SU1638162A1 - Method of isolation of reverse transcriptase from escherichia coli - Google Patents
Method of isolation of reverse transcriptase from escherichia coli Download PDFInfo
- Publication number
- SU1638162A1 SU1638162A1 SU894632976A SU4632976A SU1638162A1 SU 1638162 A1 SU1638162 A1 SU 1638162A1 SU 894632976 A SU894632976 A SU 894632976A SU 4632976 A SU4632976 A SU 4632976A SU 1638162 A1 SU1638162 A1 SU 1638162A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- purification
- reverse transcriptase
- protein
- concentration
- linear
- Prior art date
Links
Abstract
Изобретение относитс к биотехнологии и может быть использовано дл получени фермента, осуществл ющего переписывание генетической информации с РНК в молекулы ДНК. Целью изобретени вл етс повышение степени очистки обратной транскриптазы из Е coli. Получение обратной транскриптазы включает гомогенизацию клеток Е coli MRE-600, экстрагиро- вание белка буферным раствором, фракционирование в двухфазной системе ПЭГ-декстран с последующей очисткой методами колоночной хроматографии на фос- фоцеллюлозе, ДЭАЭ-целлюлозе, сефадексе G-100 и носителе Био-Рекс 70. Степень очистки 1358, удельна активность препарата 57000 ед/мг, выход по активности 2,8%, выход по белку 0,002%. 1 таблThe invention relates to biotechnology and can be used to obtain an enzyme that transforms genetic information from RNA into DNA molecules. The aim of the invention is to increase the degree of purification of the reverse transcriptase from E coli. Reverse transcriptase production involves homogenization of E coli MRE-600 cells, extraction of the protein with a buffer solution, fractionation in a two-phase PEG-dextran system, followed by purification using column chromatography on phosphorus cellulose, DEAE-cellulose, Sephadex G-100, and Bio-Receptor chromatography 70. The degree of purification is 1358, the specific activity of the preparation is 57000 units / mg, the yield for activity is 2.8%, the yield for protein is 0.002%. 1 tab
Description
Изобретение относитс к биотехнологии и может быть использовано дл получени фермента, осуществл ющего переписывание генетической информации с РНК в молекулы ДНК.The invention relates to biotechnology and can be used to obtain an enzyme that transforms genetic information from RNA into DNA molecules.
Целью изобретени вл етс повышение степени очистки обратной транскриптазы из Е. colt.The aim of the invention is to increase the degree of purification of reverse transcriptase from E. colt.
Получение обратной транскриптазы включает гомогенизацию клеток Е. coli MRE 600, экстрагирование белка буферным раствором , фракционирование в двухфазной системе полиэтиленгликоль-декстран с последующей хроматографической очисткой, включающей последовательную хроматографию на фосфоцеллюлозе, диэтиламиноэтилцеллюлозе , сефадексе G-100 и носителе Био-Рекс 70.Reverse transcriptase production involves homogenization of E. coli MRE 600 cells, extraction of the protein with a buffer solution, fractionation in a two-phase polyethylene glycol-dextran system, followed by chromatographic purification, including sequential chromatography on phosphocellulose, diethylaminoethyl cellulose, Sephadex G-100, and Bio-Rex 70 carrier.
Степень очистки и выход на каждой стадии приведены в таблице.The degree of purification and yield at each stage are given in the table.
Способ иллюстрируетс примерами.The method is illustrated by examples.
Пример Получение обратной транскриптазы из Е. coliExample Obtaining Reverse Transcriptase from E. coli
1. Разрушение клеток бактерий и получение грубого экстракта.1. The destruction of bacterial cells and obtaining a coarse extract.
К 1,5 кг биомассы MRE-600 ранней логарифмической фазы роста добавл ют 750 мл водного раствора лизоцима с концентрацией 2 мг/мл. Суспензию титруют насыщенным раствором трис-(оксиметил)-аминометана до рН 8,3, выдерживают 30 мин при 5-7°С, замораживают смесь жидким азотом и разрушают клетки в механическом гомогенизаторе приTo 1.5 kg of MRE-600 biomass of the early logarithmic growth phase, 750 ml of an aqueous solution of lysozyme with a concentration of 2 mg / ml is added. The suspension is titrated with a saturated solution of Tris- (oxymethyl) -aminomethane to pH 8.3, incubated for 30 minutes at 5-7 ° C, the mixture is frozen in liquid nitrogen and destroyed in a mechanical homogenizer at
ON СО 00ON CO 00
ОABOUT
гоgo
8000 об./мин в течение 10 мин. К полученному порошку разрушенных клеток добавл ют 3000 мл 0,05 М трис-HCI, рН 8,3, и с помощью механической мешалки ведут экстракцию в течение 1,5 мин. Экстракт осветл ют центрифугированием (60 мин, 9000 об./мин).8000 rpm for 10 min. 3000 ml of 0.05 M Tris-HCl, pH 8.3 is added to the obtained disrupted cell powder, and extraction is carried out with a mechanical stirrer for 1.5 minutes. The extract is clarified by centrifugation (60 min, 9000 rpm).
Выход белка на этой стадии составл ет 72 г; удельна активность фермента 42 е.а./мг.The protein yield at this stage is 72 g; the specific activity of the enzyme is 42 ea / mg.
2,Фракционирование в двухфазной системе полиэтиленгликоль-декстран.2, Polyethylene glycol-dextran fractionation in a two-phase system.
К 3300 мл полученного грубого экстракта добавл ют 1095 мл 30%-ного раствора полиэтиленгликол (ПЭГ, мол.мае. 20000 D) и 200 мл 20%-ного раствора декстрана Т-500. Полученную смесь перемешивают в течение 30 мин при помощи механической мешалки. Затем центрифугируют 40 мин при 9000 об./мин. Верхнюю фазу отбрасывают , а к нижней добавл ют раствор, содержащий 0,4 М KCI, 50 мМ трис-HCI (рН 8,3) и 6%-ный раствор ПЭГ(мол,мас. 20000 D), из расчета 8 об. этого раствора на 1 об нижней фазы. После 30 мин энергичного перемешивани вновь раздел ют фазы центрифугированием (40 мин, 9000 об./мин) и отбрасывают верхнюю фазу. К нижней фазе добавл ют раствор, содержащий 4М KCI и 6% ПЭГ (мол.мас. 6000D) в 50 мМ трис-HCI, рН 7,3, из расчета 3 об этого раствора на1095 ml of 30% polyethylene glycol solution (PEG, mol. 20,000 D) and 200 ml of 20% dextran T-500 solution are added to 3300 ml of the obtained crude extract. The resulting mixture is stirred for 30 minutes using a mechanical stirrer. Then centrifuged for 40 min at 9000 rpm. The upper phase is discarded, and a solution containing 0.4 M KCl, 50 mM Tris-HCl (pH 8.3) and 6% PEG solution (mol, wt. 20,000 D) is added at the rate of 8 vol. of this solution on 1 of the lower phase. After 30 minutes of vigorous stirring, the phases are again separated by centrifugation (40 minutes, 9000 rpm) and the upper phase is discarded. To the lower phase add a solution containing 4M KCI and 6% PEG (mol.mash. 6000D) in 50 mM Tris-HCl, pH 7.3, at the rate of 3 v of this solution per
Iоб нижней фазы и перемешивают механической мешалкой 40 мин. Затем после 40 мин центрифугировани при 9000 об./мин декантируют верхнюю фазу и подвергают очистке содержащийс в ней материал.About the lower phase and mix with a mechanical stirrer for 40 minutes. After 40 minutes of centrifugation at 9000 rpm, the upper phase is then decanted and the contained material is cleaned.
Выход белка 12,7 г; удельна активность 76 е.а./мг. Выход по активности 32%.The protein yield of 12.7 g; specific activity of 76 ea / mg. The yield on the activity of 32%.
3.Хроматографи на фосфоцеллюлозе Р-11.3. Chromatography on phosphocellulose P-11.
Полученный на предыдущей стадии белковый материал освобождают от полиэтиленгликол , фрагментов нуклеиновых кислот, других низкомолекул рных примесей/а также избытка соли путем пропускани через колонку с сефадексом G-25 (грубым, V 8 л), уравновешенную 50 мМ трис-HCI, рН 7,3,, содержащим 50 мМ КС, и нанос т на колонку с фосфоцеллюлозой РI1 (V 400 мл), уравновешенную буферным раствором того же состава. Разделение ведут в линейном градиенте КС 0,05-0,5 М в 50 мМ трис-HCI, рН 7.3 (общий объем градиента 4 л). Фракции, содержащие активность обратной транскриптазы, объедин ют и ведут осаждение белка диализом против насыщенного раствора сульфата аммони , рН 7,5. Осадок белка собирают центрифугированием (9000 об./мин, 45 мин). чThe protein material obtained in the previous step is freed from polyethylene glycol, nucleic acid fragments, other low molecular weight impurities / and also excess salt by passing through a column with Sephadex G-25 (coarse, V 8 L), equilibrated with 50 mM Tris-HCl, pH 7, 3, containing 50 mM CS, and applied to a column with PI1 phosphocellulose (V 400 ml), equilibrated with a buffer solution of the same composition. Separation is carried out in a linear gradient of KS 0.05-0.5 M in 50 mM Tris-HCI, pH 7.3 (total gradient volume 4 l). The fractions containing reverse transcriptase activity are combined and protein precipitation is carried out by dialysis against a saturated solution of ammonium sulfate, pH 7.5. The protein precipitate is collected by centrifugation (9000 rpm, 45 min). h
Выход белка на этой стадии 120 мг удельна активность 2300 е.а./мг.The protein yield at this stage is 120 mg specific activity of 2300 ea / mg.
4. Хроматографи на диэтиламиноэтил- целлюлозе ДЕ-52,4. Chromatography on diethylaminoethyl cellulose DE-52,
Полученный на предыдущей стадии белковый материал обессоливают на колонке с сефадексом G-50 (средний V 100 мл), уравновешенной 0,05 М трис-HCI, рН 7,3, содержащим 50 мМ KCI, и нанос т на колонку сThe protein material obtained at the previous stage is desalted on a Sephadex G-50 column (average V 100 ml), equilibrated with 0.05 M Tris-HCl, pH 7.3, containing 50 mM KCI, and applied to a column with
диэтиламиноэтилцеллюлозой ДЕ-52 (V 100 мл), уравновешенную буферным раствором того же состава. Хроматографиче- ское разделение ведут в линейном градиенте KCI 0,05-0,5 М трис-HCI, рН 7,3.diethylaminoethylcellulose DE-52 (V 100 ml), balanced with a buffer solution of the same composition. Chromatographic separation is carried out in a linear KCI gradient of 0.05-0.5 M Tris-HCI, pH 7.3.
Суммарный объем градиента 1,0 л. Хрома- тографические фракции, содержащие белок с активностью обратной транскриптазы и не содержащие нуклеаз, объедин ют, провод т осаждение белка диализом против суспензии сульфата аммони , как на стадии 3, и собирают белковый осадок центрифугированием .The total volume of the gradient is 1.0 l. Chromatographic fractions containing a protein with reverse transcriptase activity and not containing nucleases are pooled, the protein is precipitated by dialysis against a suspension of ammonium sulfate, as in step 3, and the protein precipitate is collected by centrifugation.
Выход белка 8,7 мг; удельна активность - 12000 е.а./мг.Protein yield 8.7 mg; specific activity - 12000 EA / mg.
5. Гельфильтраци на сефадексе G-100.5. Gelfiltration on Sephadex G-100.
Осадок белка раствор ют в объеме 1-2 мл 0,05 М трис-HCI, рН 7,3, содержащего 0,05 М KCI, раствор осветл ют центрифугированием и нанос т белковый материал наThe protein precipitate is dissolved in a volume of 1-2 ml of 0.05 M Tris-HCl, pH 7.3, containing 0.05 M KCl, the solution is clarified by centrifugation, and the protein material is applied onto
колонку с сефадексом G-100 (сверхтонкий, V 100 мл, размеры колонки: диаметр 1 см, высота 70 см), Скорость нанесени и гель- фильтрации 12-14 мл/ч. Элюент - 0,05 М трис-HCI. Фракции, содержащие белок с активностью обратной транскриптазы и не содержащие нуклеаз, объедин ют и провод т следующую стадию очистки.column with Sephadex G-100 (ultra-thin, V 100 ml, column size: diameter 1 cm, height 70 cm), Application and gel filtration rate 12-14 ml / h. The eluent is 0.05 M Tris-HCI. The fractions containing the protein with reverse transcriptase activity and not containing nucleases are combined and the next purification step is carried out.
Выход белка на этой стадии 6 мг; удельна активность 15000 е.а./мг.The protein yield at this stage is 6 mg; specific activity of 15,000 EA / mg.
6. Хроматографи на Био-Рекс 70.6. Chromatography on Bio-Rex 70.
Белковый материал, полученный на предыдущей стадии, нанос т на колонку (V 2 мл) с Био-Рекс 70, уравновешенную 0,05 М трис-HCI, рН 7,3, содержащимThe proteinaceous material obtained in the previous stage was applied to a column (V 2 ml) with Bio-Rex 70, equilibrated with 0.05 M Tris-HCl, pH 7.3, containing
0,05 М KCI, со скоростью 4 мл/ч. Разделение ведут в линейном градиенте KCI 0,05- 0,5 М трис-HCI, рН 7,3 (суммарный объем градиента 20 мл) со скоростью 3 мл/ч. Фракции , содержащие обратную транскриптазу,0.05 M KCI, at a rate of 4 ml / h. Separation is carried out in a linear KCI gradient of 0.05-0.5 M Tris-HCl, pH 7.3 (total gradient volume 20 ml) at a rate of 3 ml / h. Fractions containing reverse transcriptase,
объедин ют.unite.
Выход белка 1,5 мг (концентраци около 0,5 мг/мл); удельна активность 57000 е.а./мг.Protein yield 1.5 mg (concentration about 0.5 mg / ml); specific activity 57000 EA / mg.
Фермент хранитс в виде замороженного раствора при -20°С без потери активности не менее одного года.The enzyme is stored as a frozen solution at -20 ° C without loss of activity for at least one year.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894632976A SU1638162A1 (en) | 1989-01-06 | 1989-01-06 | Method of isolation of reverse transcriptase from escherichia coli |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894632976A SU1638162A1 (en) | 1989-01-06 | 1989-01-06 | Method of isolation of reverse transcriptase from escherichia coli |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1638162A1 true SU1638162A1 (en) | 1991-03-30 |
Family
ID=21420794
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU894632976A SU1638162A1 (en) | 1989-01-06 | 1989-01-06 | Method of isolation of reverse transcriptase from escherichia coli |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1638162A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1147226A4 (en) * | 1999-01-27 | 2005-05-11 | Folim G Halaka | Materials and methods for the purification of polyelectrolytes |
-
1989
- 1989-01-06 SU SU894632976A patent/SU1638162A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Патент US № 4663290, кл. C12N 1/20. 1987. Ромащенко А.Г., Воробьева Н.В., Кожем кина Н.Н., Потапов В.А., Сидельникова Н.П.. Старообразова М.Г., Салганик Р.И. РНК-зависима , ДНК-полимераза Escherlch4a coll.- Доклады АН СССР, 1977, т. 233. с. 734-737. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1147226A4 (en) * | 1999-01-27 | 2005-05-11 | Folim G Halaka | Materials and methods for the purification of polyelectrolytes |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
von Ehrenstein | [76] Isolation of sRNA from intact Escherichia coli cells | |
EP0037687B1 (en) | Recombinant deoxyribonucleid acid which codes for plasminogen activator and method of making plasminogen activator protein therefrom | |
JPS5928492A (en) | Separation of serum protein from cell culture | |
US4144130A (en) | Process for the separation of enzymes | |
EP0193046B1 (en) | Process to recover crystalline enzymes | |
US4508825A (en) | Method for the separation of extracellular amylase and protease produced during the fermentation of enzyme producing microorganisms | |
JP2646085B2 (en) | Vector for heterologous gene expression | |
SU1638162A1 (en) | Method of isolation of reverse transcriptase from escherichia coli | |
Gafni et al. | Characterization of sarcoplasmic reticulum adenosinetriphosphatase purified by selective column adsorption | |
Corbett et al. | Determinants of triad junction reformation: Identification and isolation of an endogenous promotor for junction reformation in sketal muscle | |
OSMUNDSVAG et al. | Cellulases from Sporocytophaga myxococcoides: Purification and properties | |
Zhu et al. | In situ extraction of intracellular l-asparaginase using thermoseparating aqueous two-phase systems | |
NO157787B (en) | CORROSION PREVENTION, SYNCHRIC PAINTING CONTAINING MANGANOMANGANOXYDE RKPIGMENT. | |
US4879234A (en) | Process for the purification and recovery of formate-dehydrogenase (FDH) from Candida boidinii, and FDH-containing product | |
IKEZAWA et al. | Gel-filtration of Clostridium perfringens α-Toxin (Phospholipase C) | |
WO2022031314A2 (en) | Scalable production of polyribonucleotides of controlled size | |
Maglott et al. | [42] Fractionation of Escherichia coli 50 S ribosomes into various protein-deficient cores and split protein fractions by CsCl density gradient centrifugation and reconstitution of active particles | |
Baril et al. | Co-fractionation of “nickase” with rat liver DNA polymerase | |
US3511755A (en) | Synthesis of l-asparaginase | |
Walsdorf et al. | Investigation of affinity partition chromatography using formate dehydrogenase as a model | |
SU1161550A1 (en) | Method of obtaining nuclease s1 | |
Nunokawa | Purification of two acid-proteases of Aspergillus oryzae from takadiastase | |
Miller et al. | Purification and characterization of RNA polymerase from Fremyella diplosiphon | |
USRE25785E (en) | Process for preparing a nucleic acid | |
RU1796676C (en) | Method of restriction endonuclease sau 6782 preparation |