SU798165A1 - Способ получени рибонуклеазы - Google Patents

Способ получени рибонуклеазы Download PDF

Info

Publication number
SU798165A1
SU798165A1 SU792742091A SU2742091A SU798165A1 SU 798165 A1 SU798165 A1 SU 798165A1 SU 792742091 A SU792742091 A SU 792742091A SU 2742091 A SU2742091 A SU 2742091A SU 798165 A1 SU798165 A1 SU 798165A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
starch
culture
medium
suspension
added
Prior art date
Application number
SU792742091A
Other languages
English (en)
Inventor
Эгидиюс-Владас Владович Башкис
Ольга Владимировна Кислухина
Татьяна Александровна Кузнецова
Original Assignee
Всесоюзный Научно-Исследовательскийбиотехнический Институт
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всесоюзный Научно-Исследовательскийбиотехнический Институт filed Critical Всесоюзный Научно-Исследовательскийбиотехнический Институт
Priority to SU792742091A priority Critical patent/SU798165A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU798165A1 publication Critical patent/SU798165A1/ru

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Изобретение относится к микробиологической промышленности, а именно, к способу получения рибонуклеазы.
Известен способ получения рибонук- , леазы, предусматривающий культивиро- . вание ее продуцента -. бактерий вида Bacillus subt-itis на питательной среде, содержащей источники азота, < фосфора, минеральные соли и крахмал.'. . в качестве источника углерода [11.
Недостатками известного способа являются низкая активность фермента и большая продолжительность процесса культивирования.
Цель изобретения - повышение ак- 15 тивности фермента и сокращение времени культивирования.
Указанная цель достигается тем, что в качестве продуцента рибонуклеазы из вида BaciKCus subtitis ис- 20 пользуют штамм Bacillus subtiEis ЦМПМ В - 1611. При этом культивирование продуцента осуществляют на пита тельной среде следующего состава, г/л: 25
Крахмал картофельный осахаренный 100-140
Гидролизат микробной биомассы 13-17
КСе или К250д. 0,27-0,33
2п9О4 0,009-0,011
Вода Остальное,
Штамм Bacittus subbiti^ ЦМПМ В — 1611 хранится в коллекции культур ВНИИ генетики й селекции.промышленных микроорганизмов.
Характеристика штамма.
Культурально-морфологические приз наки.
На сусло-мясо-пептонном агаре колонии довольно крупные, до 15 мм в диаметре, сухие,кожистые морщинистые, края колоний сильно изрезаны, поверхность колонии покрыта сероватобелым налетом, в агар колонии не врастают. На картофельном агаре пленка культуры тоньше и сильно врастает в агар. На ломтиках картофеля культура образует мощную пленку серого цвета, сильно складчатую. Выделяет значительное количество бурого пигмеи та, в ломти картофеля врастает слабо. Пузырьков со слизью нет. На пшеничных отрубях культура дает очень богатый рост в виде шаровидных серовато-белых скоплений по всей толщине среда. На глюкозном агаре культура растет по всему уколу с образованием газа.
Клетки поверхностной культуры соединены в длинные филаменты, при глу-. ' бинном культивировании встречаются’ как одиночные клетки, так и соединенные попарно или по четыре. Размер клеток; диаметр 0,6-0 ,Ijt, ,длина 1,5. Диаметр спор не превышает диаметра клетки, споры расположены эксцентрально, но ближе к центру, чем* резко отличаются от спор многих других штаммов того же вида, имеющих вид ''спичечной головки'1.
Физиолого-биохимические свойства.
Молоко пептонизирует без подкисления. Желатину разжижает. Казеин и крахмал гидролизует.
Отношение к углеводам: арабинозу, галактозу, клюкозу, ксилозу,рамнозу, дульцит, маннит, сорбит, мальтозу, лактозу, сахарозу, декстрины, крахмал ассимилирует без предпочтения.
Нитраты восстанавливает.
На среде Кларка образует ацетилметилкарбинол.
Хорошо растет при 25-42°С, оптимальная температура роста 37°С.
Культура является аэробом, в отсутствии кислорода подвергается ’'анаэробному лизису''.
При глубийном культивировании на питательных средах, содержащих органические источники углерода, азота и минеральные соли, штамм синтезирует следующие ферменты: комплекс бактериолитических ферментов, |3 глюканазу, маннаназу, хитиназу, нейтральную протеазу, РНКазу, сС-амилазу, каталазу.
Пример 1. 120 г картофельного крахмала,суспендируют в 500 мл водопроводной воды, добавляют 0,2 г амилосубти.цина ГЗХ и нагревают взвесь при постоянном перемешивании до 80°С, периодически проверяя реакцию крахмала с йодом. Осахаривание заканчивают по достижении красно-коричневой окраски.
В 500 мл водопроводной воды растворяют 0,3 г калйя сернокислого и 0,01 г сернокислого цинка, добавляют 15 г сухого ферментативного гидролизата биомассы метанокисляющих бактерий^тщательно ,размешивают полученную взвесь, затем добавляют раствор осахаренного крахмала, вновь перемешивают среду и устанавливают pH 6,8 с помощью 10% раствора НаОН. Питательную среду разливают по 100мл в колбы емкостью 750 мл и стерилизуют в течение часа при давлении 0,5ат, После охлаждения среду засевают водной суспензией поверхностной культуры В· subtit-js В-1611, выращенной на ломтях картофеля в течение суток при 37°С.
Колбы с засеянной средой инкубируют на качалке при 37еС в течение 2 0ч· По.окончании инкубации pH культуральной жидкости 4,6 активность pH
Казы 5200 ед/мл. Активность фермента сохранялась в течение 10 дней при хранении культуральной жидкости при температуре 5°С.
Пример 2 . В чан оборудованный мешалкой и водяной рубашкой, наливают 75 л водопроводной воды и при перемешивании добавляют 18 кг картофельного крахмала и 60 г амилосубтилина ГЗХ. Суспензию крахмала нагревают при перемешивании до 75°С и выдерживают при этой температуре 10 мин до момента перехода крахмала в эритродекстрины. Раствор осахаренного крахмала передают в ферментер емкостью 250 мл вносят 0,2 л подсолнечного масла в качестве пеногасителя и стерилизуют компонент 30 мин при 135°С.
В чан с мешалкой наливают 45 л водопроводной воды, вносят 2 кг сухого ферментативного гидролизата БВК, 0,045 кг КСЕ и 0,0015 кг сернокислого цинка, тщательно размешивают : взвесь и передают в сателлит ферментера. (Стерилизуют 30 мин при 135°С.
После охлаждения до 60°С содержимое сателлита передают в ферментер, среду охлаждают до температуры 40°С, устанавливают pH 7 с помощью водного аммиака.
Питательную среду засевали водной суспензией культуры B-Subb-it-is В-1611, выращенной в колбе на пшеничных отрубях в течение 2 сут при 37°С.
Выращивание в ферментере проводят при 37 ± 1°С, постоянном перемешивание и аэрации 8-10 м ^/ч, продолжительность выращивания 18 ч. В процессе выращивания pH культуральной жидкости не регулируют. По окончании процесса pH культуральной жидкости составляет 4,3, активность pH Казы 6800 ед/мл, объем культуральной жидкости 150 л. Активность pH Казы в культуральной жидкости оставалась постоянной в течение 7 дней при 510°С.
Предлагаемый способ получения рибонуклеазы позволяет увеличить активность фермента в культуральной жидкости до 5200-6800 ед/мл, что в 3 раза выше по .сравнению с известным способом при одновременном сокращении продолжительности выращивания продуцента.

Claims (2)

  1. Клетки поверхностной культуры сое динены в длинные филаменты, при глубинном культивировании встречаютс  как одиночные клетки, так и соединен ные попарно или по четыре. Размер клеток: диаметр О ,6-0 ,7ум, ,длина 1,5 . Диаметр спор не превышает д аметра клетки, споры расположены экс центрально, но ближе к центру, чем резко отличаютс  от спор многих других штаммов того же вида, имеющих ви спичечной головки . Физиолого-биохимические свойства Молоко пептонизирует без подкислени . Желатину разжижает. Казеин и крахмал гидролизует. Отношение к углеводам: арабинозу галактозу, клюкозу, ксилозу,рамнозу дульцит, маннит, сорбит, мальтозу, лактозу, сахарозу, декстрины, крахмал ассимилирует без предпочтени . Нитраты восстанавливает. На среде Кларка образует ацетилметил карбинол . Хорошо растет при 25-42°С, оптимальна  температура роста . Культура  вл етс  аэробом, в отсутствии кислорода подвергаетс  анаэробному лизису . При глубийном культивировании на питательных средах, содержащих органические источники углерода, азота и минеральные соли, штамм синтезирует следующие ферменты: комплекс бактериолитических ферментов, р глюканазу , маннаназу, хитиназу, нейт ральную протеазу, РНКазу, сС-амилазу каталазу. Пример 1. 120 г картофельного крахмала,суспендируют в 500 мл водопроводной воды, добавл ют 0,2 г амилосубти ина ГЗХ и нагревают взвес при посто нном перемешивании до периодически провер   реакцию крахмала с йодом. Осахаривание заканчивают по достижении красно-коричневой окраски. В 500 мл водопроводной воды раствор ют 0,3 г кали  сернокислого и 0,01 г сернокислого цинка, добавл ют 15 г сухого ферментативного гидролизата биомассы метанокисл ющих бактерий .тщательно ,размешивают полученную взвесь, затем добавл ют раствор осахаренного крахмала, вновь перемешивают среду и устанавливают рН 6,8 с помощью 10% раствора NaOH. Питательную среду разливают по 100мл в колбы емкостью 750 мл и стерилизуют в течение часа при давлении 0,5ат После охлаждени  среду засевают водной суспензией поверхностной куль туры В. Bubtit-is В-1611, вь1ращенной на ломт х картофел  в течение суток при 37С. Колбы с засе нной средой инкубиру ют на качалке при в течение 20ч по.окончании инкубации рН культураль ной жидкости 4,6 активность рН Казн 5200 ед/мл. Активность фермента сохран лась в течение 10 дней при хранении культуральной жидкости при температуре 5°С. Пример 2 . /В чан,оборудованный мешалкой и вод ной рубашкой, наливают 75 л водопроводной воды и при перемешивании добавл ют 18 кг картофельного крахмала и 60 г амилосубтилина ГЗХ. Суспензию крахмала нагревают при перемешивании до 75°С и выдерживают при этой температуре 10 мин до момента перехода крахмала в эритродекстрины. Раствор осахаренного крахмала передают в ферментер емкостью 250 мл внос т 0,2 л подсолнечного масла в качестве пеногасител  и стерилизуют компонент 30 мин при 135с. В чан с мешалкой наливают 45 л водопроводной воды, внос т 2 кг сухого ферментативного гидролизата БВК, 0,045 кг КСЕ и 0,0015кг сернокислого цинка, тщательно размешивают ; взвесь и передают в сателлит ферментера . (Стерилизуют 30 мин при 135°С. После охлаждени  до содержимое сателлита передают в ферментер, среду охлаждают до температ фы , устанавливают рН 7 с помощью водного аммиака. Питательную среду засевали водной суспензией культуры В.subtitle В-1611, выращенной в колбе на пшеничных отруб х в течение 2 сут при . Выращивание в ферментере провод т при 37 ± 1°С, посто нном перемешивание и аэрации 8-10 , продолжительность выращивани  18 ч. В процессе выращивани  рН культуральной жидкости не регулируют. По окончании процесса рН культуральной жидкости составл ет 4,3, активность рН Казы 6800 ед/мл, объем культуральной жидкости 150 л. Активность рН Казы в культуральной жидкости оставалась посто нной в течение 7 дней при 5Предлагаемый способ получени  рибонуклеазн позвол ет увеличить активность фермента в культуральной жидкости до 5200-6800 ед/мл, что в 3 раза выше по .сравнению с известным способом при одновременном сокращении продолжительности выращивани  продуцента. « Формула изобретени  1, Способ получени  рибонуклеазы., предусматривающий культивирование ее продуцента - бактерий вида Вас 1 lus 5иЪЪ1Е1в на питательной среде, содерЖсццей источники азота, фосфора, минеральные соли и крахмал в качестве источника углерода, отличающ и и с   тем,что,с целью повышени  активности фермента и сокращени  времени культивировани ,в качестве продуцента рибонуклеазы. из вида BaciE.-
    Eu5 subtitle используют штамм Ъак л E-US c,.i5ЦМПМ В-1611.
  2. 2. Способ по п. 1,отлича ющ и и с   тем, что культивирование продуцента осуществл ют на питательной среде следующего состава, г/л:
    Крахмал картофельный
    осахаренный100-140
    Гидролизат микробной
    13-17 0,27-0,33 0,009-0,011 Остальное
    Источники информации, прин тые во внимание при экспертизе
    l.NisVtimura S.Bacittus t-ibonucbease Proceedings in nucteic acid re5eqrc1i Ne w jork-l.ohdott,1966.56-63.
SU792742091A 1979-03-27 1979-03-27 Способ получени рибонуклеазы SU798165A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU792742091A SU798165A1 (ru) 1979-03-27 1979-03-27 Способ получени рибонуклеазы

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU792742091A SU798165A1 (ru) 1979-03-27 1979-03-27 Способ получени рибонуклеазы

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU798165A1 true SU798165A1 (ru) 1981-01-23

Family

ID=20817534

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU792742091A SU798165A1 (ru) 1979-03-27 1979-03-27 Способ получени рибонуклеазы

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU798165A1 (ru)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ramesh et al. Critical importance of moisture content of the medium in alpha-amylase production by Bacillus licheniformis M27 in a solid-state fermentation system
Bajpai et al. High‐temperature alkaline α‐amylase from Bacillus iicheniformis TCRDC‐B13
Andersson et al. α-Amylase production in aqueous two-phase systems with Bacillus subtilis
Updegraff Utilization of cellulose from waste paper by Myrothecium verrucaria
Ramesh et al. Ability of a solid state fermentation technique to significantly minimize catabolic repression of α-amylase production by Bacillus licheniformis M27
Okazaki et al. Production and properties of two types of xylanases from alkalophilic thermophilic Bacillus spp.
US4393136A (en) Bacterial ethanol production
Nilegaonkar et al. Production of 2, 3-butanediol from glucose by Bacillus licheniformis
Grajek Production of D-xylanases by thermophilic fungi using different methods of culture
Berndt et al. Identification and physiological characterization of the nitrogen fixing bacterium Corynebacterium autotrophicum GZ 29
Shinke et al. Isolation of β-amylase producing microorganisms
Yoshida et al. Production and application of maltose phosphorylase and trehalose phosphorylase by a strain of Plesiomonas
Kalyani et al. Production and purification of amylase from Bacillus subtilis isolated from soil
SU798165A1 (ru) Способ получени рибонуклеазы
Yoon et al. Phosphate effects in the fermentation of α-amylase by Bacillus amyloliquefaciens
Srinivasan et al. Continuous culture in the fermentation industry
Furuta et al. Production of glucoamylase by passively immobilized cells of a flocculent yeast, Saccharomyces diastaticus
US4349631A (en) Process for producing heat-resistant acetate kinase
Riscaldati et al. Ammonium fumarate production by free or immobilised Rhizopus arrhizus in bench‐and laboratory‐scale bioreactors
US4389485A (en) Uricase production method
SU1643608A1 (ru) Штамм гриба АLLеSснеRIа теRRеSтRIS - продуцент целлюлаз
Nisar et al. Optimization and production kinetics for cellulases by wild and mutant strain of Thermomyces dupontii in stirred tank reactor.
Ariga et al. Efficient production of recombinant enzymes using PVA-encapsulated bacteria
US4332903A (en) Media manipulation for preparing biologically active hollow mycelial pellets
Hatzinikolaou et al. Comparative growth studies of the extreme thermophile Sulfolobus acidocaldarius in submerged and solidified substrate cultures