SU1742325A1 - Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L. - продуцент моноклональных антител к холерному энтеротоксину биотипа эльтор - Google Patents
Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L. - продуцент моноклональных антител к холерному энтеротоксину биотипа эльтор Download PDFInfo
- Publication number
- SU1742325A1 SU1742325A1 SU904876007A SU4876007A SU1742325A1 SU 1742325 A1 SU1742325 A1 SU 1742325A1 SU 904876007 A SU904876007 A SU 904876007A SU 4876007 A SU4876007 A SU 4876007A SU 1742325 A1 SU1742325 A1 SU 1742325A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- cells
- cholera
- enterotoxin
- biotype
- strain
- Prior art date
Links
Classifications
-
- Y02A50/472—
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Использование: биотехнологи , иммунологи . Сущность изобретени : штамм получают гибридизацией сплено цитов белых мышей, иммунизированных очищенным препаратом холерного энтеротоксина с миеломой Р3-Х63/Ад8.653. Штамм под номером ВСКК(П) 433Д хранитс в Специализированной коллекции перевиваемых соматических клеток позвоночных Института цитологии АН СССР и характеризуетс следующими признаками: среда культивировани RPM1-1640 или ДМЕМ, содержаща 10 - 15% тел чьей эмбриональной сыворотки. Посевна доза клеток 105 - 1,5105 кл/мл, коэффициент рассева 1:4 - 1:5. Модальное число хромосом 87. Титр моноклональных антител (МКА) в культуральной -жидкости 1:256 - 1:512 (ИФА), в асцитической жидкости 1:25600-1:51200 (ИФА), 1:16-1:32 (РП). Нейтрализаци холерного энтеротоксина в пробе по Крейгу 1:2000, нейтрализаци холерного энтеротоксина на клетках СНО 1:320 - 1:640. МКА относ тс к классу Ig С2в. Они вы вл ют энтеротоксин в супернатан- тах штаммов холерных вибрионов биотипа эльтор, не дают перекрестных реакций с энтеротоксинами классического биотипа и E.coli, ЛПС, выделенными из холерных эн- теротоксинов классического и эльтор биотипов , убитыми бактериальными клетками холерных вибрионов. МКА используют в диагностических цел х дл серологической идентификации холерных энтеротоксинов биотипа эльтор. С/1 С 2 чэ со hO ел
Description
Изобретение относитс к биотехнологии , а именно к гибридомной технологии получени моноклональных антител (МКА), которые могут быть использованы дл серологической идентификации холерного энтеротоксина (XT) биотипа эльтор.
Известны способы получени МКА к холерному токсину классического биотипа.
Штаммы гибридных клеток, продуцирующих МКА к XT биотипа эльтор, в литературе не описаны.
Целью изобретени вл етс получение гибридного штамма культивируемых клеток Mus musculus, продуцирующего МКА к холерному энтеротоксину биотипа эльтор.
Штамм получают следующим образом.
Мышей линии Balb/c (массой 16 - 18 г) иммунизируют гомогенным препаратом XT. Дл получени XT используют штамм - продуцент XT In vitro Vibrio eltor 1310 серовара Oraea. Лиофилизированный препарат XT раствор ют в фосфатно-солевом буфере (рН 7,2). Схема включает б инъекций. Первые 2 инъекции провод т внутрибрюшинно (в/б) с интервалом в 1 мес в дозе 5 мкг по белку. Перед первой иммунизацией раствор XT эмульгируют с полным адъювантом Фрейн- да (ПАВ), последующую иммунизацию провод т нэтивным раствором XT 1310. Затем через 2 недели 2 дн подр д внутривенно (в/в) ввод т раствор XT в дозе 5 мкг по белку. Заключительные инъекции раствором XT провод т через неделю два дн подр д в/б по 20 мкг по белку. Иммунизацию завершают за 3 дн до сли ни .
Иммунные спленоциты мышей сливают с клетками плазмоцитомы мышей РЗ-Х 63/Ад8.653 в соотношении 2:1. Сли ние клеток миеломы с клетками селезенки мышей провод т с помощью 50%-ного раствора полиэтиленгликол с мол.массой 4000д. В стерильных услови х извлекают селезенку , измельчают ее с помощью гомогенизатора Даунса. Взвесь фильтруют через капроновое ситечко и обрабатывают 0,83%- ным раствором NhUCI, забуференным трис- буфером, дл лизировани эритроцитов. Лимфоциты дважды отмывают средой Игла- МЕМ и смешивают с дважды отмытыми клетками миеломы. Смесь клеток отмывают один раз в 50-миллилитровой центрифужной пробирке, супернатант декантируют и к осадку добавл ют 1 мл 50%-ного раствора полиэтиленгликол в течение 1 мин по капл м при 42°С(на вод ной бане). После этого в центрифужную пробирку медленно вноситс бессывороточна среда RPM1-1640 в объеме до 10 мл, Взвесь клеток инкубируют при 37°С 10 мин, после чего один раз центрифугируют при 800 об/мин 7 мин. Супернатант декантируют и смесь клеток осторожно ресуспендируют в 40 мл ростовой среды (среда RPM1-1640 иди ДМ ЕМ с добавлением 20%-ной сыворотки эмбрионов коров, 5 мМ/мл L-глютамина, 4 г/л глюкозы , 0,1 М пирувата натри ), содержащей компоненты ГАТ (0,0131 мг/мл гипоксантина, 0,000191 мг/мл аминоптерина, 0,00385 мг/ мл тимидина). Суспензию клеток в ГАТ-сре- де разливают по 0,1 мл в 96-луночные плоскодонные планшеты, в лунки которых за сутки внесены в качестве фидерного сло - перитонеальные макрофаги белых мышей в дозе кл на лунку. Видимые клоны гибридных клеток по вл ютс на 7 - 10-е сутки . Гибридому культивируют 14 дней на
среде ГАТ, затем 7-10 дней на среде ГТ, после перевод т на ростовую среду без селективных компонентов. Гибридому дважды клонируют методом предельных
разведений на фидере из мышиных перито- неальных макрофагов. В результате клонировани получают продуктивный штамм гибридных культивируемых клеток мыши, стабильно продуцирующих МКА заданной
0 специфичности.
Штамм обозначают ВСКК (П) 433 Д, он хранитс в специализированной коллекции перевиваемых соматических клеток позвоночных Института цитологии АН СССР и ха5 рактэризуетс следующими признаками. Морфологические признаки, Гибридные клетки ВСКК (П) 433 Д представл ют собой крупные округлые клетки с узким ободком базофильной цитоплазмы.
0 Ядра гиперхромные, неправильноовальной формы, крупные, с грубой структурой дерного хроматина.
Культуральные признаки. Культуральные свойства типичны дл
5 перевиваемых клеток мышиных плазмоци- том. Клетки ВСКК(П)433 Д культивируютс в виде стационарной суспензии при 37°С в пластиковой или стекл нной посуде при посевной дозе 1,0- 1,5x10 кл./мл в течение 3 0 4 дней до плотности насыщени 8 - 9x105 кл./мл. Клетки пассируют один раз в 3-4 дн той же дозой. Коэффициент рассева 1:4 - 1:5. Культивирование ведут на питательной среде RPM1-1640 или ДМЕМ, содер5 жащей 10 - 15% эмбриональной сыворотки коров, 2 мМЬтлютамина, 8-10 мМ буфера HEPES.
Культивирование штамма в организме экспериментальных животных.
0 Индукцию асцитных опухолей у интакт- ных беспородных белых мышей и инбред- ных мышей линии Balb/c, внутрибрюшинно праймированных за 2 - 3 недели до введени гибридомы ПАФ в объеме 0,5 мл/мышь,
5 осуществл ют путем инокулировани 5x10 - 107 гибридных клеток на одно животное в 2 мл среды, Иммунную асцитическую жидкость собирают по мере формировани асцитных опухолей через 10-14 дней в
0 объеме2-бмл,
Кариологиче ские признаки. Модальное число хромосом 87, С-мар- керы родительской миеломной линии РЗ- Х63Ад8.653.
5 Характеристика моноклональных антител .
МКА относитс к lgG2. Они вы вл ют энтеротоксин биотипа эльтор, не вступа во взаимодействие с энтеротоксинами классического биотипа и 026; ЛПС, выделенными из холерных вибрионов классическог и эльтор биотипов, убитыми бактериальными клетками холерных вибрионов Антитела тестируют в твердофазном иммунофермен- тном анализе (ИФА) и реакции преципитации (РП) по Оухтерлонии с XT 1310, по нейтрализации специфического действи XT 1310 в тесте кожной проницаемости по Крейгу и нейтрализации цитотоксического действи XT на овариальные клетки китайского хом чка (СНО). Класс иммуноглобулинов определ ют в РП по Оухтерлони или в ИФА с Hibvidoma subisotyping kit, mouse, Calbiochem (США).
Титр МКА в культуральной жидкости 1/265- 1/512 (ИФА); в асцитической жидкости 1/51200 (ИФА), 1/16-1/32 (РП); нейтрализации XT 1310 в пробе по Крейгу 1/2000; нейтрализации XT 1310 на клетках СНО 1/320- 1/640.
Стабильность продукции антител сохран етс на прот жении пассажей в культуре и пассажей на животных в течение 18 мес (срок наблюдени ).
Контаминаци .
Бактерии и грибы в культуре клеток не обнаруживаютс . Заражение микоплазма- ми и вирусами не исследовали
Криоконсервирование.
Клетки штамма ресуспендируют в среде RPM1-1640, содержащей 50% эмбриональной сыворотки коров и 10% глицерина или диметилсульфоксида, Замораживание провод т ступенчато: после запаивани ампул - эквилибраци в течение 2 ч при 4°С, затем 24 ч в парах азота, затем клетки помещают в жидкий азот. Размораживание провод т быстро на вод ной бане при 37°С. Жизнеспособность клеток по включению 0,25%- ного трипанового синего составл ет 80 - 90%.
Иссследование специфичности МКА. . В качестве антигенных препаратов в тестах in vitro и in vivo используют убитые нагреванием бактериальные юлетки холерных вибрионов, ЛПС и энтеротоксины, выделенные из холерных вибрионов классического и эльтор биотипов и Е coli.
При постановке ИФА в качестве твердой фазы используют плоскодонные 96-лу- ночные ИФА-пластины, позвол ющие проводить фотометрический учет реакции. Дл определени специфичности МКА ИФА провод т на планшетах, сенсибилизированных гомогенным препаратом XT 1310, XT 569B или энтеротоксином Е.соИ 0,26 (10 - 20 мкг/мл по белку), либо суспензией убитых нагреванием бактерий (V.cholerae 569В. V.eltor 1310 1х108 кл/мл), либо ЛПС (5-10 мкг/мл по массе) в объеме 100 мкл в
0,05 М карбонатно-бикарбонатном буфере (КББ) рН 9,6 Сенсибилизацию провод т в течение 18 ч при 4°С В качестве вторых антител используют кроличьи антитела про- 5 тив иммуноглобулина мыши, меченные пе- роксидазой хрена. Субстратом служит ортофенилендиамин в цитратно-фосфатном буфере (рН 4,7) В качестве позитивного контрол используют иммунную поликло0 нальную антитоксическую мышиную сыворотку , в качестве негативного контрол - миеломный супернатант или асцитическую жидкость, индуцированную клетками мие- ломы.
5РП по Оухтерлони провод т в микромодификации с использованием 0,8 - 1 %-ного агара (Difco) или сахарозы (Serva), приготовленных на фосфатном буферном растворе (рН 7,4). В слое гел вырезают лунки
0 на рассто нии 5 мм друг от друга, в центральную лунку внос т МКА, а в периферические - гомо- и гетероантигены в объеме 0.03 мл (нагрузка энтеротоксинов составл ет 25 - 30 мкг по белку на 1 лунку; цельных
5 убитых клеток 2 - 3x10 м.к. на 1 лунку). Контрол ми служат: позитивным - антитоксическа холерна сыворотка; негативными - миеломна асцитическа жидкость, развод ща жидкость.
0Биологическую активность и специфичность МКА исследуют также в тесте проницаемости сосудов по Крейгу и на культуре клеток СНО.
В предварительных опытах определ ют
5 сосудистую проницаемость XT путем внут- рикожного (в/к) введени кроликам последовательных разведений XT в объеме 0,1мл. Дл смеси XT - МКА используют наименьшую дозу XT, дающую четкую зону посине0 ни диаметром 7-8 мм. Дл нейтрализации
используют МКА из асцитической жидкости
и лиофилизированные МКА. 0,1 мл XT в по- роговой дозе объедин ют с 0,1 мл МКА в
последовательных разведени х (в фосфат5 но-солевом буфере, рН 7,2), инкубируют 1 ч при 37°С, после чего 0,1 мл полученного , материала ввод т в/к кроликам. Через 24 ч в/в ввод т синьку Эванса и через 1 ч измер ют диаметр окрасившейс зоны. Реакцию
0 нейтрализации считают положительной, если зона посинени будет диаметром не более 4 мм. Каждый опыт сопровождают положительным (нейтрализаци XT гомологичной экспериментальной кроличьей
5 антитоксической сывороткой (АТС) и отрицательным (сосудиста проницаемость пороговой дозы XT) контрол ми.
Дл определени специфической антитоксической активности МКА в цитотоксиче- ском тесте на клетках СНО используют
препараты XT в минимальной дозе, оказывающей четкое цитотоксическое действие, 0,1 мл XT соедин ют с 0,1 мл МКА в последовательных разведени х (в среде Игла с 1% инактивированной эмбриональной сыворотки коров), инкубируют 2 ч при 37°С, затем по 0,1 мл смеси внос т в плоскодонные лунки 96-луночной панели дл культуры клеток. В каждую лунку добавл ют по 0,1 мл суспензии клеток СНО в дозе 3x10 кл. Дл контрол специфического действи XT используют экспериментальную кроличью АТС. В качестве отрицательного контрол используют контроль культуры клеток СНО. Пластины помещают в эксикатор во влажную атмосферу с 5% СОз, выдерживают 18 ч при 37°С. Учет провод т по 4-крестной Системе.
В РП по Оухтерлонии МКА ВСКК (П) 433 Д на 7 с формируют в агаре одну четкую линию преципитации с XT биотипа Эльтор и не взаимодействует с другимугиспользованны- ми антигенами и микроорганизмами.
В ИФА МКА ВСКК(П) 433 Д взаимодействуют только с гомологичным энтеротокси- ном. Показатели экстинкции реакции с XT 569В, XT 569 (Calblochem), ЛПС, а также С цельными клетками штаммов: V.cholerae 569В, V.eltor 1310, имеют значение фонового сигнала.
П р и м е р 1.96-луночные ИФА-планше- ты сенсибилизируют гомогенным препаратом XT биотипа эльтор (10 - 20 мкг/мл по белку) в КББ (рН 9,6), полученным по известному методу. Дл получени XT используют штамм - продуцент XT In vitro. Планшеты выдерживают 1 ч при 37°С или 18ч при 4°С. Промывают пластины фосфатно-солевым буфером (ФСБ) рН 7,4, содержащим 0,05% Твина-20 и раститровывают по 0,1 мл асци- тическую жидкость, содержащую МКА, в ФСБ с 1%-ным бычьим сывороточным альбумином (БСА) и 0,05% Твина-20. Инкубируют 2 ч при 37°С. Св завшиес комплексы
антигена с антителом вы вл ют антимышиными глобулинами, меченными пероксида- зой хрена. Оптическую плотность измер ют на многоканальном спектрофотометре
Multiskan MK 11 (Flow, UK) при длине волны 492 нм или визуально. Ярко-желтое или оранжевое окрашивание лунок пластины при бесцветных отрицательных контрол х расценивают как специфическое. При наличии специфического окрашивани позитивного контрол , основанного на использовании антитоксической холерной сыворотки к XT биотипа эльтор, делают заключение о том, что асцитическа жидкость
содержит М КА к энтеротоксину биотипа эльтор .
П р и м е р 2. Цельные супернатанты культур холерных вибрионов, выращенных по известному методу, внос т в объеме 0,1
мл в лунки 96-луночных планшет, сенсибилизированных МКА и XT биотипа эльтор (10-20 мкг мл) в КББ (рН 9,6). Инкубируют 1 ч при 37°С. Пластины трижды промывают ФСБ, содержащим 0,05% Трина-20. В лунки
добавл ют конъюгированные с пероксида- зой хрена МКА к XT биотипа эльтор в рабочем разведении и оставл ют дл контакта на 1 ч при 37°С. Приготовленный ex tempore субстрат по 0,1 мл добавл ют в лунки и помещают пластины в темный шкаф на 15 - 20 мин при комнатной температуре дл цветового про влени реакции. Положительным контролем вл етс реакци между МКА и очищенным препаратом XT к биотипу
эльтор. Дл отрицательного контрол используют гетерологичные энтеротоксины и развод щую жидкость.
Результаты учитывают аналогично примеру 1.
Claims (1)
- Формула изобретениШтамм гибридных культивируемых клеток животных Mus musculus L ВСКК(П)433 Д-продуцент моноклональных антител к холерному энтеротоксину биотипа эльтор.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU904876007A SU1742325A1 (ru) | 1990-10-22 | 1990-10-22 | Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L. - продуцент моноклональных антител к холерному энтеротоксину биотипа эльтор |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU904876007A SU1742325A1 (ru) | 1990-10-22 | 1990-10-22 | Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L. - продуцент моноклональных антител к холерному энтеротоксину биотипа эльтор |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1742325A1 true SU1742325A1 (ru) | 1992-06-23 |
Family
ID=21541559
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU904876007A SU1742325A1 (ru) | 1990-10-22 | 1990-10-22 | Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L. - продуцент моноклональных антител к холерному энтеротоксину биотипа эльтор |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1742325A1 (ru) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2583306C1 (ru) * | 2015-03-11 | 2016-05-10 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб") | Штамм гибридных культивированных клеток животных mus musculus хт 2е5 - продуцент моноклональных антител изотипа g 1 к в-субъединице холерного токсина |
-
1990
- 1990-10-22 SU SU904876007A patent/SU1742325A1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Сидорович И.Г., Николаева И.А., Игнатьева ГА Моноклональные антитела к холерному токсину (получение и характеристика), - В сб. Моноклональные антитела в микробиологии и вирусологии - М., 1985. Tamplln M.L et al.3. Gen.mlcrobiol., 1989, v.135, №5, p.1195- 1200. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2583306C1 (ru) * | 2015-03-11 | 2016-05-10 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб") | Штамм гибридных культивированных клеток животных mus musculus хт 2е5 - продуцент моноклональных антител изотипа g 1 к в-субъединице холерного токсина |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US5196337A (en) | Human monoclonal antibody, and its production and use | |
JPH03236794A (ja) | ヒトモノクローン抗体の製造法 | |
SU1742325A1 (ru) | Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L. - продуцент моноклональных антител к холерному энтеротоксину биотипа эльтор | |
CN102181402B (zh) | 高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒单克隆抗体及其制备 | |
Cerny et al. | Specific susceptibility of sensitized (memory) B cells to suppression and antigenic alteration by murine leukemia virus | |
RU2265658C2 (ru) | Штамм гибридных клеток животного mus musculus l. 9e2, используемый для получения моноклональных антител к белку e вируса западного нила штамм wnv/leiv-vig99-27889 | |
RU2783897C1 (ru) | Штамм гибридных культивируемых клеток Homo sapiens/Mus musculus 1B9C7 - продуцент человеческих моноклональных антител, специфичных к протеолитическому домену ботулинического токсина типа A | |
RU2535982C1 (ru) | Штамм культивируемых гибридных клеток животного mus musculus l. cchfv vd-1-продуцент моноклонального антитела 4g4/b6 к вирусу крым-конго геморрагической лихорадки | |
RU2583306C1 (ru) | Штамм гибридных культивированных клеток животных mus musculus хт 2е5 - продуцент моноклональных антител изотипа g 1 к в-субъединице холерного токсина | |
RU2092554C1 (ru) | Штамм гибридных культивируемых клеток животных mus musculus l. - продуцент моноклональных антител к вирусу болезни ауески штамм унииэв 18 в | |
RU2395575C1 (ru) | ШТАММ ГИБРИДНЫХ КЛЕТОК ЖИВОТНОГО Mus musculus L. - ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ БЕЛКА VP40 ВИРУСА МАРБУРГ (ШТАММ Рорр) (ВАРИАНТЫ), МОНОКЛОНАЛЬНОЕ АНТИТЕЛО, ПРОДУЦИРУЕМОЕ ШТАММОМ (ВАРИАНТЫ), НАБОР ДЛЯ ИММУНОФЕРМЕНТНОЙ ТЕСТ-СИСТЕМЫ ФОРМАТА "СЭНДВИЧ" ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ МАТРИКСНОГО БЕЛКА VP40 ВИРУСА МАРБУРГ (ШТАММ Рорр) | |
RU2012594C1 (ru) | Штамм гибридных культивируемых клеток животных mus musculus l - продуцент моноклональных антител к 146s-компоненту вируса ящура азия-1 | |
SU1541254A1 (ru) | Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS, используемый дл получени моноклональных антител к термостабильному О-антигену холерного вибриона серовара Огава | |
RU2281327C2 (ru) | ШТАММ ГИБРИДНЫХ КУЛЬТИВИРУЕМЫХ КЛЕТОК Rattus norvegicus 122Н9 - ПРОДУЦЕНТ ПЕРЕКРЕСТНО-РЕАКТИВНЫХ НЕЙТРАЛИЗУЮЩИХ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ ПРОТИВ ОРТОПОКСВИРУСОВ, ПАТОГЕННЫХ ДЛЯ ЧЕЛОВЕКА | |
RU2478703C1 (ru) | ШТАММ ГИБРИДНЫХ КЛЕТОК ЖИВОТНЫХ Mus musculus 5G6 - ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ, СПЕЦИФИЧНЫХ К V АНТИГЕНУ Yersinia pestis | |
RU2652885C1 (ru) | Штамм гибридных культивируемых клеток животных mus musculus α - продуцент моноклональных антител, специфичных к раково-тестикулярному антигену человека GAGE | |
RU2542381C2 (ru) | ШТАММ ГИБРИДНЫХ КУЛЬТИВИРУЕМЫХ КЛЕТОК ЖИВОТНЫХ mus musculus α-ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ, СПЕЦИФИЧНЫХ К ГРАНУЛОЦИТАРНОМУ КОЛОНИЕСТИМУЛИРУЮЩЕМУ ФАКТОРУ (GCSF) ЧЕЛОВЕКА | |
RU2525663C1 (ru) | ШТАММ ГИБРИДНЫХ КУЛЬТИВИРУЕМЫХ КЛЕТОК ЖИВОТНЫХ Mus musculus 2F9-ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ, СПЕЦИФИЧНЫХ К ЛИЗОСТАФИНУ И ИНГИБИРУЮЩИХ ЕГО ЛИТИЧЕСКУЮ АКТИВНОСТЬ | |
SU1640157A1 (ru) | Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L, используемый дл получени моноклональных антител к ДНК-зависимой РНК-полимеразе бактериофага Т7 | |
RU2570638C1 (ru) | Штамм культивируемых гибридных клеток животного mus musculus l. bpm vd-10 - продуцент моноклонального антитела 5h11/e5 к антигену 200 kda возбудителя мелиоидоза | |
RU1798372C (ru) | Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L. - продуцент протективных моноклональных антител к вирусу восточного энцефаломиелита лошадей | |
RU2186106C1 (ru) | Штамм гибридных клеток э4/n-6g5 животных mus musculus l., продуцирующих моноклональные антитела к вирусу эбола | |
SU1541253A1 (ru) | Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS, используемый дл получени моноклональных антител к поверхностному антигену возбудител тул ремии голарктической расы | |
SU1652340A1 (ru) | Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L - продуцент моноклональных антител к М - белку вируса гриппа типа А | |
RU2018531C1 (ru) | Штамм гибридных культивируемых клеток животных mus musculus l., используемый для получения моноклональных антител к гликопротеиновому антигену 70 кда мононуклеаров периферической крови крупного рогатого скота |