SU519138A3 - The method of growing shchura virus - Google Patents
The method of growing shchura virusInfo
- Publication number
- SU519138A3 SU519138A3 SU1882920A SU1882920A SU519138A3 SU 519138 A3 SU519138 A3 SU 519138A3 SU 1882920 A SU1882920 A SU 1882920A SU 1882920 A SU1882920 A SU 1882920A SU 519138 A3 SU519138 A3 SU 519138A3
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- virus
- suspension
- cultivation
- hours
- growing
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N7/00—Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/12—Viral antigens
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/12—Viral antigens
- A61K39/125—Picornaviridae, e.g. calicivirus
- A61K39/135—Foot- and mouth-disease virus
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
- A61K2039/525—Virus
- A61K2039/5254—Virus avirulent or attenuated
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/55—Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the host/recipient, e.g. newborn with maternal antibodies
- A61K2039/552—Veterinary vaccine
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2770/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
- C12N2770/00011—Details
- C12N2770/32011—Picornaviridae
- C12N2770/32111—Aphthovirus, e.g. footandmouth disease virus
- C12N2770/32134—Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2770/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
- C12N2770/00011—Details
- C12N2770/32011—Picornaviridae
- C12N2770/32111—Aphthovirus, e.g. footandmouth disease virus
- C12N2770/32161—Methods of inactivation or attenuation
- C12N2770/32164—Methods of inactivation or attenuation by serial passage
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Virology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Mycology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
(54) СПОСОБ ВЫРАЩИВАНИЯ ВИРУСА ЯЩУРА(54) METHOD OF CULTIVATION OF THE VIRUS OF THE VASCINE
щают в приготовленный дл купьтивироваиин, вирусов ферментер, содержащий необходимую пропорцию питательной среды.In a fermentation tank prepared for cuptivirovaiin, a virus is prepared containing the required proportion of the nutrient medium.
В качестве питательнэй среды используют физиологический раствор с рН 7,4-7,6 следующего состава, г: NaC 720, К C-t 18, CaC-t -bHaO 18, MgWa..09, NaWa, О ИД.аНСОз 200 Waa,HP04,5Hj048,06, глюкоза ЮО пептон 24О, касайнгидролизат ЗОО, DL - метионин 12,8,DL - трипто-: фан 8,0,I)L- TpeoHJ-ra 2,5,L-- цистин HCi 5,2,..р тироксин О.ОООЭДЬСа пантотенат О,О32, ниацин ОД6, хлорамфеникол 1О, пеницилин 32, неомицин- сульфат 1О, поли- миксин В 0,5I j нистатин 0,75. 1 Кроме того, среда содержит О,02%-ный растеор гемина 3,6 мл, инсулина80 36. и 10О л дистиллированной воды.As a nutrient medium, a physiological solution with a pH of 7.4-7.6 of the following composition is used, g: NaC 720, K Ct 18, CaC-t -bHaO 18, MgWa..09, NaWa, O ID.ANSOz 200 Waa, HP04 , 5Hj048,06, glucose YuO peptone 24O, kasayngrolizat ZOO, DL - methionine 12.8, DL - trypto: fan 8.0, I) L- TpeoHJ-ra 2.5, L-- cystine HCi 5.2, .. p thyroxin O.OOOOEDSa pantothenate O, O32, niacin OD6, chloramphenicol 1O, penicillin 32, neomycin sulfate 1O, polymyxin B 0.5I j nystatin 0.75. 1 In addition, the medium contains 0, 02% hemeinum solution 3.6 ml, insulin 80 36. and 10 O l of distilled water.
Исходную смесь дл выращивани после добавлени суспензии ткани с вирусами | ycTai-швливают при помощи гпикокол-буфера ка| значение рН 7,4-7,6 и размешивают при и с 25 об/мин.Initial mixture for growing after adding a suspension of tissue with viruses | ycTai-mocks using gpikokol buffer ka | pH value 7.4-7.6 and stirred at and from 25 rpm.
Гликокол-.буфер имеет следующий срстав, г: гл1{кокал 158,Na,C- l-4,NaOH eljr, а также дистиллированной воды 100(5. мл.Glycol-Buffer has the following srstav, g: gl1 {coca 158, Na, C-l-4, NaOH eljr, as well as distilled water 100 (5 ml.
Одновременно в исходную смесь ввод т дл выращивани стерильно отфильтрованныйчистый кислород (2 м/мин). Значение рН исходной смеси непрерьшно контролируют и,; если .необходимо, регулируют добавл гли-i жокол- буфер на значение рН 7,4-7,6.At the same time, sterile filtered pure oxygen (2 m / min) is introduced into the initial mixture for growth. The pH of the initial mixture is continuously controlled and ,; if necessary, adjust the addition of gl-i cocoa buffer to a pH value of 7.4-7.6.
Через 18-24 час, в зависимости от типа вируса, прекращают вьфащивание вируса и охлаждают суспензию до 4 С. Затем содержащие в:фус ткани (ткани рубца и эпителиальные клеткн зыка) размельчают при помощиКОЛЛОИДНОЙ мельницы, чтобы получить наход щие-л в клетках . Вскрытую таким образом ткалевую массу вместе с содержащей аирусы средой дл выращиэани экстрагируют, медленно размешива (35 ), в течение 1 час при 4 С. В . суспензию ткаьш добавл ют мертоган (Тиме-, розал}, с коицентрадией 1:40ООО;или 0,2 i 1% хлорофорьш.-. ,After 18-24 hours, depending on the type of virus, the virus is stopped and the suspension is cooled to 4 ° C. Then the tissues containing the scar (tissues of the rumen and epithelial cells) are crushed using a COLLOID mill to get the cells in the cells. The weaved mass thus opened together with the medium containing the airs for growing is extracted, slowly stirring (35), for 1 hour at 4 ° C. mercury suspension is added to the suspension (TIM-, Rosal}, with co-centration of 1: 40OOO; or 0.2 i with 1% chloroform .-.,
После зкстрактжи суспензию вирус эв, цеН трифугируют в непрерывно действующей цен-: тр фуге. Полученный таким образом прозрач- ный экстрат вирусов после количественного отцепенив его антигенного содержани вирусов , йщура может применен как антиген дл изготовлени вакцины против щура.After extracting the suspension, the virus ev, the centN is trifuged in a continuously operating center: tr fugue. The thus obtained clear extract of viruses after quantitatively decoupling its antigenic content of viruses, can be used as an antigen for the manufacture of a vaccine against schur.
Определение содержани В1фуса, а именно; содержание инфекциозных антиген и компле-, мектр св зывающих антиген, происходит ко- личественно.Determination of content of Bfusa, namely the content of infectious antigen and complex, the spectrum of antigen binding, occurs quantitatively.
Содержание инфекционного ант1П ена определ ют на мыщах следующим образом.The content of infectious anti-pandehyde is determined in mice as follows.
Каждые Ю мыщейв возрасте 4 - 7 дней получают под эфирным наркозом О ДО млEvery 10 to 7 day old mice are given under ether anesthesia.
-7-7
разжижени вирусов 1О , Ю,Ю 10 , 1 р внутрнбрющную инъекцию.Опьгг продолжаетс 7 дней. Смертные случаи до истеченич 48 час после инфекции не принимаютс во внимание, так как инкубационный период продолжаетс 48 час.dilution of viruses 1O, Yu, Yu 10, 1 p intravenous injection. Shaving continues for 7 days. Deaths prior to expiration of 48 hours after infection are not taken into account, since the incubation period lasts 48 hours.
Содержание комплементр-св зываюишх антиген определ ют количественно серологически а реакции св зьшани комплемента при помощи спектрофотометрического анализа.The content of the complement-binding antigen is quantified serologically and the reaction of complement binding using spectrophotometric analysis.
Пример.Example.
15 кг ткани рубца и 15 к эпителиальных клеток зыка, очищенных облучением ультрафиолетовых лучей, собирают в изотонический , содержащий антибиотик, солевой раствор и размельчают в м сорубке.15 kg of scar tissue and 15 of the tongue epithelial cells, purified by irradiation with ultraviolet rays, are collected in an isotonic, antibiotic-containing, saline solution and crushed in a miter.
Полученную таким образом тканевую массу промывают физиологическим раствором и затем встр хивают в течение 1 час с изотоническим , содержащим антибиотик, солевым раствором. Затем солевой раствор отдел ют декантированием и тканевую массу инфицируют ЗО кг суспензии вируса щура, южно-американского типа вируса С, титр вируса которого составл ет КъЬВ 10 The tissue mass thus obtained is washed with saline and then shaken for 1 hour with an isotonic, antibiotic-containing saline. Then the saline solution is separated by decanting and the tissue mass is infected with 30 kg of a suspension of scurvy virus, a South American type of virus C, the virus titer of which is KV 10
После адсорбции в течение 20 мин инфицированную тканевую массу в стерильных услови х помещают в ферментер, наполненный 240 кг питательной среды. Питательную среду перед тем нагревают до 37 С. Исходную смесь дл вьфащдвани при помощи 25О мл гпикоко/Ьбуфера устанавливают на значение рН 7,5 и размешивают приЪ7°С и с 25 об/мин. В течение всего процесса вьфашивани в тканевую суспензию пропускают стерильно фильтрованный чистый кислоРОД (2 л/мин). Значение рН посто нно контролируют: через 5 час и через 8 час после инфицировани , устанавливают дополнительно , добавл по 300 мл, а через 14 час после инфицировани , добавл 400 мл глихокол-буфера на значение рН 7,4.After adsorption for 20 minutes, the infected tissue mass under sterile conditions is placed in a fermenter filled with 240 kg of nutrient medium. The nutrient medium is first heated to 37 ° C. The initial mixture is applied with 25 O g g picoco / Buffer to pH 7.5 and stirred at 7 ° C and 25 rpm. Throughout the entire process, sterile filtered pure oxygen is passed into the tissue suspension (2 L / min). The pH value is constantly monitored: after 5 hours and 8 hours after infection, it is additionally set by adding 300 ml each, and 14 hours after infection, adding 400 ml of glycol buffer for pH 7.4.
После 12 час инфицировани (с промежутком в 2 час) до 22 час после инфицирЬ вани отбирают пробы дл количественного определени содержани инфекциозных и ком- плегленто-св зывающих антигенов. Выращивш1ие прекращают через 22 час, и исходную смесь охла вдают до 4 С, Части ткани исходной смеси дл выращивани при помощи коллоидной мельницы открывают дл конечной экстракции вируса.After 12 hours of infection (at intervals of 2 hours) to 22 hours after infection of the van, infections are taken to quantify the content of infectious and complexgly-binding antigens. The cultivation is stopped after 22 hours, and the initial mixture is cooled to 4 ° C. Parts of the fabric of the initial mixture for cultivation using a colloid mill are opened for the final extraction of the virus.
Обработанную таким образом тканевую массу вместе с содержащей вирус средой дл выращивани экстрагируют в течение 1 час при 4 С, медленно размещива /35 об/мин/. После экстракции суспензию вирусов центрифугируют . Б непрестанно действующей центрифуге. В полученную таким образом прозрачную суспензию вируса добавл ют мертагов в концентращ1и 1 : 40000. Титр вируса и титр кэмппвментэ-сБ зываюшего антигена развиваютс в течение 22 час процесса /табл.1/. Пример 2. Согласно примеру 3. из эпителиальных клеток зьпса крупного рогатого скота и ткани рубца получают суспензию и инфицируют ее южно-американским вирусом щура типа О, подтип О - Canipcb(iHTp вируса Mi)l.l}5Q ). : Выращивание вируса прекращают после ; 20 час. Развитие титра вируса и титра ком1 плементо-св зывакицего антигена проходит ; следующим образом (табл. 2). Пример 3. Согласно примеру 1 из ткан„ рубца и эпителиальных клеток зыка крупного рогатого скота изготовл ют суспен|зию ткани и инфицируют южнэ-американским вирусом типа А подтип А,-(титр, вирусаiMbLDyolCT i . : Через 24 час выращивание прекращают и собирают вирус. Развитие титра вируса и титра кэмплементэ-св зывающего антиге|на проходит следующим образом (табл. 3). j Полученные по примерам 1, 2, 3 суспен зии вируса примен ют в качестве антигена ;вируса щура -. трехвалентной вакцине проITHB шура. ; Вакцина защищает рогатый скот против -искусственного заражени примененными дл ;ее изготовлени трем типами вируса О Cawpos j j , и С. ( Предлагаемый способ позвол ет использовать в качестве вируса щура, например, {европейские О, А и С, южно-американские О, А и С, африканские SAT 1,2 и 3, а также |азиа7ч:кие типы, например ЛбШ 1, и все под|типы названных основных типов вируса. Таблица 1The tissue mass thus treated together with the virus-containing growth medium is extracted for 1 hour at 4 ° C, slowly placing / 35 rpm /. After extraction, the virus suspension is centrifuged. Used ceaseless centrifuge. To the thus obtained clear suspension of the virus, mertags are added to a concentrate of 1: 40,000. The virus titer and the camper-titer of the antigen are developed within 22 hours of the process / table 1/. Example 2. According to example 3. Suspension is obtained from epithelial cells of cattle and scar tissue, and they are infected with South American shchura virus O, subtype O - Canipcb (iHTp virus Mi) l.l} 5Q). : The cultivation of the virus is stopped after; 20 hours The development of the virus titer and the titer of the com1 tribe-binding antigen passes; as follows (Table 2). Example 3. According to example 1, tissue suspension is made from the tissue of the rumen and bovine tongue epithelial cells and infected with South American type A virus, subtype A, (titer, iMbLDyolCT i. Virus: After 24 hours, the cultivation is stopped and the virus is harvested The development of the virus titer and the titer of the binding antigean binding is as follows (Table 3). J The virus suspensions obtained in Examples 1, 2, 3 are used as the antigen, the schivirus - ITV shura trivalent vaccine; Vaccine protects cattle against non-artificial the use of three types of O Cawpos jj and C viruses. (The proposed method allows using, for example, scurf virus, {European O, A and C, South American O, A and C, African SAT 1, 2 and 3, as well as | Asia7h: cue types, for example LbSh 1, and all under | types of the named main types of virus Table 1
Таблица 2table 2
Claims (1)
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE2206779A DE2206779A1 (en) | 1972-02-12 | 1972-02-12 | METHOD OF BULK FOOD SECURITY |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU519138A3 true SU519138A3 (en) | 1976-06-25 |
Family
ID=5835863
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU1882920A SU519138A3 (en) | 1972-02-12 | 1973-01-31 | The method of growing shchura virus |
Country Status (17)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS4891262A (en) |
AR (1) | AR193480A1 (en) |
AT (1) | AT321464B (en) |
BE (1) | BE795293A (en) |
CH (1) | CH577031A5 (en) |
CS (1) | CS199547B2 (en) |
DD (1) | DD105252A5 (en) |
DE (1) | DE2206779A1 (en) |
DK (1) | DK137766C (en) |
ES (1) | ES411484A1 (en) |
FR (1) | FR2171425B1 (en) |
GB (1) | GB1375154A (en) |
KE (1) | KE2550A (en) |
NL (1) | NL7301892A (en) |
RO (1) | RO62814A (en) |
SU (1) | SU519138A3 (en) |
ZA (1) | ZA73926B (en) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN109097320A (en) * | 2018-07-23 | 2018-12-28 | 南京农业大学 | A kind of sheep lamb cud epithelial cell cultural method |
-
0
- BE BE795293D patent/BE795293A/en unknown
-
1972
- 1972-02-12 DE DE2206779A patent/DE2206779A1/en active Pending
-
1973
- 1973-01-31 SU SU1882920A patent/SU519138A3/en active
- 1973-02-03 AR AR246515A patent/AR193480A1/en active
- 1973-02-09 JP JP48015801A patent/JPS4891262A/ja active Pending
- 1973-02-09 DK DK73173A patent/DK137766C/en active
- 1973-02-09 ZA ZA730926A patent/ZA73926B/en unknown
- 1973-02-09 DD DD168792A patent/DD105252A5/xx unknown
- 1973-02-09 AT AT121073A patent/AT321464B/en not_active IP Right Cessation
- 1973-02-09 RO RO197373792A patent/RO62814A/en unknown
- 1973-02-09 NL NL7301892A patent/NL7301892A/xx not_active Application Discontinuation
- 1973-02-09 CH CH186773A patent/CH577031A5/xx not_active IP Right Cessation
- 1973-02-10 ES ES411484A patent/ES411484A1/en not_active Expired
- 1973-02-12 CS CS731009A patent/CS199547B2/en unknown
- 1973-02-12 FR FR7304836A patent/FR2171425B1/fr not_active Expired
- 1973-02-12 GB GB680173A patent/GB1375154A/en not_active Expired
-
1975
- 1975-08-08 KE KE2550*UA patent/KE2550A/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
KE2550A (en) | 1975-08-22 |
DK137766B (en) | 1978-05-01 |
ZA73926B (en) | 1973-11-28 |
FR2171425B1 (en) | 1976-11-05 |
RO62814A (en) | 1977-11-15 |
BE795293A (en) | 1973-08-13 |
CS199547B2 (en) | 1980-07-31 |
AT321464B (en) | 1975-04-10 |
JPS4891262A (en) | 1973-11-28 |
DD105252A5 (en) | 1974-04-12 |
AR193480A1 (en) | 1973-04-23 |
DK137766C (en) | 1978-10-09 |
FR2171425A1 (en) | 1973-09-21 |
CH577031A5 (en) | 1976-06-30 |
NL7301892A (en) | 1973-08-14 |
GB1375154A (en) | 1974-11-27 |
ES411484A1 (en) | 1976-01-01 |
DE2206779A1 (en) | 1973-08-16 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Alexander et al. | Effect of nucleic acids from immune lymphocytes on rat sarcomata | |
Fishman et al. | Antibody formation initiated in vitro: II. Antibody synthesis in X-irradiated recipients of diffusion chambers containing nucleic acid derived from macrophages incubated with antigen | |
Magnusson et al. | Preparation of purified tuberculin RT 23 | |
Miller et al. | The action of cytotoxic antisera on the HeLa strain of human carcinoma | |
DK155915B (en) | PROCEDURE FOR PREPARING PERTUSSIS TOXOID FOR USE IN VACCINES | |
US4946438A (en) | Process for development of acceptance of transplanted organs and tissues | |
CN112870341B (en) | Goat infectious pleuropneumonia subunit vaccine and preparation method and application thereof | |
SU519138A3 (en) | The method of growing shchura virus | |
AU2020103625A4 (en) | Applications of bacillus calmette-guerin (bcg) polysaccharide and nucleic acid in in-vitro culture of cytokine-induced-killer (cik) cells and preparation of antitumor drugs | |
US3395218A (en) | Nonliving nematode vaccines | |
Moog et al. | Quantitative determination of phosphatase activity in chick embryo duodenum cultured in fluid media with and without hydrocortisone | |
US2867567A (en) | Process of preparing anti-haemophilic globulin | |
JPS58183627A (en) | Immunobiological preparation | |
Rees et al. | Immune response to adenovirus 12-induced tumour antigens, as measured in vitro by the macrophage migration inhibition test | |
Boone et al. | Preparation of membrane fractions with enhanced tumor-transplantation-antigen activity from tumor cells infected with influenza virus | |
US2720485A (en) | Preparation of concentrated, purified ultraviolet inactivated hog cholera vaccine | |
Ezell et al. | Soluble specific leptospiral complement-fixing antigens | |
US3048524A (en) | Process of producing infectious bovine rhinotracheitis vaccine and product thereof | |
Ross | Photodynamic action of methylene blue on antipneumococcal serum | |
CA1243949A (en) | Processes for development of acceptance of transplanted organs and tissues | |
Ruiz-Castaneda | Active Immunization Against Epidemic Typhus by Means of Vaccines Prepared from Endemic Virus | |
Fakhri et al. | Studies of the rat immune response to plasmacytoma 5563 in C3H mice | |
US3627874A (en) | Vaccine preparation | |
EP0002645B1 (en) | Antigenic complex from neisseria gonorrhoeae, process and vaccine | |
RU2255766C2 (en) | Method for preparing immunoglobulin preparation for prophylaxis and therapy of bacterial and viral infection, immunoglobulin preparation for prophylaxis and therapy of bacterial and viral infection (variants) and suppository based on immunoglobulin preparation |