SU1518373A1 - Method of producing immobilized tripsine - Google Patents
Method of producing immobilized tripsine Download PDFInfo
- Publication number
- SU1518373A1 SU1518373A1 SU874308764A SU4308764A SU1518373A1 SU 1518373 A1 SU1518373 A1 SU 1518373A1 SU 874308764 A SU874308764 A SU 874308764A SU 4308764 A SU4308764 A SU 4308764A SU 1518373 A1 SU1518373 A1 SU 1518373A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- concentration
- trypsin
- amino groups
- primary amino
- ferromagnetite
- Prior art date
Links
Landscapes
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к биотехнологии, а именно к получению иммобилизованного трипсина. Цель изобретени - упрощение процесса и повышение стабильности иммобилизованного трипсина. Способ заключаетс в обработке ферромагнетита с диаметром пор 80... 100А J-аминопропилтриэтоксисиланом до достижени концентрации первичных аминогрупп 140...200 мк/моль на 1/г сухого носител , модифицировании полученного производного глутаровым альдегидом, вз тым в 25...30 - кратном избытке по отношению к концентрации первичных аминогрупп носител , св зывании трипсина с носителем. Способ позвол ет упростить процесс получени иммобилизованного трипсина, а также увеличить его стабильность.This invention relates to biotechnology, in particular to the preparation of immobilized trypsin. The purpose of the invention is to simplify the process and increase the stability of the immobilized trypsin. The method consists in treating ferromagnetite with a pore diameter of 80 ... 100A with J-aminopropyltriethoxysilane until the concentration of primary amino groups reaches 140 ... 200 micron / mol per 1 / g of dry carrier, modifying the resulting derivative with glutaric aldehyde, taken in 25 ... 30 - fold excess in relation to the concentration of the primary amino groups of the carrier, binding of trypsin to the carrier. The method allows to simplify the process of obtaining immobilized trypsin, as well as to increase its stability.
Description
1one
(21)430876А/31-13(21) 430876A / 31-13
(22)01.10,87(22) 01.10,87
(46) 30.10.89. Бкш. Я- 40(46) 10/30/89. Bksh. I- 40
(71)Вильнюсский государственный университет им. В. Купсукаса(71) Vilnius State University V. Kupsukas
(72)В.Г. Бендикене, А.А, Раэюнас и Б«А. Юодка(72) V.G. Bendikene, A.A., Raeiūnas and B.A. Juodka
(53)577.15(088.8)(53) 577.15 (088.8)
(56)Введение в прикладную энциклопе, дию/Под ред. И.В. Березина(56) Introduction to the applied encyclopes, diu / Ed. I.V. Berezina
и К. Мартинека, М., МГУ, 1982, с. 112.and K. Martinek, M., Moscow State University, 1982, p. 112
Е. van Leemputten and М, Horisbe rger. Immobilization of enzymes on magnette particles. - Biotechnol, Bioeng. Vol. XYI, p. 385-396, 1974.E. van Leemputten and M, Horisbe rger. Immobilization of enzymes on magnette particles. - Biotechnol, Bioeng. Vol. XYI, p. 385-396, 1974.
(54)СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ИММОБИЛИЗОВАННОГО ТРИПСИНА(54) METHOD FOR OBTAINING IMMOBILIZED TRIPSINE
(57)Изобретение относитс к биотехнологии , а именно к получению иммобилизованного трипсина. Цель изобретени - упрощение процесса и повышение стабильности иммобилизованного трипсина. Способ заключаетс в обработке ф рромагнетита с диаметром пор 80-100 А -аминопропилтриэтоксн- силаном до достижени концентрации первичных аминогрупп I40-200 мкмоль на 1 г сухого носител , модифицирование полученного производного глутаровым альдегидом, вз тым в 25-30- кратном избытке по отношению к концентрации первичных аминогрупп носител , св зывании трипсина с носителем . Способ позвол ет упростить процесс получени иммобилизованного трипсина, а также увелнчить его стабильность .(57) The invention relates to biotechnology, namely to the preparation of immobilized trypsin. The purpose of the invention is to simplify the process and increase the stability of the immobilized trypsin. The method consists in treating phromomagnetite with a pore diameter of 80-100 A-aminopropyltriethoxysilane to achieve a concentration of primary amino groups of I40-200 µmol per 1 g of dry carrier, modifying the resulting derivative with glutaric aldehyde, taken in 25-30-fold excess relative to the concentration of the primary amino groups of the carrier, the binding of trypsin to the carrier. The method allows to simplify the process of obtaining immobilized trypsin, as well as increase its stability.
ёyo
слcl
Изобретение относитс к биотехнологии , в частности к способам получени иммобилизованных белков,и может найти применение в химической, фармацевтической , пищевой промышленности и в медицине дп проведени ферментативных реакций.The invention relates to biotechnology, in particular, to methods for producing immobilized proteins, and may find application in the chemical, pharmaceutical, food industry and medicine in dp carrying out enzymatic reactions.
Цель изобретени - упрощение процесса и повышение стабильности иммобилизованного трипсина.The purpose of the invention is to simplify the process and increase the stability of the immobilized trypsin.
Способ заключаетс в обработке ферромагнегита с диаметром пор 80- 100 X аминопропилтриэтоксисиланом (-АПТЭС) до достижени концентрации первичных аминогрупп 140-200 мкмоль на 1 г сухого носител , модификации полученного производного глутаровымThe method consists in treating ferromagnetite with a pore diameter of 80-100 X aminopropyltriethoxysilane (-APTES) to achieve a primary amino group concentration of 140-200 µmol per 1 g of dry carrier, modification of the resulting derivative with glutaric
альдегидом, вз тым в 25-30-кратном избытке по отношению к концентрации, первичных аминогрупп носител , св зывании трипсииа и удалении несв - завшегос белка отмыванием. Использование указанных приемов позвол ет иммобилизовать трипсин на носителе с ферромагнетитными свойствами и получить крг1йне стабильный препарат, сохран ющий неизменную активность в течение 24 мес и 50% активности через 36 мес.aldehyde, taken in a 25-30 fold excess relative to the concentration of the primary amino groups of the carrier, binding of the trypsia and removal of the unbound protein, which has been washed out. The use of these methods allows immobilizing trypsin on a carrier with ferromagnetite properties and obtaining a very stable preparation that retains unchanged activity for 24 months and 50% of activity after 36 months.
Предлагаемый способ проще известного , так как стади активации носител сокращена на одну стадию и в процессе активации исключено использование токсических веществ.The proposed method is easier known, since the stage of activation of the carrier is reduced by one stage and the use of toxic substances is excluded in the activation process.
елate
OD СО OD CO
СОWITH
Пример 1. Получение ферромаг- нетита. Частицы ферромагнетита коллоидных размеров получают осаждением водных растворов смеси солей двух- и трехвалентного железа, выбранных из групп сульфатов и хлоридов, растворами щелочи по известным методикам ,Example 1. Production of ferromagnetite. Ferromagnetite particles of colloidal sizes are obtained by precipitating aqueous solutions of a mixture of salts of bivalent and trivalent iron selected from the groups of sulfates and chlorides, solutions of alkali by known methods,
28 г сернокислого закисного желе- за (FeS04 ,0) раствор ют в 750 мл воды и 55,5 г ТЦ-хлорного железа ( ) раствор ют в 750 мл воды . Полученные растворы смешивают пр комнатной те.мпературе и Э1у смесь ввод т в 50 мл (избыток составл ет 27% от зквимол рного количества раствора аммиака) 25%-ного раствора аммиака Полученную смесь перемешивают и отстаивают в течение 1,5 ч, жидкость над осадком сливают в количестве 1,15 л, что составл ет 70% маточного раствора, быстро промывают двум порци ми воды по 500 мл 300 мл ацетона, порци ми по 150 мл смеси ацетон- i Jлvoл (в соотношении 4:1, 3:2, 2:3, i:4) и дважды толуоло по 150 мл и быстро используют дл дальнейших опытов. Диаметр пор фер- омагнетита 80-100 А.28 g of ferrous sulphate (FeS04, 0) are dissolved in 750 ml of water and 55.5 g of TCI ferric chloride () are dissolved in 750 ml of water. The resulting solutions are mixed at room temperature and the mixture is introduced into 50 ml (an excess of 27% from an equivalent amount of ammonia solution) of a 25% ammonia solution. The resulting mixture is stirred and settled for 1.5 hours, the liquid above the precipitate poured in an amount of 1.15 liters, which constitutes 70% of the mother liquor, is quickly washed with two portions of water in 500 ml each of 300 ml of acetone, portions in 150 ml of a mixture of acetone and i lvol (4: 1, 3: 2, 2: 3, i: 4) and twice toluolo in 150 ml and quickly used for further experiments. Ferromagnetite pore diameter 80-100 A.
Силанизаци ферромагнетита. Полученный магнетит высушивают (придержива его посто нным магнитом) фильтровальной бумагой, взвешивают и перенос т в круглодонную трехгор- лую колбу, снабженнуь:) механической мешалкой, термометром и холодильником , К магнетшу приливают раствор у-АЛТЭС в толуоле (соотношение ве- соных количеств магнетита, } -АЛТЭС и толуола 1:1:10) и кип т т при температуре кипени растворител в течение 10-25 ч (с перерывами)с После охлаждени смеси магнетит придерживают посто нным магнитом, раствор сливают, осадок промывают толуолом (порци ми по 100 мл 5-6 раз), затем тщательно этиловым спиртом (по 100 м 3-5 раз) и высушивают при комнатной температуре в чашке Петри,Silanization of ferromagnetite. The resulting magnetite is dried (holding it with a permanent magnet) with filter paper, weighed and transferred into a round-bottom three-neck flask, equipped with a mechanical stirrer :), thermometer and cooler. The y-ALTES solution in toluene (ratio of magnetite magnetite ,} -LATES and toluene 1: 1: 10) and boil at the boiling point of the solvent for 10-25 hours (intermittently). After the mixture is cooled, the magnetite is held with a permanent magnet, the solution is drained, the precipitate is washed with toluene ( 100 ml 5-6 times ), then thoroughly with ethyl alcohol (100 m by 3-5 times) and dried at room temperature in a Petri dish,
В силанизированньгх образцах магнетита (в зависимости от продолжени времени реакции с у -АПТЭС) определ ю концентрацию первичных аминогрупп в 1 г сухого магнетита,измер УФ-поIn silanized magnetite samples (depending on the prolongation of the reaction time with y-APTES), determine the concentration of primary amino groups in 1 g of dry magnetite, measure UV
глощение этанольного раствора салицилового альдегида до реакции с образцами и после нее. Затем рассчитывают концентрацию свободных первичных амис absorption of ethanol solution of salicylic aldehyde before reaction with samples and after it. Then calculate the concentration of free primary Amis
5 0 5 Q5 0 5 Q
c 0 5 Qc 0 5 Q
5five
ногрупп в мкмолих на I г сухого магнетита . ,foot groups in µmol on I g of dry magnetite. ,
При продолжении реакции силаниза- ции до 30 ч количество первичных аминогрупп на поверхности носител не увеличиваетс . Поэтому прод пение реакции сверх 25 ч нецелесообразно с экономической точки зрени , 15 зависимости от времени обработки v-АПТЭС кон1;ентраци аминогрупп варьирует от 70 до 200 мкмоль на 1 г носител .If the silanization reaction continues up to 30 hours, the number of primary amino groups on the surface of the carrier does not increase. Therefore, prolonging the reaction in excess of 25 hours is impractical from an economic point of view, 15 depending on the processing time of the v-APTES con1; the concentration of amino groups varies from 70 to 200 µmol per 1 g of carrier.
2,3 г силанизированного магнетита с концентрацией первичных аминогрупп 70 мкмоль/г промывают водой, заливают 25-кратным избытком (1,6 мк) (по отнотенню к молю первичных лмино- групп) глутарового альдег-ида f 25- кратный избыток глутарового апьдеги- да на моль первичшлх NH2-rpyi n подобран во избежание кросслинкинга -.)еж- ду д)зум молекулами ног:ител м r.fcne- кулы диальдегида ),; Затем прибапл ют 5,4 мл воды, перемешивают i ч при комнатной температуре, промывают водой путем декантации, придержива посто нным Muri-штом, затем двум порци ми по 15-20 мл 0,ОЛ М Са (СН цСОО) .j, К влажному моднфициро- ааниому глутарал ьдес идг м м ai i nnH- рованному MarHGTH v ирлбакл ь: г б мл раствора трипсиь а (концентраци Зел- ка 5 ) в 0,002 М :а (di з-;:ооУ . Суспензию 1еремешивают Hc i лел ,1ой бане Б течение 2 ч,, Магне ;: ti .;р зм1:1- ваюг начальным б7ФepIIЫ p i :TDOpO;4 до огоутстви 1 npONii-иэных водсчх -Jei - ка, измер емогс, при /VK-IHP ролны 280 им,2.3 g of silanized magnetite with a concentration of primary amino groups of 70 µmol / g is washed with water, poured with a 25-fold excess (1.6 microns) (by note on the prayer of the primary lminogroups) of glutaraldehyde f 25-fold excess of glutaral apdehy- yes per mole NH2-rpyi n primary is chosen to avoid cross-linking -.) every day e) zoom by foot molecules: it teldehyde dials) ,; Then, 5.4 ml of water is added, stirred for i h at room temperature, washed with water by decantation, keeping it constant with Muri-shtom, then in two portions of 15-20 ml of 0, OL M Ca (CH tsOO) .j, K Wet modular airoma glutaral δdesm and m ai i nnH-marhGTH v irlbach: g b ml of trypsi-a solution (concentration of Zelk 5) in 0.002 M: a (di 3 -; o oV. Suspension is mixed with Hc i lel , 1st bath B for 2 hours, Magne;: ti.; Pmm1: 1 - initial initial 7PepII pi: TDOpO; 4 up to 1 npONii-ienyh vodschh -Jei-ka, measure emogs, with / VK-IHP rolls 280 them,
И р и м е р 2, 2,3 г сипапизир - ванного магнетита с кокценграцией первичных аминогрупп 140 мкмоль/г, промывают водой, заливают 4 ил rjry- тарового альдегида, 3 мл воды, перс- г ешнвают 1 ч при комнатной температуре , промывают водой путем декантации, придержива магнетит посто нным Мгаг- нитом, затем двум порци ми по 15- 20 нл 0,002 М Са(СНзСОО)г. К влажному глутаральдегидом модифицированному магнетиту прибавл ют 6 мл раст- всфа трипсина (концентраци белка 5 иг/мл) в 0,002 М Ca(CH}COO). Сус- пензшо перемешивают на лед ной бане в течение 2 ч, Магнетиты промывают начальным буферным раствором до отсутстви в промьшных водах белка, измер емого при длине волны 280 нм.Both pimer 2, 2.3 g of succinic magnetite with primary amino groups co-centered with 140 µmol / g, washed with water, 4 ml of rjry-tallow aldehyde, 3 ml of water are poured, persisted for 1 h at room temperature, washed with water by decanting, holding the magnetite with constant Mgnitol, then in two portions of 15-20 nl each of 0.002 M Ca (CH3COO) g. To wet glutaraldehyde-modified magnetite, 6 ml of plant-tryfine rash (protein concentration 5 g / ml) in 0.002 M Ca (CH} COO) was added. The suspension is stirred in an ice bath for 2 h. Magnetites are washed with an initial buffer solution until protein is absent in industrial waters, measured at a wavelength of 280 nm.
5151
П р и м е р 3. 2,3 г сштапиэ ро- ванного маг)1етигн (пример 2) с концентрацией первичных аминогрупп 180 мкмоль/г, промывают водой, заливают 4,1 MJ1 глутарового альдегида, 2,9 мл воды, перемеш7-1нают 1 ч при комнатной температуре, промывают водой путем декантации, придержива маг нетит посто нным магнитом, затем двум порци ми по 15-20 мл 0,002 М Са(СНзСОО)-г. К влажному глутараль- дегидом модифицированному магнетиту прибавл ют 6 мл раствора трипсина (кошдентраци белка 5 мг/мл) в 0,002 М Са(СН-,СОО)2 . Суспензию перемешивают на лед ной бане в 2 ч, Магтгетиты промывают начальным буферным раствором до отсутстви в пром1-1вных водах белка, измер емого по длине волны 280 им,PRI me R 3. 2.3 g of the staped-up magician) method (example 2) with a primary amino group concentration of 180 μmol / g, washed with water, 4.1 MJ1 glutaraldehyde was poured, 2.9 ml of water, mixed 7 The 1-hour is at room temperature, washed with water by decanting, holding the magnet with a permanent magnet, then in two portions of 15-20 ml of 0.002 M Ca (CH3COO) -g. To wet glutaraldehyde-modified magnetite, add 6 ml of trypsin solution (protein concentration 5 mg / ml) in 0.002 M Ca (CH-, COO) 2. The suspension is stirred in an ice bath for 2 hours. Magghetites are washed with an initial buffer solution until they are absent in the industrial waters of the protein measured at 280 wavelengths,
П р и м е р 4, 2,3 силанизирован- но;о магнетита (пример 2) с концентрацией перзичф1х аминогрупп 200 мкмоль/г, пpo ывaют водой, заливают 5,6 мл глутарового альдегида, ),4 мл зоды, перемешивают 1 ч при комнатной температуре, промывают водой путем декантации, придержива магнетит посто нным магнитом, затем двум порци ми по 15-20 мл 0,002 М Са (СН ;|СОО) 3 . К влажному глутаральде- гидом модифицированному магнетиту прибавл ют 5 мл раствора трипсина (концентраци белка 5 мг/мл) и 0,02 Са(СНзСОО)о, Суспензию перемешивают на лед ной бане в течение 2 Чз Магне титы промывают начальным буферным раствором до отсутстви в промывных водах белка, измер емого при длине волны 280 нм.EXAMPLE 4, 2.3 SILANIZED; about magnetite (example 2) with a concentration of percyph amino groups of 200 μmol / g, they are pushed with water, 5.6 ml of glutaraldehyde are poured,), 4 ml of zod, mixed 1 at room temperature, washed with water by decantation, holding the magnetite with a permanent magnet, then in two portions of 15-20 ml of 0.002 M Ca (CH; | COO) 3. To a wet glutaraldehyde of modified magnetite, 5 ml of trypsin solution (5 mg / ml protein concentration) and 0.02 Ca (CH3COO) o are added, the suspension is stirred in an ice bath for 2 times. Magnetites are washed with an initial buffer solution until no. protein wash waters, measured at 280 nm.
В зависимости от концентрации первичных аминогрупп на поверхности силанизированного магнетита (при сохранении идентичных условий иммобилизации дл всех исследуемых образцов ) резко мен етс количество иммобилизованного белка Так, при концентрации 70 мкмоль/г, иммобилизуетс лишь 0,45 мг/г, а при концентрации 140, 180 и 200 мкмоль/г - 1,8; 2,5 и 2,8 мг/г белка соответственноо Таким образом, оптимальным количеством первичных МН2 групп дл св зывани наибольшего количества белка вл етс 140-200 мкмоль на 1 г сухого носител . Кроме того, верхним пределом концен грации вл етс как раз 200 мкмоль/г, так как при продолже3736Depending on the concentration of primary amino groups on the surface of the silanized magnetite (while maintaining identical immobilization conditions for all the samples), the amount of immobilized protein drastically changes. So, at a concentration of 70 µmol / g, only 0.45 mg / g is immobilized, and at a concentration of 140, 180 and 200 μmol / g - 1.8; 2.5 and 2.8 mg / g protein, respectively. Thus, the optimal amount of primary MH2 groups for binding the largest amount of protein is 140-200 µmol per 1 g of dry carrier. In addition, the upper limit of the concentration is just 200 µmol / g, since during continuation
НИИ нремени силанизации больше 25 ч, количество вводимых аминогрупп не мен етс . Эффективность иммобилизации при добавлении 25- или 30-кратного избытка глутарового альдегида одинакова.The scientific research institute of silanization time is more than 25 hours; the amount of amino groups introduced does not change. The efficiency of immobilization with the addition of a 25-or 30-fold excess of glutaraldehyde is the same.
Эстеразную активность определ ют со специфическим субстратом 4-нитро- Q анилиДОМ-N-бензоил-DL-аргинина (BApNA).Esterase activity is determined with a specific substrate 4-nitro-Q anilide-N-benzoyl-DL-arginine (BApNA).
Удельна активность трипсина определ етс количеством мкмолей п-нитро5 анилина, образовавшегос во врем ферментативного гидролиз-а субстрата за 2 мин при 37°С, при рН 8,2 на 1 мг белка.The specific activity of trypsin is determined by the number of moles of p-nitro5 aniline formed during the enzymatic hydrolysis of the substrate for 2 minutes at 37 ° C, at a pH of 8.2 per 1 mg of protein.
Полученный препарат иммобилизован0 ного трипсина хранитс в течение двух лет без потери активности, а-через три года его активность ст жаетс на 50%.The resulting preparation of immobilized trypsin is stored for two years without loss of activity, and after three years its activity is reduced by 50%.
Термостабильность полученного пре5 парата вьпие изпесть ого при температуре в течение 1 ч, активность препаратов падает соответственно на 50 и 70%.The thermostability of the obtained preparation is higher than at temperature for 1 h, the activity of preparations decreases by 50 and 70%, respectively.
Таким образом, использование предQ лагаемого способа позвол ет существенно упростить процесс получени целевого продукта за счет ис лючени одной стадии активации носител и проведени процесса сез использовани токсических веществ. Кроме тог о, полученные препарат г иммобилизованного трилс;ина обладают повьпиеннои термостабильностью и высокой стабильностью при хранении.Thus, the use of the proposed method significantly simplifies the process of obtaining the target product by eliminating one stage of carrier activation and carrying out the process of using toxic substances. In addition to this, the obtained preparation of immobilized trilles; ina has thermal stability and high storage stability.
00
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874308764A SU1518373A1 (en) | 1987-10-01 | 1987-10-01 | Method of producing immobilized tripsine |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874308764A SU1518373A1 (en) | 1987-10-01 | 1987-10-01 | Method of producing immobilized tripsine |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1518373A1 true SU1518373A1 (en) | 1989-10-30 |
Family
ID=21328760
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU874308764A SU1518373A1 (en) | 1987-10-01 | 1987-10-01 | Method of producing immobilized tripsine |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1518373A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2484178C2 (en) * | 2011-09-08 | 2013-06-10 | Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Биохимической Физики Им. Н.М. Эмануэля Российской Академии Наук (Ибхф Ран) | Method of producing protein coatings on surface of solid bodies containing mixed valence metal ions |
-
1987
- 1987-10-01 SU SU874308764A patent/SU1518373A1/en active
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2484178C2 (en) * | 2011-09-08 | 2013-06-10 | Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Биохимической Физики Им. Н.М. Эмануэля Российской Академии Наук (Ибхф Ран) | Method of producing protein coatings on surface of solid bodies containing mixed valence metal ions |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Quiocho et al. | Intermolecular cross linking of a protein in the crystalline state: carboxypeptidase-A | |
Britland et al. | Micropatterning proteins and synthetic peptides on solid supports: a novel application for microelectronics fabrication technology | |
US6004786A (en) | Inorganic carrier containing bound silane coupling agent having carboxylic-ester group for immobilizing lipase | |
RU2124052C1 (en) | Crystal of protein cross-linked with multifunctional cross-linking age (versions), device containing this crystal, and method for preparing aspartame | |
CA1212058A (en) | High-surface-area systems for immobilization of substrates containing nucleophilic groups | |
JPH03505222A (en) | Method for immobilizing proteins, peptides, coenzymes, etc. on carriers | |
US20180036702A1 (en) | Microparticles | |
White et al. | Popular matrices for enzyme and other immobilizations | |
CN112980807B (en) | Method for constructing immobilized multienzyme system based on interaction between DNA (deoxyribonucleic acid), graphene oxide and metal organic framework material | |
SU1518373A1 (en) | Method of producing immobilized tripsine | |
JP2000139459A (en) | Ultrastabilized enzyme | |
JPWO2003074691A1 (en) | Cell and liposome immobilization body and immobilization method thereof | |
Tümtürk et al. | Immobilization of invertase attached to a granular dimer acid-co-alkyl polyamine | |
Iyengar et al. | Urease bound to chitin with glutaraldehyde | |
JPH03290443A (en) | Continuously foamed cellulosic molded material containing functional group having ion exchangeability | |
Robinson et al. | Dependence of amine-accelerated silicate condensation on amine structure | |
Kennedy | The tate and lyle carbohydrate chemistry award lecture. transition-metal oxide chelates of carbohydrate-directed macromolecules | |
KR20200034696A (en) | enzyme-metal hybrid nanoflowers and its application in repeated batch decolorization of dyes | |
Kennedy et al. | Immobilisation of biocatalysts by metal-link/chelation processes | |
DE69825896T2 (en) | PROCESS FOR COVALENT IMMOBILIZATION OF BIOMOLECULES ON A CARRIER BY MEANS OF A HIS-TAG | |
Letts et al. | Chemical modification of mushroom tyrosinase for stabilization to reaction inactivation | |
RU2126012C1 (en) | Process for preparing water-soluble oligosaccharides | |
RU2065877C1 (en) | Process for preparing affinic sorbent for purifying proteinases | |
Sungur et al. | Immobilization of urease into carboxymethylcellulose-gelatine system | |
SU1500670A1 (en) | Method of immobilized proteins |