SU1659851A1 - Method for determination of membrane-toxic action of chemicals - Google Patents

Method for determination of membrane-toxic action of chemicals Download PDF

Info

Publication number
SU1659851A1
SU1659851A1 SU894635372A SU4635372A SU1659851A1 SU 1659851 A1 SU1659851 A1 SU 1659851A1 SU 894635372 A SU894635372 A SU 894635372A SU 4635372 A SU4635372 A SU 4635372A SU 1659851 A1 SU1659851 A1 SU 1659851A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
membrane
chemicals
determination
supernatant
luciferase
Prior art date
Application number
SU894635372A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Анатолий Васильевич Светлаков
Ирина Юрьевна Виделец
Валерий Васильевич Иванов
Александр Николаевич Шендеров
Original Assignee
Красноярский государственный университет
Красноярский государственный медицинский институт
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Красноярский государственный университет, Красноярский государственный медицинский институт filed Critical Красноярский государственный университет
Priority to SU894635372A priority Critical patent/SU1659851A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1659851A1 publication Critical patent/SU1659851A1/en

Links

Abstract

Изобретение относитс  к медицине, медицинской и микробиологической промышленности , экологии, а именно к методам исследовани  и количественной оценки потенциальной опасности химических веществ , и может быть использовано в токсикологии дл  установлени  предельной концентрации мембранотоксического действи  химических соединений, в промышленной гигиене дл  определени  предельно допустимого уровн  токсических веществ в окру- жающей среде. Цель изобретени  заключаетс  в ускорении способа определени  мембранотоксического действи  химических веществ. Сущность изобретени  состоит в том, что клетки люминесцентных бактерий инкубируют с исследуемым веществом , центрифугируют и мембранотоксич- ность соединени  определ ют по по влению в супернатанте маркерного белка , люциферазы, определ   ее активность. Скорость определени  мембранотоксично- го действи  веществ возрастает в 9 раз по сравнению с прототипом. 2 табл. сл сThe invention relates to medicine, medical and microbiological industries, ecology, and specifically to research methods and quantitative assessment of the potential hazard of chemicals, and can be used in toxicology to determine the maximum concentration of the membrane-toxic effect of chemical compounds in industrial hygiene to determine the maximum permissible level of toxic substances. in the environment. The purpose of the invention is to accelerate the method for determining the membrane-toxic effect of chemicals. The essence of the invention is that cells of luminescent bacteria are incubated with the test substance, centrifuged, and the membrane-toxicity of the compound is determined by the appearance of the marker protein, luciferase, in the supernatant, and its activity is determined. The rate of determination of the membrantotoxic effect of substances increases 9-fold compared with the prototype. 2 tab. cl

Description

Изобретение относитс  к медицине, медицинской и микробиологической промышленности , экологии, а именно к методам исследовани  и количественной оценки потенциальной опасности химических веществ , может быть использовано в токсикологии дл  установлени  предельной концентрации мембранотоксического действи  химических соединений, в промышленной гигиене дл  определени  предельно допустимого уровн  токсических веществ в окружающей среде.The invention relates to medicine, medical and microbiological industries, ecology, and specifically to research methods and quantitative assessment of the potential hazard of chemicals, can be used in toxicology to determine the maximum concentration of the membrane-toxic effect of chemical compounds, in industrial hygiene to determine the maximum permissible level of toxic substances in environment.

Цель изобретени  - ускорение способа.The purpose of the invention is the acceleration of the method.

Способ осуществл ют следующим образом .The method is carried out as follows.

К суспензии клеток ph.Leiognathf добавл ют исследуемое на токсичность химическое вещество, инкубируют и центрируют. Супернатант анализируют на содержание люциферазы. Дл  этого в кювету люмино- метра внос т 0,1 мл супернатанта и добав-. л ют 0,02 мл 0,01%-ного спиртового раствора миристинового альдегида. Кювету помещают в люминометр. Запуск реакции производ т впрыскиванием 0,5 мл 0,05 мМ восстановленного флавинмононуклеотида. Максимум световой вспышки регистрируют самописцем или цифровым прибором и выражают в микроамперах. Степень мембранотоксического действи  химических веществ определ ют по величине активности люциферазы в супернатанте.To a suspension of ph.Leiognathf cells, a chemical test substance is added, incubated and centered. The supernatant is analyzed for luciferase content. For this purpose, 0.1 ml of the supernatant is added to the cuvette of the luminometer and added. 0.02 ml of a 0.01% alcohol solution of myristic aldehyde. The cuvette is placed in a luminometer. The reaction was started by injecting 0.5 ml of 0.05 mM reduced flavin mononucleotide. The maximum light flash recorded by a recorder or digital device and expressed in microamperes. The degree of the membrane-toxic effect of chemicals is determined by the magnitude of the luciferase activity in the supernatant.

П р и м е р 1. Суспензию культуры ph.Lelognathl разливают в р д пробирок поEXAMPLE 1: A culture suspension of ph. Lelognathl is poured into a series of test tubes according to

OsOs

ел чate h

0000

елate

1мл и приливают по 10 мкл бутил мета кри- лата в конечных концентраци х 0,5; 1.0; 2; 4; 8; 16; 32 мМ. В качестве контрол  используют 10 мкл растворител , на котором приготовлен раствор исследуемого химического вещества. Приготовленную таким образом смесь инкубируют 5 мин при 2б°С. После инкубации неразрушенные клетки и клеточные обмотки осаждают центрифугированием . 0,1 мл надосадочной жидкости анализируют на содержание вышедшего из клеток люминесцентных бактерий фермента люциферазы по люминесцентной реакции in vitro.1 ml and poured 10 µl butyl methane acetate in final concentrations of 0.5; 1.0; 2; four; eight; sixteen; 32 mM As a control, use 10 μl of the solvent, on which a solution of the studied chemical was prepared. The mixture thus prepared is incubated for 5 min at 2b ° C. After incubation, intact cells and cell windings are precipitated by centrifugation. 0.1 ml of the supernatant is analyzed for the content of luciferase enzyme released from the cells of luminescent bacteria by the luminescent reaction in vitro.

Количество вышедшей люциферазы при действии бутилметакрилата в дозе 1 мМ было минимально (0,23 усл.ед. ± 0,03) и значительно не отличалось от контрол . При дозеThe amount of released luciferase under the action of butyl methacrylate at a dose of 1 mM was minimal (0.23 used units ± 0.03) and was not significantly different from the control. At dose

2мМ количество люциферазы составило 1,05 ± 0,08 усл.ед., что достоверно отличалось от контрол  (Р 0,01). Полученные данные говор т, что порог мембранотокси- ческого действи  бутилметакрилата равен 2 мМ.2 mM amount of luciferase was 1.05 ± 0.08 used, which was significantly different from the control (P 0.01). The data obtained indicate that the threshold of the membrane-toxic effect of butyl methacrylate is 2 mM.

. П о и м е о 2. Определение 50% мембра- нолитической дозы (ЕДэо). Суспензию культуры ph.Lelognathi разливают в дубл х в р д пробирок по 1 мл. В обе пробирки дубл  приливают по 10 мкл определенной концентрации ксенобиотика. В данном случае это спиртовый раствор бутилакрилата в конечных концентраци х 4; 8; 16; 32; 64 мМ. В качестве первого контрол  полного лизиса клеток к 1 мл культуры бактерий приливают мембранотропный антибиотик, не действующий на люминесцентную систему, пол- имиксин, в конечной концентрации 100 ед/мл. Вторым контролем на исследование тушени  люминесценции непосредственно тестируемыми концентраци ми ксенобиотика служат дублирующие пробирки с ксенобиотиком и культурой офотобактерий, в которые добавл ют полимиксин в конечной концентрации 100 ед/мл. Контрольные и опытные пробы инкубируют 5 мин при 28°С, центрифугированием осаждают клетки и клеточные обломки и 0,1 мл. надосадочной жидкости исследуют на содержание люциферазы по люминесцентной реакции in vitro.. Example 2. Determination of 50% of the membrane-lymphatic dose (EDEo). The culture suspension of ph.Lelognathi is poured into duplicates in a series of 1 ml tubes. Double tubes are poured into both tubes at a rate of 10 μl of a specific concentration of xenobiotic. In this case, it is an alcohol solution of butyl acrylate in final concentrations of 4; eight; sixteen; 32; 64 mM As a first control of complete cell lysis, a membranotropic antibiotic that does not act on the luminescent system, polimixin, is poured at a final concentration of 100 units / ml to 1 ml of bacterial culture. The second control for the study of luminescence quenching directly tested concentrations of xenobiotics are duplicate tubes with xenobiotics and the culture of phototobacteria, to which polymyxin is added at a final concentration of 100 units / ml. Control and experimental samples are incubated for 5 min at 28 ° C, and cells and cell debris and 0.1 ml are precipitated by centrifugation. supernatants are examined for luciferase content by an in vitro luminescent reaction.

Результаты исследовани  50% мембра- нолитической дозы дл  бутилакрилата представлены в табл.1.The results of a study of 50% of the membranolytic dose for butyl acrylate are presented in Table 1.

По полученным результатам исследовани  вычисление истинных значений количества вышедшей из клеток люциферазы, т.е. с учетом ингибировани  люминесцентнойAccording to the results of the study, the calculation of the true values of the amount of luciferase released from the cells, i.e. considering inhibition of luminescent

системы непосредственно ксенобиотиком, провод т следующим образом. Свечение опытных проб умножают на коэффициент ингибировани , равный отношению контроль 1/контроль 2. Дл  бутилакрилата вычисл ют определенные значени . Из вычисленных значений рассчитывают 50% мембранолитическую дозу (ЕД ). Вычисленна  ЁДво дл  бутилакрилата 7,4 мм (табл.2).systems directly xenobiotic, conducted as follows. The luminescence of the test samples is multiplied by an inhibition ratio equal to the ratio of control 1 / control 2. Certain values are calculated for butyl acrylate. From the calculated values, 50% of the membranolytic dose (ED) is calculated. The calculated dose for butyl acrylate is 7.4 mm (Table 2).

Определенное значение ЕДэо дл  бутилакрилата по прототипу составило 12 мМ.The specific EDU value for the prototype butyl acrylate was 12 mM.

ПримерЗ. При сравнении времени экспозиции фотобактерий с бутилакрила- том в концентрации 7,4 мМ со временемExample When comparing the exposure time of photobacteria with butyl acrylate at a concentration of 7.4 mM with time

экспозиции эритроцитов с тем же веществом в концентрации 12 мМ установлено, что в первом случае максимальный эффект достигаетс  за 5 мин, тогда как во втором максимальный выход гемоглобина из эритроцитов достигаетс  за 45 мин.exposure of erythrocytes with the same substance at a concentration of 12 mM found that in the first case, the maximum effect is achieved in 5 minutes, while in the second, the maximum output of hemoglobin from red blood cells is reached in 45 minutes.

Таким образом врем  определени  мембранотоксического действи  химических веществ значительно сокращаетс .Thus, the time to determine the membrane-toxic effect of chemicals is significantly reduced.

Claims (1)

Формула изобретени Invention Formula Способ определени  мембранотоксического действи  химических веществ, включающий инкубацию индикаторных клеток с исследуемыми химическими веществами,The method of determining the membrane-toxic effect of chemicals, including the incubation of indicator cells with the chemical substances under investigation, центрифугирование и определение количества освободившегос  внутриклеточного содержимого по по влению в супернатанте маркерного белка, отличающийс  тем, что, с целью ускорени  способа, индикаторными клетками служат люминесцентные бактерии, а в качестве маркерного белка используют люциферазу и определ ют ее активность в супернатанте.centrifuging and quantifying the released intracellular contents of the appearance of a marker protein in the supernatant, characterized in that, in order to speed up the method, luminescent bacteria serve as indicator cells, and luciferase is used as a marker protein and its activity is determined in the supernatant. Таблица 1Table 1 Таблица 2table 2
SU894635372A 1989-01-12 1989-01-12 Method for determination of membrane-toxic action of chemicals SU1659851A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894635372A SU1659851A1 (en) 1989-01-12 1989-01-12 Method for determination of membrane-toxic action of chemicals

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894635372A SU1659851A1 (en) 1989-01-12 1989-01-12 Method for determination of membrane-toxic action of chemicals

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1659851A1 true SU1659851A1 (en) 1991-06-30

Family

ID=21421851

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU894635372A SU1659851A1 (en) 1989-01-12 1989-01-12 Method for determination of membrane-toxic action of chemicals

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1659851A1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106546579A (en) * 2016-10-28 2017-03-29 华南理工大学 A kind of organic solvent improves the method that photobacteria detects toxicant susceptibility

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Jasuhara Hetal. Toxicol. Appl. Pharmacol. 1985, V.79. № 3, p.453-460. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106546579A (en) * 2016-10-28 2017-03-29 华南理工大学 A kind of organic solvent improves the method that photobacteria detects toxicant susceptibility

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP1049798B1 (en) Antibiotic sensitivity testing
US3971703A (en) Method of detecting and counting bacteria
JP2002500892A5 (en)
GB1463133A (en) Test composition device and method for the determination of cholesterol
US20060292662A1 (en) Galleria mellonella derived composition for detecting peptidoglycan, a method for use thereof, and a diagnostic kit containing the same
JPH07114715B2 (en) Bioassay for toxic substances
NZ268405A (en) Atp-adp chemiluminescent testing for microorganisms including a source of a magnesium ion
US4132599A (en) Determination of antimicrobial susceptibilities on infected urines without isolation
CA1339059C (en) Bioassay for chemicals which generate prooxidant states
Smith et al. The determination of haptoglobins in normal human serum
SU1659851A1 (en) Method for determination of membrane-toxic action of chemicals
US2967132A (en) Process of using bacterial spores as indicator system for determination of antibacterial activity
US20080113401A1 (en) Cell-Based Assay for the Detection of Toxic Analytes
Beutler et al. Incidence of the erythrocytic defect associated with drug-sensitivity among oriental subjects
US3575812A (en) Method for the detection of virus
JPS61141898A (en) Bacteria identification kit and method for detecting novel biomolecule synthesis inhibiting factor
EP0138938A1 (en) Method and device for detecting microorganisms
Heilbronn An electrometric method for the determination of cholinesterase activity
KR100592693B1 (en) Antibiotic sensitivity testing and a test kit
WO1995014105A2 (en) Antibiotic sensitivity profile
Kind Stable test-papers for seminal acid phosphatase
JPH09502605A (en) Cell reagents and assays
US3637655A (en) Method for extracting water-soluble substances from biological materials
IE55289B1 (en) Composition and method for detecting antistreptolysin o
RU2008680C1 (en) Method of assay of substance biological activity