SU927853A1 - Process for continuously culturing luminous bacteria photobacterium phosporeum - Google Patents

Process for continuously culturing luminous bacteria photobacterium phosporeum Download PDF

Info

Publication number
SU927853A1
SU927853A1 SU803218849A SU3218849A SU927853A1 SU 927853 A1 SU927853 A1 SU 927853A1 SU 803218849 A SU803218849 A SU 803218849A SU 3218849 A SU3218849 A SU 3218849A SU 927853 A1 SU927853 A1 SU 927853A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
bacteria
bioluminescence
nutrient medium
luminescence
culture
Prior art date
Application number
SU803218849A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Валерий Владимирович Заворуев
Владислав Валентинович Межевикин
Original Assignee
Институт Физики Им.Л.В.Киренского
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт Физики Им.Л.В.Киренского filed Critical Институт Физики Им.Л.В.Киренского
Priority to SU803218849A priority Critical patent/SU927853A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU927853A1 publication Critical patent/SU927853A1/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Изобретение относится к микробио' логин и может быть использойано для тестирования ряда биологически активных веществ. Постоянное свечение получаемого урожая бактерий позволяет создать биолюминесцентный датчик неп- 5 рерывного действия. Использование бактерий с постоянным уровнем люминесценции удобно и при обычном применении светящихся бактерий для тестирования загрязнения окружающей среды, 10 ядов и наркотиков в медицине и т.д. Оно может быть использовано и в.мик-> робиологической промышленности для непрерывного получения биомассы бак-?· терий с высокой производительностью 15 и большим содержанием люциферазы. Высокое содержание люциферазы упрощает методику очистки этого фермента. Может быть использовано в научных __ исследованиях при изучении связи между люминесценцией и процессами метаболизма в бактериях.The invention relates to microbiological login and can be used to test a number of biologically active substances. Constant light yield obtained bioluminescent bacteria to create a sensor nep- 5 reryvnogo action. The use of bacteria with a constant level of luminescence is also convenient for the usual use of luminous bacteria for testing environmental pollution, 10 poisons and drugs in medicine, etc. It can also be used in the microprobiological industry for the continuous production of biomass of bacteria with a high productivity of 15 and a high content of luciferase. The high luciferase content simplifies the purification of this enzyme. It can be used in scientific __ studies to study the relationship between luminescence and metabolic processes in bacteria.

Известен способ непрерывного культивирования светящихся бактерий Photobacterium belarerskii в турбидостате, где поддерживается на постоянном уровне оптическая плотность суспензии til·A known method for the continuous cultivation of luminous bacteria Photobacterium belarerskii in a turbidostat, where the optical density of the suspension is maintained at a constant level til

Однако в процессе культивирования биолюминисценция изменяется на два порядка, т.е. активность люциферазы в клетке варьируют в 100 раз. Исполь зование такой биомассы для тестирования биологически активных веществ крайне затруднительно, а биомасса непригодна для получения, очищенных препаратов люциферазы.However, during cultivation, bioluminescence changes by two orders of magnitude, i.e. luciferase activity in a cell varies 100 times. The use of such biomass for testing biologically active substances is extremely difficult, and the biomass is unsuitable for obtaining purified luciferase preparations.

Известен также способ культивирования Ph. phosphoreum (СМВ 844), где подачей питательной среды и вы- . водом готового продукта на постоянном уровне поддерживают совмещенный си< нал, который складывается из проходящего через культуру света от излучателя (оптическая плотность) и биолюминесценции бактерий. Соотношение з 9271 между интенсивностью прошедшего че~ : рез культуру света и интенсивностью биолюминесценции выбирают приблизительно равным 1:1. Питательная среда, применяемая для культивирования в момент ее добавления в культуру светящихся бактерий, должна ингибировать биолюминесценцию. Для этого используют сложную питательную среду Oxoid Nutrient Broth (СМ1), к кото- ι рой добавляют глицерина 1% об./об. и 2,5% вес./об. NaCl [2].Also known is a method of culturing Ph. phosphoreum (SMV 844), where the supply of a nutrient medium and you. The water of the finished product is maintained at a constant level by the combined signal, which consists of the light passing through the culture from the emitter (optical density) and the bioluminescence of bacteria. The ratio of s 9271 between the intensity of the passed through : light culture and the intensity of bioluminescence is chosen approximately equal to 1: 1. The nutrient medium used for cultivation at the time of its addition to the culture of luminous bacteria should inhibit bioluminescence. For this, a complex nutrient medium, Oxoid Nutrient Broth (CM1), is used, to which a glycerol of 1% v / v is added. and 2.5% w / v. NaCl [2].

Недостатком этого способа является низкая стабильность биолюминесценции, которая составляет+ 8%. Био- ι масса получаемая при этом болееThe disadvantage of this method is the low stability of bioluminescence, which is + 8%. Bio- ι mass obtained with this more

4 люминесценции бактерий 2, самописца с позиционным регулятором 3» насосадозатора, подающего питательную среду в культиватор 4, резервуара с питательной средой 5 и сборника урожая 6.4 luminescence of bacteria 2, a recorder with a positional regulator 3 "pump dispenser, feeding the nutrient medium to the cultivator 4, the reservoir with the nutrient medium 5 and the harvester 6.

Термостатируемый при температуре оптимальной для роста и люминесценции бактерий культиватор заполняется питательной средой. Туда же вводится инокулят бактерий. Культивирование ведут при интенсивном перемешивании и барботаже. Интенсивность биолюминесценции и количество клеток увеличивается. После достижения заданного уровня люминесценции с поудовлетворительна для получения люциферазы, но не пригодна для использования ее в качестве биолюминесцентного датчика непрерывного действия, когда требуется фиксировать изменение свечения меньше ±8%. Кроме того, способ требует применения сложной аппаратуры управления процессом куль мощью позиционного регулятора включа ется насос-дозатор, подающий питательную среду в культиватор. Одновре2о менно эквивалентный объем культураль ной жидкости со светящимися бактерия ми сливается в сборник урожая. После разбавления культуры и уменьшения интенсивности биолюминесценции, контивирования.Thermostatted at a temperature optimal for the growth and luminescence of bacteria, the cultivator is filled with a nutrient medium. A bacterial inoculum is introduced there. Cultivation is carried out with vigorous stirring and bubbling. The intensity of bioluminescence and the number of cells increases. After reaching a predetermined level of luminescence, it is satisfactory for obtaining luciferase, but is not suitable for use as a bioluminescent sensor of continuous action when it is necessary to record a change in luminescence of less than ± 8%. In addition, the method requires the use of sophisticated process control equipment by means of the position controller regulator, a metering pump is turned on, which feeds the nutrient medium to the cultivator. At the same time, the equivalent volume of culture fluid with luminous bacteria merges into the harvest collector. After diluting the culture and reducing the intensity of bioluminescence, inactivation.

Цель изобретения - повышение стабильности биолюминесценции бактерий.The purpose of the invention is to increase the stability of the bioluminescence of bacteria.

Поставленная цель достигается тем что питательную среду добавляют, когда биолюминесценция превышает заданный уровень, причем питательная среда содержит хлористый натрий фосфорнокислый натрий двузамёщенный, фосфорнокислый калий однозамещенный, фосфорнокислый аммоний двузамещенный, сернокислый магний, пеп тон и глицерин, при ношении компонентовThis goal is achieved by the fact that the nutrient medium is added when bioluminescence exceeds a predetermined level, and the nutrient medium contains sodium chloride, disubstituted sodium phosphate, monosubstituted phosphate, ammonium phosphate disubstituted, magnesium sulfate, peptone and glycerol, when wearing components

Хлористый натрий Фосфорнокислый натрий двузамещенный Фосфорнокислый калий однозамещенный Фосфорнокислый аммоний двузамещенный Сернокислый магний .ГлицеринSodium Chloride Sodium Phosphate Disubstituted Potassium Phosphate Monosubstituted Ammonium Phosphate Disubstituted Magnesium Sulfate. Glycerol

ПептонPeptone

Вода следующем соот, г/л:Water of the following, g / l:

28-3028-30

8-108-10

1,0-1,11.0-1.1

0,50-0,550.50-0.55

0,08-0,120.08-0.12

1-2,5 5,0-5,1 До 1000 мл1-2.5 5.0-5.1 Up to 1000 ml

На чертеже изображено устройство, применяемое для реализации предлагаемого способа.The drawing shows a device used to implement the proposed method.

Устройство состоит из термостатируемого культиватора 1, датчика био, такты позиционного регулятора возвращаются в исходное положение и подача питательной среды прекращается. Затем процесс повторяется.Интенсивность люминесценции записывается непрерыв30 но с помощью самописца. Скорость подачи питательной среды насосом-дозатором выбирается так, чтобы проток (отношение объема среды, прокаченного насосом за определенный промежуток 35 времени к объему культиватора) был больше максимальной скорости роста бактерий.The device consists of a thermostatically controlled cultivator 1, a bio sensor, the cycles of the positional controller return to their original position and the flow of the nutrient medium is stopped. Then the process is repeated. The luminescence intensity is recorded continuously30 using a recorder. The feed rate of the nutrient medium by the metering pump is selected so that the duct (the ratio of the volume of medium pumped by the pump over a certain period of 35 time to the volume of the cultivator) is greater than the maximum growth rate of bacteria.

Пример. Готовят 2 л среды, содержащей, г/л:_Example. Prepare 2 l of medium containing, g / l: _

NaCE 28-30NaCE 28-30

Nai^HPO^· 1 2HqO 8,0-10Nai ^ HPO ^ 1 2HqO 8.0-10

KHqPO4 1,0-1,1 (NH4)q_HPO4 0,50-0,55KHqPO 4 1.0-1.1 (NH 4 ) q_HPO 4 0.50-0.55

MgS04 7Н<20 0,08-0,12MgS0 4 7H <20 0.08-0.12

Глицерин 1,0-2,5Glycerin 1.0-2.5

Пептон 5,0-5,1Peptone 5.0-5.1

Эта среда заливается в термостатируемый при 20±0,1°С культиватор 50 емкостью 150 мл. После инокуляции бактерий исходная концентрация клеток ζ0,65· 101 кл/мл, а интенсивность биолюминесценции 2,5 отн.ед. Барботаж осуществляют из расчета, чтобы количество подаваемого в 1 мин воздуха 55 было равно объему культиватора, т.е.This medium is poured into a cultivator 50 with a capacity of 150 ml thermostatically controlled at 20 ± 0.1 ° C. After bacterial inoculation, the initial cell concentration is ζ 0.65 · 10 1 cells / ml, and the intensity of bioluminescence is 2.5 rel. Bubbling is carried out on the basis that the amount of air 55 supplied in 1 min is equal to the volume of the cultivator, i.e.

150 мл/мин,после достижения заданного уровня, равнбго 40 отн.ед., замыкается позиционный регулятор и включается насос-дозатор подачи питательной среды, обеспечивающий скорость протока 1,5 4-1. Максимальная удельная скорость роста Ph. phosphoreum на данной среде равна 0,4 ч\ После установления стационарного режима удельная скорость роста бактерий 0,3-0,35 ч*1 , а число клеток 0,4 х х1(Г® г/мл.150 ml / min, after reaching a predetermined level, equal to 40 rel.ed., the position controller closes and the metering pump for supplying the nutrient medium is turned on, providing a flow rate of 1.5 4 -1 . Maximum specific growth rate Ph. phosphoreum in this medium is 0.4 h. After the establishment of the stationary regime, the specific growth rate of bacteria is 0.3-0.35 h * 1 , and the number of cells is 0.4 x x1 (G® g / ml.

Использование предлагаемого способа культивирования позволяет стабилизировать биолюминесценцию Ph phosphoreum с точностью+0,6%. При этом не требуется сложная аппаратура. Вся установка собрана из широко распространенных приборов и узлов. Производительность предлагаемого способа культивирования в 2,5 раза выше, чем в периодическом режиме.Using the proposed method of cultivation allows you to stabilize the bioluminescence of Ph phosphoreum with an accuracy of + 0.6%. At the same time, complex equipment is not required. The entire installation is assembled from widespread instruments and components. The performance of the proposed method of cultivation is 2.5 times higher than in periodic mode.

Claims (3)

Изобретение относитс  к микробиологии и может быть использойано дл  тестировани  р да биологически актив ных веществ. Посто нное свечение по лучаемого урожа  бактерий позвол ет создать биолюминесцентный датчик неп рерывного действи . Использование бактерий с посто нным уровнем люмине ценции удобно и при обычном применении свет щихс  бактерий дл  тестировани  загр знени  окружающей среды,  дов и наркотиков в медицине и т.д. Оно может быть использовано и в.иикробиологической промышленности дл  непрерывного получени  биомассы бактерий с высокой производительностью и большим содержанием люциферазы. Высокое содержание люциферазы упрощает методику очистки этого фермента . Может быть использовано в научны исследовани х при изучении св зи между люминесценцией и процессами метаболизма в бактери х . Известен способ непрерывного культивировани  свет щихс  бактерий Photobacterium belarerskii в турбидостате , где поддерживаетс  на пос- I то нном уровне оптическа  плотность суспензии tilОднако в процессе культивировани  биолюминисценци  измен етс  на два порйдка, т.е. активность люциферазы в клетке варьируют в 100 раз. Исполь зование такой биомассы дл  тестировани  биологически активных веществ крайне затруднительно, а биомасса непригодна дл  получени , очищенных препаратов люциферазы. Известен также способ культивировани  Ph. phosphoreum (СМВ 8), где подачей питательной среды и вы- водом готового продукта на посто нном уровне поддерживают совмещенный сигнал , который складываетс  из проход щего через культуру света от излучател  (оптическа  плотность) и биолюминесценции бактерий. Соотношение между интенсивностью прошедшего через культуру света и интенсивностью биолюминесценции выбирают приблизительно равным 1:1. Питательна  среда , примен ема  дл  культивировани  в момент ее добавлени  в культуру свет щихс  бактерий, должна инги бировать биолюминесценцию. Дл  этог используют сложную питательную сред Oxoid Nutrient Broth (СМ1), к которой добавл ют глицерина 1% об./об. и 2,5% вес./об. NaCI {21, Недостатком этого способа  вл етс  низка  стабильность биолюминес ценции, котора  составл етt 8. Био масса получаема  при этом более удовлетворительна дл  получени  люц феразы, но не пригодна дл  использовани  ее в качестве биолюминесцен ного датчика непрерывного действи  когда требуетс  фиксировать изменение свечени  меньше ±8%. Кроме того способ требует применени  сложной аппаратуры управлени  процессом кул тивировани .. Цель изобретени  - повышение ста бильности биолюминесценции бактерий Поставленна  цель достигаетс  те что питательную среду добавл ют, когда биолюминесценци  превышает за данный уровень, причем питательна  среда содержит хлористый натрий фосфорнокислый натрий двузамёщенный , фосфорнокислый калий однозамещенный , фосфорнокислый аммоний двузамещенный , сернокислый магний, пеп тон и глицерин, при следующем соотношении компонентов, г/л: Хлористый натрий Фосфорнокислый натрий двузамещенный Фосфорнокислый калий однозамещенный 1,0-1,1 Фосфорнокислый аммоний двузамещенный 0,50-0,55 Сернокислый 0,08-0,12 магний Глицерин 1-2,5 5,0-5,1 Пептон До 1000 мл На чертеже изображено устройство примен емое дл  реализации предлага емого способа. Устройство состоит из термостати руемого культиватора 1, датчика био люминесценции бактерий 2, самописца с позиционным регул тором 3, насоса дозатора, подающего питательную среду в культиватор 4, резервуара с питательной средой 5 и сборника урожа  6. Термостатируемый при температуре оптимальной дл  роста и люминесценции бактерий культиватор заполн етс  питательной средой. Туда же вводитс  инокул т бактерий. Культивирование ведут при интенсивном перемешивании и барботаже. Интенсивность биолюминесценции и количество клеток увеличиваетс . После достижени  заданного уровн  люминесценции с помощью позиционного регул тора включаетс  насос-дозатор, подающий питательную среду в культиватор. Одновременно эквивалентный объем культуральной жидкости со свет щимис  бактери ми сливаетс  в сборник урожа . После разбавлени  культуры и уменьшени  интенсивности биолюминесценции, контакты позиционного регул тора возвращаютс  в исходное положение и подача питательной среды прекращаетс . Затем процесс повтор етс .Интенсивность люминесценции записываетс  непрерывно с помощью самописца. Скорость подачи питательной среды насосом-дозатором выбираетс  так, чтобы проток (отношение объема среды, прокаченного насосом за определенный промежуток времени к объему культиватора) был больше максимальной скорости роста бактерий. Пример. Готов т 2 л среды, содержащей, г/л: NaCE28-30 .12H|jO 8,0-10 КН(Р041,0-1,1 ( NH4)LHP040,50-0,55 МдЗОд 7H(ip0,08-0,12 Глицерин1,0-2 ,5 Пептон5,0-5,1 Эта среда заливаетс  в термостатируемый при 20t 0, культиватор емкостью 150 мл. После инокул ции бактерий исходна  концентраци  клеток 0,65 10 кл/мл, а интенсивность биолюминесценции 2,5 отн.ед. Барботаж осуществл ют из расчета, чтобы количество подаваемого в 1 мин воздуха было равно объему культиватора, т.е. 150 мл/мин,после достижени  заданного уровн , равного 40 отн.ед., замыкаетс  позиционный регул тор и включаетс  насос-дозатор подачи питательной среды, обеспечивающий скорость протока 1,5 ч-. Максимальна  удельна  скорость роста Ph. phosphoreum на данной среде равна 0, ч . После установлени  стационарного режима удельна  скорость роста бактерий 0,3-0,35 ч , а число клеток 0,| х х1(Гв г/мл. Использование предлагаемого способа культивировани  позвол ет стаби лизировать биолюминесценцию РК phos phoreum с точностью t0,6%. При этом не требуетс  сложна  аппаратура. Вс  установка собрана из широко распространенных приборов и узлов. Произво дительность предлагаемого способа ку льтивировани  в 2,5 раза выше, чем в периодическом режиме. Формула изобретени  Способ непрерывного культивирова ни  свет щихс  бактерий Photobacterium phosphoreum на питательной сре де, содержащей источник углерода и минеральные соли, отличающийс  тем, что, с целью повышени  стабильности биолюминесценции питательную среду добавл ют, когда биолюминесценци  превышает заданный уровень, причем питательна  среда содержит хлористый натрий, фосфорно ислый натрий двузамещенный, фосорнокислый калий однозамещенный, осфорнокислый аммоний двузамещеный , сернокислый магний, пептон и гЛи ерин при следующем соотношении омпонентов, г/л: Хлористый натрий Фосфорнокислый натрий двузаме8-tO щенный Фосфорнокислый калий однозаме1 ,0-1,1 щенный Фосфорнокислый аммоний двуза0 ,50-0,55 мещенный Сернокислый Mai- 0,08-0,12 Глицерин 1.0-2,5 Пептон 5,0-5,1 До 1000 мл Источники информации, прин тые во внимание при экспертизе 1.Фиш A.M. Исследование некоорых сторон метаболизма свет щихс  бактерий в непрерывной культуре. Азтореф .канд.диссертации, Красно рск, 1969. The invention relates to microbiology and can be used for testing a number of biologically active substances. Constant luminescence of the obtained yield of bacteria allows creating a bioluminescent sensor of continuous action. The use of bacteria with a constant level of luminescence is convenient and with the usual use of luminous bacteria for testing the contamination of the environment, poisons and drugs in medicine, etc. It can be used in the microbiological industry for the continuous production of bacterial biomass with high productivity and high luciferase content. The high content of luciferase simplifies the method of purification of this enzyme. It can be used in scientific studies to study the relationship between luminescence and metabolic processes in bacteria. A known method of continuous cultivation of luminous bacteria of Photobacterium belarerskii in a turbidostat, where the optical density of the suspension til is maintained at a constant level. However, in the process of cultivation, bioluminescence changes by two times, i.e. luciferase activity in the cell varies by 100 times. The use of such biomass for testing biologically active substances is extremely difficult, and the biomass is unsuitable for obtaining purified luciferase preparations. A method of cultivating Ph is also known. phosphoreum (SMB 8), where the supply of the nutrient medium and the output of the finished product at a constant level is supported by a combined signal, which is composed of light passing through the culture from the emitter (optical density) and bioluminescence of bacteria. The ratio between the intensity of the light passing through the culture and the intensity of the bioluminescence is chosen to be approximately 1: 1. The nutrient medium used for cultivation at the time of its addition to the culture of luminous bacteria should inhibit bioluminescence. For this, Oxoid Nutrient Broth (CM1) complex nutrient media is used, to which 1% v / v glycerol is added. and 2.5% wt./about. NaCI {21, The disadvantage of this method is the low stability of bioluminescence, which is 8. The bio mass obtained in this case is more satisfactory for obtaining lyephrase, but is not suitable for using it as a bioluminescent continuous sensor when it is necessary to fix the change in luminescence ± 8%. In addition, the method requires the use of complex apparatus for controlling the process of clotting. The purpose of the invention is to increase the stability of the bioluminescence of bacteria. The goal is to ensure that the nutrient medium is added when the bioluminescence exceeds the given level, and the nutrient medium contains sodium phosphate sodium disodium, phosphoric acid potassium monosubstituted, ammonium phosphate disubstituted, magnesium sulphate, peptone and glycerin, in the following ratio of components, g / l: chlorine total sodium Phosphate sodium disubstituted Potassium phosphate monosubstituted 1.0-1.1 Ammonium phosphate disubstituted 0.50-0.55 Sulfuric acid 0.08-0.12 magnesium Glycerin 1-2.5 5.0-5.1 Peptone To 1000 ml The drawing shows the device used to implement the proposed method. The device consists of a thermostatically controlled cultivator 1, a bio-luminescence sensor for bacteria 2, a recorder with position controller 3, a metering pump supplying the nutrient medium to the cultivator 4, a reservoir with nutrient medium 5, and a crop collector 6. Thermostatically controlled at the temperature optimal for the growth and luminescence of bacteria the cultivator is filled with a nutrient medium. An inoculum of bacteria is also administered there. Cultivation is carried out with vigorous stirring and bubbling. The intensity of bioluminescence and the number of cells increases. After the preset luminescence level has been reached by means of the position controller, the metering pump turns on, feeding the nutrient medium to the cultivator. At the same time, an equivalent volume of culture fluid with luminous bacteria is discharged into the crop collector. After diluting the culture and reducing the bioluminescence intensity, the contacts of the position controller return to their original position and the feeding of the nutrient medium is stopped. The process is then repeated. The luminescence intensity is recorded continuously using a recorder. The feed rate of the nutrient medium by the dosing pump is chosen so that the flow path (the ratio of the volume of the medium pumped by the pump over a certain period of time to the volume of the cultivator) is greater than the maximum growth rate of bacteria. Example. Prepared 2 liters of medium containing, g / l: NaCE28-30 .12H | jO 8.0-10 KN (P0.0.0-1.1 (NH4) LHP040.50-0.55 MhZod 7H (ip0.08- 0.12 Glycerin 1.0-2, 5 Pepto5.0-5.1 This medium is poured into a 150 ml cultivator which is temperature-controlled at 20t.. After bacterial inoculation, the initial cell concentration is 0.65 10 cells / ml, and the bioluminescence intensity is 2 , 5 rel. Units Bubbling is carried out on the basis that the amount of air supplied per 1 min equals the volume of the cultivator, i.e. 150 ml / min, after reaching a predetermined level of 40 rel., The position regulator closes and pitch dosing pump starts The average specific growth rate of Ph. phosphoreum on this medium is 0, h. After establishing the stationary mode, the specific growth rate of bacteria is 0.3-0.35 h, and the number of cells is 0, | xx1 (Gu g / ml. Using the proposed culture method stabilizes the bioluminescence of PK phos phoreum with an accuracy of t0.6%. At the same time, complex equipment is not required. The installation is assembled from widespread devices and assemblies. The productivity of the proposed method of cultivation is 2.5 times higher than in the periodic mode. DETAILED DESCRIPTION A method for continuously cultivating light bacteria of Photobacterium phosphoreum in a nutrient medium containing a carbon source and mineral salts, characterized in that, in order to improve the bioluminescence stability, the nutrient medium is added when the bioluminescence exceeds a predetermined level, and the nutrient medium contains sodium chloride. , sodium phosphate-sodium disubstituted, potassium phosphate monosubstituted, ammonium phosphate ammonium disubstituted, magnesium sulphate, peptone and hydrogen erin at the following ratio The following components, g / l: Sodium chloride Sodium phosphate dibasame8-tO scoop Potassium phosphate monoamer1, 0-1,1 scooped Ammonium phosphate bicase 0, 50-0.55 bichenate Sulfuric acid Mai- 0.08-0.12 Glycerin 1.0-2, 5 Peptone 5.0-5.1 Up to 1000 ml Sources of information taken into account during the examination 1.Fish AM Investigation of several sides of the metabolism of lucid bacteria in continuous culture. Aztoref. Candidate Dissertations, Krasno rsk, 1969. 2.Wardley-Smlth В. et all. The continous culture of luminous bacteria . 2.Wardley-Smlth B. et all. The continous culture of luminous bacteria. 3. Appl. Bact., 1975, 39, p.337-3 3 (прототип).3. Appl. Bact., 1975, 39, p. 377-3 3 (prototype).
SU803218849A 1980-12-15 1980-12-15 Process for continuously culturing luminous bacteria photobacterium phosporeum SU927853A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU803218849A SU927853A1 (en) 1980-12-15 1980-12-15 Process for continuously culturing luminous bacteria photobacterium phosporeum

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU803218849A SU927853A1 (en) 1980-12-15 1980-12-15 Process for continuously culturing luminous bacteria photobacterium phosporeum

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU927853A1 true SU927853A1 (en) 1982-05-15

Family

ID=20932238

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU803218849A SU927853A1 (en) 1980-12-15 1980-12-15 Process for continuously culturing luminous bacteria photobacterium phosporeum

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU927853A1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Gibor The culture of brine algae
CN101633894B (en) Culture medium of euglena gracilis and open type high-density culture method
Werrlein et al. Oxygen microenvironment and respiratory oscillations in cultured mammalian cells
JP5018104B2 (en) Cell culture method and cell culture apparatus
IT1256566B (en) PROCEDURE AND EQUIPMENT TO CONTROL THE CONCENTRATION OF THE CARBON SOURCE IN AN AEROBIC CULTURE OF A MICROORGANISM
Matsudo et al. Photosynthetic efficiency and rate of CO2 assimilation by Arthrospira (Spirulina) platensis continuously cultivated in a tubular photobioreactor
CN100500828C (en) Liquid containing diatom, diatom and method for culturing diatom
Lee et al. High CO 2 partial pressure depresses productivity and bioenergetic growth yield of Chlorella pyrenoidosa culture
Otto et al. The phosphate potential, adenylate energy charge and proton motive force in growing cells of Streptococcus cremoris
US4306026A (en) Process for culturing cells
SU927853A1 (en) Process for continuously culturing luminous bacteria photobacterium phosporeum
Vieira et al. Simultaneous use of urea and potassium nitrate for Arthrospira (Spirulina) platensis cultivation
Nampoothiri et al. Immobilization of Brevibacterium cells for the production of L-glutamic acid
JP2008043301A (en) Cell culture method
Zhulin et al. Behavior of Rhizobium meliloti in oxygen gradients
Lasko et al. In situ fermentation monitoring with recombinant firefly luciferase
Ohtaguchi et al. Elevation of the efficiency of cyanobacterial carbon dioxide removal by monoethanolamine solution
SU592807A1 (en) Method of obtaining peat bacterial fertilizer
SU950768A1 (en) Method of determining kinetic parameters of growth of microorganisms
Mason et al. Growth kinetics of a yeast grown on glucose or hexadecane
SU663713A1 (en) Method of continuous two-stage cultivation of yeast
Olofsson Jr The role of microlayers in controlling phytoplankton productivity
Ismailov et al. Biosensors using free and immobilized cells of luminous bacteria
SU734262A1 (en) Method of preparing rna-polymerase
DiLuccio et al. Effect of dissolved oxygen on nitrogen fixation by A. vinelandii. I. Free cell cultures