SU1701196A1 - Method for obtaining regenerated barley plants resistant to helminthosporiosis - Google Patents
Method for obtaining regenerated barley plants resistant to helminthosporiosis Download PDFInfo
- Publication number
- SU1701196A1 SU1701196A1 SU894767215A SU4767215A SU1701196A1 SU 1701196 A1 SU1701196 A1 SU 1701196A1 SU 894767215 A SU894767215 A SU 894767215A SU 4767215 A SU4767215 A SU 4767215A SU 1701196 A1 SU1701196 A1 SU 1701196A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- barley
- toxin
- fungus
- medium
- sativum
- Prior art date
Links
Landscapes
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к сельскохоз йственной биотехнологии и может быть использовано в селекционной практике при создании сортов злаковых культур, устойчивых к гельминтоспориоэу. Целью зобрете- ни вл етс повышение устойчивости растений-регенерантов к патогену. Способ состоит в том, что получают регенеранты из каллуса, выращиваемого на питательной среде Мурасиге-Скуга в присутствии селективного агента-токсина гриба H.Sativum. 3 табл.The invention relates to agricultural biotechnology and can be used in breeding practice in creating varieties of cereals resistant to gelmintosporioi. The aim of the invention is to increase the resistance of regenerated plants to the pathogen. The method consists in the fact that regenerants are obtained from callus grown on a nutrient medium Murashige-Skoog in the presence of the selective H.Sativum fungal toxin agent. 3 tab.
Description
слcl
сwith
Изобретение относитс к сельскохоз йственной биотехнологии и может быть использовано в селекционной практике при создании устойчивых к фитопатогенам грибов - возбудителей болезней сортов злаковых культур, в частности чмен .The invention relates to agricultural biotechnology and can be used in breeding practice for creating pathogen-resistant fungi that cause pathogens of varieties of cereals, in particular, barley.
Целью изобретени вл етс повышение устойчивости растений-регенерантов к патогену.The aim of the invention is to increase the resistance of regenerated plants to the pathogen.
Способ предусматривает выращивание каллусной ткани на среде Мурасиге и Скуга, содержащей селективный агент, с последующим получением регенерантов, при этом в качестве селективного агента используют токсин гриба Helmintosporlum satlvum.The method involves the cultivation of callus tissue on Murashige and Skoog medium containing a selective agent, followed by the preparation of regenerants, with the Helmintosporlum satlvum toxin fungus being used as a selective agent.
Способ осуществл етс следующим образом .The method is carried out as follows.
В качестве эксплантатов, которые высаживают на каллусогенную среду Мурасиге и Скуга в пробирки с различными концентраци ми простерилизоваиного при помощи бактериального фильтра токсинов гриба Н.satlvum, используют незрелые зародыши рового чмен сортов Добрый и Дина. Перед высадкой эксплантаты стерилизовали в 5% раствора хлорамина 15 мин. Эксплантаты внос т в среду № 1 с токсином гриба H.sativum следующего состава: Маточный раствор № 1, г: NH4N038,25As explants that are planted on Murashige and Skoog callusogenic medium in test tubes with different concentrations of sterilized with the help of a bacterial filter of the toxins of the fungus N. satlvum, unripe embryos are used in barley varieties Good and Dean. Before planting, the explants were sterilized in a 5% solution of chloramine for 15 minutes. The explants are introduced in medium No. 1 with the H.sativum fungus toxin of the following composition: Mother solution No. 1, g: NH4N038.25
КМОз9,5CMO9.5
MgS04 -7Н201,85MgS04-7H201.85
MnS04 -5Н200,12MnS04 -5H200,12
Zn4S04 -4Н200,043Zn4S04-4H200.043
CuSO4 -5H200,000125CuSO4 -5H200,000125
Довод т до 500 мл дистиллированной водой, откуда берут 100 мл. Маточный раствор Nfe 2, г: КН2ОР040,85Bring to 500 ml with distilled water, from where take 100 ml. The mother liquor Nfe 2, g: KN2OR040,85
НзВОз0,031NZVOZ0.031
4 О4 o
ЮYU
ОABOUT
KJ. 0,00415Kj. 0,00415
Na2Mo04 2H20 0,00125 (раствор ют отдельно в 10 мл подогретой НаО и берут 1 мл/л)Na2Mo04 2H20 0.00125 (dissolved separately in 10 ml of warmed NaO and take 1 ml / l)
бНаО 0,000125 (раствор ют отдельно в 100 мл, откуда берут 1 мл/л). bNaO 0.000125 (dissolved separately in 100 ml, from which 1 ml / l is taken).
Довод т до 500 мл дистиллированной водой и берут 100 мл. Витамины, г:Bring to 500 ml with distilled water and take 100 ml. Vitamins, g:
Глицин0,07Glycine0.07
Витамин Bi0,005Vitamin Bi0.005
Витамин Be0,005Vitamin Be0.005
Витамин РР0,005Vitamin PP0.005
Раствор ют в 100 мл дистиллированной H2U, откуда берут 10 мл.Dissolve in 100 ml of distilled H2U, from where 10 ml is taken.
2,4 Дихлорфенокеиуксусна кислота0,002 г2.4 Dichlorophenoxyacetic acid0.002 g
Хелат железа10 млIron chelate10 ml
Сахароза25 гSucrose 25g
Аг.ар7 гAg.Ar7 g
,332 г, 332 g
Все компоненты смешивают и довод т до объема 1 л дистиллированной водой.All components are mixed and made up to a volume of 1 liter with distilled water.
Образовавшийс каллус пересаживают на среду № 2 такого же состава, но без токсина. Затем культивирование выжившего каллуса ведут на органоченной среде № 3 следующего состава:The resulting callus is transplanted to medium No. 2 of the same composition, but without toxin. Then the cultivation of the surviving callus is carried out on an organic medium No. 3 of the following composition:
Раствор № 1100 млSolution number 1100 ml
Раствор № 2100 млSolution number 2100 ml
Хелат железа10млChelate iron10ml
Витамины10млVitamins 10ml
Гидролизат дрожжевой1,0 гYeast hydrolyzate1.0 g
CaCi20,332 гCaCi20,332 g
ИУК (индолилуксусна кислота )0,0005 г Кинетин0,01 г Гибереллова кислота 0,05 г Сахароза15 г Агар7 г и довод т до 1 л дистиллированной Н20.IAA (indole acetic acid) 0.0005 g Kinetin 0.01 g Hyperellic acid 0.05 g Sucrose 15 g Agar 7 g and made up to 1 liter of distilled H20.
Эксплантаты культивируют на ср едах № 1 и 2 при освещенности 5-6 тыс. лк, при Т 26°С и 16-часовом фотопериоде, а на среде № 3 при Т 15 + 17°С, освещенности 10-15 тыс; лк, при фотопериоде 16 ч в течение 25-30 дней на каждой среде.The explants are cultivated on Wed units 1 and 2 at illumination of 5-6 thousand lx, at T 26 ° C and a 16-hour photoperiod, and on medium No. 3 at T 15 + 17 ° C, illumination 10-15 thousand; lx, with a photoperiod of 16 h for 25-30 days on each medium.
Полученные регенеранты в фазе 2-3 листьев высаживают в горшки со стерильным песком, затем в почвосмесь: дернова земл - песок - торф 1:1:1 м устанавливают вThe resulting regenerants in the phase of 2-3 leaves are planted in pots with sterile sand, then in the soil mixture: sod soil - sand - peat 1: 1: 1 m set in
вегетационную камеру (Т 2-4°С) на 56-60 дней.growing chamber (T 2-4 ° C) for 56-60 days.
После ровизации и депонировани растений-регенерантов семена от них испытывают на устойчивость к гельминтоспори- озу.After rovization and deposition of regenerated plants, seeds from them are tested for resistance to helminthosporiosis.
П р и м е р 1. Выборку доз дл введени токсина в 1 каллусогенную селективную среду определ ют эмпирически. Дл этогоEXAMPLE 1 A dose selection for administering a toxin to 1 callusogenic selective medium is determined empirically. For this
первоначально устанавливают .процент ин- гибировани корней однодневных проростков сем н чмен токсином гриба (табл. 1). Исход из концентрации, котора инги- бирует не менее 30% роста центральногоinitially, the percentage of inhibition of the roots of one-day seedlings of seeds of the fungus toxin is established (Table 1). Based on a concentration that inhibits at least 30% of the growth of the central
корн , подбирают дозы дл введени в се--- лективную каллусогенную среду. Дозы подбирают эмперически примерно в 20-25 раз меньше найденной на проростках. Регене- рационна способность каллусов чмен приведена в табл. 2.root, select the dose for the introduction into the Cse --- selective callusogenic medium. Doses are selected emperically about 20-25 times less than that found in seedlings. The regeneration capacity of barley calluses is given in Table. 2
П р и м е р 2, Полученные из выживших на селективной среде с токсином гриба каллусов регенеранты после выращивани на инфекционном фоне дают урожайность по сравнению с контролем в 1,6 раза выше.PRI me R 2 Regenerants obtained from surviving on the selective medium with the toxin of the fungus calluses after growing on an infectious background give a yield 1.6 times higher compared to the control.
Использование предлагаемого способа получени растений-регенерантов чмен , устойчивых к токсину гриба H.sativum, обеспечивает по сравнению с известным способом следующие преимущества:The use of the proposed method for the production of barley-resistant plant regenerators of H.sativum fungus provides the following advantages in comparison with the known method:
применение в качестве селективного фактора токсина гриба более экономично, он не содержит сопутствующих примесей, воздействие которых на каллус про вл етс при использовании культурального фильтрата;the use of the toxin fungus as a selective factor is more economical, it does not contain associated impurities, the effect of which on the callus is manifested when using culture filtrate;
введение в питательную среду Мураси- га и Скуга определенных доз токсина гриба позвол ет вести отбор регенерантов из минимального количества выживших каллусов .the introduction of certain doses of the fungus toxin into the Murashiga and Skoog medium allows the selection of regenerants from the minimum number of surviving calli.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894767215A SU1701196A1 (en) | 1989-12-12 | 1989-12-12 | Method for obtaining regenerated barley plants resistant to helminthosporiosis |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894767215A SU1701196A1 (en) | 1989-12-12 | 1989-12-12 | Method for obtaining regenerated barley plants resistant to helminthosporiosis |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1701196A1 true SU1701196A1 (en) | 1991-12-30 |
Family
ID=21483690
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU894767215A SU1701196A1 (en) | 1989-12-12 | 1989-12-12 | Method for obtaining regenerated barley plants resistant to helminthosporiosis |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1701196A1 (en) |
-
1989
- 1989-12-12 SU SU894767215A patent/SU1701196A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Авторское свидетельство СССР Ns 1323046, кл. А 01 Н 1/04, 1984. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Lane | Regeneration of pear plants from shoot meristem-tips | |
CN110547200B (en) | Marigold pollen differentiation medium and differentiation culture method | |
EP0877546B1 (en) | Process for propagation of plant material | |
Romano et al. | Influence of growth regulators on shoot proliferation in Quercus suber L. | |
Logan et al. | Rapid in vitro propagation of virus-indexed gladioli | |
Van Ark et al. | Improvement of the tissue culture response of seed-derived callus cultures of Poa pratensis L.: Effect of gelling agent and abscisic acid | |
EP0525914B1 (en) | Synthetic seed | |
Pennazio et al. | Factors affecting the culture in vitro of potato meristem tips | |
RU2080780C1 (en) | Clonal plant micro propagation method | |
IKEMORI | Epicormic shoots from the branches of Eucalyptus grandis as an explant source for in vitro culture | |
Agnihotri et al. | In vitro cloning of female and male Carica papaya through tips of shoots and inflorescences | |
Theiler | In vitro culture of shoot tips of Pelargonium species | |
Hornung et al. | Somatic embryogenesis in coconut from immature inflorescence explants | |
SU1701196A1 (en) | Method for obtaining regenerated barley plants resistant to helminthosporiosis | |
SATO et al. | Tissue culture technology in the rapid clonal propagation of Japanese white birch | |
CN114698549A (en) | Tissue culture medium and tissue culture method for rapid propagation of grape rootstock stem | |
Kaur et al. | In vitro plantlet formation in Carrizo citrange: A promising citrus rootstock | |
KR100398749B1 (en) | Method for mass propagation of Wild Korean ginseng (Panax ginseng C.A.Meyer) by biotechnological technique | |
Chesick et al. | Jack pine (Pinus banksiana Lamb.) | |
Rodge et al. | Tissue Culture as a Plant Production Technique for Fruit Crops and Plant Part Used for Propagation | |
Amany et al. | In vitro propagation of jackfruit (Artocarpus heterophyllus L.) | |
SU1581741A1 (en) | Method of microclonal reproduction of aspen hybrides | |
CN110604053A (en) | In-vitro culture rapid propagation method of holly | |
SU1752284A1 (en) | Method of karelian birch hybrids clonal micromultiplication | |
KR100302206B1 (en) | In-flight mass production and forge transplanting method |