SU927853A1 - Process for continuously culturing luminous bacteria photobacterium phosporeum - Google Patents
Process for continuously culturing luminous bacteria photobacterium phosporeum Download PDFInfo
- Publication number
- SU927853A1 SU927853A1 SU803218849A SU3218849A SU927853A1 SU 927853 A1 SU927853 A1 SU 927853A1 SU 803218849 A SU803218849 A SU 803218849A SU 3218849 A SU3218849 A SU 3218849A SU 927853 A1 SU927853 A1 SU 927853A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- bacteria
- bioluminescence
- nutrient medium
- luminescence
- culture
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Description
Изобретение относится к микробио' логин и может быть использойано для тестирования ряда биологически активных веществ. Постоянное свечение получаемого урожая бактерий позволяет создать биолюминесцентный датчик неп- 5 рерывного действия. Использование бактерий с постоянным уровнем люминесценции удобно и при обычном применении светящихся бактерий для тестирования загрязнения окружающей среды, 10 ядов и наркотиков в медицине и т.д. Оно может быть использовано и в.мик-> робиологической промышленности для непрерывного получения биомассы бак-?· терий с высокой производительностью 15 и большим содержанием люциферазы. Высокое содержание люциферазы упрощает методику очистки этого фермента. Может быть использовано в научных __ исследованиях при изучении связи между люминесценцией и процессами метаболизма в бактериях.The invention relates to microbiological login and can be used to test a number of biologically active substances. Constant light yield obtained bioluminescent bacteria to create a sensor nep- 5 reryvnogo action. The use of bacteria with a constant level of luminescence is also convenient for the usual use of luminous bacteria for testing environmental pollution, 10 poisons and drugs in medicine, etc. It can also be used in the microprobiological industry for the continuous production of biomass of bacteria with a high productivity of 15 and a high content of luciferase. The high luciferase content simplifies the purification of this enzyme. It can be used in scientific __ studies to study the relationship between luminescence and metabolic processes in bacteria.
Известен способ непрерывного культивирования светящихся бактерий Photobacterium belarerskii в турбидостате, где поддерживается на постоянном уровне оптическая плотность суспензии til·A known method for the continuous cultivation of luminous bacteria Photobacterium belarerskii in a turbidostat, where the optical density of the suspension is maintained at a constant level til
Однако в процессе культивирования биолюминисценция изменяется на два порядка, т.е. активность люциферазы в клетке варьируют в 100 раз. Исполь зование такой биомассы для тестирования биологически активных веществ крайне затруднительно, а биомасса непригодна для получения, очищенных препаратов люциферазы.However, during cultivation, bioluminescence changes by two orders of magnitude, i.e. luciferase activity in a cell varies 100 times. The use of such biomass for testing biologically active substances is extremely difficult, and the biomass is unsuitable for obtaining purified luciferase preparations.
Известен также способ культивирования Ph. phosphoreum (СМВ 844), где подачей питательной среды и вы- . водом готового продукта на постоянном уровне поддерживают совмещенный си< нал, который складывается из проходящего через культуру света от излучателя (оптическая плотность) и биолюминесценции бактерий. Соотношение з 9271 между интенсивностью прошедшего че~ : рез культуру света и интенсивностью биолюминесценции выбирают приблизительно равным 1:1. Питательная среда, применяемая для культивирования в момент ее добавления в культуру светящихся бактерий, должна ингибировать биолюминесценцию. Для этого используют сложную питательную среду Oxoid Nutrient Broth (СМ1), к кото- ι рой добавляют глицерина 1% об./об. и 2,5% вес./об. NaCl [2].Also known is a method of culturing Ph. phosphoreum (SMV 844), where the supply of a nutrient medium and you. The water of the finished product is maintained at a constant level by the combined signal, which consists of the light passing through the culture from the emitter (optical density) and the bioluminescence of bacteria. The ratio of s 9271 between the intensity of the passed through : light culture and the intensity of bioluminescence is chosen approximately equal to 1: 1. The nutrient medium used for cultivation at the time of its addition to the culture of luminous bacteria should inhibit bioluminescence. For this, a complex nutrient medium, Oxoid Nutrient Broth (CM1), is used, to which a glycerol of 1% v / v is added. and 2.5% w / v. NaCl [2].
Недостатком этого способа является низкая стабильность биолюминесценции, которая составляет+ 8%. Био- ι масса получаемая при этом болееThe disadvantage of this method is the low stability of bioluminescence, which is + 8%. Bio- ι mass obtained with this more
4 люминесценции бактерий 2, самописца с позиционным регулятором 3» насосадозатора, подающего питательную среду в культиватор 4, резервуара с питательной средой 5 и сборника урожая 6.4 luminescence of bacteria 2, a recorder with a positional regulator 3 "pump dispenser, feeding the nutrient medium to the cultivator 4, the reservoir with the nutrient medium 5 and the harvester 6.
Термостатируемый при температуре оптимальной для роста и люминесценции бактерий культиватор заполняется питательной средой. Туда же вводится инокулят бактерий. Культивирование ведут при интенсивном перемешивании и барботаже. Интенсивность биолюминесценции и количество клеток увеличивается. После достижения заданного уровня люминесценции с поудовлетворительна для получения люциферазы, но не пригодна для использования ее в качестве биолюминесцентного датчика непрерывного действия, когда требуется фиксировать изменение свечения меньше ±8%. Кроме того, способ требует применения сложной аппаратуры управления процессом куль мощью позиционного регулятора включа ется насос-дозатор, подающий питательную среду в культиватор. Одновре2о менно эквивалентный объем культураль ной жидкости со светящимися бактерия ми сливается в сборник урожая. После разбавления культуры и уменьшения интенсивности биолюминесценции, контивирования.Thermostatted at a temperature optimal for the growth and luminescence of bacteria, the cultivator is filled with a nutrient medium. A bacterial inoculum is introduced there. Cultivation is carried out with vigorous stirring and bubbling. The intensity of bioluminescence and the number of cells increases. After reaching a predetermined level of luminescence, it is satisfactory for obtaining luciferase, but is not suitable for use as a bioluminescent sensor of continuous action when it is necessary to record a change in luminescence of less than ± 8%. In addition, the method requires the use of sophisticated process control equipment by means of the position controller regulator, a metering pump is turned on, which feeds the nutrient medium to the cultivator. At the same time, the equivalent volume of culture fluid with luminous bacteria merges into the harvest collector. After diluting the culture and reducing the intensity of bioluminescence, inactivation.
Цель изобретения - повышение стабильности биолюминесценции бактерий.The purpose of the invention is to increase the stability of the bioluminescence of bacteria.
Поставленная цель достигается тем что питательную среду добавляют, когда биолюминесценция превышает заданный уровень, причем питательная среда содержит хлористый натрий фосфорнокислый натрий двузамёщенный, фосфорнокислый калий однозамещенный, фосфорнокислый аммоний двузамещенный, сернокислый магний, пеп тон и глицерин, при ношении компонентовThis goal is achieved by the fact that the nutrient medium is added when bioluminescence exceeds a predetermined level, and the nutrient medium contains sodium chloride, disubstituted sodium phosphate, monosubstituted phosphate, ammonium phosphate disubstituted, magnesium sulfate, peptone and glycerol, when wearing components
Хлористый натрий Фосфорнокислый натрий двузамещенный Фосфорнокислый калий однозамещенный Фосфорнокислый аммоний двузамещенный Сернокислый магний .ГлицеринSodium Chloride Sodium Phosphate Disubstituted Potassium Phosphate Monosubstituted Ammonium Phosphate Disubstituted Magnesium Sulfate. Glycerol
ПептонPeptone
Вода следующем соот, г/л:Water of the following, g / l:
28-3028-30
8-108-10
1,0-1,11.0-1.1
0,50-0,550.50-0.55
0,08-0,120.08-0.12
1-2,5 5,0-5,1 До 1000 мл1-2.5 5.0-5.1 Up to 1000 ml
На чертеже изображено устройство, применяемое для реализации предлагаемого способа.The drawing shows a device used to implement the proposed method.
Устройство состоит из термостатируемого культиватора 1, датчика био, такты позиционного регулятора возвращаются в исходное положение и подача питательной среды прекращается. Затем процесс повторяется.Интенсивность люминесценции записывается непрерыв30 но с помощью самописца. Скорость подачи питательной среды насосом-дозатором выбирается так, чтобы проток (отношение объема среды, прокаченного насосом за определенный промежуток 35 времени к объему культиватора) был больше максимальной скорости роста бактерий.The device consists of a thermostatically controlled cultivator 1, a bio sensor, the cycles of the positional controller return to their original position and the flow of the nutrient medium is stopped. Then the process is repeated. The luminescence intensity is recorded continuously30 using a recorder. The feed rate of the nutrient medium by the metering pump is selected so that the duct (the ratio of the volume of medium pumped by the pump over a certain period of 35 time to the volume of the cultivator) is greater than the maximum growth rate of bacteria.
Пример. Готовят 2 л среды, содержащей, г/л:_Example. Prepare 2 l of medium containing, g / l: _
NaCE 28-30NaCE 28-30
Nai^HPO^· 1 2HqO 8,0-10Nai ^ HPO ^ 1 2HqO 8.0-10
KHqPO4 1,0-1,1 (NH4)q_HPO4 0,50-0,55KHqPO 4 1.0-1.1 (NH 4 ) q_HPO 4 0.50-0.55
MgS04 7Н<20 0,08-0,12MgS0 4 7H <20 0.08-0.12
Глицерин 1,0-2,5Glycerin 1.0-2.5
Пептон 5,0-5,1Peptone 5.0-5.1
Эта среда заливается в термостатируемый при 20±0,1°С культиватор 50 емкостью 150 мл. После инокуляции бактерий исходная концентрация клеток ζ0,65· 101 кл/мл, а интенсивность биолюминесценции 2,5 отн.ед. Барботаж осуществляют из расчета, чтобы количество подаваемого в 1 мин воздуха 55 было равно объему культиватора, т.е.This medium is poured into a cultivator 50 with a capacity of 150 ml thermostatically controlled at 20 ± 0.1 ° C. After bacterial inoculation, the initial cell concentration is ζ 0.65 · 10 1 cells / ml, and the intensity of bioluminescence is 2.5 rel. Bubbling is carried out on the basis that the amount of air 55 supplied in 1 min is equal to the volume of the cultivator, i.e.
150 мл/мин,после достижения заданного уровня, равнбго 40 отн.ед., замыкается позиционный регулятор и включается насос-дозатор подачи питательной среды, обеспечивающий скорость протока 1,5 4-1. Максимальная удельная скорость роста Ph. phosphoreum на данной среде равна 0,4 ч\ После установления стационарного режима удельная скорость роста бактерий 0,3-0,35 ч*1 , а число клеток 0,4 х х1(Г® г/мл.150 ml / min, after reaching a predetermined level, equal to 40 rel.ed., the position controller closes and the metering pump for supplying the nutrient medium is turned on, providing a flow rate of 1.5 4 -1 . Maximum specific growth rate Ph. phosphoreum in this medium is 0.4 h. After the establishment of the stationary regime, the specific growth rate of bacteria is 0.3-0.35 h * 1 , and the number of cells is 0.4 x x1 (G® g / ml.
Использование предлагаемого способа культивирования позволяет стабилизировать биолюминесценцию Ph phosphoreum с точностью+0,6%. При этом не требуется сложная аппаратура. Вся установка собрана из широко распространенных приборов и узлов. Производительность предлагаемого способа культивирования в 2,5 раза выше, чем в периодическом режиме.Using the proposed method of cultivation allows you to stabilize the bioluminescence of Ph phosphoreum with an accuracy of + 0.6%. At the same time, complex equipment is not required. The entire installation is assembled from widespread instruments and components. The performance of the proposed method of cultivation is 2.5 times higher than in periodic mode.
Claims (3)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU803218849A SU927853A1 (en) | 1980-12-15 | 1980-12-15 | Process for continuously culturing luminous bacteria photobacterium phosporeum |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU803218849A SU927853A1 (en) | 1980-12-15 | 1980-12-15 | Process for continuously culturing luminous bacteria photobacterium phosporeum |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU927853A1 true SU927853A1 (en) | 1982-05-15 |
Family
ID=20932238
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU803218849A SU927853A1 (en) | 1980-12-15 | 1980-12-15 | Process for continuously culturing luminous bacteria photobacterium phosporeum |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU927853A1 (en) |
-
1980
- 1980-12-15 SU SU803218849A patent/SU927853A1/en active
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Gibor | The culture of brine algae | |
CN101633894B (en) | Culture medium of euglena gracilis and open type high-density culture method | |
Werrlein et al. | Oxygen microenvironment and respiratory oscillations in cultured mammalian cells | |
JP5018104B2 (en) | Cell culture method and cell culture apparatus | |
IT1256566B (en) | PROCEDURE AND EQUIPMENT TO CONTROL THE CONCENTRATION OF THE CARBON SOURCE IN AN AEROBIC CULTURE OF A MICROORGANISM | |
Matsudo et al. | Photosynthetic efficiency and rate of CO2 assimilation by Arthrospira (Spirulina) platensis continuously cultivated in a tubular photobioreactor | |
CN100500828C (en) | Liquid containing diatom, diatom and method for culturing diatom | |
Lee et al. | High CO 2 partial pressure depresses productivity and bioenergetic growth yield of Chlorella pyrenoidosa culture | |
Otto et al. | The phosphate potential, adenylate energy charge and proton motive force in growing cells of Streptococcus cremoris | |
US4306026A (en) | Process for culturing cells | |
SU927853A1 (en) | Process for continuously culturing luminous bacteria photobacterium phosporeum | |
Vieira et al. | Simultaneous use of urea and potassium nitrate for Arthrospira (Spirulina) platensis cultivation | |
Nampoothiri et al. | Immobilization of Brevibacterium cells for the production of L-glutamic acid | |
JP2008043301A (en) | Cell culture method | |
Zhulin et al. | Behavior of Rhizobium meliloti in oxygen gradients | |
Lasko et al. | In situ fermentation monitoring with recombinant firefly luciferase | |
Ohtaguchi et al. | Elevation of the efficiency of cyanobacterial carbon dioxide removal by monoethanolamine solution | |
SU592807A1 (en) | Method of obtaining peat bacterial fertilizer | |
SU950768A1 (en) | Method of determining kinetic parameters of growth of microorganisms | |
Mason et al. | Growth kinetics of a yeast grown on glucose or hexadecane | |
SU663713A1 (en) | Method of continuous two-stage cultivation of yeast | |
Olofsson Jr | The role of microlayers in controlling phytoplankton productivity | |
Ismailov et al. | Biosensors using free and immobilized cells of luminous bacteria | |
SU734262A1 (en) | Method of preparing rna-polymerase | |
DiLuccio et al. | Effect of dissolved oxygen on nitrogen fixation by A. vinelandii. I. Free cell cultures |