SU1482942A1 - Method of primary extraction of effective strains of soya-bean tuber bacteria - Google Patents

Method of primary extraction of effective strains of soya-bean tuber bacteria Download PDF

Info

Publication number
SU1482942A1
SU1482942A1 SU874205849A SU4205849A SU1482942A1 SU 1482942 A1 SU1482942 A1 SU 1482942A1 SU 874205849 A SU874205849 A SU 874205849A SU 4205849 A SU4205849 A SU 4205849A SU 1482942 A1 SU1482942 A1 SU 1482942A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
strains
soybean
plants
bacteria
days
Prior art date
Application number
SU874205849A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Владимир Арнольдович Тильба
Степан Алексеевич Бегун
Елена Васильевна Садовская
Original Assignee
Всероссийский научно-исследовательский институт сои
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всероссийский научно-исследовательский институт сои filed Critical Всероссийский научно-исследовательский институт сои
Priority to SU874205849A priority Critical patent/SU1482942A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1482942A1 publication Critical patent/SU1482942A1/en

Links

Landscapes

  • Pretreatment Of Seeds And Plants (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к сельскохоз йственной микробиологии и может быть использовано дл  первичного отбора эффективных штаммов клубеньковых бактерий сои. Целью изобретени   вл етс  повышение достоверности первичного отбора эффективных штаммов клубеньковых бактерий сои. Способ заключаетс  в инокул ции стерильных сем н сои исследуемыми штаммами бактерий RHIZOBIUM, выращивании растений в стерильных дл  корневой системы услови х в течение 15-20 сут. до по влени  клубеньков, затем пересадке растений в почву с природной попул цией клубеньковых бактерий сои и выращивании в течение 30-40 сут., определении сухой массы надземной части растений и отборе эффективных штаммов по наибольшей прибавке сухой массы растений. Способ позвол ет по сравнению с известными лабораторными, вегетационными и полевыми способами повысить достоверность первичного отбора эффективных штаммов клубеньковых бактерий дл  последующей селекционной работы с ними и при этом снизить трудозатраты. 6 табл.The invention relates to agricultural microbiology and can be used for the initial selection of effective strains of soybean nodule bacteria. The aim of the invention is to increase the reliability of the primary selection of effective strains of soybean nodule bacteria. The method consists in inoculation of sterile soybean seeds with the tested strains of bacteria RHIZOBIUM, cultivating plants in conditions that are sterile for the root system for 15–20 days. until the emergence of nodules, then transplanting plants into the soil with the natural population of soybean nodule bacteria and growing for 30–40 days, determining the dry mass of the aerial parts of plants and selecting effective strains according to the greatest increase in the dry mass of plants. The method allows, in comparison with the known laboratory, vegetative and field methods, to increase the reliability of the initial selection of effective strains of nodule bacteria for subsequent selection work with them and at the same time to reduce labor costs. 6 tab.

Description

Изобретение относитс  к сельскохоз йственной микробиологии и может быть использовано дл  первичного отбора эффективных штаммов клубеньковых бактерий сои.The invention relates to agricultural microbiology and can be used for the initial selection of effective strains of soybean nodule bacteria.

Цель изобретени  - повышение достоверности первичного отбора эффективных штаммов клубеньковых бактерий сои.The purpose of the invention is to increase the reliability of the primary selection of effective strains of soybean nodule bacteria.

Способ заключаетс  в инокул ции стерильных сем н сои исследуемыми штаммами бактерий Phizobium, выращивание растений на 1 этапе в стерильных дл  корневой системы услови х в течение 15-20 сут до по влени  клубеньков на корн х растений, пересадке на 2 этапе растений в почву с природной попул цией клубеньковых бактерий сои и выращивание в течение 30-40 сут, определение сухой массы надземной части растений и отборе эффективных штаммов бактерий по наибольшей прибавке сухой массы растений .The method consists in inoculation of sterile soybean seeds with the studied strains of Phizobium bacteria, cultivation of plants at stage 1 under sterile conditions for the root system for 15–20 days until nodules appear on the roots of plants, transplanted at stage 2 into plants with natural the population of soybean nodule bacteria and cultivation for 30–40 days, the determination of the dry mass of the aerial parts of plants and the selection of effective strains of bacteria by the greatest increase in the dry mass of plants.

Пример. В пробирку диаметром 21 мм и высотой 200 мм помещают полоску фильтровальной бумаги (ширина 200, высота 150 мм), сложенную гармошкой и затем свернутую в рулон. Дл  поддержани  влажности вокруг сем н в верхней части рулона делают углубление . В пробирку внос т 20-30 млExample. In a test tube with a diameter of 21 mm and a height of 200 mm put a strip of filter paper (width 200, height 150 mm), folded accordion and then rolled into a roll. A recess is made in the upper part of the roll to maintain moisture around the seeds. 20-30 ml are added to the tube.

1СЬ1СЬ

0000

toto

СО 4ь 1CCO 4b 1C

питательной среды дл  растений следующего состава, г/л: KtHPO 1,0; MgS04 1,0, CaS04 0,5, FeS04,H,BO,, MnS04, и соль молибдена следы.nutrient medium for plants of the following composition, g / l: KtHPO 1.0; MgS04 1.0, CaS04 0.5, FeS04, H, BO ,, MnS04, and molybdenum salt traces.

Пробирку закрывают и стерилизуют в автоклаве при 1 атм 30 мин. В подготовленную пробирку с фильтровальной бумагой высаживают по одному стерильному семени сои и внос т 1 мл суспензии клубеньковых бактерий сои с содержанием 1 млн. клеток/мл. Б контрольные пробирки внос т 1 мл стерильной воды. Пробирки, закрытые ватными пробками, термостатируют в течение 3-5 сут при 25-27°С до прорастани  сем н сои. Затем их выставл ют на стеллажи с дополнительным освещением. Дл  затенени  корневой системы растений на пробирки одевают колпачки из плотной бумаги или темной пленки. В день выхода сем долей из пробирки ватные пробки снимают, а вокруг стебл  укладывают фильтр из ваты. По мере необходимости соблю- дал стерильность, в каждую пробирку дополнительно внос т по 10-20 мл питательного раствора. Растение сои в пробирках со стерильной корневой системой выращивают в течение 15- 30 сут. Вы влено, что дл  образовани  клубеньков на корн х за счет искусственной инокул ции достаточно выращивани  растений сои в пробирках в течение 15-20 сут. К этому времени на корн х сои насчитывают в среднем 7-11 клубеньков в расчете на одно растение. Более короткий промежуток времени выращивани  растений в пробирках (менее 15 сут) не в полной мере обеспечивает образование клубеньков на корн х сои. Достоверность данных провер ют по отсутствию клубеньков на корн х неинокули- рованных растений сои. На каждом ва- рианте выращивают не менее 15 растений сои.The tube is closed and sterilized in an autoclave at 1 atm. 30 min. One sterile soybean seed is planted in a prepared test tube with filter paper and 1 ml of a suspension of soybean nodule bacteria containing 1 million cells / ml is added. B control tubes are added with 1 ml of sterile water. The tubes, closed with cotton plugs, are thermostated for 3-5 days at 25-27 ° C until germination of soybean seeds. They are then placed on racks with additional lighting. For shading the root system of plants, caps of thick paper or dark film are put on the tubes. On the day of the release of this lobe from the tube, the cotton plugs are removed, and around the stem the filter is placed with cotton wool. As required, he observed sterility; 10-20 ml of nutrient solution was additionally added to each tube. The soybean plant in test tubes with a sterile root system is grown for 15-30 days. It was found that for the formation of nodules on the roots due to artificial inoculation, it is enough to grow soybean plants in test tubes for 15–20 days. By this time, an average of 7-11 nodules per soybean root is calculated per plant. A shorter period of time for growing plants in test tubes (less than 15 days) does not fully ensure the formation of nodules on soybean roots. The accuracy of the data is checked by the absence of nodules on the roots of non-inoculated soybean plants. At least 15 soybean plants are grown in each variant.

На втором этапе способа 15-20-су точные растени  сои с клубеньками на корн х извлекают из пробирки и сразу же пересаживают в почву с природной попул цией специфичных клубеньковых бактерий. Пересаженные в почву предварительно инфицированные растени  сои некоторое врем  устойчивы к вторичному заражению клубеньковыми бактери ми , обитающими в почве. Этого времени достаточно дл  про влени At the second stage of the method, 15–20 soo-exact soybean plants with nodules on the roots are removed from the tube and immediately transplanted into the soil with a natural population of specific nodule bacteria. The previously infected soybean plants that have been transplanted into the soil have been resistant to secondary infection with nodule bacteria found in the soil for some time. This time is enough to show

эффективности исследуемых штаммов клубеньковых бактерий сои.the effectiveness of the studied strains of soybean nodule bacteria.

После высадки растений сои в почву провод т первичный полив. В течение 30-50 сут растени  сои выращивают в почве с естественными (поле) или искусственными (теплица) услови ми . По приросту сухого вещества надземной массы сои определ ют эффективность испытываемых штаммов клубеньковых бактерий. / В опыте были изучены штаммы клубеньковых бактерий сои Rhizobium japonicum-646, 648а, 639а, ТС-37, ТД-55, АС-17 (табл.1.).After the planting of soybean in the soil, primary watering is carried out. For 30–50 days, soybean plants are grown in soil with natural (field) or artificial (greenhouse) conditions. The efficiency of the tested strains of nodule bacteria is determined by the increase in the dry matter of the above-ground soybean mass. / In the experiment, strains of soybean nodule bacteria Rhizobium japonicum-646, 648a, 639a, TC-37, TD-55, AC-17 (Table 1.) Were studied.

Испытание указанных штаммов сои лабораторно-полевым способом показало их существенно разную эффективность в повышении массы сухого вещества надземной части растений. Так штаммы 648а и 639а дают прирост сухого вещества надземной массы сои в 2,1-2,5 раза и более эффективны в сравнении с известным штаммом 646,The testing of these soybean strains by a laboratory-field method showed their substantially different efficacy in increasing the dry matter mass of the aerial parts of plants. So strains 648a and 639a give an increase in the dry matter of the above-ground mass of soybean by 2.1-2.5 times and are more effective in comparison with the known strain 646,

Определение длительности лабораторного и полевого этапа выращивани  сои в способе.Determination of the duration of the laboratory and field stages of soybean cultivation in the method.

При отработке способа установлено по вление клубеньков на корн х сои на первом этапе на 12-15 сут после посева инокулированных сем н в пробирки .When developing the method, the occurrence of nodules on soybean roots was established at the first stage for 12–15 days after sowing inoculated seeds into test tubes.

Однако некоторые штаммы клубеньковых бактерий через указанный выше период времени вызывали образование клубеньков на корн х сои только у 78-95% растений. При увеличении первого периода до 20 сут клубеньки на корн х сои отмечают практически у всех растений. Поэтому первый этап способа ограничивают 15-20 сут выращивани  сои в стерильных пробирках.However, some strains of nodule bacteria after the above period of time caused the formation of nodules on soybean roots in only 78-95% of the plants. With an increase in the first period to 20 days, nodules on soybean roots are noted in almost all plants. Therefore, the first stage of the process is limited to 15-20 days of growing soybeans in sterile tubes.

Оптимальна  продолжительность выращивани  пересаженных в почву растений сои (второй этап способа) составл ет 30-40 сут (табл.2). При увеличении продолжительности выращивани  растений сои на втором этапе способа заметно снижаетс  эффективность искусственной инокул ции. Более коротка  продолжительность выращивани  растений сои не обеспечивает оптимального про влени  эффективности испытываемых штаммов клубеньковых бактерий. The optimal duration of growing soybean plants transplanted into the soil (the second stage of the method) is 30-40 days (Table 2). With an increase in the duration of growing soybean plants in the second stage of the process, the efficiency of artificial inoculation is noticeably reduced. The shorter duration of growing soybean plants does not provide an optimal manifestation of the effectiveness of the tested strains of nodule bacteria.

Сравнительна  оценка способов первичного отбора эффективных штаммов клубеньковых бактерий сои.Comparative evaluation of the methods for the initial selection of effective strains of soybean nodule bacteria.

Первичный отбор эффективных штаммов бактерий сои R.japonicum провод т известным лабораторным и лабора- торно-полевыми способами.The primary selection of effective strains of the R. japonicum soybean bacteria is carried out by known laboratory and laboratory-field methods.

Описание постановки опыта согласно лабораторно-полевому способу описано выше, при этом используют сорт сои ВНИИС-1.The description of the experiment according to the laboratory-field method is described above, using the soybean variety VNIIS-1.

В анализируемых способах испытывают примерно одинаковое количество штаммов клубеньковых бактерий сои с различной эффективностью. В качестве стандарта-эталона используют известный эффективный штамм 646.In the analyzed methods have approximately the same number of strains of nodule bacteria of soybean with different efficacy. As a standard standard, use the known effective strain 646.

При использовании известного лабораторного способа с трем  видамиWhen using the known laboratory method with three types

Известный лабораторный способ пер- 10 субстрата только в песчаной культуреKnown laboratory method per- 10 substrates only in sand culture

вичного отбора штаммов бактерий сои, заключаетс  в выращивании инокулнро- ванных растений в сосудах емкостью 1 л на стерильной агаризованной среде , песчаной культуре или почве. The primary selection of soybean bacterial strains is the cultivation of inoculated plants in 1 liter vessels on sterile agar medium, sand culture or soil.

Агаризованна  среда представл ет собой раствор Пр нишникова с 0,1 нормой азота и добавлением 2% агар-агара . Этот же раствор, но без агар- агара используют дл  песчаной культуры. Приготовленные сосуды с субстратами стерилизуют при 2 атм в течение 30 мин. В сосудах с песком и почвой поддерживают влажность на уровне 70% от полной влаго- емкости. Семена сои инокулируют из расчета 1 млн. бактериальных клеток на 1 сем . Используют сорт сои ВНИИС-1. В каждом сосуде оставл ют по 4 растени , которые выращивают 30-40 сут. Дальнейшее выращивание растений сои ограничивают возможност ми емкости сосудов, а также высокой агрессивности природных Phizo- bium japonicum. Использование многолитровых сосудов резко снижает объем испытываемых штаммов, что недопустимо при первичном отборе.The agar medium is Prishnikova solution with 0.1 norm of nitrogen and the addition of 2% agar-agar. The same solution, but without agar-agar, is used for sand culture. The prepared vessels with the substrates are sterilized at 2 atm for 30 minutes. In vessels with sand and soil, humidity is maintained at 70% of the full moisture capacity. Soybean seeds are inoculated at the rate of 1 million bacterial cells per 1 seed. Use a grade of soy VNIIS-1. In each vessel, 4 plants are left that are grown for 30-40 days. Further cultivation of soybean plants is limited by the capacity of the vessels, as well as the high aggressiveness of natural Phizobium japonicum. The use of multi-liter vessels dramatically reduces the volume of the tested strains, which is unacceptable during the initial selection.

В лабораторно-полевом способе первичного отбора эффективных штаммов клубеньковых бактерий сои также использовалс  сорт ВНИИС-1. Семена инокулировались из расчета 1 млн./мл клеток на одно сем .In the laboratory-field method of primary selection of effective strains of soybean nodule bacteria, the VNIIS-1 variety was also used. Seeds were inoculated at the rate of 1 million / ml of cells per one seed.

Предлагаемьй способ состоит из двух этапов - лабораторного и полевого . В услови х лаборатории бактеризованные растени  сои выращивали в пробирках на фильтровальной бумаге до фазы образовани  клубеньков в течение 15-20 сут. За счет выращивани  растений сои со стерильной корневой системой в пробирках удаетс  резко увеличить количество испытываемых штаммов.The proposed method consists of two stages - laboratory and field. Under laboratory conditions, bacterized soybean plants were grown in test tubes on filter paper to the nodule formation phase for 15–20 days. By growing soybean plants with a sterile root system in test tubes, it is possible to dramatically increase the number of test strains.

Сравнива  известный (лабораторный) и лабораторно-полевой способы первичного отбора (табл.3), отмечают значительные преимущества последнего.Comparing the known (laboratory) and laboratory-field methods of primary selection (Table 3), note the significant advantages of the latter.

удаетс  отобрать минимальное количество штаммов клубеньковых бактерий сои дл  последующих испытаний в полевых опытах. В сосудах, где используют в качестве субстрата агар-агар и почву, искусственна  инокул ци  сем н сои не оказывает положительного вли ни  на продуктивность растений . В среднем из 45 испытываемыхIt is possible to select the minimum number of strains of soybean nodule bacteria for subsequent trials in field trials. In vessels, where agar-agar and soil are used as a substrate, artificial inoculation of soybean seeds does not have a positive effect on plant productivity. On average, out of 45 tested

штаммов известным способом только 2% повышают продуктивность растений сои на 25% в сравнении с контролем. В то же врем  при испытании этих же штаммов лабораторно-полевым способом 61% бактериальных культур повышают продуктивность растений сои более чем на 25% табл.З).strains in a known manner only 2% increase the productivity of soybean plants by 25% in comparison with the control. At the same time, when testing these same strains using a laboratory-field method, 61% of bacterial cultures increase the productivity of soybean plants by more than 25% of the table. 3).

Способ позвол ет вы вить штаммы, вызывающие повышение продуктивностиThe method allows to identify strains that cause an increase in productivity.

растений сои в 2-2,5 раза по сравнению с контролем. Это дает возможность вести первичный отбор наиболее эффективны:: штаммов клубеньковых бактерий сои дл  последующе окончательного их испытани  в полевых опытах (табл.4).soybean plants 2-2.5 times compared to control. This makes it possible to conduct the primary selection of the most effective :: strains of soybean nodule bacteria for subsequent final testing in field experiments (Table 4).

Такие данные приведены в табл.4 по сравнительному анализу эффективности штаммов лабораторно-полевым иThese data are given in Table 4 for a comparative analysis of the effectiveness of laboratory-field and

известным способом проведени  первичного отбора.a known method of conducting the primary selection.

Известный штамм 646 не эффективный при испытании его известным лабораторным способом с субстратамиKnown strain 646 is not effective when tested in a known laboratory method with substrates

агар-агар, песок,почва. Использование нового способа эффективности этого штамма подтверждаетс .agar-agar, sand, soil. The use of the new method of the effectiveness of this strain is confirmed.

Штаммы 648а, 639а, ТС-37, ТД-55, АС-17, испытываемые известным способом ,  вл ютс  слабо эффективными или не эффективными. При испытании их лабораторно-полевым способом эти штаммы показывают высокую эффективность . Так, штаммы 648а и 639аStrains 648a, 639a, TC-37, TD-55, AC-17, tested in a known manner, are poorly effective or not effective. When tested by their laboratory-field method, these strains show high efficiency. So, strains 648a and 639a

увеличивают прирост сухого вещества надземной массы сои в 2,1-2,5 раза.increase the increase in dry matter aboveground mass of soybeans 2.1-2.5 times.

Сравнива  результаты, полученные лабораторным и лабораторно-полевымComparing the results obtained by laboratory and laboratory-field

способами первичного отбора перспективных штаммов, установлены значительные преимущества последнего. Способ позвол ет резко подн ть результативность и достоверность первичного отбора новых штаммов клубеньковых бактерий сои, он менее трудоемок , дает возможность вести отбор штаммов не только в летний (поле), но и зимний (теплица) периоды, что ускор ет селекционный процесс.by means of the primary selection of promising strains, the significant advantages of the latter have been established. The method allows a dramatic increase in the effectiveness and reliability of the initial selection of new strains of soybean nodule bacteria, it is less laborious, it makes it possible to select strains not only in the summer (field), but also in the winter (greenhouse) periods, which accelerates the selection process.

В табл.5 .показаны результаты вегетационного опыта по оценке эффективности штаммов ризобий сои. В сравнении с лабораторно-полевым способом, в котором дл  этих штаммов установлены существенные различи  в эффективности различных штаммов от -«-9 до +257%, в вегетационном опыте по приросту фитомассы эффективность штаммов значительно более близка  (от -13 до +11 % разница по отношению к контролю). По признаку зерновой продуктивности изменени  по сравнению с контролем составл ют -2 до +8%.гTable 5 shows the results of the vegetation experiment to assess the effectiveness of soybean rhizobia strains. In comparison with the laboratory-field method, in which for these strains there are significant differences in the effectiveness of different strains from - "- 9 to + 257%, in the vegetative experiment on the increase of phytomass, the effectiveness of the strains is much closer (from -13 to +11% the difference in relation to the control). On the basis of the grain productivity, the changes in comparison with the control are -2 to + 8% .g

Трудозатраты при проведении вегетационного опыта (40 сосудов Вагнера) 30 составл ют (без закладки и учета урожа ) 96 человекодней, тогда как при лабораторно-полевом способе (40- вариантный опыт) 24 человекодн  на весь объем работ.Labor costs during the vegetation experiment (40 Wagner vessels) 30 make up (without laying out and taking into account the crop) 96 man-days, whereas with the laboratory-field method (40-variant experiment) 24 man-days for the whole work.

При вы влении эффективности штаммов ризобий в полевом опыте (10-ти вариантна  схема, обща  площадь дел нки 50 м2) общие затраты достигают 120 человекодней при учете зерновой до продуктивности и 60-70 человекодней при учете показател  прироста и достоверность полученных данных по сравнению с лабораторно-полевым опытом также значительно ниже (табл.6). 45When revealing the effectiveness of rhizobia strains in the field experiment (10 variant scheme, total area of 50 m2), total costs reach 120 man-days when taking into account grain to productivity and 60-70 man-days when taking into account the growth rate and reliability of the data obtained compared to laboratory -field experience is also significantly lower (Table 6). 45

Таким образом, лабораторно-поле- вой способ первичного отбора эффективных штаммов клубеньковых бакте- рий сои позвол ет в сравнении с известными способами повысить объективность отбора и снизить трудозатраты .Thus, the laboratory-field method of the primary selection of effective strains of soybean nodule bacteria allows, in comparison with known methods, to increase the objectivity of selection and reduce labor costs.

Claims (1)

Формула изобретени Invention Formula Способ первичного отбора эффективных штаммов клубеньковых бактерий сои, включающий инокул цию стерильных сем н растений исследуемыми штаммами бактерий рода Khizobium, выращивание растений в стерильных дл  корневой системы услови х, определение массы сухого вещества надземной части растений с последующим отбором штаммов бактерий по наибольшей прибавке сухой массы растений, отличающийс  тем, что, с целью повышени  достоверности способа , выращивание инокулированных растений в стерильных услови х осуществл ют в течение 15-20 сут, затем растени  пересаживают в почву с природной попул цией клубеньковых бактерий сои и выращивают 30-40 сут.The method of primary selection of effective strains of soybean nodule bacteria, including the inoculation of sterile plant seeds with the tested strains of bacteria of the genus Khizobium, growing plants under sterile conditions for the root system, determining the dry matter mass of the aerial part of plants, followed by the greatest increase in the dry weight of plants , characterized in that, in order to increase the reliability of the method, growing inoculated plants under sterile conditions is carried out for 15-20 days, then asthenia transplanted into the soil with a population of natural soybean root nodule bacteria and grown 30-40 days. Т а в л и цT a to l and c 1one ШтаммыStrains Масса надземной части сои, % к контролюMass of above-ground part of soy,% of control стный costly 178 257 219 145 109 148178 257 219 145 109 148 Таблица 2table 2 онтроль 6390 ТС-31 АС-37 ТС-37 ТД-73 АС-17 АС-20 АС-26- ЗД-4control 6390 TS-31 AS-37 TS-37 TD-73 AS-17 AS-20 AS-26-ZD-4 19,1 18,6 21,2 20,4 19,9 20,0 21,1 18,8 19,1 20,019.1 18.6 21.2 20.4 19.9 20.0 21.1 18.8 19.1 20.0 100 87 111 107 104 105 110 98 100 105100 87 111 107 104 105 110 98 100 105 НСР . 1,6 г/сосуд,NSR 1.6 g / vessel Та-б лица 3That person 3 Таблица 4Table 4 9,69.6 9,49.4 10,510.5 10,310.3 9,89.8 9,6 9.6 10,410.4 9,59.5 9,59.5 9,79.7 100100 9898 109109 107107 102102 100100 108108 9999 9999 101101 9,59.5 9,29.2 10,710.7 10,110.1 10,110.1 10,410.4 10,710.7 9,39.3 9,69.6 10,310.3 5Х 0,5 г5 x 0.5 g 6,8 7,6 7,2 6,6 6,2 5,5 6,2 7,6 7,36.8 7.6 7.2 6.6 6.2 5.5 6.2 7.6 7.3 Надземна  суха  масса , г 6,8 1-а  фаза плодообразовани , % к контролю 100 Урожай- сем нAbove-ground dry weight, g 6.8 1-and the phase of fruit formation,% to control 100 Yield сои, ц/га 18,03 18,13 19,01 17,13 17,79 18,15 16,6318,1318,5517,5 % к контролюsoybeans, t / ha 18.03 18.13 19.01 17.13 17.79 18.15 16.6318.1318.5517.5% to control 100 112 106 97100 112 106 97 9191 81 91 112 10781 91 112 107 100100 100 105100 105 9595 99 101 103 100 103 9799 101 103 100 103 97 НСР05. 2,33 ц/га (13%) х 0,81 ц (4,5%)NCP05. 2.33 c / ha (13%) x 0.81 c (4.5%) Т а б л и ц а 6T a b l and c a 6 9191 81 91 112 10781 91 112 107 7,13 17,79 18,15 16,6318,1318,5517,5 7.13 17.79 18.15 16.6318.1318.5517.5 9595 99 101 103 100 103 9799 101 103 100 103 97
SU874205849A 1987-03-04 1987-03-04 Method of primary extraction of effective strains of soya-bean tuber bacteria SU1482942A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU874205849A SU1482942A1 (en) 1987-03-04 1987-03-04 Method of primary extraction of effective strains of soya-bean tuber bacteria

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU874205849A SU1482942A1 (en) 1987-03-04 1987-03-04 Method of primary extraction of effective strains of soya-bean tuber bacteria

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1482942A1 true SU1482942A1 (en) 1989-05-30

Family

ID=21289196

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU874205849A SU1482942A1 (en) 1987-03-04 1987-03-04 Method of primary extraction of effective strains of soya-bean tuber bacteria

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1482942A1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2592677C2 (en) * 2014-12-19 2016-07-27 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский институт кормов имени В.Р. Вильямса" METHOD FOR SELECTING EFFECTIVE STRAINS OF LEGUME BACTERIA Rhizobium loti L CAPABLE OF EFFECTIVE SYMBIOSIS WITH LADYFINGER

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Интенсификаци возделывани сои на Дальнем Востоке. Новосибирск, 1984, с. 17-26. Сэги И. Методы почвенной микробиологии. М,: Колос, 1983, с. 296. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2592677C2 (en) * 2014-12-19 2016-07-27 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский институт кормов имени В.Р. Вильямса" METHOD FOR SELECTING EFFECTIVE STRAINS OF LEGUME BACTERIA Rhizobium loti L CAPABLE OF EFFECTIVE SYMBIOSIS WITH LADYFINGER

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Baylis et al. The mycorrhizal nodules of podocarps
Paine STUDIES IN BACTERIOSIS II¹.
CN105886451B (en) Single spore separation method of phytophthora capsici zoospores
Theodorou et al. Influence of temperature on the mycorrhizal associations of Pinus radiata D. Don
Htay et al. Biological control of crown gall: seed and root inoculation
CN111357566A (en) Method for quickly cultivating mycorrhizal seedlings of ectomycorrhizal fungi
CN114175996B (en) Propagation method of arbuscular mycorrhizal fungi
Edson et al. Temperature relations of certain potato-rot and wilt-producing fungi
Barker et al. A bacterial disease of fruit blossom
Smith Further studies on a virus found in the roots of certain normal-looking plants
Uosukainen et al. Effect of inoculation with arbuscular mycorrhizas on rooting, weaning and subsequent growth of micropropagated Malus (L.) Moench
SU1482942A1 (en) Method of primary extraction of effective strains of soya-bean tuber bacteria
Pedersen et al. Growth of asparagus in a commercial peat mix containing vesicular-arbuscular mycorrhizal (VAM) fungi and the effects of applied phosphorus
Cook et al. Virulence of Gaeumannomyces graminis var. tritici from fields under short‐term and long‐term wheat cultivation in the Pacific Northwest, USA
CN108913625A (en) Salt tolerant streptomycete, its microbial inoculum and its microbial inoculum are promoting the application in plant growth
CN110506596B (en) Method for simultaneously identifying common mosaic disease and bacterial wilt resistance of tobacco of same strain
Strider¹ 36 Vol. 54, No. 1--PLANT DISEASE REPORTER--January 1970 TOMATO SEEDLING INOCULATIONS WITH CORYNEBACTERIUM MICHIGANENSE
Moore A germination inhibitor in achenes of Cercocarpus montanus
Goss TEMPERATURE AND HUMIDITY STUDIES OF SOME FUSARIA ROTS OF THE IRISH POTATO ¹
WO1984004653A1 (en) Method of culture of va mycorrhizal fungi
Richardson A Phytophthora tomato disease new to Ontario
NO880663L (en) PROCEDURE FOR INCREASING EFFECTIVENESS IN VITRO VEGETATIVE CULTIVATION OF THE POT.
RU2711781C1 (en) Method of selecting in vitro acid-tolerant forms of red clover (trifolium pratense l.)
SU1745160A1 (en) Method for breeding tomatoes for resistance to alternariosis
CN107365829B (en) Method for screening black shank resistant germplasm of tobacco in laboratory