SU1751207A1 - Recombinant plasmid dna ps t20, encoding human alpha- interferon in tobacco plants - Google Patents
Recombinant plasmid dna ps t20, encoding human alpha- interferon in tobacco plants Download PDFInfo
- Publication number
- SU1751207A1 SU1751207A1 SU904817194A SU4817194A SU1751207A1 SU 1751207 A1 SU1751207 A1 SU 1751207A1 SU 904817194 A SU904817194 A SU 904817194A SU 4817194 A SU4817194 A SU 4817194A SU 1751207 A1 SU1751207 A1 SU 1751207A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- gene
- plasmid
- dna
- distance
- bamhi
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Использование: при биотехнологическом производств интерферона. Сущность изобретени : клонирование гена рекомби- нантного альфа-интерферона человека в экспрессионном векторе под контролем конститутивного промотора 35S и вируса мозаики цветной капусты, передача рекомбинантной плазмиды в клетки Agrobacterium tumefaciens, несущие разоруженную Ti-плазмиду, интеграци обеих плазмид, трансформаци методом листовых дисков растений табака и регенераци полноценных трансгенных растений, продуцирующих рекомбинантный альфа-интерферон человекаUse: for biotechnological production of interferon. Summary of the Invention: Cloning a human recombinant alpha interferon gene in an expression vector under the control of a constitutive 35S promoter and cauliflower mosaic virus, transferring the recombinant plasmid into Agrobacterium tumefaciens cells carrying a disarmed Ti plasmid, integrating both plasmids, transforming with leaf sheets and regeneration of high-grade transgenic plants producing recombinant human alpha interferon
Description
Изобретение относитс к генетической инженерии и может быть использовано при биотехнологическом производстве интерферона .The invention relates to genetic engineering and can be used in the biotechnological production of interferon.
Известны методы получени продуцирующих интерферон клеток человека, бак- терИи, дрожжей.Methods are known for producing human interferon-producing cells, bacterium, yeast.
Описан способ введени и временной экспрессии гена интерферона человека в растени х турнепса в составе вируса мозаики цветной капусты. Однако этот способ не обеспечивает встраивани и стабильного поддержани гена интерферона в геноме растени , что обусловлено использованием в качестве вектора вируса. Стабильное встраивание и экспрессию гена интерферона можно осуществить лишь путем генетической трансформации растений, как было показано дл р да других генов.A method for the introduction and transient expression of the human interferon gene in turnip plants as part of a cauliflower mosaic virus is described. However, this method does not allow for the integration and stable maintenance of the interferon gene in the plant genome, which is due to the use of a virus as a vector. Stable insertion and expression of the interferon gene can be accomplished only by genetic transformation of plants, as has been shown for a number of other genes.
Целью изобретени вл етс создание плазмиды, кодирующей альфа-интерферон человека в трансгенных растени х.The aim of the invention is the creation of a plasmid encoding human alpha interferon in transgenic plants.
Преимущества трансгенных растений перед другими организмами - продуцеитами интерферона - заключаютс в отсутствии необходимости использовани дл получени больших количеств биомассы растени продуцента дорогосто щих специального оборудовани и помещений и ростовых сред, стерильных условий выращивани , высококвалифицированного персоналаThe advantages of transgenic plants over other organisms - interferon producers - are the absence of the need to use for the production of large quantities of plant biomass of expensive specialized equipment and premises and growth media, sterile growing conditions, highly qualified personnel.
Изобретение включает клонирование гена рекомбинантного альфа-интерферона человека в экспрессионный вектор pST6 под контроль сильного конститутивного промотора 35S из вируса мозаики цветной капусты , передачу полученной рекомбинантной плазмиды pST20 в штамм Agrobacterium tumefaciens C158, несущий разоруженную Ti-плазмиду pGV2260, с последующей интеграцией плазмид pST20 и pGV2260, генетическую трансформацию методом листовых дисков растений Nicotiana tabacum сорта Самсун полученным штаммом агробактерий и рпенерацию на селективной среде полноценных трансгенныхThe invention includes the cloning of the recombinant human alpha interferon gene into the pST6 expression vector under the control of a strong constitutive 35S promoter from the cauliflower mosaic virus, transferring the resulting recombinant plasmid pST20 into the Agrobacterium tumefaciens C158 strain, carrying the unarmed pGV2222 plasmid disarmed with the Ti plasmid, which is unarmed. , genetic transformation by the method of leaf disks of Nicotiana tabacum cultivar Samsun obtained by the strain of agrobacteria and regeneration on the selective medium of high-grade transgenic
XIXi
слcl
го оabout
Х4X4
растений, продуцирующих рекомбинант- ный альфа-интерферон человека.plants producing recombinant human alpha interferon.
Пример. Клетки штаммов Е. coli K12, содержащие плазмиды pINF, pUC19 и plink (pBR322 со встроенным между сайтами EcoRI и Hind 111 полилинкером из pUC19) выращивают на полноценной питательной среде с антибиотиками 12 ч при 37°С и выдел ют из Hi/ft плазмидную ДНК щелочным способом, которую затем очищают гель- фильтрацией на мини-колонке с сёф арозой 2В. 5 мкг ДНК плазмиды pINF расщепл ют рестриктазами EcoRI (25ед.)и Pstl (25 ед.) 1 ч при 37°С. 2 мкг ДНК плазмиды pUC19 расщепл ют рестриктазами pst I (10 ед.) и Hfndlll (10 ед.) 1,ч при 37°С. 5 мкг ДНК плазмиды pllnk расщепл ют рестриктазами EcoRI (25 ед.), Hindlll (25 ед.) и Pvul (25 ед,) 1 ч при 37°С, затем гель-фильтрацией на миниколонке с сефарозой 2В отдел ют малый EcoRI-Hindlll фрагмент (псГлШШКё р из pUC19) от остальных фрагментов плазмиды. Соедин ют вместе пробы, содержащие малый EcoRI-Hindlll фрагмент ДНК плазмиды plink и расщепленую EcoRI и Pstl ДНК плазмиды pINF, и добавл ют к ним 0,1 мкг ДНК плазмиды pUC19, расщепленную Pstl и Hindlll, депротеииизируют смесь хлороформом и осаждают этанолом 12 ч при -20°С. Осадок раствор ют в 10 мкл ТЕ-буфера (10 мМ трис-HCI рН 7,5, 1 мМ ЭДТА), отбирают 1/5 часть и провод т лигирование с 2,5 ед ДНХ-лигазы Т4 в 50 мкл лигазного буфера 12чпри4°С.Example. Cells of E. coli K12 strains containing plasmids pINF, pUC19 and plink (pBR322 with a polylinker from pUC19 embedded with EcoRI and Hind 111 sites) were grown on a full nutrient medium with antibiotics for 12 hours at 37 ° C and plasmid DNA was isolated from Hi / ft by the alkaline method, which is then purified by gel filtration on a mini-column with arose 2B. 5 μg of plasmid pINF DNA was digested with restriction enzymes EcoRI (25 units) and Pstl (25 units) for 1 hour at 37 ° C. 2 μg of plasmid pUC19 DNA was digested with restriction enzymes pst I (10 units) and Hfndlll (10 units) 1 hour at 37 ° C. 5 µg of plasmid pllnk DNA was digested with EcoRI restriction enzymes (25 units), Hindlll (25 units) and Pvul (25 units,) for 1 hour at 37 ° C, then gel-filtered on a mini-column with sepharose 2B to separate small EcoRI-Hindlll fragment (psGLSHKy r from pUC19) from the remaining fragments of the plasmid. Together, samples containing the small EcoRI-Hindlll DNA fragment of the plasmid plink and the digested EcoRI and Pstl DNA of the plasmid pINF, and 0.1 µg of the plasmid pUC19 digested with Pstl and Hindlll are added to them, the mixture is deproteinized with chloroform and precipitated with ethanol for 12 hours at -20 ° C. The precipitate is dissolved in 10 µl of TE buffer (10 mM Tris-HCl pH 7.5, 1 mM EDTA), 1/5 part is taken and ligated with 2.5 units of DN4 T4 ligase in 50 µl of ligase buffer 12 h WITH.
Лигировзнной ДНК трансформируют компетентные клетки Е. coli TGI и высевают на селективную среду ЭНДО, позвол ющую по окраске колоний определить наличие вставки ДНК в плаомиду pUC19, а также содержащую ампициллин (100 мг/л) Выросшие через 48 ч при 37°С белые колонии, дол которых составл ет приблизительно 30% от общего числа ампицйллинустойчи- вых трансформзнтов, очищают на той же среде до отдельных колоний и из нескольких кл онов вУдел ют плазмидную ДНК, которую переваривают затем рестриктазами EcoRI, BamHl, Pstl и Hindlll. После анализа рестрицирован ной ДНК в агарозном геле отбирают варианты, у которых ген inf оказалс встроен ным между двум сайтами BamHl.The ligated DNA is transformed into E. coli TGI competent cells and plated on an ENDO selective medium, which allows the presence of DNA insertion in the pUC19 plaomid to be determined by colony coloration and also containing ampicillin (100 mg / l) White colonies grown at 48 ° C, The share of which is approximately 30% of the total number of ampicillin-resistant transforms, is purified on the same medium to individual colonies, and plasmid DNA is isolated from several cells, which is then digested with EcoRI, BamHl, Pstl and Hindlll restrictases. After analysis of the restriction DNA in an agarose gel, variants were selected from which the inf gene was inserted between two BamH1 sites.
На следующем этапе из выделенного клона бактерий, а также из клеток Е. coliTGI, содержащих экспрессионный вектор рЗТб, препаративно выдел ют плазмидную ДНК, как указано. 5 мкг плазмиды pUC19 со встроенным геном интерферона и 2 мкг ДНК плазмиды pST6 раещетш ют рестрик- тазой BamHl (50 ед) смешивают всю ДНКIn the next step, plasmid DNA was preparatively isolated from the isolated clone of bacteria, as well as from E. coliTGI cells containing the rZTb expression vector, as indicated. 5 μg of the plasmid pUC19 with the inserted interferon gene and 2 μg of the DNA of the plasmid pST6 are digested with the restriction enzyme BamHl (50 units) and the whole DNA is mixed
плазмиды pUC19:inf с 0,2 мкг ДНК плазмиды pST6 , хлороформируют и осаждают этанолом и раствор ют осадок в 10 мкл ТЕ-буфера. 1/5 часть полученной смесиpUC19: inf plasmids with 0.2 µg of pST6 plasmid, chloroform and precipitate with ethanol and dissolve the precipitate in 10 µl of TE buffer. 1/5 part of the mixture
ДНК лигируют в 10 мкл лигазного буфера с 2,5 ед. ДНК-лигазы Т4 18 ч при 4°С. Лигиро- ванной ДНК трансформируют компетентные клетки Е. coli TGI и провод т селекцию трансформантов на питательной среде с 100DNA is ligated in 10 μl of ligase buffer with 2.5 units. DNA ligase T4 18 h at 4 ° C. The ligated DNA transforms the competent E. coli TGI cells and selects the transformants on a nutrient medium from 100
0 мкг/мл ампициллина. Выросшие при 37°С в течение 16ч клоны очищают на той же среде и выдел ют из них плазмидную ДНК, которую переваривают рестриктазами EcoRI, Pvull, Bglll и BamHl и отбирают клоны, в0 µg / ml ampicillin. Clones grown at 37 ° C for 16 hours were purified on the same medium and plasmid DNA was isolated from them, which was digested with restriction enzymes EcoRI, Pvull, Bglll and BamHl and the clones were selected.
5 которых ген интерферона встроилс в вектор рЗТб в нужной ориентации,5 of which the interferon gene is inserted into the rZTb vector in the desired orientation,
На следующем этапе осуществл ют передачу полученной рекомбинантной плазмиды pST20 из клеток Е. coll в клеткиIn the next step, the resulting recombinant plasmid pST20 is transferred from E.coll cells to the cells.
0 агробактерий . С этой целью в питательном бульоне с а эрацией выращивают бактерии A tumefaclens C158 rifR (pGV2260), E. coll TGI (pRK2013) и Е. coli (pST20) до достижени плотности клеточной суспензии0 agrobacteria. To this end, bacteria A tumefaclens C158 rifR (pGV2260), E. coli TGI (pRK2013) and E. coli (pST20) are grown in nutrient broth with aeration to achieve a cell suspension density
5 108 кл/мл. Смешивают по 0,1 мл суспензии клеток всех трех штаммов и нанос т на нит- роцеллюлозный фильтр, который помещают на полноценную питательную среду на 18 ч при 30°С. Бактерии смывают с фильтра и5 108 cells / ml. Mix 0.1 ml of the cell suspension of all three strains and apply it to a nitrocellulose filter, which is placed on a full nutrient medium for 18 hours at 30 ° C. Bacteria are washed off the filter and
0 высевают на селективную среду, содержащую ампициллин (100 мкг/мл), рифампицин (100 мкг/мл), с пектином и ци н (100 мкг/мл) и стрептомицин (100 мкг/мл). Выросшие через 3 сут колонии на селективной среде при0 are plated on selective medium containing ampicillin (100 μg / ml), rifampicin (100 μg / ml), with pectin and qing (100 μg / ml) and streptomycin (100 μg / ml). Colonies grown in 3 days on selective medium with
5 30°С очищают на той же среде до отдельных коло-ний и выдел ют из клеточной биомассы тотальную ДНК, 10 мкг ДНК переваривают с 20 ед рестриктазы BamHl 1 ч при 37°С, фракционируют путем электрофореза в5 30 ° С is purified on the same medium to separate colonies and total DNA is extracted from cell biomass, 10 µg of DNA is digested with 20 units of BamHl restriction enzyme for 1 hour at 37 ° С, and fractionated by electrophoresis
0 0,7% агарозном геле и перенос т на нитро- целлюлозный фильтр по методу Саузерна. Провод т гибридизацию иммобилизованной на фильтре ДНК с 32Р-меченной ДНК плазмиды pST20, отмывают фильтр от не5 ,св завшейс метки и экспонируют фильтр сутки с рентгеновской пленкой. На радиоавтографе ДНК из исходного штамма агробактерий дает одну зону гибридизации с pST20, соответствующую области гена ампицилли0 нусюйчивости на плазмиде pGVC2260, a ДНК из клонов трансконъюгантов дает 3 зоны гибридизации, что доказывает интеграцию плазмид pST20 и pGV2250 в клетках агробактерий,0 0.7% agarose gel and transferred to a nitrocellulose filter by the Southern method. Hybridization of the DNA immobilized on the filter with the 32P-labeled DNA plasmid pST20 is carried out, the filter is washed off from he5, the bound tag is exposed and the filter is exposed for 24 hours with the X-ray film. On a radioautograph, DNA from the original Agrobacterium strain yields one hybridization zone with pST20, corresponding to the ampicillus susceptibility gene region on plasmid pGVC2260, and DNA from transconjugants clones gives 3 hybridization zones, which proves the integration of plasmids pST20 and pGV2250 in agrobacteria cells,
5Полученные штаммы агробактерий, несущие интегрированные плазмиды pST20 и pGV2260, используют дл инфицировани листовых дисков табака Бактерии выращивают на минимальной среде А при 30°С и суспендируют в среде RMNO до плотности5 Agrobacterium strains obtained carrying the integrated plasmids pST20 and pGV2260 are used to infect tobacco leaf disks. Bacteria are grown on minimal medium A at 30 ° C and suspended in RMNO medium to density
10 кл/мл. Кусочки листьев стерильных растений табака N. tabacum сорта Самсун в возрасте 3-4 нед погружают в суспензию бактерий на 2-3 мин, промокают стерильной фильтровальной бумагой и помещают на среду RMNO, где инкубируют 2 сут в темноте при 25°С, после чего перенос т на среду дл органогенеза (солева среда Му- расиги и Скуга + 1,5 мкг/мл БАП + 1 мкг/мл витамина Bi + 0,8 мкг/мл витамина Вб + 250 мкг/мл клафорана + 50 мкг/мл канами- цина) и инкубируют в светокамере с фотопериодом 16/8 ч 3 нед, Образовавшиес побеги пересаживают на среду дл укоренени , котора отличаетс от среды дл орга- могенеза заменой БАП на 1 мкг/мл ИУК, и инкубируют еще 3 нед дл ускорени побегов .10 cells / ml. The leaves of sterile tobacco plants of N. tabacum cultivar Samsun at the age of 3-4 weeks are immersed in bacteria suspension for 2-3 minutes, soaked with sterile filter paper and placed on RMNO medium, where they are incubated for 2 days in the dark at 25 ° C, after which the transfer t on medium for organogenesis (salt medium Murasigi and Skoog + 1.5 µg / ml BAP + 1 µg / ml of vitamin Bi + 0.8 µg / ml of vitamin Wb + 250 µg / ml claforan + 50 µg / ml kanami- tsina) and incubated in a camera with a photoperiod of 16/8 hours 3 weeks. The resulting shoots are transplanted onto a rooting medium that is different from the average food for organogenesis by replacing BAP with 1 µg / ml IAA, and incubate for another 3 weeks to accelerate the shoots.
Образовавшиес на селективной среде с канамицином растени провер ют на на- личие ДНК гена интерферона и его экспрессию . Присутствие ДИК гена интерферона в растени х определ етс методом дот-гибридизации , 30 мкг тотальной ДНК, выделенной из растений-регенерантов, денатируют и нанос т на нитроцеллюлозный фильтр, после чего провод т гибридизацию иммобилизованной на фильтре ДНК с Р-меченной ДНК гена интерферона (малый BamHI фрагмент плазмиды pST20) Растени , дающие гибридизационный сигнал, содержат ДНК гена интерферона человека.Plants formed on kanamycin selective medium are tested for the presence of interferon gene DNA and its expression. The presence of DIC of the interferon gene in plants is determined by the dot-hybridization method, 30 µg of total DNA isolated from regenerated plants is denaturated and applied to a nitrocellulose filter, followed by hybridization of the DNA-labeled interferon gene on the filter ( small BamHI fragment of plasmid pST20) Plants that give a hybridization signal contain the DNA of a human interferon gene.
Дл установлени транскрипции гена интерферона в трансгенных растени х выдел ют тотальную РНК из листьев, фракци- онируют ее путем электрофореза в 1,2% агарозном геле при денатурирующих услови х с формальдегидом, перенос т на нитроцеллюлозный фильтр и гибридизуют сTo establish the transcription of the interferon gene in transgenic plants, total RNA is isolated from the leaves, fractioned by electrophoresis on a 1.2% agarose gel under denaturing conditions with formaldehyde, transferred to a nitrocellulose filter, and hybridized with
Р-меченной ДНК гена интерферона. В ка- честве стандарта используют 0,1 нг ДНК малого ВатН фрагмента плазмиды pST20, а также 18S и 25S рибосомальную РНК. Вывод о транскрипции гена интерферона в трансгенных растени х делают на основа- нии по влени зоны гибридизации, соответствующей молекулам РНК с размером 0,95 т.о.P-labeled interferon gene DNA. As a standard, 0.1 ng of the DNA of the small WatN fragment of the pST20 plasmid, as well as 18S and 25S ribosomal RNA, are used. The conclusion about the transcription of the interferon gene in transgenic plants is made on the basis of the appearance of a hybridization zone corresponding to RNA molecules with a size of 0.95 kb.
Белковый продукт гена интерферона в трансгенных растени х определ ют имму- нологически, использу моноклональные антитела против лейкоцитарного интерферона человека Кусочки листьев массой 100 мг растирают в ступке и экстрагируют буфером (25 мМ трис-HCI, рН 8,35; 195 мМ глицин) Обломки клеток осаждают центрифугированием , супернатанту добавл ют этанол до конечной концентрации 20% и фильтруют раствор через нитроцеллюлоз- фильтр Фильтр промывают 4 раза по 5The protein product of the interferon gene in transgenic plants is immunologically determined using monoclonal antibodies against human leukocyte interferon. 100 mg leaves are ground in a mortar and extracted with buffer (25 mM Tris-HCl, pH 8.35; 195 mM glycine) Cell fragments precipitated by centrifugation, ethanol is added to the supernatant to a final concentration of 20% and the solution is filtered through nitrocellulose filter. The filter is washed 4 times with 5 times
мин раствором В (10 MM-NaH2P04/Na2HP04 0,15 М NaCI; 0,3% Твин-20; рН 7.2) На поверхность фильтра нанос т 5 мкл раствора, содержащего моноклональные антитела против лейкоцитарного интерферона человека и инкубируют 12 ч при 4°С. Фильтр промывают 4 раза по 5 мин в растворе В и нанос т на него 5 мкл раствора меченных антител против IgG мыши. Инкубируют 30 мин при 20°С и промывают антитела на фильтре 4 раза по 5 мин раствором В. Св завшиес антитела визуализируют, освеща фильтр длинноволновым УФ-светом. В качестве стандарта используют 500 ед. лейкоцитарного интерферона человека. О продукции трансгенными растени ми белка интерферона свидетельствует по вление ркого флюоресцентного свечени препаратов на фильтрах.min with solution B (10 MM-NaH2P04 / Na2HP04 with 0.15 M NaCI; 0.3% Tween-20; pH 7.2) 5 μl of a solution containing monoclonal antibodies against human leukocyte interferon is applied to the filter surface and incubated for 12 hours at 4 ° WITH. The filter is washed 4 times for 5 minutes in solution B and 5 µl of a solution of labeled antibodies against mouse IgG is applied to it. Incubate for 30 min at 20 ° C and wash the antibodies on the filter 4 times for 5 min with solution B. Sv zavshies antibodies are visualized by illuminating the filter with long-wave UV light. 500 units are used as standard. human leukocyte interferon. The production of interferon protein by transgenic plants is evidenced by the appearance of strong fluorescent luminescence of preparations on filters.
Среда RMNO: 1х макросоли, 1х микросоли , 1 мг/л Fe-хелат, 440 мг/л CaCIa, 100 мг/л-мезоинозит, 1 мг/л витамин В1, 0,1 мг/л 2,4-Д, 0,04 мг/л кинетин, 3 мг/л ИУК, 3% сахароза, 8 г/л агарRMNO medium: 1x macrosalt, 1x micro-salt, 1 mg / l Fe-chelate, 440 mg / l CaCIa, 100 mg / l-meso-inositol, 1 mg / l vitamin B1, 0.1 mg / l 2,4-D, 0 , 04 mg / l kinetin, 3 mg / l IAA, 3% sucrose, 8 g / l agar
Среда А: 10,5 г/л НРОл. 4,5 г/л КН2Р04, 1 г/л (МНфЗО. 0,5 г/л цитрат натри -2Н20Wednesday A: 10.5 g / l NROL. 4.5 g / l КН2Р04, 1 g / l (МНФЗО. 0.5 g / l sodium citrate -2Н20
Питательна среда дл бактерий: 10 г/л триптон, 5 г/л дрож. экстракт, 10 г/л NaCI.Nutrient medium for bacteria: 10 g / l tryptone, 5 g / l yeast. extract, 10 g / l NaCI.
Агаризованна питательна среда: м - сопептонный агар (МПА) производства ИЭМ им. Н. Ф. Гамалеи,Agarized nutrient medium: m - septon agar (MPA) produced by IEM im. N.F. Gamalei
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU904817194A SU1751207A1 (en) | 1990-04-20 | 1990-04-20 | Recombinant plasmid dna ps t20, encoding human alpha- interferon in tobacco plants |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU904817194A SU1751207A1 (en) | 1990-04-20 | 1990-04-20 | Recombinant plasmid dna ps t20, encoding human alpha- interferon in tobacco plants |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1751207A1 true SU1751207A1 (en) | 1992-07-30 |
Family
ID=21509874
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU904817194A SU1751207A1 (en) | 1990-04-20 | 1990-04-20 | Recombinant plasmid dna ps t20, encoding human alpha- interferon in tobacco plants |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1751207A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US9751918B2 (en) | 2001-07-13 | 2017-09-05 | Xeragenx Llc | Transgenic plants expressing cobalamin binding proteins |
-
1990
- 1990-04-20 SU SU904817194A patent/SU1751207A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Virology, 1989, v. 172, p. 213-222. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US9751918B2 (en) | 2001-07-13 | 2017-09-05 | Xeragenx Llc | Transgenic plants expressing cobalamin binding proteins |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP0116718B1 (en) | Process for the introduction of expressible genes into plant cell genomes and agrobacterium strains carrying hybrid ti plasmid vectors useful for this process | |
CA1341419C (en) | Process for the introduction of expressible genes into plant cell genomes and agrobacterium strains carrying hybrid ti plasmid vectors useful for this process | |
AU648951B2 (en) | Agrobacterium mediated transformation of germinating plant seeds | |
US5731179A (en) | Method for introducing two T-DNAS into plants and vectors therefor | |
Cocking et al. | Gene transfer in cereals | |
US6265638B1 (en) | Method of plant transformation | |
US5591605A (en) | Plant structural gene expression | |
CA2007091A1 (en) | Wound-inducible and potato tuber specific transcriptional regulation | |
WO1998049332A1 (en) | Agrobacterium mediated transformation of sorghum | |
EP0131624A1 (en) | Plasmids for transforming plant cells. | |
Lulsdorf et al. | Optimizing the production of transformed pea (Pisum sativum L.) callus using disarmed Agrobacterium tumefaciens strains | |
US7176352B1 (en) | Transgenic Lemnaceae | |
Machida et al. | Plant-inducible recombination between the 25 bp border sequences of T-DNA in Agrobacterium tumefaciens | |
EP0126546A2 (en) | Plant structural gene expression | |
JP7491517B2 (en) | Method for mass-producing a target protein from plants | |
WO1986003776A1 (en) | Process for preparing genetically stably transformed monocotyledonous plant cells | |
US7238854B2 (en) | Method of controlling site-specific recombination | |
US20090075358A1 (en) | Vectors for transformation of plant cells | |
SU1751207A1 (en) | Recombinant plasmid dna ps t20, encoding human alpha- interferon in tobacco plants | |
US5917127A (en) | Plasmids useful for and methods of preparing transgenic plants with modifications of habit and yield | |
KR101557043B1 (en) | Constitutive expression promoter from chrysanthemum | |
US6767735B1 (en) | Vector for introducing a gene into a plant using a selectable marker | |
NZ207766A (en) | Plant structural gene expression | |
KR100985971B1 (en) | Transformation vector for eliminating selection marker gene | |
EP0243553A1 (en) | Plant transformation vector |