SU1402615A1 - Nutritive medium for cultivating klebsicella pneumonial bacteria vkpm v-1826 as producer of restrictase - Google Patents

Nutritive medium for cultivating klebsicella pneumonial bacteria vkpm v-1826 as producer of restrictase Download PDF

Info

Publication number
SU1402615A1
SU1402615A1 SU864190099A SU4190099A SU1402615A1 SU 1402615 A1 SU1402615 A1 SU 1402615A1 SU 864190099 A SU864190099 A SU 864190099A SU 4190099 A SU4190099 A SU 4190099A SU 1402615 A1 SU1402615 A1 SU 1402615A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
biomass
medium
cultivating
producer
yeast extract
Prior art date
Application number
SU864190099A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Зоя Федоровна Бунина
Владислав Владимирович Смолянинов
Original Assignee
Всесоюзный научно-исследовательский институт прикладной микробиологии
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всесоюзный научно-исследовательский институт прикладной микробиологии filed Critical Всесоюзный научно-исследовательский институт прикладной микробиологии
Priority to SU864190099A priority Critical patent/SU1402615A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1402615A1 publication Critical patent/SU1402615A1/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к микробиологии и может быть использовано при получении из биомассы рестрикцион- ной эндонуклеазы Kpnl Дл  работ в биотехнологии и биохимии. Целью изобретени   вл етс  повьшение выхода биомассы . Компоненты питательной среды подобраны экспериментально в два этапа с помощью ЭВМ по программе дробно- факторного планировани  дл  ДФЭ-2 Предложены концентрации компонентов среды, мас.%: глюкоза 0,6-0,65; пептон 1,6-1,7; дрожжевой экстракт 1,2-. 1,3; двузамещенньй фосфорно-кислый натрий 0,85-0,87; аммоний хлористый 0,37-0,40; магний сернокислый сейи- водный 0,02; вода дистиллированна  - остальное. Питательна  среда обеспечивает высокий выход сырой биомассы (л-ЗО г/л) и фермента (.т-Ю-Ю ед. на 1 г сырой биомассы). 2 табл. S (ЛThis invention relates to microbiology and can be used in the production of the restriction endonuclease Kpnl from biomass for work in biotechnology and biochemistry. The aim of the invention is to increase the biomass yield. The components of the nutrient medium were selected experimentally in two stages using a computer according to the fractional factor planning program for DFE-2. The concentrations of the medium components, in wt%, were proposed: glucose 0.6-0.65; peptone 1.6-1.7; yeast extract 1,2-. 1.3; disubstituted phosphoric acid sodium 0.85-0.87; ammonium chloride 0,37-0,40; magnesium sulfate salt 0.02; distilled water - the rest. The nutrient medium provides a high yield of raw biomass (L-ZO g / L) and enzyme (T-Yu units per 1 g of raw biomass). 2 tab. S (l

Description

tt

ФF

Изобретение относитс  к микробиологии и может быть использовано при получении из биомассы рестрикционной эндонуклеазы дл  биотехнических работ и биохимии.This invention relates to microbiology and can be used in the production of restriction endonuclease from biomass for biotechnical work and biochemistry.

Цель изобретени  - повьппение выхода биомассы.The purpose of the invention is to increase the biomass yield.

Приготавливают питательную среду из расчета на I л следующим образом. Пептон и дрожжевой экстракт взвешивают и раствор ют в 200 мл воды, кип т т 15-20 мин, охлаждают,довод т рН до 7,0-7,2 и осадок отдел ют на центрифуге при 6000 об/мин в течение 20 мин. Надосадочную жидкость сливают ;в мерный сосуд, добавл ют соли, глю- |козу, воду до метки. Провер ют рН ;среды, при необходимости довод т до :7,0-7,2 и стерилизуют при давлении В 1 атм в течение 30 мин.Prepare a nutrient medium based on I l as follows. Peptone and yeast extract are weighed and dissolved in 200 ml of water, boiled for 15-20 minutes, cooled, the pH is adjusted to 7.0-7.2 and the precipitate is separated in a centrifuge at 6000 rpm for 20 minutes. The supernatant is drained; to the measuring vessel, add salt, glucose, water to the mark. The pH of the medium is checked, adjusted to 7.0-7.2 if necessary, and sterilized at a pressure of 1 atm for 30 minutes.

Результаты культивировани  клеток в средах 1-4 представлены в табл. 1.The results of cell culture in media 1-4 are presented in Table. one.

Как видно из данных табл. 1, через 5 ч.клетки растут следующим об- разом. В средах 2 и 3 с меньшей концентрацией компонентов рост хуже из- эа начинающегос  голодани  клеток, и среде 4 с большей концентрацией компонентов рост не улучшаетс  по отНошению к росту клеток на среде 1. Следовательно, выбранна  концентраци  компонентов среды 1  вл етс  оптимальной .As can be seen from the data table. 1, after 5 cells grow as follows. In environments 2 and 3 with a lower concentration of components, growth is worse than the beginning of starvation of cells, and medium 4 with a higher concentration of components does not improve growth in relation to the growth of cells on medium 1. Consequently, the selected concentration of components of medium 1 is optimal.

; Пример. Дл  сравнени  выхо- Да сырой биомассы провод т параллель- культивирование K.pneumoniae СОК8) ВКПМ В-1823 в предлагаемой среде и контрольной среде (известное). Предлагаема  среда, г/л: глюкоза 6,5; nienTOH 17; дрожжевой экстракт 13; IfejHPO,. 8,7; NH4C1 4,0; MgS04-7H,0 0,02, вода дистиллированна  до 1 л. Среда (контроль), г/л: глюкоза 1; NaCl 10,0; дрожжевой экстракт (Difсо) 5; бакто-пептон (Difeo) 10, вода дистиллированна  до 1 л, рН сред 7,0. Выращивание провод т в качалочных колбах Эрленмейера объемом 750 мл в 200 мл среды при З7 с с качанием 200250 об/мин. Оптическую плотность суспензии клеток выражают в оптических единицах (о.е.) и замер ют на приборе фотоэлектрокалориметр КФК-2 при длине волны 540 нм в кювете толщиной 3,05 мм. Пробы отбирают одновременно; Example. To compare the output of the raw biomass, parallel cultivation of K.pneumoniae COK8) VKPM B-1823 is carried out in the proposed medium and control medium (known). The proposed environment, g / l: glucose 6.5; nienTOH 17; yeast extract 13; IfejHPO ,. 8.7; NH4C1 4.0; MgS04-7H, 0 0.02, distilled water to 1 l. Wednesday (control), g / l: glucose 1; NaCl 10.0; yeast extract (Difso) 5; bacto-peptone (Difeo) 10, distilled water to 1 l, pH of the medium 7.0. The cultivation is carried out in 750 ml Erlenmeyer flasks in 200 ml of medium at 3-7 seconds with a swing of 200250 rpm. The optical density of the cell suspension is expressed in optical units (i.e.) and measured on a KFK-2 photoelectric calorimeter instrument at a wavelength of 540 nm in a cuvette 3.05 mm thick. Samples are taken simultaneously.

Результаты представлены в табл.2.The results are presented in table 2.

По результатам табл. 2 видно, что .рост клеток на предлагаемой среде вAccording to the results of table. 2 that cell growth on the proposed medium in

два раза лучше, чем на известной. Кроме того, эксперименты показали пр мую коррел ционную зависимость между ростом клеток и накоплением фермента , поэтому клетки осаждают из культуральной жидкости к концу логарифмической фазы роста. Выход сырой биомассы на предлагаемой среде в 3-5 раз выше, чем на известной. Следовательно , и общий выход фермента вьте. Концентраци  рестрикционной эндонуклеазы Kpnl в грузом клеточном экстракте после разрушени  клеток ультра звуком составл ет r lO-18-lO усл.ед, на 1 г .сырой биомассы. За единицу активности принимали минимальное количество фермента, необходимое дл  полного гидролиза 1 мкг ДНК фага при 37 С за 15 мин. Рестрикционные эндонуклеазы, получаемые из биомассы  вл ютс  ценными препаратами, исполь зу-емыми дл  научных исследований, к ним предъ вл ютс  высокие требовани  по активности и чистоте.two times better than the famous. In addition, experiments have shown a direct correlation between cell growth and enzyme accumulation, so cells are precipitated from the culture fluid by the end of the logarithmic growth phase. The yield of raw biomass on the proposed medium is 3-5 times higher than on the known one. Consequently, the total yield of the enzyme. The concentration of the Kpnl restriction endonuclease in the cell extract load after the destruction of the cells by ultra sound is r l-18-l o sm, per 1 g of raw biomass. The minimum amount of enzyme required for complete hydrolysis of 1 μg of phage DNA at 37 ° C in 15 minutes was taken as a unit of activity. Restriction endonucleases derived from biomass are valuable drugs used for scientific research, they are subject to high requirements for activity and purity.

Таким образом, питательна  среда включает компоненты, используемые в микробиологической промьшгленности, Совокупность компонентов в предлагаемой среде, подобранной по результата двухэтапного дробно-факторного эксперимента на ЭВМ, позвол ет получать клетки K.pneumoniae ОК8 в количестве л 20-30 г с 1 л среды.Thus, the nutrient medium includes the components used in the microbiological industry. The combination of the components in the proposed medium, selected according to the result of a two-stage fractional-factor experiment on a computer, makes it possible to obtain K.pneumoniae OK8 cells in an amount of 20-30 g per 1 l of medium.

Claims (1)

Формула изобретени Invention Formula Питательна  среда дл  культивировани  бактерий Klebsiella pneumoniae ВКПМ В-1826 - продуцента рестриктазы Kpnl, содержаща  глюкозу, пептон, дрожжевой экстракт, минеральньй источник натри  и хлора и дистиллированную воду, отличающа с  тем, что, с целью повьщ1ени  выхода биомассы, она дополнительно содержит сернокислый семиводный магний, в качестве источника натри  - двуза- мещенный фосфорнокислый натрий, а источника хлора - хлористый аммоний, при следующем соотношении компонентов мас,%:The nutrient medium for cultivating the bacteria Klebsiella pneumoniae VKPM B-1826 - a producer of the restriction enzyme Kpnl, containing glucose, peptone, yeast extract, a mineral source of sodium and chlorine, and distilled water, so that in order to increase the yield of biomass, the supplement also contains a syrme. magnesium, as the source of sodium - disubstituted sodium phosphate, and the source of chlorine - ammonium chloride, in the following ratio of components, wt,%: Глюкоза Пептон Дрожжевой экстракт Хлористый аммонийGlucose Pepton Yeast Extract Ammonium Chloride 0,60-0,65 1,6-1,70,60-0,65 1,6-1,7 1,2-1,3 0,37-0,401.2-1.3 0.37-0.40 0,85-0,870.85-0.87 0,015-0,020 Остальное0.015-0.020 Else Т а б л и ц а 1Table 1 Результаты культивировани  K.pneu- moniae ОК8The results of the cultivation of K.pneumoniae OK8 Сре- Оптическа  плотность, оптические еди- да ницы, при времени культивировани , чOptical density, optical units, with cultivation time, h 10,28 0,7 2il 2,7 3,710.28 0.7 2il 2.7 3.7 20,27 0,7 1,9 2,3 2,820.27 0.7 1.9 2.3 2.8 30,26 0,7 1,6 1,7 2,530.26 0.7 1.6 1.7 2.5 40,27 0,7 2,1 2,7 3,240.27 0.7 2.1 2.7 3.2 1 .one . Т а б л и ц а 2Table 2 Концентраци  клеток K.pneimoniae ОК8 на предлагаемой среде и известнойThe concentration of K.pneimoniae OK8 cells on the proposed medium and the known Врем  Оптическа  плот-;Выход сырой биороста , ность куль гуры массы, гTime Optical Density; Output of Raw Bio Growth; Capacity of Mass Culture, g ч (o.ei) в средетh (o.ei) in sredet j-предла- контпредла- конт-гаема  роль гаема  рольj-precontracted contractive role-played role played 21,11,121,11,1 4,53,11,9434,53,11,943 84,62,96484,62,964 248,04,020-306-7248,04,020-306-7 ,ff Составитель И. Привалова Редактор Н. Киштулинец Техред А.Кравчук Корректор С. Шекмар Compiled by I. Privalov Editor N. Kishtulinets Tekhred A. Kravchuk Proofreader S. Shekmar Заказ 2826/18Тираж 520ПодписноеOrder 2826/18 Circulation 520 Subscription ВНИИПИ Государственного комитета СССРVNIIPI USSR State Committee по делам изобретений и открытий 113035, Москва, Ж-35, Раушска  наб., д. 4/5for inventions and discoveries 113035, Moscow, Zh-35, Raushsk nab., 4/5 Производственно-полиграфическое предпри тие, г. Ужгород, ул. Проектна , 4Production and printing company, Uzhgorod, st. Project, 4
SU864190099A 1986-11-17 1986-11-17 Nutritive medium for cultivating klebsicella pneumonial bacteria vkpm v-1826 as producer of restrictase SU1402615A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU864190099A SU1402615A1 (en) 1986-11-17 1986-11-17 Nutritive medium for cultivating klebsicella pneumonial bacteria vkpm v-1826 as producer of restrictase

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU864190099A SU1402615A1 (en) 1986-11-17 1986-11-17 Nutritive medium for cultivating klebsicella pneumonial bacteria vkpm v-1826 as producer of restrictase

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1402615A1 true SU1402615A1 (en) 1988-06-15

Family

ID=21283898

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU864190099A SU1402615A1 (en) 1986-11-17 1986-11-17 Nutritive medium for cultivating klebsicella pneumonial bacteria vkpm v-1826 as producer of restrictase

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1402615A1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Патецу GB № 2021415, кл. ,А 61 К 35/74, опублик. 1979. Методы общей бактериологии/Под, ред. Ф. Герхардта. М.: Мир. т. 1, 1983, с. 216-230. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Gale The production of amines by bacteria: The decarboxylation of amino-acids by strains of Bacterium coli
SU943282A1 (en) Process for producing l-treonine
Tuominen et al. Pyruvate Kinase of the Spore-forming Bacterium, Bacillus licheniformis: I. PURIFICATION, STABILITY, REGULATION OF SYNTHESIS, AND EVIDENCE FOR MULTIPLE MOLECULAR STATES
Soffer Enzymatic expression of genetic units of function concerned with galactose metabolism in Escherichia coli
SU1402615A1 (en) Nutritive medium for cultivating klebsicella pneumonial bacteria vkpm v-1826 as producer of restrictase
Glassman In vitro complementation between nonallelic Drosophila mutants deficient in xanthine dehydrogenase
Roon et al. [37a] ATP: Urea amidolyase (ADP)(Candida utilis)
KAMOGAWA et al. Purification and properties of uridinediphosphate glucose pyrophosphorylase from Escherichia coli K 12
Rokop et al. Purification and characterization of fully deuterated enzymes
CN109161556A (en) M1PDH gene, its protein and purposes in one main laminaria
Ning et al. Regulation of L-isoleucine biosynthesis in the photosynthetic bacterium Rhodospirillum rubrum
EP0029976B1 (en) A biologically pure culture of strain ifo 14093 and a process for producing an intracellular component herefrom
US5306629A (en) Method for producing dinucleoside polyphosphate, nucleoside polyphosphate or derivatives thereof
Matsumura Conformation of acyl carrier protein from Mycobacterium phlei
CN113151377A (en) Enzymatic preparation method for preparing glucosamine from glucose and enzyme application
Korber et al. Crystallization of the NADP+-dependent glutamate dehydrogenase from Escherichia coli
JONES Orotidylate decarboxylase of yeast and man
SU1693041A1 (en) Nutrient medium for cultivation of micrococcus luteus vkpm v-2836 - a producer of site-specific endonuclease mlui
JPS6342686A (en) Production of protease
JPS6341558B2 (en)
JPH05137572A (en) Thermostable adenosine-5'-triphosphate sulfurylase and its production
SU1479513A1 (en) Method of producing formate dehydrogenase
Benziman et al. Properties and physiological role of the pep‐synthase of A. xylinum
US4794084A (en) Acyl-CoA synthetase
SU1565888A1 (en) Method of obtaining keratinaze