SU1642499A1 - Способ моделировани инфекционного процесса после трансплантации - Google Patents
Способ моделировани инфекционного процесса после трансплантации Download PDFInfo
- Publication number
- SU1642499A1 SU1642499A1 SU884472161A SU4472161A SU1642499A1 SU 1642499 A1 SU1642499 A1 SU 1642499A1 SU 884472161 A SU884472161 A SU 884472161A SU 4472161 A SU4472161 A SU 4472161A SU 1642499 A1 SU1642499 A1 SU 1642499A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- prosthesis
- aorta
- graft
- infectious process
- transplantation
- Prior art date
Links
Landscapes
- Materials For Medical Uses (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к медицине, а именно к хирургии и трансплантологии. Цель - повышение воспроизводимости способа . Бактериальный агент ввод т непосредственно в трансплантат в степени 10 -107 клеток и через 2-3 ч трансплантируют сосудистый трансплантат экспериментальному животному Применение способа позвол ет повысить воспроизводимость модели инфекционного процесса в сосудистом трансплантате 30% по сравнению с прототипом .
Description
Изобретение относитс к медицине, а именно к хирургии и трансплантологии
Цель изобретени - повышение воспроизводимости способа.
Способ осуществл ют следующим образом .
За сутки до операции суточную патогенную культуру золотистого стафилококка (штамм 489) суспендируют в 5 мл физиологического раствора, инкубируют при 37°С в течение 3 ч на шутеле.
Выбор штамма 489 условен, так как может быть использован и любой другой другой штамм с высокой степенью патогенности. Однако на прот жении всех этапов экспериметальных исследований необходимо использовать определенный штамм дл чистоты эксперимента.
После инкубации центрифугируют в течение 10 мин при 7000 об/мин, затем на- досадочную жидкость сливают, осадок ре- суспендируют в 5 мл стерильного физиологического раствора и вновь центрифугируют
10 мин при 7000 об/мин дл получени высокой концентрации. Степень мутности со1 ставл ет 10П клеток (по стандарту мутности).
В пробирку с 5 мл данной культуры помещают синтетический сосудистый гофрированный протез длиной 3 см и инкубируют его в течение суток при 4°С (в холодильни-. ке). Диаметр трансплантата подбирают в соответствии с диаметром аорты экспериментального животного (0,6-1 см).
За 2-3 ч до операции п ротез перемещают в стерильную чашку Петри до полного высыхани при комнатной температуре.
Операцию провод т в услови х стерильной операционной под интубационным наркозом после премедикации дроперидолом и калипсолом, инъецированными внутримышечно в одном шприце за 30 мин до операции , дл интубации используют 2%-ный раствор гексенала, разведенный 50 мл физиологического раствора, который инъецируют внутривенно струйно через катетер в периферическую вену передней лапы под
О
го
Ч)
ч
контролем роговичного рефлекса. После интубации наркоз поддерживают внутривенным капельным введением фентанила по 2 г через 20-30 мин на физиологическом растворе (200 мл).
После обработки операционного пол иодом производ т разрез по средней линии живота, вскрытие брюшной полости и обкладывание ее пеленками, выдел ют брюшную аорту после рассечени париентальной брюшины, аорту пережимают на двух зажимах , наложенных ниже почечных артерий и выше бифуркации аорты. После пересечени аорты производ т ее протезирование синтетическим гофрированным протезом (длина 3 см. диаметр соответствует диамет- ру аорты), поскольку протез был заранее инфицирован патогенной культурой, производ т отграничение свободной брюшной полости и забрюшинной клетчатки стерильными пеленками дл предотвращени распространени бактериального агента. После окончани протезировани снимают дистальный, а затем проксимальный зажимы с аорты и восстанавливают кровоток. После тщательного гемостаза ушивают брюшину непрерывным кетгутовым швом. Рану передней брюшной стенки наглухо ушивают послойно шелковыми швами.
П р и м е р 1. Беспородна собака мужского пола весом 16 кг.
За сутки до операции суточную патогенную культуру золотистого стафилококка (штамм 489) суспендировали в 5 мл физиологического раствора, инкубировали при 37°С в течение 3 ч в шутеле. Затем центрифугировали в течение 10 мин при 7000 об/мин надосадочную жидкость сливали, осадок ре- суспендировали в 5 мл стерильного физиологического раствора и вновь центрифугировали 10 мин при 7000 об./мин, дл получени высокой концентрации. Степень мутности в данном случае составила 106 клеток (по стандарту мутности).
В пробирку с 5 мл данной культуры помещали синтетический сосудистый гофрированный протез длиной 3 см и диаметром 1 см и инкубировали его в течение суток при 4°С {в холодильнике).
После инкубации протез перемещали в стерильную чашку Петри и после полного высыхани его через 2 ч начинали операцию .
Операцию проводили в услови х стерильной операционной под интубационным наркозом, за 30 мин до операции произвели премедикацию дроперидолом и калипсо- лом по 3 г, инъецированными внутримышечно в одном шприце. Дл полного расслаблени дыхательной мускулатуры в
момент интубации использовали 2%-ный раствор гексенала, разведенный 50 мл физиологического раствора, которым инъецировали внутривенно струйно через катетер в периферическую вену передней лапы под контролем роговичного рефлекса. После интубации наркоз поддерживали внутривенным капельным введением фентанила по 2 г через 20-30 мин (в зависимости от рого- 0 вичного рефлекса) на 200 мл физиологического раствора.
После интубации и подключени инту- бационной трубки к аппарату искусственной вентил ции легких брили переднюю 5 брюшную стенку лежащего на спине и фиксированного за лапы животного. Операционное поле на всем прот жении передней брюшной стенки обрабатывали йодом, затем производили разрез по средней линии 0 живота на прот жении 25 см, вскрывали брюшную полость и обкладывали ее пеленками . После рассечени париентальной брюшины выдел ли брюшную аорту (инф- раренальный отдел). Аорту пережимали на 5 двух зажимах, наложенных ниже почечных артерий (на 0,5 см) и выше бифуркации аорты на 1 см, после пересечени аорты производили ее протезирование синтетическим гофрированным протезом длиной 3 см. за- 0 ранее инфицированным золотистым стафилококком со степенью 10 клеток. Диаметры аорты и протеза одинаковы - 1 см. До протезировани аорты и начала манипулировани а брюшной полости инфицированным 5 протезом обкладывали стерильными пеленками свободную брюшную полость и забрю- шинную клетчатку, отграничив их тем самым от возможного инфицировани во врем операции. После окончани протезирова- 0 ни снимали дистальный, а затем проксимальный зажимы и восстанавливали кровоток. Врем пережати аорты составило 24 мин, кровопотер - около 60 мл. После тщательного гемостаза протез реперитони- 5 зировали, ушив брюшину непрерывным кетгутовым швом. Рану передней брюшной стенки ушили послойно наглухо шелковыми швами. Пробуждение собаки от наркоза наступило через 1 ч 40 мин. 0 Достоверность инфицировани трансплантата в зоне протезировани аорты была подтверждена сцинтиграфией с 99М Тс-лей- коцитами через 2 ч после операции (после полного пробуждени животного). При 5 сцинтиграфии протез четко визуализировалс на персистеноскопе гамма-камеры, что свидетельствовало о миграции в зону протезировани меченых лейкоцитов, а значит , наличии в этой зоне инфекции. Контрольна сцинтиграфи через 8 сут после
операции также подтвердила наличие инфекционного процесса в зоне протеза, так как инфицированный трансплантат четко визуализировалс . Кроме того, полученные результаты подтверждены при аутопсии, проведенной на 11-е сутки после операции (в день смерти собаки). На аутопсии обнаружено около 900 мл крови в брюшной полости вследствие прорезывани двух швов проксимального анастомоза и аррозионно- го кровотечени , что безусловно вилось результатом развити в зоне реконструкции аорты инфекционного процесса. Кроме того , бактериологическое исследование резецированного во врем аутопсии протеза идентифицировало рост патогенной культуре золотистого стафилококка (штамм 489), что свидетельствует о прогрессировании инфекционного процесса и достоверно подтверждает практическую значимость воспроизведенной модели инфицированного трансплантата.
П р и м е р 2. Беспородна собака женского пола массой 15,5 кг.
За сутки до операции суточную патогенную культуру золотистого стафилококка (штамм 489) суспендировали в 5 мл физиологического раствора, инкубировали при 37°С в течение 3 ч на шут еле. Затем центрифугировали в течение 10 мин при 7000 об/мин. На- досадочную жидкость сливалич осадок ресус- пендировали 5 мл стерильного раствора и вновь центрифугировали 10 мин при 7000 об./мин. дл получени высокой концентрации . Степень мутности в данном случае составила 10 клеток (по стандарту мутности).
В пробирку сданной культурой помещали синтетический сосудистый гофрированный протез длиной 3 см, диаметром 0,9 см и инкубировали его в течение суток при 4°С (в холодильнике).
После инкубации протез перемещали в стерильную чашку Петри и после полного высыхани его через 3 ч начали операцию.
Операцию производили в стерильных услови х (как и во всех случа х) под интуба- ционным наркозом, за 30 мин до операции производили премедикацию дропередолом и калипсолом по 3 г, инъецированными внутримышечно в одном шприце. Дл полного расслаблени дыхательной мускулатуры в момент интубации использовали 2%-ный раствор гексенала, разведенный 50 мл физиологического раствора, который инъецировали внутривенно струйно через катетер в периферическую вену передней лапы под контролем роговичного рефлекса. После интубации наркоз поддерживали внутривенным, капельным введением фентанила по 2 г через 20-30 мин (в зависимости от роговичного рефлекса) на 200 мл физиологического раствора.
Укладывали собаку на операционный 5 стол на спину и фиксировали к столу выт нутые лапы. Подключали к аппарату искусственнойвентил циилегких интубационную трубку. Брили переднюю брюшную стенку, а затем обрабатывали
0 йодом ее на всем прот жении. После обработки операционного пол производили разрез по средней линии живота на прот жении 25 см, вскрывали брюшную полость и обкладывали ее пеленками. После рассе5 чени париетальной брюшины выдел ли брюшную аорту (инфраренальный отдел). После выделени аорты обкладывали свободную брюшную полость, а также забрю- шинную область пеленками, отграничив от
0 попадани инфекции. Аорту пережимали на двух зажимах, наложенных ниже почечных артерий (на 0,5 см) и выше бифуркации аорты на 1 см. После пересечени аорты производили ее протезирование синтетическим
5 гофрированным протезом длиной 3 см, диаметром 0,9 см (как и аорта), заранее инфиг цированным золотистым стафиликокком (штамм 489) со степенью 10 клеток, после окончани протезировани снимали дис0 тальный, а затем проксимальный зажимы и восстанавливали кровообращение. Врем пережати аорты составило 29 мин, крово- потер - около 70 мл. После тщательного гемостаза протез реперитонизировали,
5 ушив брюшину непрерывным кетгутовым швом. Рану передней брюшной стенки ушили послойно наглухо шелковыми швами, пробуждение собаки от наркоза наступило через 1 ч 55 мин
0 Достоверность инфицировани трансплантата в зоне протезировани аорты была подтверждена сцинтиграфией с 99М Тс-лей- коцитами через 2,5 ч после операции (после полного пробуждени ) При сцинтиграфии
5 протез четко визуализировалс на перси- стеноскопе гаммы-камеры, что свидетельствовало о миграции в зону инфекции меченых лейкоцитов. Собака умерла на 7-е сутки после операции от аррозионного кро0 вотечени из зоны протезировани вследствие прорезывани 6 швов проксимального анастомоза, что было вы влено при аутопсии . В брюшной полости было около 1 л крови. Бактериологическое исследование
5 протеза идентифицировало рост культуры , золотистого стафилококка (штамм 489).(
Применение способа позвол ет повысить воспроизводимость модели инфекционного процесса в сосудистом
трансплантате на 30% по сравнению с про-тогенной культуры, отличающийс ,
тотипом.тем, что, с целью повышени воспроизводиФормула изобретени мости способа, бактериальный агент ввод т
Способ моделировани инфекционногонепосредственно в трансплантат в степени
процесса после трансплантации путем вве-5 10-10 клеток и через 2-3 ч трансплантирудени экспериментальному животному па-ют сосудистый трансплантат животному.
Claims (1)
- Формула изобретенияСпособ моделирования инфекционного процесса после трансплантации путем введения экспериментальному животному патогенной культуры, о т л и ч а ю щ и й с я, тем, что, с целью повышения воспроизводимости способа, бактериальный агент вводят непосредственно в трансплантат в степени 5 106— 107 клеток и через 2-3 ч трансплантируют сосудистый трансплантат животному.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU884472161A SU1642499A1 (ru) | 1988-06-14 | 1988-06-14 | Способ моделировани инфекционного процесса после трансплантации |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU884472161A SU1642499A1 (ru) | 1988-06-14 | 1988-06-14 | Способ моделировани инфекционного процесса после трансплантации |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1642499A1 true SU1642499A1 (ru) | 1991-04-15 |
Family
ID=21394736
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU884472161A SU1642499A1 (ru) | 1988-06-14 | 1988-06-14 | Способ моделировани инфекционного процесса после трансплантации |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1642499A1 (ru) |
-
1988
- 1988-06-14 SU SU884472161A patent/SU1642499A1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Serota A, I. et al.-Surgery, 1981, v. 90, N 1, p. 35-40. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Venugopalan | Essentials of veterinary surgery | |
Carrel | On the experimental surgery of the thoracic aorta and the heart | |
ABBOTT et al. | A technique for heart transplantation in the rat | |
Heron | A technique for accessory cervical heart transplantation in rabbits and rats | |
Yamada | The studies on lymphatic venous anastomosis in lymphedema | |
Winston et al. | Pregnancy following autograft transplantation of fallopian tube and ovary in the rabbit | |
MARCUS et al. | Homologous heart grafts: I. Technique of interim parabiotic perfusion II. Transplantation of the heart in dogs | |
Daniller et al. | Renal transplantation in rats with the use of microsurgical techniques: a new method | |
SMITH et al. | Surgical treatment of mycotic aneurysms | |
Hess et al. | Advantages of auxiliary liver homotransplantation in rats | |
Thomas | Large vessel appliqué arteriovenous shunt for hemodialysis: A new concept | |
VAN BKKKUM et al. | Effects of immunosuppressive treatment on rejection of heart allografts in rats | |
SU1642499A1 (ru) | Способ моделировани инфекционного процесса после трансплантации | |
Johnson et al. | Aneurysm formation in experimental vein grafts in the thoracic aorta | |
Takato et al. | Prefabricated venous flaps: an experimental study in rabbits | |
CN105941329A (zh) | 长爪沙鼠原位肝移植模型的建立方法及肝星状细胞的分离方法 | |
Mehran et al. | Porcine model for vascular graft studies | |
Kinmonth et al. | Arterial Replacement by “Orlon” Cloth | |
Brooks | Aortic resection and anastomosis in pups studied after reaching adulthood | |
Nathan et al. | A method for transplantation of the rabbit kidney. | |
SU1456105A1 (ru) | Способ трансплантации поджелудочной железы | |
BARNETT | Experimental Nylon Aortic Substitutes: Results After Two Years' Implantation in the Dog | |
Senn | Principles of surgery | |
PAYNE et al. | The ultimate fate of implanted aortic homografts preserved in acid-buffered formalin | |
RU2232430C1 (ru) | Способ моделирования острого гнойного холангита у экспериментальных животных |