SU534692A1 - Способ определени степени качественных изменений м са - Google Patents

Способ определени степени качественных изменений м са

Info

Publication number
SU534692A1
SU534692A1 SU2019439A SU2019439A SU534692A1 SU 534692 A1 SU534692 A1 SU 534692A1 SU 2019439 A SU2019439 A SU 2019439A SU 2019439 A SU2019439 A SU 2019439A SU 534692 A1 SU534692 A1 SU 534692A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
fraction
curve
mmk
meat
proteins
Prior art date
Application number
SU2019439A
Other languages
English (en)
Inventor
Николай Алексеевич Головкин
Любовь Андреевна Мелузова
Original Assignee
Ленинградский технологический институт холодильной промышленности
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ленинградский технологический институт холодильной промышленности filed Critical Ленинградский технологический институт холодильной промышленности
Priority to SU2019439A priority Critical patent/SU534692A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU534692A1 publication Critical patent/SU534692A1/ru

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Meat, Egg Or Seafood Products (AREA)

Description

(54) СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ СТЕПЕНИ КАЧЕСТВЕННЫХ ИЗМЕНЕНИЙ МЯСА
Изобретение отнех;итс  к области холо- |аильного хранени  м са, а именно к способу контрол  его качества.i
I Известен способ контрол  свежести м се ;рыбы по гипоксантину l.
Однако наличие гипоксантина характеризует не свежесть продукта, а его порчу.
Известен также способ отличи  свежего .м са гов дины от несвежего по смешению максимума спектра люминйсценции в широкой области от 570 до 482 ммк 2. При этом не установлено, какое соединение обуславливает люминисценцию при порче продукта . Кроме того, люминесценци  парного и охлажденного м са настолько мала, что не поддаетс  измерению.
Целью изобретени   вл етс  объективный анализ качественных изменений м са после ;убо  животного.
Поставленна  цель достигаетс  тем, что из исследуемого образца м са путем отде:лени  белков саркоплазмы, экстрактивных .веществ и соединительной ткани получают экстракт фибрилл рных белков мышечной ткани, который затем подвергают фракцио нированию на колонке с выделением порций элюата, содержащего 4ракцию белков и фракцию пептидов мукополисахаридов внутримышечной соединительной ткани, затем осу- щестал ют,спектрофотомегрирование,а остепени качественных изменений суд т по построенным на основании данных спектрофо тометрировани  кривым.
Способ осуществл ют следующим образом, i Растертую навеску м са экстраг-ируют .трехкратным объемом фосфатного буфера ; ионной силы ,О8, рН 7,4 в течение ЗО мин при . При этом из м са экстрагируютс  саркоплазматические бейки и экстрактивные вещества. Полученный гюмогенат центрифугируют при скорости бОООхС в течение ЗО мин. Прозрачную надосадочку1о жидкость отбрасывают, а м сной остаток вторично обрабатывают, как указано выше,; Вторичной экстракцией достигаетс  полное извлечение из м са белков саркоплазмы и :-экстрактивных вешеств. Полученный остаток м са, не содержащий саркоилазматических белков и экстрактивных веществ, экстра (гируют 2,5 объемами0,5 М раствора хлористо1-о калии с боратным буфером рН 8,6; 11 буф (обща  ионна  сила 0,6) и вьь держнвают при 30 мин,; В надосадочной жидкости, получаемой .nociie центрифугировани  с охлаждением при ркорости бОООх Gf в течение 30 мин,, содержатс  фибрилл рные белки мышечной тка ни, растворимые при 0,6, .Полученный остаток м са, который содержит внутримыщечную .соединительную ткань, отбрасывают ja прозрачный экстракт фибрилл5фных белков (фракционируют на колонке (1x60 см), упаскованной подготовленным сефадексом Г-25 (нижний слой высотою 1О см) и сефадексом Г-100 или Г-75 ({верхний слой ш.1сото|о 40 см). В колонку внос т 1 мл полученного эк стракта фибрилл рных белков м са. Эллюацию фракций с колонки производ т с помощью солевого растворител , используемого дл  экстракции фибрилл рных белков, т.е, 0,5М раствора хлористого кали  с боратным буфером рН 8,6, Элюат, выдел ющийс  с колонки , собирают равными порци ми с помо-. .шью коллектора фракций и в каждой порции элюата измер ют оптическое поглощение Д |при 28О и ЗО8 ммк на спектрофотометреСтади  созревани 
Экстракт парного м са состоит из чисгых фракций А и В белков (фиг,. 1), Ультрафиолетовый спектр поглощени  4ракции А (фиг, 1), представленный на фиг, 4, и фракции В (фиг,:1) на фиг,,5, показывает, что максимум расположен в области погло-: Люни  белков, т,е, при 276-285 ммк. ФракШ1Я пептидов мукополисахарицов.с максиliyMOM поглощени  при 305-310 ммк от утствует. Это означает, что в.состав экбтракта парного м са вход т только фракции белков,
Экстракт м са в стадии окоченени  помимоб4}лков содержит фракцию пептидов
276-285
305-310

Claims (1)

  1. Гмукополисахаридов внутримышечной соединительной ткани (фиг; 2), Фракци  С имеет больше Д при 308 ммк (крива  2), чем. 1при длине волны 280 ммк (крива  1),,Это: указывает на присутствие фрак. пептидов мукопописахаридов внутримышечной соединительной ткани. Спектр поглощени  фракции С (фиг,..,2), представленный на фиг,6, по;казывает максимум при 305-310 ммк, что :подтверждает вывод, сделанный на основании кривых 4ракционировани  (фиг, 2), Наличие в составе экстракта фракции пептидов муко:полисахаридов  вл етс  отличительным гфиэнаком м са в стадии окоченени  от парного м са. Под измеренным величинам Д вычерчивб ;К т две кривые 4чзакционировани  при 280 ммк (крива  1) и 308 ммк (крива  2), фиг,), 2, 3, Пики на кривой 1-фракционировани , измеренной при 280 ммк, регистрируют выход белковых фракций,.Крива  2 4ракцио;нировани , измеренна  при ЗО8 ммк, показывает выход фракции пептидов мукополисахаридов , В тех порци х элюата, где крива  2 регистрирует большее оптическое поглощение Д., чем крива  1, содержитс  фракци  пептидов мукопаписахаридов внутримыщечной соединительной ткани. Дл  провЕфКИ эти порции элюата объедин ют во фракцию,и спектрофотометрируют в области 250-315 ммк, Фракционнь;1й состав экстракта фибрилл рных белков, растворимых при ионной силе Д1 0,6, измен етс  в зависимости от состо ни  м са в послеубойный период. Приведенна  ниже таблица отражает от личие м са в различных состо ни х по фра ционному составу и максимуму ультрафиолетового спектра поглощени  каждой фракции . Экстракт м са в стадии созревани  содержит фршкпаю пептидов мукопописахар дов внутримышечной соединительной ткани .св занную с белками. Как видно иа фиг, 3, фракци  В имеет близкое Д как при 280мм ( крива  1)| так и при 308 ммк (крива  2) . Спектр поглощени  фракции В .(фиг, 3), представленный на фиг, 7, показывает наличие двух максимумов в области поглощеНИИ белков при 276-285 ммк и в областипоглощени  пептидов мукополисахаридов внутримышечной соединительной ткани при 305-310 ммк. Следовательно, 4рвкци  В экстракта созревшего м са (фиг, 3)  вл етс  комплексной фракцией белков, св занных с пептидами мукополисахаридов внутр№мышечной соединительной ткани,. Предлагаемый способ обеспечивает объек тивный контроль качественных изменений м са и возможность регулировани  техноло1№ческих процессов обработки и хранени  м с в послеубойный период,, Формула изобретени  Способ определени  степени качественных изменений м са непосредственно после
    fpiii.1 убо  животного до кулинарной обработки, отличающийс  тем, что, с целью обьвктивности анализа, из исследуемого образца м са путем отделени  белков саркоплазмы, экстршстивных веществ и со-одинительиой ткани получают экстракт ф брилл рных белков мышечной ткани, кото- , :рый затем подвергают (|$)акционированию ни колонке с выделением порций адюата, содержащего (} акции белков и фракцию пептидов мукополисах идов внутримышечиой соединительной ткани, затем осуществл ют спектрофотометрирование, а о степени качественных изменений суд т по построе{ьным кривым на основании данных спектрофотометрировани . Источники информации, прин тые во внимание при экспертизе: iSpineeCv З.Дхтипа M..Mwnuc1ii D.I.Tood Seience, 1964 г., .3 29, f 6, P. TlOj 2, Крылова Н, Н, и Л сковска  Ю, И,, Физик -химические методы исследовани  продуктов животного происхождени  , изд. Пищева  промышленность, М„ 1965 г., стр, 260,
    д
    В
    IQ
    0.5
    SO
    Д
    to
    100
    у, мл
    ffut.Z
    В
    0.5
    50
    100
    ,мл
    Уиг.З
    д
    0.25
    250
    280 зов
    320 Л.нмк ut.4f
    32ffЛ, ffiitc
    280yOff
    U9.S
SU2019439A 1974-04-19 1974-04-19 Способ определени степени качественных изменений м са SU534692A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU2019439A SU534692A1 (ru) 1974-04-19 1974-04-19 Способ определени степени качественных изменений м са

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU2019439A SU534692A1 (ru) 1974-04-19 1974-04-19 Способ определени степени качественных изменений м са

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU534692A1 true SU534692A1 (ru) 1976-11-05

Family

ID=20583057

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU2019439A SU534692A1 (ru) 1974-04-19 1974-04-19 Способ определени степени качественных изменений м са

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU534692A1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2779434A1 (fr) * 1998-06-05 1999-12-10 Javenech Procede de preparation de fibrilline a partir de cnidaires, et compositions obtenues utilisables en cosmetique
RU2768698C1 (ru) * 2021-04-08 2022-03-24 Общество с ограниченной ответственностью "Спектр-М" Способ проведения экспресс-анализа свежести мясных продуктов питания и устройство фотолюминесцентного анализатора для его осуществления

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2779434A1 (fr) * 1998-06-05 1999-12-10 Javenech Procede de preparation de fibrilline a partir de cnidaires, et compositions obtenues utilisables en cosmetique
WO1999063964A1 (fr) * 1998-06-05 1999-12-16 Javenech (Societe Anonyme) Procede de preparation de fibrilline a partir de cnidaires, et compositions obtenues utilisables en cosmetiques
RU2768698C1 (ru) * 2021-04-08 2022-03-24 Общество с ограниченной ответственностью "Спектр-М" Способ проведения экспресс-анализа свежести мясных продуктов питания и устройство фотолюминесцентного анализатора для его осуществления

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Tiribelli et al. Isolation of a sulfobromophthalein-binding protein from hepatocyte plasma membrane
Schwenke et al. Isolation of the 12 s globulin from rapeseed (brassica napus l.) and characterization as a “neutral” protein on seed proteins. Part 13
Belter et al. Protein denaturation in soybean meal during processing
Millerd et al. Cotyledonary storage proteins in Pisum sativum. III. Patterns of accumulation during development
SU534692A1 (ru) Способ определени степени качественных изменений м са
Van Loon et al. Polyacrylamide disc electrophoresis of the soluble leaf proteins from Nicotiana tabacumvar.“Samsun” and “Samsun NN”—I
Racusen et al. The major glycoprotein in germinating bean seeds
Fujimaki et al. Chromatographic Fractionation of Sarcoplasmic Proteins of Beef Skeletal Muscle on Ion‐Exchange Cellulose a, b
CN103822918A (zh) 烟草或其制品中可溶性蛋白质含量的测定方法
Scholz et al. Studies on Seed Globulins from Legumes: I. Separation and Purification of Legumin and Vicilin from Vicia faba L. by Zone Precipitation
Clements Fruit proteins: extraction and electrophoresis
KIM et al. Characteristics and functional properties of protein isolates from various peanut (Arachis hypogaea L.) cultivars
Spanier et al. Chromatographic isolation of presumptive peptide flavor principles from red meat
Saito et al. Heat denaturation and emulsifying properties of plasma protein
Amin et al. Analysis of vicilin (7S)‐class globulin in cocoa cotyledons from various genetic origins
Bullerman et al. Extraction and analysis of aflatoxins from cured and aged meats
JPS6328887B2 (ru)
Jankiewicz et al. Isolation and characterisation of wheat flour proteins. I.—separation of salt‐and acetic acid‐dispersible proteins by gel filtration, polyacrylamide gel electrophoresis, and sucrose gradient ultracentrifugation
Wright et al. A method of fractionation of flour proteins by means of gel filtration on Sephadex G‐100
Lee et al. Effects of processing on amino acid and mineral contents of peas
Nakanishi et al. Crystallization and physical characterization of porcine myoglobin
Walker Determination of protein and reactive lysine in leaf-protein concentrates by dye-binding
Krishnamurthy et al. Quantitative determination of amino acids by circular paper chromatography
Hill‐Cottingham et al. Extraction and analysis of amesto acids from apple tree material
Sarkar et al. Soluble proteins of alfalfa (Medicago sativa) herbage. Fractionation by ammonium sulfate and gel chromatography