SU1701196A1 - Method for obtaining regenerated barley plants resistant to helminthosporiosis - Google Patents

Method for obtaining regenerated barley plants resistant to helminthosporiosis Download PDF

Info

Publication number
SU1701196A1
SU1701196A1 SU894767215A SU4767215A SU1701196A1 SU 1701196 A1 SU1701196 A1 SU 1701196A1 SU 894767215 A SU894767215 A SU 894767215A SU 4767215 A SU4767215 A SU 4767215A SU 1701196 A1 SU1701196 A1 SU 1701196A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
barley
toxin
fungus
medium
sativum
Prior art date
Application number
SU894767215A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Евгений Алексеевич Родин
Александр Александрович Ивановский
Нина Дмитриевна Лялькина
Ольга Наумовна Шуплецова
Original Assignee
Научно-Исследовательский Институт Сельского Хозяйства Северо-Востока Им.Рудницкого Н.В.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-Исследовательский Институт Сельского Хозяйства Северо-Востока Им.Рудницкого Н.В. filed Critical Научно-Исследовательский Институт Сельского Хозяйства Северо-Востока Им.Рудницкого Н.В.
Priority to SU894767215A priority Critical patent/SU1701196A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1701196A1 publication Critical patent/SU1701196A1/en

Links

Landscapes

  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к сельскохоз йственной биотехнологии и может быть использовано в селекционной практике при создании сортов злаковых культур, устойчивых к гельминтоспориоэу. Целью зобрете- ни   вл етс  повышение устойчивости растений-регенерантов к патогену. Способ состоит в том, что получают регенеранты из каллуса, выращиваемого на питательной среде Мурасиге-Скуга в присутствии селективного агента-токсина гриба H.Sativum. 3 табл.The invention relates to agricultural biotechnology and can be used in breeding practice in creating varieties of cereals resistant to gelmintosporioi. The aim of the invention is to increase the resistance of regenerated plants to the pathogen. The method consists in the fact that regenerants are obtained from callus grown on a nutrient medium Murashige-Skoog in the presence of the selective H.Sativum fungal toxin agent. 3 tab.

Description

слcl

сwith

Изобретение относитс  к сельскохоз йственной биотехнологии и может быть использовано в селекционной практике при создании устойчивых к фитопатогенам грибов - возбудителей болезней сортов злаковых культур, в частности  чмен .The invention relates to agricultural biotechnology and can be used in breeding practice for creating pathogen-resistant fungi that cause pathogens of varieties of cereals, in particular, barley.

Целью изобретени   вл етс  повышение устойчивости растений-регенерантов к патогену.The aim of the invention is to increase the resistance of regenerated plants to the pathogen.

Способ предусматривает выращивание каллусной ткани на среде Мурасиге и Скуга, содержащей селективный агент, с последующим получением регенерантов, при этом в качестве селективного агента используют токсин гриба Helmintosporlum satlvum.The method involves the cultivation of callus tissue on Murashige and Skoog medium containing a selective agent, followed by the preparation of regenerants, with the Helmintosporlum satlvum toxin fungus being used as a selective agent.

Способ осуществл етс  следующим образом .The method is carried out as follows.

В качестве эксплантатов, которые высаживают на каллусогенную среду Мурасиге и Скуга в пробирки с различными концентраци ми простерилизоваиного при помощи бактериального фильтра токсинов гриба Н.satlvum, используют незрелые зародыши  рового  чмен  сортов Добрый и Дина. Перед высадкой эксплантаты стерилизовали в 5% раствора хлорамина 15 мин. Эксплантаты внос т в среду № 1 с токсином гриба H.sativum следующего состава: Маточный раствор № 1, г: NH4N038,25As explants that are planted on Murashige and Skoog callusogenic medium in test tubes with different concentrations of sterilized with the help of a bacterial filter of the toxins of the fungus N. satlvum, unripe embryos are used in barley varieties Good and Dean. Before planting, the explants were sterilized in a 5% solution of chloramine for 15 minutes. The explants are introduced in medium No. 1 with the H.sativum fungus toxin of the following composition: Mother solution No. 1, g: NH4N038.25

КМОз9,5CMO9.5

MgS04 -7Н201,85MgS04-7H201.85

MnS04 -5Н200,12MnS04 -5H200,12

Zn4S04 -4Н200,043Zn4S04-4H200.043

CuSO4 -5H200,000125CuSO4 -5H200,000125

Довод т до 500 мл дистиллированной водой, откуда берут 100 мл. Маточный раствор Nfe 2, г: КН2ОР040,85Bring to 500 ml with distilled water, from where take 100 ml. The mother liquor Nfe 2, g: KN2OR040,85

НзВОз0,031NZVOZ0.031

4 О4 o

ЮYU

ОABOUT

KJ. 0,00415Kj. 0,00415

Na2Mo04 2H20 0,00125 (раствор ют отдельно в 10 мл подогретой НаО и берут 1 мл/л)Na2Mo04 2H20 0.00125 (dissolved separately in 10 ml of warmed NaO and take 1 ml / l)

бНаО 0,000125 (раствор ют отдельно в 100 мл, откуда берут 1 мл/л).  bNaO 0.000125 (dissolved separately in 100 ml, from which 1 ml / l is taken).

Довод т до 500 мл дистиллированной водой и берут 100 мл. Витамины, г:Bring to 500 ml with distilled water and take 100 ml. Vitamins, g:

Глицин0,07Glycine0.07

Витамин Bi0,005Vitamin Bi0.005

Витамин Be0,005Vitamin Be0.005

Витамин РР0,005Vitamin PP0.005

Раствор ют в 100 мл дистиллированной H2U, откуда берут 10 мл.Dissolve in 100 ml of distilled H2U, from where 10 ml is taken.

2,4 Дихлорфенокеиуксусна  кислота0,002 г2.4 Dichlorophenoxyacetic acid0.002 g

Хелат железа10 млIron chelate10 ml

Сахароза25 гSucrose 25g

Аг.ар7 гAg.Ar7 g

,332 г, 332 g

Все компоненты смешивают и довод т до объема 1 л дистиллированной водой.All components are mixed and made up to a volume of 1 liter with distilled water.

Образовавшийс  каллус пересаживают на среду № 2 такого же состава, но без токсина. Затем культивирование выжившего каллуса ведут на органоченной среде № 3 следующего состава:The resulting callus is transplanted to medium No. 2 of the same composition, but without toxin. Then the cultivation of the surviving callus is carried out on an organic medium No. 3 of the following composition:

Раствор № 1100 млSolution number 1100 ml

Раствор № 2100 млSolution number 2100 ml

Хелат железа10млChelate iron10ml

Витамины10млVitamins 10ml

Гидролизат дрожжевой1,0 гYeast hydrolyzate1.0 g

CaCi20,332 гCaCi20,332 g

ИУК (индолилуксусна  кислота )0,0005 г Кинетин0,01 г Гибереллова  кислота 0,05 г Сахароза15 г Агар7 г и довод т до 1 л дистиллированной Н20.IAA (indole acetic acid) 0.0005 g Kinetin 0.01 g Hyperellic acid 0.05 g Sucrose 15 g Agar 7 g and made up to 1 liter of distilled H20.

Эксплантаты культивируют на ср едах № 1 и 2 при освещенности 5-6 тыс. лк, при Т 26°С и 16-часовом фотопериоде, а на среде № 3 при Т 15 + 17°С, освещенности 10-15 тыс; лк, при фотопериоде 16 ч в течение 25-30 дней на каждой среде.The explants are cultivated on Wed units 1 and 2 at illumination of 5-6 thousand lx, at T 26 ° C and a 16-hour photoperiod, and on medium No. 3 at T 15 + 17 ° C, illumination 10-15 thousand; lx, with a photoperiod of 16 h for 25-30 days on each medium.

Полученные регенеранты в фазе 2-3 листьев высаживают в горшки со стерильным песком, затем в почвосмесь: дернова  земл  - песок - торф 1:1:1 м устанавливают вThe resulting regenerants in the phase of 2-3 leaves are planted in pots with sterile sand, then in the soil mixture: sod soil - sand - peat 1: 1: 1 m set in

вегетационную камеру (Т 2-4°С) на 56-60 дней.growing chamber (T 2-4 ° C) for 56-60 days.

После  ровизации и депонировани  растений-регенерантов семена от них испытывают на устойчивость к гельминтоспори- озу.After rovization and deposition of regenerated plants, seeds from them are tested for resistance to helminthosporiosis.

П р и м е р 1. Выборку доз дл  введени  токсина в 1 каллусогенную селективную среду определ ют эмпирически. Дл  этогоEXAMPLE 1 A dose selection for administering a toxin to 1 callusogenic selective medium is determined empirically. For this

первоначально устанавливают .процент ин- гибировани  корней однодневных проростков сем н  чмен  токсином гриба (табл. 1). Исход  из концентрации, котора  инги- бирует не менее 30% роста центральногоinitially, the percentage of inhibition of the roots of one-day seedlings of seeds of the fungus toxin is established (Table 1). Based on a concentration that inhibits at least 30% of the growth of the central

корн , подбирают дозы дл  введени  в се--- лективную каллусогенную среду. Дозы подбирают эмперически примерно в 20-25 раз меньше найденной на проростках. Регене- рационна  способность каллусов  чмен  приведена в табл. 2.root, select the dose for the introduction into the Cse --- selective callusogenic medium. Doses are selected emperically about 20-25 times less than that found in seedlings. The regeneration capacity of barley calluses is given in Table. 2

П р и м е р 2, Полученные из выживших на селективной среде с токсином гриба каллусов регенеранты после выращивани  на инфекционном фоне дают урожайность по сравнению с контролем в 1,6 раза выше.PRI me R 2 Regenerants obtained from surviving on the selective medium with the toxin of the fungus calluses after growing on an infectious background give a yield 1.6 times higher compared to the control.

Использование предлагаемого способа получени  растений-регенерантов  чмен , устойчивых к токсину гриба H.sativum, обеспечивает по сравнению с известным способом следующие преимущества:The use of the proposed method for the production of barley-resistant plant regenerators of H.sativum fungus provides the following advantages in comparison with the known method:

применение в качестве селективного фактора токсина гриба более экономично, он не содержит сопутствующих примесей, воздействие которых на каллус про вл етс  при использовании культурального фильтрата;the use of the toxin fungus as a selective factor is more economical, it does not contain associated impurities, the effect of which on the callus is manifested when using culture filtrate;

введение в питательную среду Мураси- га и Скуга определенных доз токсина гриба позвол ет вести отбор регенерантов из минимального количества выживших каллусов .the introduction of certain doses of the fungus toxin into the Murashiga and Skoog medium allows the selection of regenerants from the minimum number of surviving calli.

Claims (1)

Формула изобретени  Способ получени  растений-регенерантов  чмен , устойчивых к гельминтоспорио- зу, включающий выращивание каллуснойThe invention of the method for producing regenerated barley-resistant plants for helminthosporioses, including the cultivation of callus ткани на среде Мурасиге-Скуга в присутствии селективного агента с последующим получением регенерантов, отличающийс  тем, что, с целью повышени  устойчивости растений-регенерантов к патогену, вtissue on the Murashige-Skoog medium in the presence of a selective agent with the subsequent production of regenerants, characterized in that, in order to increase the resistance of the regenerating plants to the pathogen, качестве селективного агента используют токсин гриба Helmintosporium sativum.Helmintosporium sativum toxin is used as a selective agent. Таблица 1Table 1 Воздействи  фитотоксинов гриба H.sativum на длину корней однодневных проростков  чмен The effect of phytotoxins of the fungus H.sativum on the length of the roots of one-day seedlings barley Таблица 2 Регенерацйонна  способность сортообразцов  чмен  на селективной среде с токсиномTable 2 Regenerative ability of barley samples on selective medium with toxin Таблица 3Table 3 Показатели продуктивности при выращивании на инфекционном фоне сем н, полученных от устойчивых к фитотоксинам гриба Н, sattvum растений-регенерантовProductivity indicators when grown on an infectious background of seeds obtained from the phytotoxin-resistant fungus H, sattvum regenerated plants
SU894767215A 1989-12-12 1989-12-12 Method for obtaining regenerated barley plants resistant to helminthosporiosis SU1701196A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894767215A SU1701196A1 (en) 1989-12-12 1989-12-12 Method for obtaining regenerated barley plants resistant to helminthosporiosis

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894767215A SU1701196A1 (en) 1989-12-12 1989-12-12 Method for obtaining regenerated barley plants resistant to helminthosporiosis

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1701196A1 true SU1701196A1 (en) 1991-12-30

Family

ID=21483690

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU894767215A SU1701196A1 (en) 1989-12-12 1989-12-12 Method for obtaining regenerated barley plants resistant to helminthosporiosis

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1701196A1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Авторское свидетельство СССР Ns 1323046, кл. А 01 Н 1/04, 1984. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Lane Regeneration of pear plants from shoot meristem-tips
CN110547200B (en) Marigold pollen differentiation medium and differentiation culture method
EP0877546B1 (en) Process for propagation of plant material
Romano et al. Influence of growth regulators on shoot proliferation in Quercus suber L.
Logan et al. Rapid in vitro propagation of virus-indexed gladioli
Van Ark et al. Improvement of the tissue culture response of seed-derived callus cultures of Poa pratensis L.: Effect of gelling agent and abscisic acid
EP0525914B1 (en) Synthetic seed
Pennazio et al. Factors affecting the culture in vitro of potato meristem tips
RU2080780C1 (en) Clonal plant micro propagation method
IKEMORI Epicormic shoots from the branches of Eucalyptus grandis as an explant source for in vitro culture
Agnihotri et al. In vitro cloning of female and male Carica papaya through tips of shoots and inflorescences
Theiler In vitro culture of shoot tips of Pelargonium species
Hornung et al. Somatic embryogenesis in coconut from immature inflorescence explants
SU1701196A1 (en) Method for obtaining regenerated barley plants resistant to helminthosporiosis
SATO et al. Tissue culture technology in the rapid clonal propagation of Japanese white birch
CN114698549A (en) Tissue culture medium and tissue culture method for rapid propagation of grape rootstock stem
Kaur et al. In vitro plantlet formation in Carrizo citrange: A promising citrus rootstock
KR100398749B1 (en) Method for mass propagation of Wild Korean ginseng (Panax ginseng C.A.Meyer) by biotechnological technique
Chesick et al. Jack pine (Pinus banksiana Lamb.)
Rodge et al. Tissue Culture as a Plant Production Technique for Fruit Crops and Plant Part Used for Propagation
Amany et al. In vitro propagation of jackfruit (Artocarpus heterophyllus L.)
SU1581741A1 (en) Method of microclonal reproduction of aspen hybrides
CN110604053A (en) In-vitro culture rapid propagation method of holly
SU1752284A1 (en) Method of karelian birch hybrids clonal micromultiplication
KR100302206B1 (en) In-flight mass production and forge transplanting method