SU798165A1 - Способ получени рибонуклеазы - Google Patents
Способ получени рибонуклеазы Download PDFInfo
- Publication number
- SU798165A1 SU798165A1 SU792742091A SU2742091A SU798165A1 SU 798165 A1 SU798165 A1 SU 798165A1 SU 792742091 A SU792742091 A SU 792742091A SU 2742091 A SU2742091 A SU 2742091A SU 798165 A1 SU798165 A1 SU 798165A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- starch
- culture
- medium
- suspension
- added
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
Изобретение относится к микробиологической промышленности, а именно, к способу получения рибонуклеазы.
Известен способ получения рибонук- , леазы, предусматривающий культивиро- . вание ее продуцента -. бактерий вида Bacillus subt-itis на питательной среде, содержащей источники азота, < фосфора, минеральные соли и крахмал.'. . в качестве источника углерода [11.
Недостатками известного способа являются низкая активность фермента и большая продолжительность процесса культивирования.
Цель изобретения - повышение ак- 15 тивности фермента и сокращение времени культивирования.
Указанная цель достигается тем, что в качестве продуцента рибонуклеазы из вида BaciKCus subtitis ис- 20 пользуют штамм Bacillus subtiEis ЦМПМ В - 1611. При этом культивирование продуцента осуществляют на пита тельной среде следующего состава, г/л: 25
Крахмал картофельный осахаренный 100-140
Гидролизат микробной биомассы 13-17
КСе или К250д. 0,27-0,33
2п9О4 0,009-0,011
Вода Остальное,
Штамм Bacittus subbiti^ ЦМПМ В — 1611 хранится в коллекции культур ВНИИ генетики й селекции.промышленных микроорганизмов.
Характеристика штамма.
Культурально-морфологические приз наки.
На сусло-мясо-пептонном агаре колонии довольно крупные, до 15 мм в диаметре, сухие,кожистые морщинистые, края колоний сильно изрезаны, поверхность колонии покрыта сероватобелым налетом, в агар колонии не врастают. На картофельном агаре пленка культуры тоньше и сильно врастает в агар. На ломтиках картофеля культура образует мощную пленку серого цвета, сильно складчатую. Выделяет значительное количество бурого пигмеи та, в ломти картофеля врастает слабо. Пузырьков со слизью нет. На пшеничных отрубях культура дает очень богатый рост в виде шаровидных серовато-белых скоплений по всей толщине среда. На глюкозном агаре культура растет по всему уколу с образованием газа.
Клетки поверхностной культуры соединены в длинные филаменты, при глу-. ' бинном культивировании встречаются’ как одиночные клетки, так и соединенные попарно или по четыре. Размер клеток; диаметр 0,6-0 ,Ijt, ,длина 1,5. Диаметр спор не превышает диаметра клетки, споры расположены эксцентрально, но ближе к центру, чем* резко отличаются от спор многих других штаммов того же вида, имеющих вид ''спичечной головки'1.
Физиолого-биохимические свойства.
Молоко пептонизирует без подкисления. Желатину разжижает. Казеин и крахмал гидролизует.
Отношение к углеводам: арабинозу, галактозу, клюкозу, ксилозу,рамнозу, дульцит, маннит, сорбит, мальтозу, лактозу, сахарозу, декстрины, крахмал ассимилирует без предпочтения.
Нитраты восстанавливает.
На среде Кларка образует ацетилметилкарбинол.
Хорошо растет при 25-42°С, оптимальная температура роста 37°С.
Культура является аэробом, в отсутствии кислорода подвергается ’'анаэробному лизису''.
При глубийном культивировании на питательных средах, содержащих органические источники углерода, азота и минеральные соли, штамм синтезирует следующие ферменты: комплекс бактериолитических ферментов, |3 глюканазу, маннаназу, хитиназу, нейтральную протеазу, РНКазу, сС-амилазу, каталазу.
Пример 1. 120 г картофельного крахмала,суспендируют в 500 мл водопроводной воды, добавляют 0,2 г амилосубти.цина ГЗХ и нагревают взвесь при постоянном перемешивании до 80°С, периодически проверяя реакцию крахмала с йодом. Осахаривание заканчивают по достижении красно-коричневой окраски.
В 500 мл водопроводной воды растворяют 0,3 г калйя сернокислого и 0,01 г сернокислого цинка, добавляют 15 г сухого ферментативного гидролизата биомассы метанокисляющих бактерий^тщательно ,размешивают полученную взвесь, затем добавляют раствор осахаренного крахмала, вновь перемешивают среду и устанавливают pH 6,8 с помощью 10% раствора НаОН. Питательную среду разливают по 100мл в колбы емкостью 750 мл и стерилизуют в течение часа при давлении 0,5ат, После охлаждения среду засевают водной суспензией поверхностной культуры В· subtit-js В-1611, выращенной на ломтях картофеля в течение суток при 37°С.
Колбы с засеянной средой инкубируют на качалке при 37еС в течение 2 0ч· По.окончании инкубации pH культуральной жидкости 4,6 активность pH
Казы 5200 ед/мл. Активность фермента сохранялась в течение 10 дней при хранении культуральной жидкости при температуре 5°С.
Пример 2 . В чан оборудованный мешалкой и водяной рубашкой, наливают 75 л водопроводной воды и при перемешивании добавляют 18 кг картофельного крахмала и 60 г амилосубтилина ГЗХ. Суспензию крахмала нагревают при перемешивании до 75°С и выдерживают при этой температуре 10 мин до момента перехода крахмала в эритродекстрины. Раствор осахаренного крахмала передают в ферментер емкостью 250 мл вносят 0,2 л подсолнечного масла в качестве пеногасителя и стерилизуют компонент 30 мин при 135°С.
В чан с мешалкой наливают 45 л водопроводной воды, вносят 2 кг сухого ферментативного гидролизата БВК, 0,045 кг КСЕ и 0,0015 кг сернокислого цинка, тщательно размешивают : взвесь и передают в сателлит ферментера. (Стерилизуют 30 мин при 135°С.
После охлаждения до 60°С содержимое сателлита передают в ферментер, среду охлаждают до температуры 40°С, устанавливают pH 7 с помощью водного аммиака.
Питательную среду засевали водной суспензией культуры B-Subb-it-is В-1611, выращенной в колбе на пшеничных отрубях в течение 2 сут при 37°С.
Выращивание в ферментере проводят при 37 ± 1°С, постоянном перемешивание и аэрации 8-10 м ^/ч, продолжительность выращивания 18 ч. В процессе выращивания pH культуральной жидкости не регулируют. По окончании процесса pH культуральной жидкости составляет 4,3, активность pH Казы 6800 ед/мл, объем культуральной жидкости 150 л. Активность pH Казы в культуральной жидкости оставалась постоянной в течение 7 дней при 510°С.
Предлагаемый способ получения рибонуклеазы позволяет увеличить активность фермента в культуральной жидкости до 5200-6800 ед/мл, что в 3 раза выше по .сравнению с известным способом при одновременном сокращении продолжительности выращивания продуцента.
Claims (2)
- Клетки поверхностной культуры сое динены в длинные филаменты, при глубинном культивировании встречаютс как одиночные клетки, так и соединен ные попарно или по четыре. Размер клеток: диаметр О ,6-0 ,7ум, ,длина 1,5 . Диаметр спор не превышает д аметра клетки, споры расположены экс центрально, но ближе к центру, чем резко отличаютс от спор многих других штаммов того же вида, имеющих ви спичечной головки . Физиолого-биохимические свойства Молоко пептонизирует без подкислени . Желатину разжижает. Казеин и крахмал гидролизует. Отношение к углеводам: арабинозу галактозу, клюкозу, ксилозу,рамнозу дульцит, маннит, сорбит, мальтозу, лактозу, сахарозу, декстрины, крахмал ассимилирует без предпочтени . Нитраты восстанавливает. На среде Кларка образует ацетилметил карбинол . Хорошо растет при 25-42°С, оптимальна температура роста . Культура вл етс аэробом, в отсутствии кислорода подвергаетс анаэробному лизису . При глубийном культивировании на питательных средах, содержащих органические источники углерода, азота и минеральные соли, штамм синтезирует следующие ферменты: комплекс бактериолитических ферментов, р глюканазу , маннаназу, хитиназу, нейт ральную протеазу, РНКазу, сС-амилазу каталазу. Пример 1. 120 г картофельного крахмала,суспендируют в 500 мл водопроводной воды, добавл ют 0,2 г амилосубти ина ГЗХ и нагревают взвес при посто нном перемешивании до периодически провер реакцию крахмала с йодом. Осахаривание заканчивают по достижении красно-коричневой окраски. В 500 мл водопроводной воды раствор ют 0,3 г кали сернокислого и 0,01 г сернокислого цинка, добавл ют 15 г сухого ферментативного гидролизата биомассы метанокисл ющих бактерий .тщательно ,размешивают полученную взвесь, затем добавл ют раствор осахаренного крахмала, вновь перемешивают среду и устанавливают рН 6,8 с помощью 10% раствора NaOH. Питательную среду разливают по 100мл в колбы емкостью 750 мл и стерилизуют в течение часа при давлении 0,5ат После охлаждени среду засевают водной суспензией поверхностной куль туры В. Bubtit-is В-1611, вь1ращенной на ломт х картофел в течение суток при 37С. Колбы с засе нной средой инкубиру ют на качалке при в течение 20ч по.окончании инкубации рН культураль ной жидкости 4,6 активность рН Казн 5200 ед/мл. Активность фермента сохран лась в течение 10 дней при хранении культуральной жидкости при температуре 5°С. Пример 2 . /В чан,оборудованный мешалкой и вод ной рубашкой, наливают 75 л водопроводной воды и при перемешивании добавл ют 18 кг картофельного крахмала и 60 г амилосубтилина ГЗХ. Суспензию крахмала нагревают при перемешивании до 75°С и выдерживают при этой температуре 10 мин до момента перехода крахмала в эритродекстрины. Раствор осахаренного крахмала передают в ферментер емкостью 250 мл внос т 0,2 л подсолнечного масла в качестве пеногасител и стерилизуют компонент 30 мин при 135с. В чан с мешалкой наливают 45 л водопроводной воды, внос т 2 кг сухого ферментативного гидролизата БВК, 0,045 кг КСЕ и 0,0015кг сернокислого цинка, тщательно размешивают ; взвесь и передают в сателлит ферментера . (Стерилизуют 30 мин при 135°С. После охлаждени до содержимое сателлита передают в ферментер, среду охлаждают до температ фы , устанавливают рН 7 с помощью водного аммиака. Питательную среду засевали водной суспензией культуры В.subtitle В-1611, выращенной в колбе на пшеничных отруб х в течение 2 сут при . Выращивание в ферментере провод т при 37 ± 1°С, посто нном перемешивание и аэрации 8-10 , продолжительность выращивани 18 ч. В процессе выращивани рН культуральной жидкости не регулируют. По окончании процесса рН культуральной жидкости составл ет 4,3, активность рН Казы 6800 ед/мл, объем культуральной жидкости 150 л. Активность рН Казы в культуральной жидкости оставалась посто нной в течение 7 дней при 5Предлагаемый способ получени рибонуклеазн позвол ет увеличить активность фермента в культуральной жидкости до 5200-6800 ед/мл, что в 3 раза выше по .сравнению с известным способом при одновременном сокращении продолжительности выращивани продуцента. « Формула изобретени 1, Способ получени рибонуклеазы., предусматривающий культивирование ее продуцента - бактерий вида Вас 1 lus 5иЪЪ1Е1в на питательной среде, содерЖсццей источники азота, фосфора, минеральные соли и крахмал в качестве источника углерода, отличающ и и с тем,что,с целью повышени активности фермента и сокращени времени культивировани ,в качестве продуцента рибонуклеазы. из вида BaciE.-Eu5 subtitle используют штамм Ъак л E-US c,.i5ЦМПМ В-1611.
- 2. Способ по п. 1,отлича ющ и и с тем, что культивирование продуцента осуществл ют на питательной среде следующего состава, г/л:Крахмал картофельныйосахаренный100-140Гидролизат микробной13-17 0,27-0,33 0,009-0,011 ОстальноеИсточники информации, прин тые во внимание при экспертизеl.NisVtimura S.Bacittus t-ibonucbease Proceedings in nucteic acid re5eqrc1i Ne w jork-l.ohdott,1966.56-63.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU792742091A SU798165A1 (ru) | 1979-03-27 | 1979-03-27 | Способ получени рибонуклеазы |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU792742091A SU798165A1 (ru) | 1979-03-27 | 1979-03-27 | Способ получени рибонуклеазы |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU798165A1 true SU798165A1 (ru) | 1981-01-23 |
Family
ID=20817534
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU792742091A SU798165A1 (ru) | 1979-03-27 | 1979-03-27 | Способ получени рибонуклеазы |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU798165A1 (ru) |
-
1979
- 1979-03-27 SU SU792742091A patent/SU798165A1/ru active
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Ramesh et al. | Critical importance of moisture content of the medium in alpha-amylase production by Bacillus licheniformis M27 in a solid-state fermentation system | |
Bajpai et al. | High‐temperature alkaline α‐amylase from Bacillus iicheniformis TCRDC‐B13 | |
Andersson et al. | α-Amylase production in aqueous two-phase systems with Bacillus subtilis | |
Updegraff | Utilization of cellulose from waste paper by Myrothecium verrucaria | |
Ramesh et al. | Ability of a solid state fermentation technique to significantly minimize catabolic repression of α-amylase production by Bacillus licheniformis M27 | |
Okazaki et al. | Production and properties of two types of xylanases from alkalophilic thermophilic Bacillus spp. | |
US4393136A (en) | Bacterial ethanol production | |
Nilegaonkar et al. | Production of 2, 3-butanediol from glucose by Bacillus licheniformis | |
Grajek | Production of D-xylanases by thermophilic fungi using different methods of culture | |
Berndt et al. | Identification and physiological characterization of the nitrogen fixing bacterium Corynebacterium autotrophicum GZ 29 | |
Shinke et al. | Isolation of β-amylase producing microorganisms | |
Yoshida et al. | Production and application of maltose phosphorylase and trehalose phosphorylase by a strain of Plesiomonas | |
Kalyani et al. | Production and purification of amylase from Bacillus subtilis isolated from soil | |
SU798165A1 (ru) | Способ получени рибонуклеазы | |
Yoon et al. | Phosphate effects in the fermentation of α-amylase by Bacillus amyloliquefaciens | |
Srinivasan et al. | Continuous culture in the fermentation industry | |
Furuta et al. | Production of glucoamylase by passively immobilized cells of a flocculent yeast, Saccharomyces diastaticus | |
US4349631A (en) | Process for producing heat-resistant acetate kinase | |
Riscaldati et al. | Ammonium fumarate production by free or immobilised Rhizopus arrhizus in bench‐and laboratory‐scale bioreactors | |
US4389485A (en) | Uricase production method | |
SU1643608A1 (ru) | Штамм гриба АLLеSснеRIа теRRеSтRIS - продуцент целлюлаз | |
Nisar et al. | Optimization and production kinetics for cellulases by wild and mutant strain of Thermomyces dupontii in stirred tank reactor. | |
Ariga et al. | Efficient production of recombinant enzymes using PVA-encapsulated bacteria | |
US4332903A (en) | Media manipulation for preparing biologically active hollow mycelial pellets | |
Hatzinikolaou et al. | Comparative growth studies of the extreme thermophile Sulfolobus acidocaldarius in submerged and solidified substrate cultures |