SU732276A1 - Способ модификации дезоксирибонуклеиновой кислоты - Google Patents
Способ модификации дезоксирибонуклеиновой кислоты Download PDFInfo
- Publication number
- SU732276A1 SU732276A1 SU762430224A SU2430224A SU732276A1 SU 732276 A1 SU732276 A1 SU 732276A1 SU 762430224 A SU762430224 A SU 762430224A SU 2430224 A SU2430224 A SU 2430224A SU 732276 A1 SU732276 A1 SU 732276A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- dna
- adenine
- modifying
- deoxyribonucleic acid
- temperature
- Prior art date
Links
Landscapes
- Saccharide Compounds (AREA)
Description
Изобретение относитс к способам модификации нуклеиновых кислот, в частности к способу модификации: дез оксирибонуклеиновой кислоты (ДНК) который может найти применение при структурном анализе нуклеиновых кис лот и в медицине, в частности при и готовлении вакцин. Известны способы химической моди фикации ДНК, например, путем обрабо ки ее раствором дифениламина в муравьиной кислоте, которые привод т к одновременному удалению пуриновых оснований из молекулы ДНК . Однако в литературе не описаны способы, которые привод т к селективному -отщеплению от ДНК аденина, что важно при структурном анализе нуклеиновых кислот. Целью изобретени вл етс полу чение препаратов ДНК с заданным со держанием в ней аденина. Цель достигаетс тем, что ДНК инкубируют с соединением обшей фор мулы Е -СИ-NU-CHjOH где R. - СООН, ОН, Н; 2 - Н, СН,(СН2)п, где 0-5, R. -- - - - J при рН - 4-6 итемпературе 30-50 С в течение времени, которое определ ют по константе скорости реакции ; ,4 р„ 100 t К 10 где t - врем от начала инкубации, мин ; X - количество отщепившегос аденина , %; К - константа скорости реакции, значение которой определ етс монометилольным производным амина, используемого дл дезаденимизации ДНК, значением рН и температурой процесса . Предлагаемый Способ модификации ДНК, который приводит к получению препаратов ДНК с заданным содержанием аденина в ней, заключаетс в том, что ДНК инкубируют с соединением форму.пы I при рН 4-6 и температуре 30-50 С в течение времени, которое определ ют по константе скорости реакции. Реакцию модификации предпочтительно провод т следующим образом.
ДИК инкубируют с соединением формулы 1, которое вл етс продуктом взаимодействи формальдегида и амина , предпочтительно с 0,4 М раствором монометилолглицина (R -СООН, RJ-H), при рН 4-6, предпочтительно 5,5, и температуре ЗО-ЗО С, предпочтительно 50°С.
При значени х рН, меньших 4, резко возрастает скорость неспецифического отщеплени от ДНК пуриновых оснований 1. При значени х рН, больших б, скорость отщеплени аденина от ДНК под действием монометилольных производных аминов значительно уменьшаетс .
Увеличение температуры выше вызывает ускорение процесса неспецифического отщеплени цитозина, а уменьшение температуры инкубации ниже 30° С - зз едление процесса отщеплени аденина от ДНК под действием монометилольных производных аминов.
Пример . Ниже привод тс ус .лови , в которых происходит избирательное отщепление аденина от ДНК, вплоть до практически полного его удалени , под действием монометилольных производных глицина 3-аланина и этаноламина.
Монометилольные производные амина получают при взаимодействии глицина, fb-аланина или этаноламина (х. ч, Reanal, Венгри ) с формальдегидом . Последний готов т из фармацевтического формалина (Merk, ФРГ) . Концентрацию формальдегида определ ют йодометрическим методом. Все растворы готов т на 0,1 М натрийфосфатно буфере с таким рН, чтобы после добавлени всех компонентов и завершени
реакции формальдегида с амином рН реакционной смеси был равен 4-6,
Мол рна концентраци амина в реакционной смеси превышает мол рную концентрацию формальдегида в 3 раза, что обеспечивает полное св зывание альдегида амином с образованием моном тилольного производного амина в концентрации, равной исходной концентрации добавленного к раствору формальдегида.
Дл анализа препаратов ДНК, полученных при обработке монометилольным производными глицина Ь -аланина или этаноламина, используют метод ионообменной хроматографии на ДЭАЭ-целлюлозе в сочетании с хроматографией на бумаге.
Термоденатурированную ДНК в концентрации 2,5 мг/мл инкубируют в течение 3 суток, 1,2,3,6 недель в 0,1 М натрийфосфатном буфере с 0,4 М монометилольным производным глицина/ |3 1 -аланина или этаноламина при 30, 36 или 50°С и при рН 4,0; 5,5 или 6,0, Полученный препарат (1 мл) нанос т на колонку с ДЭАЭ-целлюлозой (VlOO см) и элюируют 0,01 М натрийфосфатным буфером. В элюате присутствует только аденин. Кроме него определ емые количества других оснований не обнаруживаютс . За по влением аденина след т спектрофотометрически .
Спектрофотометрические характеристики вещества,снимаемого с ДЭАЭ-целлюлозой 0,1 М натрийфосфатным буфером (рН 6,8) при хроматографии ДНК, обработанной монометилольным производным глицина (ММГ), приведены в табл. 1 .
Т а
лица
260 285 0,77 0,128 0,77 0,37 0,63 0,59 0,76 0,12 0,76 0,37. 0,57 0,60
Результаты, полученные в опыте.
ч
Литературные данные дл аденина в этих услови х.
Св завшуюс с ДЭАЭ-целлюлозой ДНК снимают 1 М хлоридом натри с 7 М мочевиной, обессоливают и гидролизуют 85%-ной муравьиной кислотой (175°С, 90 мин). Гидролизат хроматографируют на бумаге в кислом растворителе Кирби (метанол: концентрированна ВСЕ: Н20- 7:2:1) и анализируют нуклёотил ный состав гидролизата, Результаты приведены в табЛо.2-6.
Результаты по кинетике выщепленип аденина из ДНК под действием монометилольных производных аминов позвол ют рассчитать кор1станту скорости этого процесса. Например, в услови х опыта, результаты которого приведены в табл. 6 (0,4 М монометилолглицин, рН 5,5, температура 36°С), К « 7,5 10 мин , Така скорость в 1000 раз превышает скорость неспецифического
отщеплени аденина от ДНК в соответ- ствующих опыту услови х, но в отсуттвии ММГ.
Данные о скорости процесса деза- денинизации ДНК под действием монометилольных производных аминов поз-j вол ют заранее рассчитывать врем инкубации дл получени препаратов ДНК с заданным соедржанием аденина в ней по формуле (1). Величины К дл тех случаев обработки ДНК, которые приведены в примерах, представлены в табл. 2-6.
Процентное содержание оснований в молекуле ДНК после инкубации ДНК с 0,4 М монометилолэтаноламином в 0,1 М натрийфосфатном буфере при рН 4,0 и температуре 36°С дано в табл. 2.
Таблица 2
3 суток 10,6 37,4 23,9 28,1 63 1 недел 3,6 39,8 24,2 32,4 89
Примечание : ,0
Процентное содержание оснований в молекуле ДНК после инкубации ДНКс 0,4 М монометилол-р)-аланином в 0,1 М натрийфосфатном буфере при рН 4,0 и температуре 30 С дано в табл. 3.
Т а
лица
7,0.
Примечание
К
Процентное содержание оснований в молекуле ДНК после инкубации ДНК с 0,4 М мономотилолглицином в 0,1 М натрийфосфатном буфере при рН 5,5 J5 температуре 50°С дано в табл. 4,
Т блица
3 суток .14,4 34,4 26,0 25,2 50 д 1 недел 5,0 40,2 28,6 26,2 85
Примечание: Кг 1,3.
Процентное содержание оснований в молекуле ДНК после инкубации ДНК с 0,4 М монометилолглицином в 0,1 М натрийфосфатном буфере при рН 6,0 и температуре 50 С дано в табл. 5.
Таблица
3 суток 20,0 31,5 24,5 24,0 29
1 недел 13,5 34,2 26,4 25,9 53
3 недели 2,9 41,6 30,0 25,5 90
Примечание: Кж2,9. Процентное содержание оснований в молекуле ДНК после инкубации ДНК с 0,4 М монометилолглицином в 0,1 М натрийфосфатном буфере при рН 5,5 и температуре дано в табл. 6.
т а б л иц а
eg Исходна
Claims (2)
1. Способ модификации дезоксирибонуклеиновой кислоты, отличающ и и с тем, что, с целью получени препаратов деэоксирибонуклеиновой кислоты с заданным содержанием аденина в ней, дезоксирибонуклеиновую кислоту инкубируют с соединение общей формулы
RJ-CH-WH-CH OH RI
где R - СООН, ОН, Н;
Rg - Н, CH(CHj,)f,, где п 0-5, при рН 4-6 и температуре ЗО-ЗО С в течение времени, которое определ по константе скорости реакции , „ ,f. п 100
t К- 10 .Eg -foo::
где t - врем от начала инкубации, мин ;
X - количество отщепившегос аденина , %;
К - константа скорости реакции,
2. Способ ПОП.1, отличающийс тем, что в качестве исходного реагента используют соединение формулы 1, где. R - СООН, R Н.
Источники информации, прин тые во внимание при экспертизе
1. Кочетков Н.К., Будовский Э.И., Свердлов Е.Д., Симукова Н.А., Турчинский М.Ф., Шибаев В.Н. Органическа хими нуклеиновых кислот. М., Хими , 1970, с. 500-503 (прототип ) .
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU762430224A SU732276A1 (ru) | 1976-12-17 | 1976-12-17 | Способ модификации дезоксирибонуклеиновой кислоты |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU762430224A SU732276A1 (ru) | 1976-12-17 | 1976-12-17 | Способ модификации дезоксирибонуклеиновой кислоты |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU732276A1 true SU732276A1 (ru) | 1980-05-05 |
Family
ID=20686710
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU762430224A SU732276A1 (ru) | 1976-12-17 | 1976-12-17 | Способ модификации дезоксирибонуклеиновой кислоты |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU732276A1 (ru) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6918592B2 (en) | 2001-12-27 | 2005-07-19 | Burgmann Dichtungswerke Gmbh And Co. Kg | Face seal device |
-
1976
- 1976-12-17 SU SU762430224A patent/SU732276A1/ru active
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6918592B2 (en) | 2001-12-27 | 2005-07-19 | Burgmann Dichtungswerke Gmbh And Co. Kg | Face seal device |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Lygo et al. | Enantioselective alkylation of alanine-derived imines using quaternary ammonium catalysts | |
Gibson et al. | The isolation and characterization of a hydroxamic acid (aerobactin) formed by Aerobacter aerogenes 62-1 | |
Lengyel et al. | Mechanism of protein biosynthesis | |
Ikawa et al. | Benzene analogs of pyridoxal. The reactions of 4-nitrosalicylaldehyde with amino acids | |
Kimes et al. | Preparation and stability of oxidized polyamines | |
DE69016826T2 (de) | Verfahren zur Synthese von Ribonukleinsäure (RNS). | |
Colburn et al. | The binding of β-propiolactone to mouse skin DNA in vivo; its correlation with tumor-initiating activity | |
Smith et al. | The liberation of polynucleotides by the alkaline hydrolysis of ribonucleic acid from yeast | |
JPH05211882A (ja) | トレハロースの製造法 | |
Bollum et al. | Thymidine incorporation into deoxyribonucleic acid of rat liver homogenates | |
Murata-Kamiya et al. | Formation of a mutagen, glyoxal, from DNA treated with oxygen free radicals | |
DE69839306D1 (de) | Verfahren zur herstellung und reinigung von 9-nitro-20-camptothecin | |
SU732276A1 (ru) | Способ модификации дезоксирибонуклеиновой кислоты | |
Hansske et al. | [10] Modification of the 3′ terminus of tRNA by periodate oxidation and subsequent reaction with hydrazides | |
Shumyantzeva et al. | Modification of end phosphate groups in mono-and oligonucleotides. | |
ATE111917T1 (de) | Verfahren zur herstellung von amikacin- vorläufern. | |
Alderson | The mechanism of formaldehyde-induced mutagenesis. The monohydroxymethylation reaction of formaldehyde with adenylic acid as the necessary and sufficient condition for the mediation of the mutagenic activity of formaldehyde | |
Behr | Photohydrolysis of DNA by polyaminobenzenediazonium salts | |
Hishizawa et al. | Studies on the Formation of Transfer Ribonucleic Acid-Ribosome Complexes, XII. Phenylalanyl-Oligonucleotide Binding to E. coli Ribosomes: Necessity for a Free Amino Group | |
Kamiryo et al. | Sequential addition of glycine from glycyl-tRNA to the lipid-linked precursors of cell wall peptidoglycan in Staphylococcus aureus | |
Sprinzl et al. | Role of the 5′-terminal phosphate of tRNA for its function during protein biosynthesis elongation cycle | |
Sandberg et al. | Method for the quantitation and characterization of the cholinergic neurotoxin, monoethylcholine mustard aziridinium ion (AF64A) | |
Nishikawa et al. | Chemical excision of apurinic acids from rna. a structurally modified yeast tRNAPhe | |
Zubay | The specificity of incorporation of glutamic acid and glutamine into protein | |
Miyazawa et al. | Isolation of a new peptide, L-citrulliny-L-arginine, from a red alga Grateloupia turuturu |