SU1392902A1 - Method of extracting and purifying bacterial endonuclease from cultural serratia marcescens - Google Patents
Method of extracting and purifying bacterial endonuclease from cultural serratia marcescens Download PDFInfo
- Publication number
- SU1392902A1 SU1392902A1 SU864114042A SU4114042A SU1392902A1 SU 1392902 A1 SU1392902 A1 SU 1392902A1 SU 864114042 A SU864114042 A SU 864114042A SU 4114042 A SU4114042 A SU 4114042A SU 1392902 A1 SU1392902 A1 SU 1392902A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- endonuclease
- yield
- carried out
- nacl
- culture fluid
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к области получени ферментов , в частности внеклеточной бактериальной эндонуклеазы. Целью изобретени вл етс сокращение длительности процесса, повышение выхода и чистоты целевого продукта . Эндонуклеазу выдел ют непосредственно из культуральной жидкости за одну стадию с помощью лигандообменной хроматографии на халатных сорбентах, содержащих группировки иминодиуксусной кислоты, зар женными ионами Си. Сорбцию эндонуклеазы провод т на колонке или в объеме. После промывки хелатного сор- бента исходным буфером 0,1 М Na-аце- татным с рН 6,5-6,6, содержащим 0,3- 0,5 М NaCl, Эндонуклеазу десорбируют с выходом 65-95% тем же буфером, ио с рН 4,7-5,0. 1 табл. § (ЛThe invention relates to the field of enzyme production, in particular extracellular bacterial endonuclease. The aim of the invention is to reduce the duration of the process, increase the yield and purity of the target product. The endonuclease was isolated directly from the culture fluid in a single step using ligand exchange chromatography on negligent sorbents containing iminodiacetic acid groups charged with Cu ions. Sorption of the endonuclease is carried out on a column or in bulk. After washing the chelating sorbent with the initial buffer of 0.1 M Na-acetate with pH 6.5-6.6, containing 0.3-0.5 M NaCl, the Endonuclease is desorbed with a yield of 65-95% with the same buffer, with pH 4.7-5.0. 1 tab. § (L
Description
113113
Изобретение относитс к области получени ферментов, в частности внеклеточной бактериальной эндонуклеаэы. Эндонуклеаза примен етс в молекул р- ной биологии, биоорганической хинин, а также в ветеринарии.The invention relates to the field of the production of enzymes, in particular extracellular bacterial endonuclease. Endonuclease is used in molecular biology, bioorganic quinine, as well as in veterinary medicine.
Целью изобретени вл етс сокращение длительности процесса, повышение выхода и чистоты целевого про- дукта. Эндонуклеазу выдел ют иэ куль- туральной жндкости ВКПМВ-2379 за одну стадию с поношью лнгандообменной хроматографии на хелатных сорбентах, содержащих группировки иминодиуксус- ной кислоты (ИДК), зар женные ионами Си. Получение таких сорбентов описано в работе, Обща формулаThe aim of the invention is to reduce the duration of the process, increase the yield and purity of the target product. The endonuclease is isolated by the cultured VKPMV-2379 in a single step, with donar langandoben chromatography on chelate sorbents containing groups of iminodiacetic acid (IDA) charged with C ions. The preparation of such sorbents is described in the work, General formula
ОНHE
I /I /
P-0-CHi-CH-CH -NP-0-CHi-CH-CH -N
CHjCOOCHjCOO
Си,Si
е e
CHjCOO Р - органический носительCHjCOO P - organic carrier
2020
2525
OR IOR I
Р, -0-Si-(CH4),-O-CH4-CH-CH,P, -0-Si- (CH4), - O-CH4-CH-CH,
././
СН,СО(Г 30CH, CO (G 30
о/:.about/:.
где Р - неорганический носитель.where P is an inorganic carrier.
Метод лигандообменной хроматографии основан на способности белков образовать комплексы с ионами переходных металлов, В процессе комплек- сообразовани участвуют некоторые функциональные группы аминокислотных остатков поверхности белков, преиму- цественно имидазольные и тиольные Стационарна фаза представл ет собой хелатные сорбенты, зар женные ионами переходных металловi которые взаимодействуют с раздел емыми соединени ми путем образовани координационных св зей. В отличие от других видов хроматографии в зтом процессе сорбци белков мйжет происходить в присутствии высоких концентраций солей, неионных детергентов н некоторых органических растворителей, что позвол ет выдел ть фермент непосредственно из культур льной жидкости.The ligand exchange chromatography method is based on the ability of proteins to form complexes with transition metal ions. Some functional groups of amino acid residues of the protein surface, mainly imidazole and thiol, are involved in the complexation process. The stationary phase is a chelate sorbent charged with transition metal ions that interact with the separated compounds by forming coordination bonds. Unlike other types of chromatography, in this process the sorption of proteins may occur in the presence of high concentrations of salts, non-ionic detergents and some organic solvents, which allows the enzyme to be isolated directly from the culture fluid.
Оказалось, что при рП 6,5-6,6 из культуральной жидкости спрГ5ируетс It turned out that when the RP 6.5-6.6 from the culture fluid
5 five
00
5five
00
5five
00
5five
00
5five
преимущественно зндонуклеаза, а прочие белки остаютс в растворе. Поэтому при выделеИНН фермента рН культуральной жидкости довод т до 6,5-6,6.predominantly an nucleotide, and other proteins remain in solution. Therefore, with the extraction of INN enzyme, the pH of the culture liquid was adjusted to 6.5-6.6.
Сорбцию эндонуклеазы на хелатном сорбенте провод т на колонке с соот- ношеннем белок:сорбент«6 ед. см при скорости 15-20 мл/ч или в объеме с соотношением белок:сорбент 10-12 ед. во После промывки хелатного сорбента исходным буфером 0,1 М Na- ацетатным с рН 6,5-6,6, содержащим 0,3-0,5 М NaCl, зндонуклеазу десор- бнруют с выходом 65-95Z тем же буфером , но с рН А,7-5,0. Наличие в используемых буферах 0,3-0,5 М NaCl обеспечивает подавление ионообменных взаимодействий. Использование более высоких концентраций NaCl нецелесообразно .Sorption of the endonuclease on the chelate sorbent is carried out on a column with a relative protein: sorbent "6 units. cm at a speed of 15-20 ml / h or in volume with a protein: sorbent ratio of 10-12 units. After washing the chelate sorbent with the initial buffer of 0.1 M Na-acetate with a pH of 6.5-6.6, containing 0.3-0.5 M NaCl, the dendonuclease is desorbed with a yield of 65-95Z with the same buffer, but with pH A, 7-5.0. The presence of 0.3-0.5 M NaCl in the buffers used suppresses ion-exchange interactions. Using higher concentrations of NaCl is impractical.
Пример 1.КЗмл ИДК-агаро- зы (29 1 молей/мл), зар женной ионами Си н промытой 0,1 М Na-ацетатным буфером рН 6,5, содержащим 0,5 М NaCl, добавл ют 30 мл культуральной жидкости (7,5 ед. А дд/мл и 7400 ед. акт/мл) и рН 6,5 и перемещивают при комнатной температуре на качалке в течение 0,5 ч. Перенос т в колонку и со скоростью 17 мл/ч промывают 0,1 М Na- ацетатным буфером рН 6,5, содержащим 0,5 М NaCl, до отсутстви поглощени при 280 нм. Десорбируют эндонуклеазу тем же буфером прн рН 5,0. Выход по активности 95Z, степень очистки 50 раз, удельна активность 182000 ед. акт./мл белка.Example 1. SSL IDC-agarose (29 1 mol / ml), charged with Cn ions, washed with 0.1 M Na-acetate buffer pH 6.5, containing 0.5 M NaCl, 30 ml of culture liquid was added ( 7.5 units A dd / ml and 7400 units act / ml) and pH 6.5 and transferred at room temperature on a rocking chair for 0.5 hours. Transfer to a column and wash at a rate of 17 ml / h 0, 1 M Na-acetate buffer pH 6.5, containing 0.5 M NaCl, until absorbed at 280 nm. The endonuclease is desorbed with the same buffer prn pH 5.0. The yield on activity 95Z, the degree of purification 50 times, the specific activity of 182000 units. act./ml protein.
Пример 2. На колонку, содержащую 1 мл хелатного сорбента ИДК- тойоперла HW-55 (36 мкмолей/мл), уравновешенную 0,1 М Na-ацетатным буфером рН 6,6 с 0,3 М NaCl со скоростью 15 мл/ч нанос т 10 мл кул ьту- ральной жидкости (5, ед. Aiao/мл и 5600 ед. актУмл) с рН 6,6, отмывают 0,1 М Na-ацетатным буфером рН 6,6, содержащим 0,3 М NaCl до отсутстви поглощени прн 280 нм. Десорбируют зндонуклеазу тем же буфером при рН 4,7. Выход по активности 80%, удельна активность 200000 ед, акт./мг белка.Example 2. On a column containing 1 ml of chelating sorbent IDK-toyoperla HW-55 (36 µmol / ml), balanced with 0.1 M Na-acetate buffer pH 6.6 with 0.3 M NaCl at a rate of 15 ml / hr 10 ml of a cool liquid (5, Aiao units / ml and 5600 units of aCt) with a pH of 6.6 are washed with 0.1 M Na-acetate buffer pH 6.6, containing 0.3 M NaCl until no. Absorption prn 280 nm. Desorb annduclease with the same buffer at pH 4.7. The yield of activity is 80%, the specific activity of 200,000 units, act. / Mg of protein.
Пример 3. Аналогично примеру 2, но в качестве хелатного сорбента используют ИДК-смлохром (19 мкмолей/мл). Выход по активности 63Z, удельна активность 100000 ел. акт./мл белка.Example 3. Analogously to example 2, but as a chelate sorbent IDK-billow (19 mol / ml) is used. The activity yield is 63Z, the specific activity is 100,000 ate. act./ml protein.
Пример 4. AtranorHMHO примеру 2, но сорбцию фермента провод т при рН 6,0, а десорбцию при рН 5,5. Выход по активности 30%, удельна ак тивность 150000 ед. акт./мг белка.Example 4. AtranorHMHO Example 2, but the sorption of the enzyme was carried out at pH 6.0, and desorption at pH 5.5. The yield of activity is 30%, the specific activity is 150000 units. act./mg protein.
Пример 5. Аналогично примеру 2, но сорбцию фермента провод т при рН 8,0 в 0,005 М трис-НС буфере содержащем 0,5 М NaCl, а десорбцию при рН 4,0, О,I М Na-ацетатным буфером , содержащим 0,5 М NaCl. Выход по активности 28%, удельна активность 60000 ед. актУмл белка.Example 5. Analogously to example 2, but the sorption of the enzyme is carried out at pH 8.0 in 0.005 M Tris-HC buffer containing 0.5 M NaCl, and desorption at pH 4.0, O, I M Na-acetate buffer containing 0 , 5 M NaCl. Activity yield 28%, specific activity 60000 units. Aktoml protein.
Таким образом, проведение процес- се сорбции нуклеазы на хелатиом сорбенте в объеме позвол ет значительно сократить врем выделени фермента до 6-7 ч и с выходом 65-95Z получить препарат, содержащий не менее нуклеазы (определ ют сканированием гелей после электрофореза).Thus, carrying out the process of sorption of nuclease on the chelation sorbent in volume allows a significant reduction in the enzyme isolation time to 6-7 hours and with a yield of 65-95Z a preparation containing at least nuclease is obtained (determined by scanning gels after electrophoresis).
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU864114042A SU1392902A1 (en) | 1986-09-01 | 1986-09-01 | Method of extracting and purifying bacterial endonuclease from cultural serratia marcescens |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU864114042A SU1392902A1 (en) | 1986-09-01 | 1986-09-01 | Method of extracting and purifying bacterial endonuclease from cultural serratia marcescens |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1392902A1 true SU1392902A1 (en) | 1990-05-07 |
Family
ID=21255259
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU864114042A SU1392902A1 (en) | 1986-09-01 | 1986-09-01 | Method of extracting and purifying bacterial endonuclease from cultural serratia marcescens |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1392902A1 (en) |
-
1986
- 1986-09-01 SU SU864114042A patent/SU1392902A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Филимонова Н. М., Баратова Л. А., Воспельникова Н. Д., Желтова А. О. и Лещинска И. Б. Эндонуклеаза S. тагсеавепз. Характеристика фермента. Биохими , 1981, А6, 1660-1667. Варламов В. П., Лопатин С. А. и Рогожин С. В. Лигандообменна хроматографи ферментов. I. Синтез хе- латных сорбентов и очистка экзонукле- азы А5 актиномицетов. Биоорганическа хими , 1984, 10,927-934. Авторское свидетельство СССР 1146321, кл. С 12 N 9/22, 1983. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP2562571B2 (en) | Novel nitrilotriacetic acid derivatives and salts thereof, and methods for producing the same | |
CN1074791C (en) | Process for producing calcium D-pantothenate | |
US4259447A (en) | Process for the production of urokinase in pure condition | |
KR100776895B1 (en) | Process for producing high 2-?-?-?-glucopyranosyl-?-ascorbic acid content product | |
SU1392902A1 (en) | Method of extracting and purifying bacterial endonuclease from cultural serratia marcescens | |
RU2124496C1 (en) | Method of preparing alkali metal citrate | |
CN1325511C (en) | Glutathion purification and separation method | |
JPH07113024B2 (en) | Method for purifying pyrroloquinoline quinone | |
JPS62242692A (en) | Production of moranoline derivative | |
JPH036139B2 (en) | ||
JPS63267287A (en) | Method for purifying pyrroloquinolinequinone | |
JPH06345683A (en) | Purification of pyruvic acid | |
JPS61224996A (en) | Method of purifying mouse interferon | |
JPS6127999A (en) | Method for purifying glutathione | |
JPS648000B2 (en) | ||
JPH06245786A (en) | Method for purifying colominic acid | |
JPS63222200A (en) | Production of avidin | |
JPS61242578A (en) | Carrier for purification of enzyme and purification of aminoacylase | |
JPS6348262A (en) | Method for eluting l-tryptophan adsorbed on active carbon | |
JPH04202176A (en) | Purification of abscisic acid | |
SU1742329A1 (en) | Method of trypsin purification | |
JPH06343487A (en) | Separation and purification of neotrehalose | |
JPH0213372A (en) | Method for purifying superoxide-dismutase | |
JPH0578370A (en) | Method for separating and purifying d-biotin | |
JPH01180451A (en) | Adsorptive body for affinity separation |