SU519138A3 - The method of growing shchura virus - Google Patents

The method of growing shchura virus

Info

Publication number
SU519138A3
SU519138A3 SU1882920A SU1882920A SU519138A3 SU 519138 A3 SU519138 A3 SU 519138A3 SU 1882920 A SU1882920 A SU 1882920A SU 1882920 A SU1882920 A SU 1882920A SU 519138 A3 SU519138 A3 SU 519138A3
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
virus
suspension
cultivation
hours
growing
Prior art date
Application number
SU1882920A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ранеберг Хорст-Ульрих
Original Assignee
Байер Аг (Фирма)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Байер Аг (Фирма) filed Critical Байер Аг (Фирма)
Application granted granted Critical
Publication of SU519138A3 publication Critical patent/SU519138A3/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/125Picornaviridae, e.g. calicivirus
    • A61K39/135Foot- and mouth-disease virus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525Virus
    • A61K2039/5254Virus avirulent or attenuated
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/55Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the host/recipient, e.g. newborn with maternal antibodies
    • A61K2039/552Veterinary vaccine
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/32011Picornaviridae
    • C12N2770/32111Aphthovirus, e.g. footandmouth disease virus
    • C12N2770/32134Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/32011Picornaviridae
    • C12N2770/32111Aphthovirus, e.g. footandmouth disease virus
    • C12N2770/32161Methods of inactivation or attenuation
    • C12N2770/32164Methods of inactivation or attenuation by serial passage

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

(54) СПОСОБ ВЫРАЩИВАНИЯ ВИРУСА ЯЩУРА(54) METHOD OF CULTIVATION OF THE VIRUS OF THE VASCINE

щают в приготовленный дл  купьтивироваиин, вирусов ферментер, содержащий необходимую пропорцию питательной среды.In a fermentation tank prepared for cuptivirovaiin, a virus is prepared containing the required proportion of the nutrient medium.

В качестве питательнэй среды используют физиологический раствор с рН 7,4-7,6 следующего состава, г: NaC 720, К C-t 18, CaC-t -bHaO 18, MgWa..09, NaWa, О ИД.аНСОз 200 Waa,HP04,5Hj048,06, глюкоза ЮО пептон 24О, касайнгидролизат ЗОО, DL - метионин 12,8,DL - трипто-: фан 8,0,I)L- TpeoHJ-ra 2,5,L-- цистин HCi 5,2,..р тироксин О.ОООЭДЬСа пантотенат О,О32, ниацин ОД6, хлорамфеникол 1О, пеницилин 32, неомицин- сульфат 1О, поли- миксин В 0,5I j нистатин 0,75. 1 Кроме того, среда содержит О,02%-ный растеор гемина 3,6 мл, инсулина80 36. и 10О л дистиллированной воды.As a nutrient medium, a physiological solution with a pH of 7.4-7.6 of the following composition is used, g: NaC 720, K Ct 18, CaC-t -bHaO 18, MgWa..09, NaWa, O ID.ANSOz 200 Waa, HP04 , 5Hj048,06, glucose YuO peptone 24O, kasayngrolizat ZOO, DL - methionine 12.8, DL - trypto: fan 8.0, I) L- TpeoHJ-ra 2.5, L-- cystine HCi 5.2, .. p thyroxin O.OOOOEDSa pantothenate O, O32, niacin OD6, chloramphenicol 1O, penicillin 32, neomycin sulfate 1O, polymyxin B 0.5I j nystatin 0.75. 1 In addition, the medium contains 0, 02% hemeinum solution 3.6 ml, insulin 80 36. and 10 O l of distilled water.

Исходную смесь дл  выращивани  после добавлени  суспензии ткани с вирусами | ycTai-швливают при помощи гпикокол-буфера ка| значение рН 7,4-7,6 и размешивают при и с 25 об/мин.Initial mixture for growing after adding a suspension of tissue with viruses | ycTai-mocks using gpikokol buffer ka | pH value 7.4-7.6 and stirred at and from 25 rpm.

Гликокол-.буфер имеет следующий срстав, г: гл1{кокал 158,Na,C- l-4,NaOH eljr, а также дистиллированной воды 100(5. мл.Glycol-Buffer has the following srstav, g: gl1 {coca 158, Na, C-l-4, NaOH eljr, as well as distilled water 100 (5 ml.

Одновременно в исходную смесь ввод т дл  выращивани  стерильно отфильтрованныйчистый кислород (2 м/мин). Значение рН исходной смеси непрерьшно контролируют и,; если .необходимо, регулируют добавл   гли-i жокол- буфер на значение рН 7,4-7,6.At the same time, sterile filtered pure oxygen (2 m / min) is introduced into the initial mixture for growth. The pH of the initial mixture is continuously controlled and ,; if necessary, adjust the addition of gl-i cocoa buffer to a pH value of 7.4-7.6.

Через 18-24 час, в зависимости от типа вируса, прекращают вьфащивание вируса и охлаждают суспензию до 4 С. Затем содержащие в:фус ткани (ткани рубца и эпителиальные клеткн  зыка) размельчают при помощиКОЛЛОИДНОЙ мельницы, чтобы получить наход щие-л в клетках . Вскрытую таким образом ткалевую массу вместе с содержащей аирусы средой дл  выращиэани  экстрагируют, медленно размешива  (35 ), в течение 1 час при 4 С. В . суспензию ткаьш добавл ют мертоган (Тиме-, розал}, с коицентрадией 1:40ООО;или 0,2 i 1% хлорофорьш.-. ,After 18-24 hours, depending on the type of virus, the virus is stopped and the suspension is cooled to 4 ° C. Then the tissues containing the scar (tissues of the rumen and epithelial cells) are crushed using a COLLOID mill to get the cells in the cells. The weaved mass thus opened together with the medium containing the airs for growing is extracted, slowly stirring (35), for 1 hour at 4 ° C. mercury suspension is added to the suspension (TIM-, Rosal}, with co-centration of 1: 40OOO; or 0.2 i with 1% chloroform .-.,

После зкстрактжи суспензию вирус эв, цеН трифугируют в непрерывно действующей цен-: тр фуге. Полученный таким образом прозрач- ный экстрат вирусов после количественного отцепенив его антигенного содержани  вирусов , йщура может применен как антиген дл  изготовлени  вакцины против  щура.After extracting the suspension, the virus ev, the centN is trifuged in a continuously operating center: tr fugue. The thus obtained clear extract of viruses after quantitatively decoupling its antigenic content of viruses, can be used as an antigen for the manufacture of a vaccine against schur.

Определение содержани  В1фуса, а именно; содержание инфекциозных антиген и компле-, мектр св зывающих антиген, происходит ко- личественно.Determination of content of Bfusa, namely the content of infectious antigen and complex, the spectrum of antigen binding, occurs quantitatively.

Содержание инфекционного ант1П ена определ ют на мыщах следующим образом.The content of infectious anti-pandehyde is determined in mice as follows.

Каждые Ю мыщейв возрасте 4 - 7 дней получают под эфирным наркозом О ДО млEvery 10 to 7 day old mice are given under ether anesthesia.

-7-7

разжижени  вирусов 1О , Ю,Ю 10 , 1 р внутрнбрющную инъекцию.Опьгг продолжаетс  7 дней. Смертные случаи до истеченич 48 час после инфекции не принимаютс  во внимание, так как инкубационный период продолжаетс  48 час.dilution of viruses 1O, Yu, Yu 10, 1 p intravenous injection. Shaving continues for 7 days. Deaths prior to expiration of 48 hours after infection are not taken into account, since the incubation period lasts 48 hours.

Содержание комплементр-св зываюишх антиген определ ют количественно серологически а реакции св зьшани  комплемента при помощи спектрофотометрического анализа.The content of the complement-binding antigen is quantified serologically and the reaction of complement binding using spectrophotometric analysis.

Пример.Example.

15 кг ткани рубца и 15 к эпителиальных клеток  зыка, очищенных облучением ультрафиолетовых лучей, собирают в изотонический , содержащий антибиотик, солевой раствор и размельчают в м сорубке.15 kg of scar tissue and 15 of the tongue epithelial cells, purified by irradiation with ultraviolet rays, are collected in an isotonic, antibiotic-containing, saline solution and crushed in a miter.

Полученную таким образом тканевую массу промывают физиологическим раствором и затем встр хивают в течение 1 час с изотоническим , содержащим антибиотик, солевым раствором. Затем солевой раствор отдел ют декантированием и тканевую массу инфицируют ЗО кг суспензии вируса  щура, южно-американского типа вируса С, титр вируса которого составл ет КъЬВ 10 The tissue mass thus obtained is washed with saline and then shaken for 1 hour with an isotonic, antibiotic-containing saline. Then the saline solution is separated by decanting and the tissue mass is infected with 30 kg of a suspension of scurvy virus, a South American type of virus C, the virus titer of which is KV 10

После адсорбции в течение 20 мин инфицированную тканевую массу в стерильных услови х помещают в ферментер, наполненный 240 кг питательной среды. Питательную среду перед тем нагревают до 37 С. Исходную смесь дл  вьфащдвани  при помощи 25О мл гпикоко/Ьбуфера устанавливают на значение рН 7,5 и размешивают приЪ7°С и с 25 об/мин. В течение всего процесса вьфашивани  в тканевую суспензию пропускают стерильно фильтрованный чистый кислоРОД (2 л/мин). Значение рН посто нно контролируют: через 5 час и через 8 час после инфицировани , устанавливают дополнительно , добавл   по 300 мл, а через 14 час после инфицировани , добавл   400 мл глихокол-буфера на значение рН 7,4.After adsorption for 20 minutes, the infected tissue mass under sterile conditions is placed in a fermenter filled with 240 kg of nutrient medium. The nutrient medium is first heated to 37 ° C. The initial mixture is applied with 25 O g g picoco / Buffer to pH 7.5 and stirred at 7 ° C and 25 rpm. Throughout the entire process, sterile filtered pure oxygen is passed into the tissue suspension (2 L / min). The pH value is constantly monitored: after 5 hours and 8 hours after infection, it is additionally set by adding 300 ml each, and 14 hours after infection, adding 400 ml of glycol buffer for pH 7.4.

После 12 час инфицировани  (с промежутком в 2 час) до 22 час после инфицирЬ вани  отбирают пробы дл  количественного определени  содержани  инфекциозных и ком- плегленто-св зывающих антигенов. Выращивш1ие прекращают через 22 час, и исходную смесь охла вдают до 4 С, Части ткани исходной смеси дл  выращивани  при помощи коллоидной мельницы открывают дл  конечной экстракции вируса.After 12 hours of infection (at intervals of 2 hours) to 22 hours after infection of the van, infections are taken to quantify the content of infectious and complexgly-binding antigens. The cultivation is stopped after 22 hours, and the initial mixture is cooled to 4 ° C. Parts of the fabric of the initial mixture for cultivation using a colloid mill are opened for the final extraction of the virus.

Обработанную таким образом тканевую массу вместе с содержащей вирус средой дл  выращивани  экстрагируют в течение 1 час при 4 С, медленно размещива  /35 об/мин/. После экстракции суспензию вирусов центрифугируют . Б непрестанно действующей центрифуге. В полученную таким образом прозрачную суспензию вируса добавл ют мертагов в концентращ1и 1 : 40000. Титр вируса и титр кэмппвментэ-сБ зываюшего антигена развиваютс  в течение 22 час процесса /табл.1/. Пример 2. Согласно примеру 3. из эпителиальных клеток  зьпса крупного рогатого скота и ткани рубца получают суспензию и инфицируют ее южно-американским вирусом  щура типа О, подтип О - Canipcb(iHTp вируса Mi)l.l}5Q ). : Выращивание вируса прекращают после ; 20 час. Развитие титра вируса и титра ком1 плементо-св зывакицего антигена проходит ; следующим образом (табл. 2). Пример 3. Согласно примеру 1 из ткан„ рубца и эпителиальных клеток  зыка крупного рогатого скота изготовл ют суспен|зию ткани и инфицируют южнэ-американским вирусом типа А подтип А,-(титр, вирусаiMbLDyolCT i . : Через 24 час выращивание прекращают и собирают вирус. Развитие титра вируса и титра кэмплементэ-св зывающего антиге|на проходит следующим образом (табл. 3). j Полученные по примерам 1, 2, 3 суспен зии вируса примен ют в качестве антигена ;вируса  щура -. трехвалентной вакцине проITHB  шура. ; Вакцина защищает рогатый скот против -искусственного заражени  примененными дл  ;ее изготовлени  трем  типами вируса О Cawpos j j , и С. ( Предлагаемый способ позвол ет использовать в качестве вируса  щура, например, {европейские О, А и С, южно-американские О, А и С, африканские SAT 1,2 и 3, а также |азиа7ч:кие типы, например ЛбШ 1, и все под|типы названных основных типов вируса. Таблица 1The tissue mass thus treated together with the virus-containing growth medium is extracted for 1 hour at 4 ° C, slowly placing / 35 rpm /. After extraction, the virus suspension is centrifuged. Used ceaseless centrifuge. To the thus obtained clear suspension of the virus, mertags are added to a concentrate of 1: 40,000. The virus titer and the camper-titer of the antigen are developed within 22 hours of the process / table 1/. Example 2. According to example 3. Suspension is obtained from epithelial cells of cattle and scar tissue, and they are infected with South American shchura virus O, subtype O - Canipcb (iHTp virus Mi) l.l} 5Q). : The cultivation of the virus is stopped after; 20 hours The development of the virus titer and the titer of the com1 tribe-binding antigen passes; as follows (Table 2). Example 3. According to example 1, tissue suspension is made from the tissue of the rumen and bovine tongue epithelial cells and infected with South American type A virus, subtype A, (titer, iMbLDyolCT i. Virus: After 24 hours, the cultivation is stopped and the virus is harvested The development of the virus titer and the titer of the binding antigean binding is as follows (Table 3). J The virus suspensions obtained in Examples 1, 2, 3 are used as the antigen, the schivirus - ITV shura trivalent vaccine; Vaccine protects cattle against non-artificial the use of three types of O Cawpos jj and C viruses. (The proposed method allows using, for example, scurf virus, {European O, A and C, South American O, A and C, African SAT 1, 2 and 3, as well as | Asia7h: cue types, for example LbSh 1, and all under | types of the named main types of virus Table 1

Таблица 2table 2

Claims (1)

Формула изобретени  Спэсоб выраишвани  вируса  шура, вклю чаюшиЙ его культивирование на суспензии переживающих клеток слизистой желудка жвачных преимуи1ественно крупного рогатого скота с последуюишм выделением, о т л и-vThe invention formula of Spesob is the cultivation of a shura virus, including its cultivation on a suspension of surviving cells of the mucous membrane of the stomach of ruminants, predominantly of cattle, followed by release, about t i and-v 510138510138 8 Таблиц n 38 Tables n 3 чающийс  тем, что, с целью поъы-тени  выхода целевого продукта, культивирование вируса провод т на указанной суспензии , смешанной с суспензией переживающих клеток эпители   зыка крупного рогатого скота..due to the fact that, in order to achieve a shade of the yield of the target product, the cultivation of the virus is carried out on the specified suspension, mixed with a suspension of surviving epithelial cells of the cattle language.
SU1882920A 1972-02-12 1973-01-31 The method of growing shchura virus SU519138A3 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE2206779A DE2206779A1 (en) 1972-02-12 1972-02-12 METHOD OF BULK FOOD SECURITY

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU519138A3 true SU519138A3 (en) 1976-06-25

Family

ID=5835863

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU1882920A SU519138A3 (en) 1972-02-12 1973-01-31 The method of growing shchura virus

Country Status (17)

Country Link
JP (1) JPS4891262A (en)
AR (1) AR193480A1 (en)
AT (1) AT321464B (en)
BE (1) BE795293A (en)
CH (1) CH577031A5 (en)
CS (1) CS199547B2 (en)
DD (1) DD105252A5 (en)
DE (1) DE2206779A1 (en)
DK (1) DK137766C (en)
ES (1) ES411484A1 (en)
FR (1) FR2171425B1 (en)
GB (1) GB1375154A (en)
KE (1) KE2550A (en)
NL (1) NL7301892A (en)
RO (1) RO62814A (en)
SU (1) SU519138A3 (en)
ZA (1) ZA73926B (en)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109097320A (en) * 2018-07-23 2018-12-28 南京农业大学 A kind of sheep lamb cud epithelial cell cultural method

Also Published As

Publication number Publication date
KE2550A (en) 1975-08-22
DK137766B (en) 1978-05-01
ZA73926B (en) 1973-11-28
FR2171425B1 (en) 1976-11-05
RO62814A (en) 1977-11-15
BE795293A (en) 1973-08-13
CS199547B2 (en) 1980-07-31
AT321464B (en) 1975-04-10
JPS4891262A (en) 1973-11-28
DD105252A5 (en) 1974-04-12
AR193480A1 (en) 1973-04-23
DK137766C (en) 1978-10-09
FR2171425A1 (en) 1973-09-21
CH577031A5 (en) 1976-06-30
NL7301892A (en) 1973-08-14
GB1375154A (en) 1974-11-27
ES411484A1 (en) 1976-01-01
DE2206779A1 (en) 1973-08-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Alexander et al. Effect of nucleic acids from immune lymphocytes on rat sarcomata
Fishman et al. Antibody formation initiated in vitro: II. Antibody synthesis in X-irradiated recipients of diffusion chambers containing nucleic acid derived from macrophages incubated with antigen
Magnusson et al. Preparation of purified tuberculin RT 23
Miller et al. The action of cytotoxic antisera on the HeLa strain of human carcinoma
DK155915B (en) PROCEDURE FOR PREPARING PERTUSSIS TOXOID FOR USE IN VACCINES
US4946438A (en) Process for development of acceptance of transplanted organs and tissues
CN112870341B (en) Goat infectious pleuropneumonia subunit vaccine and preparation method and application thereof
SU519138A3 (en) The method of growing shchura virus
AU2020103625A4 (en) Applications of bacillus calmette-guerin (bcg) polysaccharide and nucleic acid in in-vitro culture of cytokine-induced-killer (cik) cells and preparation of antitumor drugs
US3395218A (en) Nonliving nematode vaccines
Moog et al. Quantitative determination of phosphatase activity in chick embryo duodenum cultured in fluid media with and without hydrocortisone
US2867567A (en) Process of preparing anti-haemophilic globulin
JPS58183627A (en) Immunobiological preparation
Rees et al. Immune response to adenovirus 12-induced tumour antigens, as measured in vitro by the macrophage migration inhibition test
Boone et al. Preparation of membrane fractions with enhanced tumor-transplantation-antigen activity from tumor cells infected with influenza virus
US2720485A (en) Preparation of concentrated, purified ultraviolet inactivated hog cholera vaccine
Ezell et al. Soluble specific leptospiral complement-fixing antigens
US3048524A (en) Process of producing infectious bovine rhinotracheitis vaccine and product thereof
Ross Photodynamic action of methylene blue on antipneumococcal serum
CA1243949A (en) Processes for development of acceptance of transplanted organs and tissues
Ruiz-Castaneda Active Immunization Against Epidemic Typhus by Means of Vaccines Prepared from Endemic Virus
Fakhri et al. Studies of the rat immune response to plasmacytoma 5563 in C3H mice
US3627874A (en) Vaccine preparation
EP0002645B1 (en) Antigenic complex from neisseria gonorrhoeae, process and vaccine
RU2255766C2 (en) Method for preparing immunoglobulin preparation for prophylaxis and therapy of bacterial and viral infection, immunoglobulin preparation for prophylaxis and therapy of bacterial and viral infection (variants) and suppository based on immunoglobulin preparation