%) 9.4 (theoretical content 9.33% J 23 ° (C 1, 5 n. Hydrochloric acid). Potentiometric titration of 98%. Example 4. Enzymatic hydrolysis of L-hydroxyphenylglycene hydantoin Prepared 100 cm, suspensions containing 8.9 g of dry cell extract under the conditions described in Example 3a. Dissolve 5 g of 4-hydroxyphenylglycine rantoin in 250 cm distilled water. The pH is adjusted to 7.5 by adding 0.1N sodium hydroxide solution and 20 cm of the cell suspension is added. The volume was adjusted to 250 cm and the reaction mixture was placed under a nitrogen atmosphere, the temperature of the reaction mixture was 31 ° C. After the process was carried out for 5 hours, the content of 4-hydroxyphenylglycine was determined.Hydantoinase activity was 1.8 M amino acid per mg dry cell extract per 1 hour enzymatic reaction. After carrying out the process for 22 hours, 4-hydroxyphenylglycine is separated by passing through an ion exchange resin (Dowex 50, Form H). 3.78 g of D- (4-hydroxyphenyl) -glycine are obtained (yield 87%). homogeneous by chromatography, with the following properties: N (%) 7.6 (theoretical content 8.4) N 3% -135 (C 1, 5 n. hydrochloric acid) Potentiometric titration 110%. Example 5. The strain Pseudomonas Sp, HM-40 is grown in the following conditions: Composition of culture medium, g / l: Glucose 20 Disubstituted potassium phosphate 7 Monosodium potassium phosphate 3 Magnesium sulfate 0.7 Manganese sulfate 0.02 Ferrous sulfate 0.02 sodium chloride . 1 D-L-methioningidantoin3 Yeast extract 2 Pre-cultivation. The first pre-cultivation was carried out in a 250 cm bottle containing 50 cm of medium for 24 hours. The second pre-cultivation of the sowing made from the previous bottle was made. carried out. also within 24 hours in a fermentation tank with a capacity of 2. l containing 1 l of culture medium. Production culture. The contents of a two-liter fermenter are used to seed a 7.5-liter fermenter containing 5 liters of medium. The culture is grown for 24 hours at a temperature with aeration of sterile air at a rate of 5 liters / min and stirring with a turbine mixer at a speed of 500 rpm. The biomass obtained under such conditions is 3.8 g of dry extract per liter of culture medium. Enzyme reaction. At the end of the growth, the microbial mass is separated from the medium by centrifugation and suspended in 250 cm of distilled water. 10 g of D, L-phenylglyzing of hydantoin are suspended in 400 cm of distilled water and the pH is adjusted to 7.5 by adding 0.1 n. caustic soda solution. 50 cm of the above-described cell suspension is added and the reaction volume is brought to 500 cm by the addition of water. Placed in a nitrogen atmosphere at a temperature, maintaining a pH of 7.5 for 17 ". After proceeding the process for 17 hours, the reaction mixture was clarified by centrifugation, evaporated to 1/5 of the original volume and acidified to pH 1 by the addition of concentrated hydrochloric acid. The precipitate formed is filtered off and dried. Chromatographic analysis shows that it represents phenylglycinhydrogenic acid with the following properties: N {%) 13.9% (theoretical content 14.4%} Dose 15 ° -1370 (with 1; 1% amYet output of Oggidantoic acid 6.3% with respect to hydantoin.The mother liquor is again evaporated and the pH soaked to pH 5 by adding caustic soda, the precipitated D-phenylglycine is separated by filtration, washed with water and ethyl alcohol, and dried. -O-phenylglycine (yield 88%) with the following properties: .N (%) 9.2 (theoretical content 9.3) Hd - -148 (C 1; 5N hydrochloric acid) Example 6. Pseudomonas Sp., HM-40 culture was grown under conditions of Example 5. After centrifugation, the microbial mass was suspended in O, 1 M phosphate buffer at pH 7.8, this suspension is used as a catalyst for the hydrolysis of various hydantoins, the reaction conditions are as follows: the initial concentration of hydantoin is 20 g / l in 0.1 M phosphate buffer at pH 7.8; The applied biomass is 6.5 g (calculated as dry extract) per 1 liter of the reaction mixture. The reaction time is 5 hours. Then the content in the reaction mixture is determined by the resulting amino acid and the enzymatic activity of the cell extract is calculated. The activity thus calculated is presented in the table in micromolar amino acid formed per 1 mg of the dry enzyme extract per 1 hour of reaction time, i The results are presented in the table.

01-метионингид9нтоин01-methioningidinntoin

DL- 2-фенил -аланингидантоинDL-2-phenyl-alaningidantoin

DL-лейцингидантоинDL-leucine hydantoin

DL-валингидантоинDL-valingidantoin

DL-триптофангидантоинDL-tryptophan-dantoin

DL- 14-оксифенил)-глицингидантоин Пример 7. По способу, описанному в примере 6, полу ьают клеточную суспензию Pseudomonas НМ-40 в. 60 буферном фосфатном растворе. Эта суспензи  содержит 6,5 г сухого экстракта в 100 см , п-еред применением клетки измельчены ультразвуком при. услови х: 65DL-14-hydroxyphenyl) -glycinhydantoin Example 7. According to the method described in Example 6, a Pseudomonas HM-40 cell suspension is obtained. 60 buffer phosphate solution. This suspension contains 6.5 g of dry extract in 100 cm, n-before using the cells are crushed by ultrasound at. conditions: 65

2,42.4

2,0 1,62.0 1.6

1,01.0

D-валинD-valine

О,. 6ABOUT,. 6

D-фенилглицинD-phenylglycine

D- (4-оксифенил)-глицинО ,6D- (4-hydroxyphenyl) -glycine, 6

D- 1-амино-(4-циан пропионова  кислота3 ,5D- 1-amino- (4-cyan propionic acid 3, 5

Claims (1)

D- (3-оксифенил)-глицйн0 ,7 / до Аппарат PONS, оборудованный зонТС4С . Частота ультразвука , кГц Обработанный объем, см Продолжительность измельчени , мин Обработанна  таким образом суспензи  применена дл  катализа процесса гидролиза гидантоинов метиони на, фенилаланина и фенилглицина в у лови х эксперимента у описанных в пр мере 6. При этом измеренна  активность была следующей, мкмоль/мг/ч: ОЬ-метионингидантоин1/7 D1-(2-фенил)-аланин- ; гйдантоин1,0 DL-фенилглицин- . гидантоин0,8 П р и м е р 8. Клеточную суспен зию Pseudomonas.SP НМ-40 в воде, по лученную как описано в примере 5, и содержащую, 7,3 г сухого экстракта в 100 см , лиофилизируют перед прим нением в следующих услови х. 120 см суспензии разливают в 4 колбы емкостью 500 см , замораживают и выдерживают при пониженном дав лений (О, 5 рт.ст. ) в течение 16 ч Получают 8,8 г порошка лиофилизрванного фермента, который при мен ют вуслови х, описанных в примере 6. Определена следующа  активность, мкмоль/мг/ч: pL-метионингидантоин2 ,4 DL-фёнилглицингидантоин0 ,4 DL- 12-фенил)-аланингидантоин 1,5 Формула изобретени  Способ получени  Т)-li-аминокислот общей формулы R-OH-COQH где R-2-метилмеркаптоэтильна ,фенильна , бензильна , 2-метилпропильна , пропильна , индолилметильна , 4-оксифенильна , 3-оксифенильна  или 3-цианопропильна  группы,f микробиологическим гидролизом гидантоина общей формулы , C-NH -s имеет указанные значени , с последующим вьщелейием целевого продукта, отличающийс  тем, что, с целью повышени  выхода целевых продуктов, гидролиз осуществл ют микроорганизмом Pseudomonas Sp., НМ-40 {CBS 259,79), Источники информации, прин тые во внимание при экспертизе 1, Патент Франции № 7817199, кл. С 12 D 13/06 опублик. 05.01.79 (прототип).D- (3-hydroxyphenyl) -glycine0, 7 / up PONS device equipped with zonTS4C. Ultrasonic frequency, kHz Treated volume, cm. Duration of grinding, min. The suspension treated in this way was used to catalyze the hydrolysis of methanine, phenylalanine and phenylglycine hydantoins in experimental experiments described in Example 6. The measured activity was as follows, µmol / mg / h: OB-methioningidantoin 1/7 D1- (2-phenyl) -alanine-; hydantoin1,0 DL-phenylglycine-. hydantoin 0.8 PRI me R 8. Cell suspension of Pseudomonas.SP HM-40 in water, prepared as described in Example 5, and containing 7.3 g of dry extract per 100 cm, is lyophilized before use in the following conditions 120 cm of the suspension is poured into 4 flasks with a capacity of 500 cm, frozen and kept under reduced pressure (0, 5 Hg) for 16 h. 8.8 g of lyophilized enzyme powder are obtained, which is used in the conditions described in the example 6. The following activity was determined, µmol / mg / h: pL-methioningidantoin2, 4 DL-phenylglycinhydantoin0, 4 DL-12-phenyl) -alaningidantoin 1.5 Formula of the invention Method of obtaining T) -li-amino acids of the general formula R-OH-COQH where R-2-methylmercaptoethyl, phenyl, benzyl, 2-methylpropyl, propyl, indolylmethyl, 4-hydroxyphenyl , 3-hydroxyphenyl or 3-cyanopropyl group, f microbiological hydrolysis of hydantoin of the general formula, C-NH -s has the indicated values, followed by the target product, characterized in that, in order to increase the yield of the target products, the hydrolysis is carried out by the Pseudomonas Sp microorganism ., NM-40 {CBS 259,79), Sources of information taken into account in examination 1, French Patent No. 7817199, cl. C 12 D 13/06 published 05.01.79 (prototype).
SU802919350A 1979-05-15 1980-05-14 Method of producing d-alpha-aminoacids SU984405A3 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR7912285A FR2456728A1 (en) 1979-05-15 1979-05-15 PROCESS FOR THE PREPARATION OF D-A-AMINOACIDS

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU984405A3 true SU984405A3 (en) 1982-12-23

Family

ID=9225470

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU802919350A SU984405A3 (en) 1979-05-15 1980-05-14 Method of producing d-alpha-aminoacids

Country Status (11)

Country Link
JP (1) JPS55153595A (en)
BE (1) BE883322A (en)
CH (1) CH643299A5 (en)
DE (1) DE3018584A1 (en)
FR (1) FR2456728A1 (en)
GB (1) GB2051053B (en)
IT (1) IT1131185B (en)
NL (1) NL8002627A (en)
SE (1) SE448883B (en)
SU (1) SU984405A3 (en)
UA (1) UA5567A1 (en)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IT1209495B (en) * 1984-02-02 1989-08-30 A San Donato Milanese Milano PROCEDURE FOR THE PREPARATION OF L-ALPHA-AMINO ACIDS.
JPS6356278A (en) * 1986-08-27 1988-03-10 Nippon Soda Co Ltd Bacterium ns214 belonging to genus pseudomonas and production of d-amino acid
IT1276163B1 (en) 1995-11-23 1997-10-27 Eniricerche Spa IMPROVED PROCEDURE FOR THE PREPARATION OF D-ALPHA-AMINO ACIDS
IT1277125B1 (en) 1995-12-21 1997-11-04 Eniricerche Spa THERMOSTABLE MUTANTS OF D-N-ALPHA-CARBAMYLASE

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IT1039757B (en) * 1975-07-10 1979-12-10 Snam Progetti ENZYMATIC COMPLEXES FOR TRANSFORMING IDANTOIN RACEME INTO OPTICALLY ACTIVE AMINO ACIDS AND THEIR APPLICATION
JPS5344690A (en) * 1976-02-04 1978-04-21 Kanegafuchi Chem Ind Co Ltd Preparation of d-n-carbamylphenylglycine and its substituted derivatives
US4211840A (en) * 1977-06-08 1980-07-08 Ajinomoto Company, Incorporated Method for producing D-α-amino acid
JPS542398A (en) * 1977-06-08 1979-01-09 Ajinomoto Co Inc Preparation of d-alpha-amino acid

Also Published As

Publication number Publication date
GB2051053B (en) 1983-07-20
SE8003630L (en) 1980-11-16
BE883322A (en) 1980-11-14
JPS55153595A (en) 1980-11-29
JPS6319158B2 (en) 1988-04-21
IT1131185B (en) 1986-06-18
IT8022089A0 (en) 1980-05-15
CH643299A5 (en) 1984-05-30
GB2051053A (en) 1981-01-14
DE3018584A1 (en) 1980-11-27
NL8002627A (en) 1980-11-18
UA5567A1 (en) 1994-12-28
FR2456728B1 (en) 1983-11-10
SE448883B (en) 1987-03-23
FR2456728A1 (en) 1980-12-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU599985B2 (en) New process for the production of L-2-amino-4- (hydroxymethyl-phosphinyl)-butyric acid
RU1806201C (en) Method of synthesis of 2-arylpropionic acid s(+)-enantiomer
CA1244788A (en) Process for the production of l-carnitine and its derivatives
SU984405A3 (en) Method of producing d-alpha-aminoacids
SU469266A3 (en) The method of obtaining 7-amino-deacetoxycephalosporanic acid
JPH01320991A (en) Production of d-homophenylalanines
GB2075026A (en) Process for producing l-amino and oxidase
EP0187525B1 (en) Process for producing l-serine
JPS58116690A (en) Preparation of d-beta-hydroxyamino acid
RU2143002C1 (en) METHOD OF γ-AMINOBUTYRIC ACID PRODUCING
JPS6356278A (en) Bacterium ns214 belonging to genus pseudomonas and production of d-amino acid
JPS5928493A (en) Preparation of alkyl ester of aspartylphenylalanine
JP2899071B2 (en) Method for producing L-α-alanine
JPH051716B2 (en)
JPH08245497A (en) Production of d(-)-tartaric acid
SU1311256A1 (en) Consortium of candida tropicalis yeast and acinetobacter species bacteria as producer of exopolysaccharide
JPH0254077B2 (en)
SU553283A1 (en) Alcohol dehydrogenase production method
JP2716477B2 (en) Method for producing S-carboxymethyl-L-cysteine
SU577229A1 (en) Method of preparing hexokinase
JPS6243679B2 (en)
SU789581A1 (en) Method of preparing dioxyacetone
KR910004952B1 (en) Process for preparation of sinthetic mazzite producing method for antibiotic cepha lexin
JP4020991B2 (en) Process for producing D-pantoic acid, D-pantothenic acid and salts thereof
KR970010133B1 (en) PROCESS FOR PREPARING D-Ñß-AMINO ACIDS