SU1521767A1 - Method of obtaining hybrid strain saccharomyces cervilae for fermenting starch - Google Patents
Method of obtaining hybrid strain saccharomyces cervilae for fermenting starch Download PDFInfo
- Publication number
- SU1521767A1 SU1521767A1 SU874258667A SU4258667A SU1521767A1 SU 1521767 A1 SU1521767 A1 SU 1521767A1 SU 874258667 A SU874258667 A SU 874258667A SU 4258667 A SU4258667 A SU 4258667A SU 1521767 A1 SU1521767 A1 SU 1521767A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- starch
- glucoamylase
- hybrids
- saccharomyces cerevisiae
- gene
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к хлебопекарной, спиртовой и пивоваренной промышленности, в частности к технологическим процессам, св занным с утилизацией крахмалсодержащего сырь . Целью изобретени вл етс получение штаммов, содержащих экспрессирующийс ген глюкоамилазы. Способ получени гибридных штаммов дрожжей сбраживани крахмалсодержащего сырь заключаетс в создании гибридов дрожжей SACCHAROMYCES CEREVISIAE, которые содержат гены, годирующие глюкоамилазу, и способны секретировать этот фермент в культуральную жидкость. С помощью способа достигаетс интенсивное сбраживание крахмалсодержащего сырь без предварительного осахаривани коммерческими амилолитическими ферментами или солодом. Гибриды получают путем скрещивани штамма SACCHAROMYCES DIASTATICUS CBS 1782, несущего структурный ген глюкоамилазы, и штамма SACCHAROMYCES CEREVISIAE, несущего ген-репрессор глюкоамилазы. Затем гибриды перенос т на питательную среду, содержащую ацетат натри , дл индукции спорообразовани , после чего изолируют споры, способные утилизировать крахмал, и скрещивают их со штаммом SACCHAROMYCES CEREVISIAE, несущим маркер ауксотрофности. Далее операции повтор ют в заданном пор дке до получени гибридов с эффективностью спорообразовани 90-95%. 1 табл.The invention relates to the baking, alcohol and brewing industry, in particular to technological processes associated with the disposal of starch-containing raw materials. The aim of the invention is to obtain strains containing an expressing glucoamylase gene. A method for producing hybrid strains of yeast fermenting starch-containing raw materials is to create hybrids of the yeast SACCHAROMYCES CEREVISIAE, which contain genes that feed glucoamylase and are able to secrete this enzyme into the culture fluid. By means of the method, intensive fermentation of starch-containing raw material is achieved without saccharification prior to commercial amylolytic enzymes or malt. Hybrids are obtained by crossing the SACCHAROMYCES DIASTATICUS CBS 1782 strain carrying the glucoamylase structural gene and the SACCHAROMYCES CEREVISIAE strain carrying the glucoamylase repressor gene. The hybrids are then transferred to a nutrient medium containing sodium acetate to induce sporulation, after which they isolate spores capable of utilizing starch and cross them with the SACCHAROMYCES CEREVISIAE strain carrying the auxotrophy marker. Further, the operations are repeated in a predetermined order until hybrids are obtained with a sporulation efficiency of 90-95%. 1 tab.
Description
Изобретение относитс к хлебопекарной , спиртовой и пивоваренной про- мьшшенности, в частности касаетс технологического процесса, св занного с утилизацией крахмалсодержащего сырь с использованием пищевых дрожжей Saccharomyces cerevisiae.The invention relates to the baking, alcohol and brewing industries, in particular, to the technological process associated with the utilization of starch-containing raw materials using food yeast Saccharomyces cerevisiae.
Цель изобретени - получение штаммов , содержащих экспрессирующийс ген глюкоамилазы.The purpose of the invention is to obtain strains containing an expressing glucoamylase gene.
Способ заключаетс в том, что получают штаммы дрожжей Saccharomyces cerevisiae , содержащие структурный ген глюкоамилазы и неактивный аллель соThe method consists in obtaining strains of the yeast Saccharomyces cerevisiae, containing the structural glucoamylase gene and the inactive allele with
о гветствуюп;его репрессора и способные использовать крахмал в качестве единственного источника углерода, секре- тиру глюкоамилазу в среду, с одновременным сбраживанием образующейс глюкозы. Предлагаемые штаммы дрожжей Saccharomyces cerevisiae получены в результате нескольких этапов скрещивани дрожжей Saccharomyces diacta- ticus CBS 1782, секретирующих глгоко- амилазу, с дрожжами Saccharomyces cerevisiae, из Петергофских генетических линий, ведущих ое происхож- цение и от расы S, cerevisiae XII, а также с дрожжами - сахаромицнтамн из Карбоьщайльских- ге-нетических линий. Предлагаемые штаммы дрожжей S, се .revisiae имеют следующие морфологи- ч еские и культуральные признаки.its repressor and capable of using starch as the sole carbon source, secretes glucoamylase into the medium, while simultaneously fermenting the glucose produced. Proposed yeast strains Saccharomyces cerevisiae obtained as a result of several stages mating yeast Saccharomyces diacta- ticus CBS 1782 glgoko- secreting amylase, yeast Saccharomyces cerevisiae, from Peterhof genetic lines leading th tsenie and origin of race S, cerevisiae XII, as well as with yeast - saharomitsntam from Karboischaylskikh- genetic lines. The proposed yeast strains S, ce. Revisiae have the following morphological and cultural characteristics.
Клетки имеют овальную, реже п очти круглую форму, средний размер 6,7 хCells are oval, less often almost round, average size 6.7 x
X. 5,0 мкм. Размножение почкованием.X. 5.0 microns. Reproduction by budding.
;Через 96 ч инкубадаи на сусло-агаре образуют круглые колонии, диаметром 4,0 - 6,3 мм. Край колонии ровный или слегка исчерченньй, поверхность матова . Дрожжи сбраживают глюкозу, фруктозу , сахарозу, мальтозу, галактозу, рафинозу, крахмал; не сбраживают ксилозу и арабинозу. Желатину не разжижают , глицерин и спирт (этанол) усваивают. Не усваивают маннит, дуль- цит и сорбит.After 96 hours, the incubators on the wort agar form round colonies with a diameter of 4.0 - 6.3 mm. The edge of the colony is flat or slightly striated, the surface of the mat. Yeast ferments glucose, fructose, sucrose, maltose, galactose, raffinose, starch; do not ferment xylose and arabinose. Gelatin is not diluted, glycerin and alcohol (ethanol) are absorbed. Do not assimilate mannitol, dulcite and sorbitol.
Культуры из полученных генетических линий Бьфащивают в жидкой среде на качалке или на агаризованных средах , содержащих один из следующих источников углерода: глюкозу (2%), мальтозу (2%), сахарозу (2%) или этанол (1,5%), а также пептон (1%) и дрожжевой экстракт., (или дрожжевой автоли- зат) (0,5%) в качестве источника ростовых веществ. Выращенную биомассуCultures from the obtained genetic lines are in a liquid medium on a rocking chair or on agar media containing one of the following carbon sources: glucose (2%), maltose (2%), sucrose (2%) or ethanol (1.5%), and also peptone (1%) and yeast extract., (or yeast autolith) (0.5%) as a source of growth substances. Grown biomass
используют дл посева в среду дл брожени . Посевной титр составл ет (О,5-5,0)-10 кл./мл. Среда дл бро - женин имеет рН 5,0-6,0 и содержит клейстеризованньй крахмал (1,5-4,0%) или муку (4%). В случае использовани used for sowing in fermentation medium. The seed volume is (O, 5-5.0) -10 cells / ml. The broth medium has a pH of 5.0-6.0 and contains gelatinized starch (1.5-4.0%) or flour (4%). In case of use
крахмала в состав среды ввод т ростовые факторы - дрож кевой экстракт (0,5%) или дрожжевой автолизат (0,5%). Брожение провод т при 28 - 35°С в течение 48-96 ч..Процесс сбраживани контролируют по интенсивному вьщеле- Ш1Ю СО.starch growth media is introduced into the medium — yeast extract (0.5%) or yeast autolysate (0.5%). The fermentation is carried out at 28 - 35 ° C for 48-96 h. The fermentation process is controlled by an intensive spike.
Способ по сн етс конкретными при- черами.The method is illustrated by specific examples.
1767417674
П р и м е р .1. Получение линий дрожжей S. cerevisiae осуществл ют, в два этапа.PRI me R. 1. The production of S. cerevisiae yeast lines is carried out in two stages.
Этап 1. Генетические линии S. cerevisiae получают следующим образом.Step 1. The genetic lines of S. cerevisiae are obtained as follows.
Культуру клеток S. cerevisiae CBS 1782, секретирующую глюкоамилазу и имеющую генотип STA 2 sta 10 (STA 2 5Cell culture of S. cerevisiae CBS 1782, secreting glucoamylase and having the genotype STA 2 sta 10 (STA 2 5
00
5five
п P
. Q . Q
Q аллель, кодирую1ций глюкоамилазу, sta 7 10 - неактивньй аллель ген-репрессора глюкоамилазы), выращивают на полноценной среде с глюкозой в течение 48 ч. Далее с помощью микроманипул тора вьщел ют отдельные клетки, которые раскладывают на полноценной агаризованной сре,де, помеща к ним вег етативные клетки штамма S. cerevisiae № 117 генотипа sta 2 STA 10 (sta 2. - отсутствие структурных генов глюкоамилазы, STA 10 - ген-реп- рессор глюкоамилазы). Через 4 ч инкубации отбирают образовавшиес зиготы и после этапа вегетативного размножени этих гибридов индуцируют у них спорообразование на ацетатной среде. Гибриды имеют низкие эффективность спорообразовани и вьпкиваемость спор. Выжившие сегреганты среди споровых потомков, изолированных при тетрадном анализе, провер ют на способность к синтезу глюкоамилазы, что про вл етс в виде зоны разложени крахмала вокруг колоний, растущих на чашках с питательной средой, содержащей крахмал (1:6%) и имеющей рН 5,4.The Q allele, coding glucoamylase, sta 7 10 - inactive allele of the glucoamylase repressor gene), is grown on a full-fledged medium with glucose for 48 h. Then, using a micromanipulator, individual cells are laid out, which are laid out on a full-fledged agar, de, placed In these cells, vegetative cells of the strain S. cerevisiae No. 117 of the genotype sta 2 STA 10 (sta 2. - absence of the structural genes of glucoamylase, STA 10 - the repressor gene of glucoamylase). After 4 hours of incubation, the resulting zygotes are selected and, after the vegetative multiplication stage of these hybrids, sporulation is induced in them on an acetate medium. Hybrids have low sporulation efficiency and high dispute abnormality. Surviving segregants among spore descendants isolated by tetrad analysis are tested for the ability to synthesize glucoamylase, which manifests itself in the form of a starch decomposition zone around colonies growing on nutrient plates containing starch (1: 6%) and having a pH of 5 ,four.
Этап 2. Отобранные ауксотрофные сегреганты имеют генотип STA 2 sta 10:ade 5. Далее с ними провод т пос- л едковат ел ьные бэккроссы на штамм S. cerevisiae № 134, который несет ауксо- трофную мутахщш в гене Сеп 2. При этом среди потомков каждый раз отбирают синтезирующие глюкоамилазу культуры генотипа STA 2 sta 10. В третьем поколении были получены культуры, со- держап 1е структурньй ген глюкоамилазы и секретирующие глюкоамилазу в среде. Такие, культуры хорошо скрещиваютс как между собой, так и с типовыми лини ми S. cerevisiae, дава гибриды с эффективностью спорообразовани 93% и частотой выживаемости спор 84%. В результате подтверждаетс , что созданы генетические линии дрожжей S. cerevisiae указанного генотипа, способные секретировать глюкоамилазу и утилизировать крахмал как единствен- ньй источник углерода.Stage 2. Selected auxotrophic segregants have the STA 2 sta 10 genotype: ade 5. Then, they are followed by baking backcrosses for S. cerevisiae strain No. 134, which carries an auxotrophic muttach in the Sep 2 gene. descendants each time, cultures of the STA 2 sta 10 genotype were synthesized by glucoamylase. In the third generation, cultures were obtained containing the structural gene for glucoamylase and secreting glucoamylase in the medium. Such cultures intersect well with each other, as well as with S. cerevisiae type lines, giving hybrids with a spore formation efficiency of 93% and a spore survival rate of 84%. As a result, it was confirmed that genetic lines of the S. cerevisiae yeast of the indicated genotype, capable of secreting glucoamylase and utilizing starch as the only carbon source, were created.
5five
00
5five
51525152
Пример 2. Этап 1. Получение линий осуществл ют по примеру 1.Example 2. Step 1. Obtaining lines is carried out as in Example 1.
Этап 2. Отобранные ауксотрофные сег реганты имеют генотип STA 2 sta 10 ade 5. Далее с ними провод т последовательные бэккроссы на штамм S. сеге- visiae № 1б40,который несет ауксотроф ную мутацию в гене t гр 1. При этом среди потомков каждьш раз отбирают синтезирующие глюкоамилазу культуры генотипа STA 2 sta 10. В третьем поколении были получены культуры, содержащие структурный ген глюкоамилазы и секретирующие глюкоамилазу в среду. :Такие культуры хорощо скрещиваютс как между собой, так и с типовыми лини ми S. cerevisiae, дава гибриды с эффективностью спорообразовани 95% и частотой выживаемости спор 90%. В результате подтверждаетс , что созданы генетические линии дрожжей S. cerevisiae указанного генотипа, способные секретировать глюкоамилазу и утилизировать крахмал как единственный источник углерода. Stage 2. Selected auxotrophic segregants have the genotype STA 2 sta 10 ade 5. Next, they carry out consecutive backcrosses to S. segusiae strain No. 1b40, which carries an auxotrophic mutation in the tt1 gene. At the same time, among descendants every time cultures of the genotype STA 2 sta 10 were synthesized by glucoamylase. In the third generation, cultures containing the glucoamylase structural gene and secreting glucoamylase into the medium were obtained. : Such cultures are intercrossed both with each other and with the S. cerevisiae lines, giving hybrids with a sporulation efficiency of 95% and a spore survival rate of 90%. As a result, it was confirmed that genetic lines of the yeast S. cerevisiae of the indicated genotype, capable of secreting glucoamylase and utilizing starch as the only carbon source, were created.
П р и м е р 3. Этап 1. Получение линий осуществл ют по примеру 1.PRI me R 3. Step 1. Obtaining lines is carried out as in Example 1.
Этап 2. Отобранные ауксотрофные сегреганты имеют генотип STA 2 sta 10 ade 5. Далее с ними провод т последо- ва- -ельнЫе бэккроссы на штамм S.uere- visiae № 193, который несет ауксртроф ную мутацию в гене ига 3. При этом, среди потомков каждый раз отбирают синтезируюидае глюкоамилазу культуры генотипа STA 2 sta 10. Б третьем поколении были получены культуры, содержащие структурный ген глюкоамилазы и секретирующие глюкоамилазу в cpe ду. Такие культуры хорошо скре1цивают- с как между собой, так и с.типовыми лини ми S. cerevisiae, дава гибриды с эффективностью спорообразовани 90% и частотой выживаемости спор 66%. В результате подтверждаетс , что созданы генетические линии дрожжей S. cerevisiae указанного генотипа, способные секретировать глюкоамилазу и утилизировать крахмал как единственный источник углерода.Stage 2. Selected auxotrophic segregants have the STA 2 sta 10 ade 5 genotype. Next, they are followed by successive backcrosses for S.uevisus No. 193 strain, which carries an aukrrotrof mutation in the yoke 3 gene. among the descendants, each time, cultures of the genotype STA 2 sta 10 are synthesized by glucoamylase of the third generation. Cultures containing the structural gene for glucoamylase and secreting glucoamylase in cpe were obtained in the third generation. Such cultures are well screened with both among themselves and with the S. cerevisiae type lines, giving hybrids with a sporulation efficiency of 90% and a spore survival rate of 66%. As a result, it was confirmed that genetic lines of the yeast S. cerevisiae of the indicated genotype, capable of secreting glucoamylase and utilizing starch as the only carbon source, were created.
Пример4. Определение активности глюкоамилазы.Example4. Determination of glucoamylase activity.
У полученных культур S. cerevisiae определ ют активность глюкоамилазы. Дл этого клетки засевают в жидкую полноценную среду, содержащую растворимый крахмал (3%) и имеющую рН 5,4. Через 72 ч инкубации при осаждаThe obtained cultures of S. cerevisiae determine the activity of glucoamylase. For this, cells are seeded in a complete liquid medium containing soluble starch (3%) and having a pH of 5.4. After 72 h of incubation with precipitation
Q 5 0 5 Q 5 0 5
О Q 5 0 About Q 5 0
5five
7676
ют клетки и к 9 част м культуральной жидкости добавл ют 1 ч раствора амилазы в диметилсульфоксиде (50 мг/мп) в качестве субстрата. В приготовленной таким образом реакционной смеси измер ют динамику накоплени глюкозы с помощью глюкозооксидазопероксидазного реагента. Исход из этой динамики рассчитывают активность глюкоамилазы в Стандартных единицах (мкмоль глюкозы/ /мл мин). Дл разных культур полученной генетической линии активность составл ет 0,03-0,05 ед. Контрольный ч щтамм S. cerevisiae XII активностью не обладает.The cells are added to 1 part of the culture fluid with 1 h of a solution of amylase in dimethyl sulfoxide (50 mg / mp) as a substrate. In the reaction mixture thus prepared, glucose accumulation dynamics were measured using a glucose oxidase reagent. From this dynamic, the glucoamylase activity is calculated in Standard Units (μmol glucose / / ml min). For different cultures of the obtained genetic line, the activity is 0.03-0.05 units. The control group of S. cerevisiae XII does not possess activity.
П р и м е р 5. Использование культур из полученных линий.PRI me R 5. The use of cultures from the obtained lines.
Набор культур 5-4А, 5-4В и 8-11C, относ щихс к.созданным генетичес- :КИМ лини м, а также контрольный штамм S. cerevisiae.XII, используемый дл сбраживани крахмала, выращивают в течение 48 ч на плотной питательной среде, содержащей глюкозу (2%), дрожжевой экстракт (0,5%) и пептон (1%). По истечении указанного срока клетки засевают в колбы с жидкой средой, содержащей крахмал (3%) и дрожжевой экстракт (0,5%) и имеющей рН 5,4. Посевной титр составл ет 1-10 кл./мл. Засе нные колбы инкубируют при 30 С без аэрации дл индукции брожени .A set of 5-4A, 5-4B and 8-11C cultures related to the established genetic: KIM lines, as well as the control strain S. cerevisiae.XII, used for fermentation of starch, are grown for 48 hours in a dense nutrient medium containing glucose (2%), yeast extract (0.5%) and peptone (1%). After the specified period, the cells are seeded in flasks with a liquid medium containing starch (3%) and yeast extract (0.5%) and having a pH of 5.4. The seed volume is 1-10 cells / ml. The seeded flasks are incubated at 30 ° C without aeration to induce fermentation.
В таблице представлены результаты измерени титра клеток и характеристика брожени (по выделению СО) в динамике.The table presents the results of measurement of cell titer and fermentation characteristics (based on CO release) over time.
Из данных таблицы видно, что гибридные штаммы S. cerevisiae способны осуществл ть процесс брожени , о чем говорит интенсивно возрастающее во времени выделение СОг, накапливать биомассу, использу крахмал, подвед- гающийс одновременному осахариванию глюкоам1-шазой, синтезируемой клетками . В то же врем штамм S. cerevisiae XII, используемый в способе-прототипе , такой способностью не обладает.From the table it is seen that hybrid strains of S. cerevisiae are able to carry out the fermentation process, as evidenced by the rapidly increasing release of CO2, accumulate biomass using starch, which is simultaneously saccharified by glucoam 1, synthesized by cells. At the same time, the strain S. cerevisiae XII used in the prototype method does not possess this ability.
Таким образом, предлагаемый способ позвол ет получить новые гибридные штаммы дрожжей S. cerevisiae, способные производить сбраживание крахмалсодержащего сырь без предварительного осахаривани амилолити- ческим ферментами. Это позвол ет сократить расход осахаривающих ферментных коммерческих препаратов или солода , а также исключить технологичесKHir этап предварительного осахарива- ни .Thus, the proposed method makes it possible to obtain new hybrid strains of the yeast S. cerevisiae capable of fermenting starch-containing raw materials without prior saccharification by amylolytic enzymes. This reduces the consumption of saccharifying enzyme commercial preparations or malt, and also eliminates the technological KHir stage of preliminary saccharification.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874258667A SU1521767A1 (en) | 1987-06-09 | 1987-06-09 | Method of obtaining hybrid strain saccharomyces cervilae for fermenting starch |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874258667A SU1521767A1 (en) | 1987-06-09 | 1987-06-09 | Method of obtaining hybrid strain saccharomyces cervilae for fermenting starch |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1521767A1 true SU1521767A1 (en) | 1989-11-15 |
Family
ID=21309577
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU874258667A SU1521767A1 (en) | 1987-06-09 | 1987-06-09 | Method of obtaining hybrid strain saccharomyces cervilae for fermenting starch |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1521767A1 (en) |
-
1987
- 1987-06-09 SU SU874258667A patent/SU1521767A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Технохимический контроль хлебопекарного производства. Регламент. Министерство хлебопродуктов СССР, НПО хлебопекарной промы1шенности, 1975. Авторское свидетельство СССР N - 707964, кл. С 12 N 1/18, 1977. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US9556444B2 (en) | Non-recombinant saccharomyces strains that grow on xylose | |
US20110183394A1 (en) | Method of producing yeast biomass | |
Russell et al. | Spheroplast fusion of brewer's yeast strains | |
JPS5828289A (en) | Preparation of alcohol by fermentation | |
Kim et al. | High-efficiency, one-step starch utilization by transformed Saccharomyces cells which secrete both yeast glucoamylase and mouse alpha-amylase | |
SU1521767A1 (en) | Method of obtaining hybrid strain saccharomyces cervilae for fermenting starch | |
Furuta et al. | Production of glucoamylase by passively immobilized cells of a flocculent yeast, Saccharomyces diastaticus | |
KR101576183B1 (en) | Method of producing erythritol using by-products, Moniliella pollinis mutant with high productivity of erythritol and the use thereof | |
US4769324A (en) | Ethanol production | |
RU2039813C1 (en) | Strain of yeast saccharomyces cerevisiae meyen for production of baking yeast and ethanol on molasses | |
Nguyen et al. | Citric acid production by Aspergillus niger using media containing low concentrations of glucose or corn starch | |
Mundkur et al. | An analysis of the phenomenon of long-term adaptation to galactose by Saccharomyces | |
Takebe et al. | Breeding of bialaphos producing strains from a biochemical engineering viewpoint | |
SU1742320A1 (en) | Strain of yeast saccharomyces cerevisiae - a biomass producer on starch, used in baking of bread | |
CA1108077A (en) | High potency glucamylase and alapha amylase enzyme system by cultivation of aspergillus niger | |
RU2001949C1 (en) | Strain of fungus trichoderma reesei - a producer of cellulolytic enzymes | |
RU2186846C2 (en) | Yeast strain saccharomyces cerevisiae used for fermentation of molasses must in production of ethyl alcohol and baking yeast | |
US4332903A (en) | Media manipulation for preparing biologically active hollow mycelial pellets | |
SU1604845A1 (en) | Hybride strain of saccharomyces cerevisae yeast used for making bakery yeast | |
Nowak et al. | Co-immobilization of Aspergillus niger and Zymomonas mobilis for ethanol production from starch | |
SU1306949A1 (en) | Hybrid yeast stock culture of saccaromyces cerevisiae cmpm u-563 for fermentation of molasses wort with increased concentration in two-product making of alcohol and bakery yeast | |
SU1371969A1 (en) | Saccharomuses cerevisiae strain used for production of dried bakery yeast | |
RU2001097C1 (en) | Yeast strain m-saccharomyces cerevisiae for obtaining alcohol | |
WO2024108254A1 (en) | Baking yeasts able to utilise glycerol | |
RU1426082C (en) | Diploid hybrid yeast strain saccharomyces cerevisiae n 69 used for liquid yeast production |