SU1720003A1 - Способ определени липополисахаридных антигенов микроорганизмов в сыворотке крови - Google Patents

Способ определени липополисахаридных антигенов микроорганизмов в сыворотке крови Download PDF

Info

Publication number
SU1720003A1
SU1720003A1 SU904777248A SU4777248A SU1720003A1 SU 1720003 A1 SU1720003 A1 SU 1720003A1 SU 904777248 A SU904777248 A SU 904777248A SU 4777248 A SU4777248 A SU 4777248A SU 1720003 A1 SU1720003 A1 SU 1720003A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
marker
determination
liposomes
complement
accuracy
Prior art date
Application number
SU904777248A
Other languages
English (en)
Inventor
Светлана Николаевна Скопинская
Сергей Петрович Ярков
Владимир Николаевич Злобин
Original Assignee
Всесоюзный научно-исследовательский институт биологического приборостроения
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всесоюзный научно-исследовательский институт биологического приборостроения filed Critical Всесоюзный научно-исследовательский институт биологического приборостроения
Priority to SU904777248A priority Critical patent/SU1720003A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1720003A1 publication Critical patent/SU1720003A1/ru

Links

Landscapes

  • Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
  • Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к микробиологии и может быть использовано в иммунодиагностике инфекционных заболеваний. Цель изобретени  - повышение точности способа. Определ емый антиген обрабатывают 0,1 н.щелочью при нагревании до 95°С в течение 10 мин, встраивают его в мембрану липосом, внутрь липосомы включают маркер, в качестве которого используют водорастворимый флуоресцентный краситель кальци , и определ ют интенсивность флуоресценции маркера после постановки реакции комплементзависимого лизиса и по рассчитанной доле иммунного лизиса по калибровочной кривой определ ют концентрацию липополисахаридных антигенов. Способ позвол ет повысить точность определени  в 2-3 раза. 3 табл.

Description

Изобретение относитс  к микробиологии и может быть использовано в иммунодиагностике инфекционных заболеваний.
Цель изобретени  - повышение точности способа.v
Способ осуществл ют следующим образом .
Осуществл ют встраивание определ емого антигена (АГ) в мембрану липосом, включение маркера внутрь липосомы, проведение реакции комплемент-зависимого лизиса с последующим определением АГ по выходу маркера из лизированных липосом. Перед включением маркера определ емый АГ обрабатывают 0,1 N сцелочью при нагревании до 95°С в течение 10 мин. В качестве маркера используют водорастворимый флуоресцентный краситель кальцин. Определ ют интенсивность флуоресценции маркера после постановки реакции комплемент-зависимого лизиса липосом с контрол ми и рассчитывают долю иммунного лизиса по выражению
ю
о
F6-(F3-Fi) + F5 F2-(F3-Fi) + F4
х 100%, (1)
о ы
где Fi - интенсивность флуоресценции суспензии липосом;
F2 - интенсивность флуоресценции суспензии липосом с добавкой стандартной антисыворотки и комплемента:
Рз - интенсивность флуоресценции суспензии липосом с добавкой только стандартной антисыворотки;
F4 интенсивность флуоресценции суспензии липосом с добавкой только комплемента;
FS - интенсивность флуоресценции суспензии липосом с добавкой сыворотки больного и комплемента;
Fe - интенсивность флуоресценции суспензии липосом с добавкой сыворотки боль- ного, комплемента, стандартной антисыворотки.
Концентрацию липополисахаридных антигенов определ ют по калибровочной кривой.
Пример 1. Получение липосомаль- ного иммунореагента.
Раствор липидов -  ичный лецитин, холестерин , дицетилфосфат(в мол рном соотношении 2:1, 5:0,22) в смеси хлороформ, метанол (2:1 пообъему)упариваютна роторном- испарителе до образовани  липидной пленки. Полученную пленку липидов раствор ют в 1,5 мл диэтилового эфира, добавл ют 0,5 мл раствора липополисахарида (ЛПС), предварительно обработанного 0,1 N NaOH и содержащего 175 мМ кальцеина.
Полученную двухфазную систему подвергают действию ультразвука в дезинтеграторе при частоте 22 кГц в течение 20-30 с. Полученную эмульсию упаривают на роторном испарителе до образовани  твердого гел  при 35-45 КПа. а затем при 25 КПа до полного удалени  эфира. Невключающийс  маркер отдел ют гельфильтрацией на колонке с сефадексом G-50. Полученный липосомальный иммунореагент сохран етс  при +4°С в течение 3-4 мес цев без утраты своей биологической активности.
П р и м е р 2. Количественное определение содержани  ЛПС в сыворотке крови больного.
В две пробирки внос т по 10 мкл сыворотки больного и по 20 мкл антисыворотки с разведением 1:32.
Через 10 мин инкубации при комнатной температуре добавл ют 40 мкл (60 нмолей липида) суспензии липосомального иммунореагента , дополнительно инкубируют 10 мин, после чего внос т 10 мкл триссолевого буфера, содержащего 5 мМ MgCfe и 1,5 мМ CaCl2 и 20 мкл комплемента, в качестве которого используют сыворотку крови морской свинки или кролика. Объем смеси довод т до ТОО мкл трис-солевым буфером. Параллельно став т контроли на неспецифический лизис липисом антисывороткой и исследуемой сывороткой больного в присутствии комплемента. Через 30 мин реакции останавливают 3 мл трис-солевого буфера. Флуоресценцию измер ют в кювете с длиной оптического пути 1 см или пробирке при длине волн эмиссии и возбуждени  493 и 520 нм соответственно.
Расчет величины иммунного лизиса
проводитс  по уравнению (1), при этом берутс  средние значени  двух параллельных измерений. По калибровочной кривой опре- дел ют содержание ОПС-антигена в мкг/мл, которое дл  трех образцов сывороток больных сальмонеллезом составило 0,7; 11,2; 29,5 мкг Л ПС/мл образца сыворотки крови больного.
В табл. 1 отражены результаты определени  интенсивности флуоресценции и расчет величины концентрации и процента иммунного лизиса дл  трех различных сывороток больных с различными содержани ми соматического 0-антигена Salmonella fyphlmurium в сыворотке крови.
П р и м е р 3. Повышение воспроизводимости и точности метода.
Липосомы приготовили, как указано в примере 1, определение антигена провод т,
как указано в примере 2. В табл. 2 приведены значени  доли иммунного лизиса и концентрации антигена, определенного с одной партией липосом в сыворотке крови больного, что отражает воспроизводимость
метода.
В табл. 3 приведены значени  определени  величин иммунного лизиса, соответствующего определенным концентраци м ЛПС-антигена в растворе. Дл  проведени 
анализа вз ты приготовленные каждый раз заново партии липосомального иммунореагента , что отражает воспроизводимость метода .
П р и м е р 4. Построение калибровочной кривой.
Дл  построени  калибровочной кривой готов т р д разведений стандартного раствора ЛЛС S. ityphlmurulm в трис-солевом
буфере. 10 мкл раствора ЛПС каждой концентрации смешивают с 20 мкл стандартной антисыворотки. Используют такое разведение антисыворотки, которое дает 90-60% от максимального иммунного лизиса. Определ ют иммунный лизис в тех же услови х, что ис образцами сыворотки больного. Став т также контроли: липосомы только с буферным раствором, липосомы только с антисывороткой , липосомы только с
комплементом. За 100% принимают величину иммунного лизиса липосом в отсутствие ЛПС. Диапазон измер емых концентраций от 0,5 до 200 мкл/ЛПС/мл исходного раствора . Стро т кривую зависимости величины иммунного лизиса от логарифма концентрации Л ПС в растворе.
Предложенный способ позвол ет в 2-3 раза повысить точность в сравнении с известным способом.
Изобретением может быть использовано в практике здравоохранени  дл  экспресс- диагностики инфекционных заболеваний и определени  т жести их протекани  контрол  загр знени  окружающей среды, в научно- исследовательской практике дл  изучени  динамики антигенемии при экспериментальном инфицировании животных.
Предложенный способ легко может быть автоматизирован, требует малого (10 мкл) количества исследуемой сыворотки.
0
5

Claims (1)

  1. Формула изобретени  Способ определени  липополисахарид- ных антигенов микроорганизмов в сыворотке крови, включающий встраивание антигена в мембрану липосом, включение маркера внутрь липосом, проведение реакции комплементозависимого лизиса с последующим определением антигена по выходу маркера, отличающ и и с   тем, что, с целью повышени  точности способа, липополисахариды перед встраиванием в липосомы обрабатывают 0.1 н.щелочью при нагревании до 95°С в течение 10 мин, в качестве маркера используют кальцеин, невключившийс  маркер отдел ют гельфильт- рацией, а выход маркера определ ют флюориметрически.
    Таблица 1
    Таблица 2
    Таблица 3
SU904777248A 1990-01-05 1990-01-05 Способ определени липополисахаридных антигенов микроорганизмов в сыворотке крови SU1720003A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU904777248A SU1720003A1 (ru) 1990-01-05 1990-01-05 Способ определени липополисахаридных антигенов микроорганизмов в сыворотке крови

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU904777248A SU1720003A1 (ru) 1990-01-05 1990-01-05 Способ определени липополисахаридных антигенов микроорганизмов в сыворотке крови

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1720003A1 true SU1720003A1 (ru) 1992-03-15

Family

ID=21488923

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU904777248A SU1720003A1 (ru) 1990-01-05 1990-01-05 Способ определени липополисахаридных антигенов микроорганизмов в сыворотке крови

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1720003A1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Власов П. С. и др. Журн. микробиологии и экспериментальной иммунологии, 1985, № 8. с. 81-91. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Schild et al. A single-radial-immunodiffusion technique for the assay of influenza haemagglutinin antigen: Proposals for an assay method for the haemagglutinin content of influenza vaccines
Brown et al. Safranin O-stained antigen microagglutination test for detection of Brucella antibodies
CN102841206B (zh) 肌钙蛋白T(Troponin-T,TNT)测定试剂盒
Mikac-Dević et al. A method for determination of free fatty acids in serum
RU2244933C2 (ru) Антигенная композиция и способ обнаружения присутствия treponema pallidum у человека
SU1720003A1 (ru) Способ определени липополисахаридных антигенов микроорганизмов в сыворотке крови
Sandhu Serum phospholipids determined without acid digestion.
US4211531A (en) Colorimetric cholesterol assay
EP0268773B1 (en) Novel method for determination of antistreptolysin o and a kit used therefor
CN106124768A (zh) 一种一步均相saa检测试剂盒及其制备和使用方法
RU2189253C1 (ru) Диагностикум для идентификации escherichia coli o157 : h7 и способ его получения
RU2203499C1 (ru) Способ постановки диагностической реакции при бруцеллезе
US20190331680A1 (en) Method for stabilizing glycerophospholipids and reagents using same
CN101451993B (zh) 抗Lp(a)抗体制备及检测Lp(a)的诊断试剂盒
US7081348B2 (en) Immunoassay of human medullasin and diagnosis of multiple sclerosis using the same
US4224306A (en) Preparation of an infectious mononucleosis antibody neutralizing antigen and product thereof
RU2203495C2 (ru) Способ липосомального иммуноанализа для детектирования аналитов в образце
US4139606A (en) Preparation of antigen and test for heterophil antibody
US4228148A (en) Heterophil antibody differentiation (HAD) test
Talafant et al. Turbidimetric determination of lipoprotein-X in serum
JP3106822B2 (ja) 補体価測定方法及びこれに用いる試薬
Umeda et al. Homogeneous liposome lysis assay for determination of anti-streptolysin O antibody titer in serum
RU2127884C1 (ru) Способ диагностики паротитно-вирусной инфекции
Kleyn et al. Spectrophotometric determination of phosphatase activity in milk utilizing a new alkaline phosphatase assay system
US5243074A (en) Immunoreagents