SU925108A1 - Method for preparing immobilized cellulose - Google Patents
Method for preparing immobilized cellulose Download PDFInfo
- Publication number
- SU925108A1 SU925108A1 SU802878954A SU2878954A SU925108A1 SU 925108 A1 SU925108 A1 SU 925108A1 SU 802878954 A SU802878954 A SU 802878954A SU 2878954 A SU2878954 A SU 2878954A SU 925108 A1 SU925108 A1 SU 925108A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- cellulase
- carrier
- immobilized
- activity
- protein
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
Abstract
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ИММОБИЛИЗОВАННОЙ ЦЕЛЛЮЛАЗЫ путем :.овалентного св зывани целлюлазы с пoJ:имepным носителем, отличающийс тем, что, с целью повышени ферментативной активности получаемого продукта , в качестве полимерного носител используют хитин, активированный п-бензохиноном, и процесс -ведут при весовом соотношении целлюлазы: носитель A method for producing an immobilized cellulose by: covalently binding cellulase to j: an immaterial carrier, characterized in that, in order to increase the enzymatic activity of the resulting product, chitin activated with p-benzoquinone is used as a polymeric carrier, and a piece is used. : carrier
Description
00 00
Изобретение относитс к способу получени и дмобилизованных ферментов, в частности целлюлазы. Иммобилизованные ферменты используютс в качестве биохимических реактивов, лекарственных препаратор, а также в химической, лсикробиологической и пищевой промышленности в качестве гетерогенных биокатализаторов.The invention relates to a process for the preparation of dmobilized enzymes, in particular cellulase. Immobilized enzymes are used as biochemical reagents, medicinal preparations, as well as in the chemical, biological biological and food industries as heterogeneous biocatalysts.
Имглобилизаци целлюлазы обеспечивает создание более эффективного гид-г ролизующего агента.Immunization of cellulase provides a more efficient hydrolysis agent.
Известна стабилизаци целлюлазы в растворимой форме l и иммобилизаци целлюлазы на нерастворимых носител х 2 , з ,The stabilization of cellulase in soluble form l and the immobilization of cellulase on insoluble carriers x, z,
Практическое использование таких ферментов, как целлюлаза и 6 -глгокозидаза , вход щих в целлюлолитический комплекс, требует получени целлюлазы в нерастворимой форме.The practical use of such enzymes as cellulase and 6 -glucosidase, which are part of the cellulolytic complex, requires the production of cellulase in an insoluble form.
Известен способ получени иммобилизованной целлюлазы путем св зывани ее с пенополиуретаном. Однако в результате процесса происходит значительна инактиваци фермента 2, A known method for producing immobilized cellulase by binding it to polyurethane foam. However, the process significantly inactivates enzyme 2,
Известен также способ получени иммобилизованной целлюлазы из Азрегgillus niger путем св зывани фермента с полимернь 1 носителем-полиакрилонитрилсмолой . Активность поОThere is also known a method for producing immobilized cellulase from Azreggillus niger by binding the enzyme to polymer 1 with a polyacrylonitrile resin carrier. Poo activity
mimi
NHNH
liN в результате высокой реакционноспособности хинонов реакци ковалент ного св зывани фермента с носителем проходит быстро и с небольшими потер ми фермента. Продолжительность реа ции св зывани 1 ч. Св зываетс до 72% от вз того количества фермента. Это обеспечивает экономию фермента. На данном носителе хорошо иммобилизуютс все компоненты целлюлолитического комплекса. -1, 4-Эндоглюкан зы иммобилизуютс с сохранением 80,9 от исходной активности (по На-КМЦ, P-I,4-глюканцеллобиогидрЬлазы иммобилизуютс с сохранением 60% от исходной активности (по целлобиозе), Иммобилизованные П -глюк зидазы по казывают 37% активности от активности исходных р -глюкозидаз (по п-нитрофенил A,D-глюкoпиpaнoзидyJ . Пример 1. К 2,5 г носител ( с содержанием 280 мкг-экв, хиноновых групп на 1 (г носитех ) прибавл ют pa хвор 1,0 г,целлюлазного препарата в As a result of the high reactivity of quinones, the liN reaction covalently binds the enzyme to the carrier quickly and with small losses of the enzyme. The duration of the reaction is 1 hour. Up to 72% of the taken amount of the enzyme is bound. This saves the enzyme. All components of the cellulolytic complex are well immobilized on this carrier. -1, 4-Endoglucan Cases are immobilized with retention of 80.9 from the initial activity (according to Na-CMC, PI, 4-glucanellobiohygrylase are immobilized with preservation of 60% of the initial activity (in cellobiose); Immobilized P-glucidase show 37% of activity from the activity of the initial p-glucosidases (according to p-nitrophenyl A, D-glucopyranoside J. Example 1. To 2.5 g of the carrier (containing 280 µg-eq, quinone groups per 1 (g of carrier)) add 1.0 g , cellulase drug in
лученной иммобилизованной целлюлазы. составл ет 20% от исходной активности фермента з .immobilized cellulase. makes up 20% of the initial activity of the enzyme h.
Недостатком способа вл етс низка активность иммобилизованной целлюлазы .The disadvantage of this method is the low activity of immobilized cellulase.
Целью изобретени вл етс повышение ферментативной активности иммобилизованной целлюлазы.The aim of the invention is to increase the enzymatic activity of immobilized cellulase.
Цель достигаетс способом получени иммобилизованной целлюлазы, заключающимс в ковалентном св зывании целлюлазы с полимерным носителем, отличительныг т особенност ми которого вл ютс использование в качестве полимерного носител хитина, активированного п-бензохиноном, и ведение процесса при весовом соотношении целлюлаза : носитель (0,06-, 0,4 : 1).The goal is achieved by a method of producing immobilized cellulase, consisting in covalent bonding of cellulase to a polymer carrier, characterized by using chitin activated by p-benzoquinone as the polymer carrier and running the process at a weight ratio of cellulase: carrier (0.06%). , 0.4: 1).
Хитин, активированный п-бензохиноном , содержит 0,2-0,28 мкг.экв хинновых групп на 1 г носител .Chitin, activated by p-benzoquinone, contains 0.2–0.28 µg eq of quinine groups per gram of carrier.
Электронно-акцепторные карбонильн группы создают недостаток электронов на углеродном кольце, вследствие чего хиноны вл ютс электроакцепторными соединени ми и легко вступают в реакцию с нуклеофильными реагентами . Схема реакции следующа :Electron acceptor carbonyl groups create a lack of electrons on the carbon ring, as a result of which quinones are electroacceptor compounds and easily react with nucleophilic reagents. The reaction scheme is as follows:
4- HZN-целлюлазацеллюлоза 10 мл 0,1 н, шдетатного буфера (рН4,8). Используетс целл олазный препарат из гриба Geotrichum candidum С содержанием белка 50% и эндоглюканазной (по йа-К1 1Ц активностью 11,37 мкмоль глюкозы/мг белка, целлобиазной (по целлобиозе ) активностью 1,13 мкмоль глюкозы/мг белка и |5 -глюкозидазной (по п-нитрофенил-р-В-глюкопиранозиду) активностью 1,16 мшлолъ глюкозы/мг белка ,. Выдерживают при комнатной температуре 1 ч и отфильтровывают. Промывают 3x15 мл 1 М раствора NaCI и 2 х 10 мл ацетатного буфера. Св зываетс 72% от вз того количества белка. Полученный препарат иммобилизованной целлюлазы содержит 43,6 мг белка на 1 г носител . Активность иммобилизованной це 1люлазы: эндоглюканазна 9,2 мкмоль глюкозы/мг .белка (80,9%), целлобиазH .afi 0,8 мкМоль глюкозы/мг белкд ( 69,8% , -глюкозидазна 0/43 мкмол глюкозы/мг белка (36,9%) , Пример2. К1 г носител пр бавл ют раствор 0,2 г целлюлазного препарата из Geotrichum candidum в 3 мл 0,05 н. ацетатного буфера рН 4,8). Выдерживают при комнатной температуре 1 ч и отфильтровывают, Промывают 3 X 10 мл 1 М раствора NaCI и 2 X 5 мл ацетатного буфера. Получают препарат иммобилизованной целлюлазы с активностью: эндоглюкан ной 9,13 мк.моль глюкозы/мг белка (80,2%), целлобиазной 0,68 мкмоль глюкозы/мг- белка (60 , 0% , р-глюкози дазной 0,42 мкмоль глюкозы/мг белка (,37,1%) . Пример 3. К2г носител прибавл ют раствор 0,3 г целлюлазно препарата в 4 мл 0,05 н, ацетатного буфера (рН 4,8). Используетс целлю лазный препарат из гриба Trichode rm lignoEum с содержанием белка 40% и эндоглюконазной активностью 32 мкмол глюкозы/мг белка, целлобиазной акти ностью 3,4 мкмоль глюкозы/мг белка , В - глюкозидазной активностью 1,9 -мкмоль . глюкозы/мг белка. Ёыдерживают при 4 С в течение 20 ч.Отфильтровывают и промывают Зх15мл1М11аС1и1х10мл ацетатного буфера. Получают препарат иммобилизованной целлюлазы с содержанием белка 43,2 мг на 1 г носител Активность иглмобилизоваиной целл лазы: эндоглюканазнал 25,8 мкмоль глюкозы/мг белка (80,8%) ; целлобиаз на 2,0 глюкозы/мг белка (60,1%) , р -глюкозидазна 0,7мкмоль глюкозы/мг белка (37,0%) . Определение активностей целлюлазы 1. Глюканазна (по Ka-KMU. Активность определ етс nd количе ству редуцирующих Сахаров, образующихс при гидролизе 1 мл 1%-ного ра твора натриевой соли карбоксиметилцеллюлозы ;(Ка-КМЦ) в течение 1 ч при 50°С в 0,05 М ацетатном буфере (рН 4;8). Определение редуцирующих Сахаров провод т с 3,5-динитросалициловой кислотой. По калибровочной кривой глюкозы определ ют активность в г глюкозы на 1 мл реакционной смеси и пересчитывают в мкмоль глюкозы на 1 мг св занного белка. 2.Целлобиазна fno целлобиозе). Активность определ етс по количеству редуцирующих сахароз, образующихс при гидролизе 1 мл 0,2%-ного раствора целлобиозы в течение 0,5 ч при в 0,25 М ацетатном буфере (рН 4,7). Определение редуцирующих Сахаров провод т глюкозооксидазным методом. 3.Арил-/ -глюкозидазна /(по п-нитп рофенил-р-Т-глюкопиранозиду . Активность определ етс по количеству п-нитрофенола, образовавшегос при гидролизе 1 мл 0,001 М п-нитрофенил-П ) - D -глюкопиранозида в течение 10 мин при 40с в 0,1 М ацетатном буфере (рН 4,7). После колориметрировани (3 фильтр) по калибровочной кривой определ ют содержание п-нитрофенола , пересчитывают в мкмоль на 1 мг белка. Преимуществами предлагаемого способа вл ютс экономи ферментного препарата и увеличение удельной активности иммобилизованного фермента. Высокие показатели всех активностей иммобилизованной целлюлазы вл ютс предпосылкой практического использовани иммобилизованного препарата. Иммобилизованна целлобиаза может быть применена д.п окончательного гидролиза oлигocaxapидoBf получаемых в процессе ферментативного расщеплени цел;1юлозы ферментами, содержащими недостаточное количество целлобиазы , до глюкозы. Иммобилизованные (З-глюконазы могут найти применение дл гидролиза -глюканов . Иммобилизованна Д-глюкозидаза может , быть использована дл Получени из/5-глюкозидов агликонов, которые примен ютс в фармацевтической промышленности .4- HZN-cellulase cellulose 10 ml 0.1 n, shdettnogo buffer (pH 4.8). A cellulose preparation from the fungus Geotrichum candidum is used. With a protein content of 50% and endoglucanase (ya-K1 1C activity 11.37 µmol glucose / mg protein, cellobiasis (cellobiose) activity 1.13 µmol glucose / mg protein and | 5-glucosidase (p-nitrophenyl-p-B-glucopyranoside) with an activity of 1.16 mg glucose / mg protein, kept at room temperature for 1 hour and filtered, washed with 3 x 15 ml of 1 M NaCl solution and 2 x 10 ml of acetate buffer. 72 % of taken amount of protein. The resulting preparation of immobilized cellulase contains 43.6 mg of be 1 g of carrier. Activity of immobilized cellulosis of lulase 1: endoglucanase 9.2 µmol glucose / mg protein (80.9%), cellobias H .afi 0.8 μmol glucose / mg belkd (69.8%, glucosidase 0/43 µmol glucose / mg protein (36.9%), Example 2. K1 g of the carrier sprinkle a solution of 0.2 g of the cellulase preparation from Geotrichum candidum in 3 ml of 0.05 n acetate buffer (pH 4.8). Hold at room temperature 1 h and filtered, Washed with 3 X 10 ml of 1 M NaCl solution and 2 X 5 ml of acetate buffer. A preparation of immobilized cellulase with the activity is obtained: endoglucanum 9.13 μmol glucose / mg protein (80.2%), cellobiasis 0.68 μmol glucose / mg-protein (60.0%, p-glucose dosage 0.42 μmol glucose / mg protein (37.1%). Example 3. A carrier solution of 0.3 g of cellulose preparation in 4 ml of 0.05 N, acetate buffer (pH 4.8) is added to the carrier. A cellulose preparation from the fungus Trichode is used. rm lignoEum with a protein content of 40% and endogluconase activity of 32 μmol glucose / mg protein, cellobiasis activity of 3.4 μmol glucose / mg protein, B - glucosidase activity of 1.9 μmol. glucose / mg of protein. Contained at 4 ° C. for 20 hours.Filtered and washed with 3 × 15 ml of M11-C1 and 1x10 ml of acetate buffer. A preparation of immobilized cellulase with a protein content of 43.2 mg per 1 g of carrier is obtained. 80.8%); cellobiasis at 2.0 glucose / mg protein (60.1%), p-glucosidase 0.7 μmol glucose / mg protein (37.0%). Determination of cellulase activities 1. Glucanase (by Ka-KMU . The activity is determined by the nd amount of reducing sugars formed by hydrolysis of 1 ml of 1% solution of carboxymethylcellulose sodium salt (Ka-CMC) for 1 hour at 50 ° C in 0.05 M acetate buffer (pH 4; 8) . The determination of reducing sugars is carried out with 3,5-dinitrosalicylic acid. The glucose calibration curve determines the activity in g glucose per 1 ml of the reaction mixture and is converted to µmol glucose per 1 mg of bound protein. 2. Cellobiasis fno cellobiose). Activity is determined by the amount of sucrose-reducing, formed by hydrolysis of 1 ml of a 0.2% cellobiose solution for 0.5 h with 0.25 M acetate buffer (pH 4.7). The determination of reducing sugars is carried out by the glucose oxidase method. 3.Aryl- (-glucosidase) (according to p-nitprophenyl-p-T-glucopyranoside. Activity is determined by the amount of p-nitrophenol formed during hydrolysis with 1 ml of 0.001 M p-nitrophenyl-P) - D -glucopyranoside over 10 min at 40s in 0.1 M acetate buffer (pH 4.7). After colorimetry (3 filter), the content of p-nitrophenol is determined from a calibration curve, converted to µmol per 1 mg of protein. The advantages of the proposed method are the saving of the enzyme preparation and the increase in the specific activity of the immobilized enzyme. High rates of all activities of immobilized cellulase are a prerequisite for the practical use of the immobilized preparation. Immobilized cellobiasis can be applied to the final hydrolysis of oligaxaxide Bf obtained in the process of enzymatic cleavage of the whole; 1ylose enzymes containing an insufficient amount of cellobiasis to glucose. Immobilized (Z-gluconase can be used for hydrolysis of -glucans. Immobilized D-glucosidase can be used to produce aglycones from 5-glucosides, which are used in the pharmaceutical industry.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU802878954A SU925108A1 (en) | 1980-02-06 | 1980-02-06 | Method for preparing immobilized cellulose |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU802878954A SU925108A1 (en) | 1980-02-06 | 1980-02-06 | Method for preparing immobilized cellulose |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU925108A1 true SU925108A1 (en) | 1984-02-29 |
Family
ID=20876144
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU802878954A SU925108A1 (en) | 1980-02-06 | 1980-02-06 | Method for preparing immobilized cellulose |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU925108A1 (en) |
-
1980
- 1980-02-06 SU SU802878954A patent/SU925108A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
1. Авторское свидетельство СССР № 709631, кл, С 07 G-7/02, 1977. 2. Патент US № 3929574, кл. С 07 G-7/02, 1975. 3. Н. Takashi, G. Sumio, S.Touru, Н. Humio. Получение и свойства целлюлозы, св занной с полиакрилнитрилсмолой в качестве носител , 1976, 23, № 2, 71-76. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CA1093991A (en) | Enzyme immobilization with pullulan gel | |
Reese et al. | β-D-1, 3 glucanases in fungi | |
DE2703615C2 (en) | ||
US4013514A (en) | Preparing a reactor containing enzymes attached to dialdehyde cellulose | |
CA1289091C (en) | Method for immobilization of enzyme and immobilized enzymes | |
US4983524A (en) | Method of immobilizing enzymes on a support with iridoid aglycone cross-linking agents | |
Kise et al. | Enzymatic reactions in aqueous-organic media. IV. Chitin-alpha-chymotrypsin complex as a catalyst for amino acid esterification and peptide synthesis in organic solvents | |
US4710470A (en) | Process for producing neuraminidase | |
SU925108A1 (en) | Method for preparing immobilized cellulose | |
Kovaleva et al. | Characteristics of inulinases: methods for regulation and stabilization of their activity | |
Kennedy et al. | Surface immobilization and entrapping of enzymes on glutaraldehyde crosslinked gelatin particles | |
Kasumi et al. | Preparation and some properties of chitosan bound enzymes | |
Evans | Properties of the β-D-glucosidase (cellobiase) from the wood-rotting fungus, Coriolus versicolor | |
JPH0698749A (en) | Production of beer having high fermentation degree | |
Stults et al. | Immobilization of proteins on partially hydrolyzed agarose beads | |
Roy et al. | Immobilization of β-glucosidase from Myceliophthora thermophila D-14 | |
EP0743363A2 (en) | Novel beta-agrase and microorganism generating the same | |
Olutiola et al. | Production of a cellulase complex in culture filtrates of Aspergillus tamarii associated with mouldy cocoa beans in Nigeria | |
Yano et al. | A chitinase indispensable for formation of protoplast of Schizophyllum commune in basidiomycete-lytic enzyme preparation produced by Bacillus circulans KA-304 | |
US5846762A (en) | Structurally stable gel bead containing entrapped enzyme and method for manufacture thereof | |
US3833555A (en) | Polysaccharide cyclic carbamate containing compounds | |
Fadda et al. | Highly efficient solubilization of natural lignocellulosic materials by a commercial cellulase immobilized on various solid supports | |
Wang et al. | Immobilization of lipase on epoxy activated (1→ 3)-α-d-glucan isolated from Penicillium chrysongenum | |
RU2054481C1 (en) | Method of immobilized enzyme preparing | |
SU744002A1 (en) | Method of preparing immobilized enzymes |