SU1325076A1 - Method of recovering and purifying urokinase from biological fluids - Google Patents
Method of recovering and purifying urokinase from biological fluids Download PDFInfo
- Publication number
- SU1325076A1 SU1325076A1 SU853973496A SU3973496A SU1325076A1 SU 1325076 A1 SU1325076 A1 SU 1325076A1 SU 853973496 A SU853973496 A SU 853973496A SU 3973496 A SU3973496 A SU 3973496A SU 1325076 A1 SU1325076 A1 SU 1325076A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- urokinase
- column
- sorbent
- ammonia
- tris
- Prior art date
Links
Abstract
Изобретение относитс к способам получени очищенных ферментов, а именно урокиназы, и может быть использовано в медицинской промьпплен- ности дл получени препаратов урокиназы . Целью изобретени вл етс повышение выхода и удельной активности целевого продукта. Способ предусматривает использование в качестве сорбента при адсорбции фермента пористых кремнеземов или лигнина отмывки сорбента 0,05-0,2 М трис-НС1 буферным раствором рН 8-10 и элюцию фермента 2-4%-ным водным раствором аммиака. Культуральную жидкость, полученную после выращивани перевиваемой культуры клеток почек человека, объемом 5 л и активностью 30 СТА и 1 мл пропускают через колонку см, заполненную пористым стеклом МПС-2000-ВГХ в течение 12 ч. Затем колонку отмывают 500 мл 0,1 М трис-НС буферного раствора рН 10. Урокиназу элюируют из колонки после отмывки, использу в качестве элюента 4%-ный водный раствор аммиака. Скорость элюции 6 мл/мин. Концентрированна и очищенна уроки- наза элюируетс из колонки вместе с аммиаком в объеме 90 мл и имеет активность 1600 СТА/МЛ. Содержание белка в полученном препарате 0,4 мг/мл. Выход урокиназы составл ет 96%,удельна активность 4000 СТЛ/мг. I табл. С елThe invention relates to methods for producing purified enzymes, namely, urokinase, and can be used in the medical industry to produce urokinase preparations. The aim of the invention is to increase the yield and specific activity of the target product. The method involves the use of porous silica or lignin washing the sorbent with 0.05-0.2 M Tris-HC1 as a sorbent during adsorption of the enzyme with a pH 8-10 buffer solution and elution of the enzyme with a 2-4% aqueous solution of ammonia. The culture fluid obtained after growing a transplanted culture of human kidney cells, of 5 liters volume and 30 CTA activity and 1 ml is passed through a cm column filled with porous glass MPS-2000-UHC for 12 hours. Then the column is washed with 500 ml of 0.1 M Tris -NS buffer solution pH 10. Urokinase is eluted from the column after washing, using 4% aqueous ammonia solution as eluent. The elution rate was 6 ml / min. Concentrated and purified urokinase eluted from the column along with ammonia in a volume of 90 ml and has an activity of 1600 CTA / ML. The protein content in the resulting preparation is 0.4 mg / ml. The yield of urokinase is 96%, the specific activity of 4000 STL / mg. Table I Ate
Description
113250762113250762
Изобретение относитс к способам 1 7 СТА/мл пропускают через колонку получени очищенных ферментов, а именно урокиназы, и может быть использоI12 см, заполненную силохромом Св течение 2 ч. Затем колонку отмыва 0,05 М трис-НС буфером, рН 8 (30м г После отмывки через колонку пропус ют 2%-ный раствор аммилка. На выход аммиака из колонки собирают фракцию объемом 4 мл, содержащую концентри рованную и очищенную урокиназу, акThe invention relates to methods 1 to 7 CTA / ml is passed through a column for the preparation of purified enzymes, namely urokinase, and can be used 12 cm filled with silochrome S for 2 hours. Then the column is washed with 0.05 M Tris-HC buffer, pH 8 (30m g After washing, a 2% ammonia solution is passed through the column. At the ammonia output from the column, a 4 ml fraction containing the concentrated and purified urokinase, as
вано в медицинской промьппленности дл получени препаратов урокинаэы.in the medical industry to obtain urokinae preparations.
Целью изобретени вл етс повышение выхода и удельной активности целевого продукта.The aim of the invention is to increase the yield and specific activity of the target product.
Способ заключаетс в том, что адсорбцию урокиназы ведут на пористом кремнеземе или лигнине, а удаление балластных белков из сорбента осуществл ют путем его отмывки трис-НС1 буфером рН 8,0-10,0.The method consists in the fact that the adsorption of urokinase is carried out on porous silica or lignin, and the removal of the ballast proteins from the sorbent is carried out by washing it with Tris-HC1 buffer pH 8.0-10.0.
Предлагаемый способ осуществл етс следующим образом.The proposed method is carried out as follows.
Биологическую жидкость, содержащую урокиназную активность,пропускают через колонку, заполненную пористым стеклом или лигнином. Объем колонки соответствует 0,1-0,01 объема пропускаемой жидкости. Затем колонку отмывают от примесей, пропуска трис-НС1 буферньм раствор, рН 10. Обычно пропускают 2-5 объемов колонки такого буфера. После отмьшки колонки адсор- бированн то урокиназу элюируют 2- 4%-ным водным раствором аммиака, пропуска его со скоростью около I см/мин.The biological fluid containing urokinase activity is passed through a column filled with porous glass or lignin. The volume of the column corresponds to 0.1-0.01 of the volume of liquid to be passed Then the column is washed from impurities, passes Tris-HC1 buffer solution, pH 10. Usually 2-5 volumes of the column of such buffer are passed. After removal of the column, the adsorbed urokinase is eluted with a 2–4% aqueous solution of ammonia, passing it at a rate of about I cm / min.
Урокиназа элюируетс узкой зоной, обычно в объеме, равном 0,5 объема колонки, вследствие чего происходит ее концентрирование в дес тки раз. Выход очищенной и концентрированной урокиназы составл ет 80-95%.Urokinase is eluted by a narrow zone, usually in a volume of 0.5 column volume, with the result that it is concentrated ten times. The yield of purified and concentrated urokinase is 80-95%.
Пример 1. Выделение урокиназы из культуральной жидкости.Example 1. The selection of urokinase from the culture fluid.
Культуральную жидкость, полученную после выращивани перевиваемой культуры клеток почек человека, объемом 5 л и активностью 30 СТА/мл пропускают через колонку 448 см, заполненную пористым стеклом МПС - 2000-ВГХ, в течение 12ч. Затем колонку отмывают 500 мл 0,1 М трис-НС1 буферного раствора, рН 10. Урокиназу элюируют из колонки после отмывки, использу в качестве элюента А%-ныйThe culture fluid obtained after growing a transplanted culture of human kidney cells, of 5 liters volume and 30 CTA / ml activity, passes through a 448 cm column filled with porous glass MPS 2000 GC for 12 hours. Then the column is washed with 500 ml of 0.1 M Tris-HCl buffer solution, pH 10. Urokinase is eluted from the column after washing, using A% A as eluent.
I12 см, заполненную силохромом С80, в течение 2 ч. Затем колонку отмывают 0,05 М трис-НС буфером, рН 8 (30мл). г После отмывки через колонку пропускают 2%-ный раствор аммилка. На выходе аммиака из колонки собирают фракцию объемом 4 мл, содержащую концентрированную и очищенную урокиназу, акW тивность фракции 950 СТА/мл. Выход урокинаты 90%. Удельна активность препарата 3300 СТА/мг.I12 cm, filled with Silochrome C80, for 2 hours. Then the column is washed with 0.05 M Tris-HC buffer, pH 8 (30 ml). g After washing, a 2% ammonium solution is passed through the column. At the ammonia outlet from the column, a 4 ml fraction containing concentrated and purified urokinase is collected, the activity of the fraction is 950 CTA / ml. The output of urokinates 90% The specific activity of the drug is 3300 CTA / mg.
П р и М е р 3. Выделение урокиназы из мочи.PRI me R 3. The selection of urokinase from urine.
15 Мочу человека, разбавленную пополам водой, объемом 2,5 л и активностью 9 СТА/МЛ пропускают через колонку 1,510 см, заполненную пористым стеклом МПС - 2000-ВГХ. Отмьшку ко20 лонки провод т 0,05 М трис-НС1 буфером , рН 9. Элюцию урокиназы осуществл ют раствором аммиака. Получают 7 мл очищенной и концентрированной урокиназы. Выход урокиназы 85%,15 A person’s urine, diluted in half with water, 2.5 liter in volume and 9 STA / ML activity, is passed through a column of 1,510 cm, filled with porous glass MPS - 2000-VGH. The flask is washed with 0.05 M Tris-HC1 buffer, pH 9. Urokinase is eluted with ammonia solution. 7 ml of purified and concentrated urokinase are obtained. The output of urokinase 85%,
25 удельна активность 2600 СТА/мг.25 specific activity 2600 cta / mg.
П р и М е р 4. Выделение урокинаэы на лигнине.PRI me R 4. The selection of urokinaei on lignin.
Культуральную жидкость.,, полученную после выращивани перевиваемойCulture fluid., Obtained after growing transplantable
30 культуры почки человека, объемом 500 мл и активностью 17 СТА/мл пропускают через колонку, заполненную лигнином (выделенным из хвойных пород деревьев). Объем колонки 11 2 см.30 cultures of a human kidney with a volume of 500 ml and an activity of 17 CTA / ml are passed through a column filled with lignin (isolated from coniferous trees). The volume of the column is 11 2 cm.
35 Затем колонку отмывают 0,05 М трис- НС буфером, рН 10 (30 мл). После отмывки через колонку пропускают 4%-нь Й водный раствор а; 1миака. На выходе аммиака из колонки собирают35 Then the column is washed with 0.05 M Tris-HC buffer, pH 10 (30 ml). After washing, a 4% aqueous solution of a is passed through the column; 1miaka. At the outlet of ammonia from the column is collected
40 фракцию объемом 4 мл, содержащую концентрированную и очирденную урокиназу . Активность фракции 1250 СТА/мл, содержание белка 0,25 мг/мл. Выход урокиназы 80%, удельна активность40 fraction with a volume of 4 ml containing concentrated and purified urokinase. The activity of the fraction 1250 cta / ml, the protein content of 0.25 mg / ml. The output of urokinase 80%, specific activity
45 препарата 5000 СТА/мг.45 drugs 5000 CTA / mg.
П р и М е р 5. Выделение урокиназы провод т согласно примеру 4. Дл отмывки колонки исцользуют 0,05 М водный раствор аммиака. Скорость элю- 50 трис-НС1 буфер, рН 8,0. Элюцию уроки- ции 6 мл/мин.. Концентрированна и назы провод т 2%-ньм водным растворомEXAMPLE 5 Urokinase extraction was carried out according to Example 4. A 0.05 M aqueous ammonia solution was used to wash the column. The rate of elu- 50 Tris-HC1 buffer, pH 8.0. Elution of urocation was 6 ml / min. Concentrated and carried out with a 2% aqueous solution.
очищенна урокиназа элюируетс из колонки вместе с аммиаком в объеме 90 мл и имеет активность 1600 СТА/мл. Содержание белка в полученном препарате 0,4 мг/мл. Выход урокиназы 96%, удельна активность 4000 СТА/мг.purified urokinase eluted from the column along with ammonia in a volume of 90 ml and has an activity of 1600 CTA / ml. The protein content in the resulting preparation is 0.4 mg / ml. Urokinase yield 96%, specific activity 4000 CTA / mg.
П р и М е р 2, Культуральную жидкость объемом 250 мл и активностьюPR and Mer 2, the culture fluid with a volume of 250 ml and activity
1 7 СТА/мл пропускают через колонку 1 7 CTA / ml is passed through the column
I12 см, заполненную силохромом С80, в течение 2 ч. Затем колонку отмывают 0,05 М трис-НС буфером, рН 8 (30мл). После отмывки через колонку пропускают 2%-ный раствор аммилка. На выходе аммиака из колонки собирают фракцию объемом 4 мл, содержащую концентрированную и очищенную урокиназу, активность фракции 950 СТА/мл. Выход урокинаты 90%. Удельна активность препарата 3300 СТА/мг.I12 cm, filled with Silochrome C80, for 2 hours. Then the column is washed with 0.05 M Tris-HC buffer, pH 8 (30 ml). After washing, a 2% ammonium solution is passed through the column. At the outlet of ammonia from the column, a 4 ml fraction is collected containing concentrated and purified urokinase, the activity of the fraction is 950 CTA / ml. The output of urokinates 90%. The specific activity of the drug is 3300 CTA / mg.
П р и М е р 3. Выделение урокиназы из мочи.PRI me R 3. The selection of urokinase from urine.
Мочу человека, разбавленную пополам водой, объемом 2,5 л и активностью 9 СТА/МЛ пропускают через колонку 1,510 см, заполненную пористым стеклом МПС - 2000-ВГХ. Отмьшку колонки провод т 0,05 М трис-НС1 буфером , рН 9. Элюцию урокиназы осуществл ют раствором аммиака. Получают 7 мл очищенной и концентрированной урокиназы. Выход урокиназы 85%,Human urine, diluted in half with water, a volume of 2.5 liters and activity of 9 CTA / ML, is passed through a column of 1.510 cm, filled with porous glass MPS - 2000-UGH. The lamination of the column was carried out with 0.05 M Tris-HC1 buffer, pH 9. Urokinase was eluted with ammonia solution. 7 ml of purified and concentrated urokinase are obtained. The output of urokinase 85%,
удельна активность 2600 СТА/мг.specific activity 2600 cta / mg.
П р и М е р 4. Выделение урокинаэы на лигнине.PRI me R 4. The selection of urokinaei on lignin.
Культуральную жидкость.,, полученную после выращивани перевиваемойCulture fluid., Obtained after growing transplantable
культуры почки человека, объемом 500 мл и активностью 17 СТА/мл пропускают через колонку, заполненную лигнином (выделенным из хвойных пород деревьев). Объем колонки 11 2 см.Cultures of a human kidney with a volume of 500 ml and an activity of 17 CTA / ml are passed through a column filled with lignin (isolated from coniferous trees). The volume of the column is 11 2 cm.
Затем колонку отмывают 0,05 М трис- НС буфером, рН 10 (30 мл). После отмывки через колонку пропускают 4%-нь Й водный раствор а; 1миака. На выходе аммиака из колонки собираютThen the column is washed with 0.05 M Tris-HC buffer, pH 10 (30 ml). After washing, a 4% aqueous solution of a is passed through the column; 1miaka. At the outlet of ammonia from the column is collected
фракцию объемом 4 мл, содержащую концентрированную и очирденную урокиназу . Активность фракции 1250 СТА/мл, содержание белка 0,25 мг/мл. Выход урокиназы 80%, удельна активность4 ml fraction containing concentrated and purified urokinase. The activity of the fraction 1250 cta / ml, the protein content of 0.25 mg / ml. The output of urokinase 80%, specific activity
препарата 5000 СТА/мг.drug 5000 CTA / mg.
аммиака. Выход урокиназы 85%у удельна активность препарата 4500 СТА/мг. il р и М е р 6. Культуральную жид- 55 кость объемом 1 л и активностью 20 СТА/МЛ пропускают через колонку 1, см, заполненную макропористым стеклом МПС-2500-ВГ Х, в течение 4 ч. Затем колонку промывают 0,2 М трис3132ammonia. The yield of urokinase is 85% of the specific activity of the drug 4500 cta / mg. il р and Мер 6. The culture fluid with a volume of 1 l and activity of 20 CTA / ML is passed through column 1, cm, filled with macroporous glass MPS-2500-VG X, for 4 hours. Then the column is washed with 0.2 M Tris3132
HCl буферным раствором, рН 10. Уро- киназу элюируют водным раствором аммиака. Концентрированна уроки- наза (объем 9 мл) имеет удельную активность 3080 СТА/мг. Выход урокина- зы 98%.HCl buffer solution, pH 10. Urokinazu elute with an aqueous solution of ammonia. Concentrated urokinase (volume 9 ml) has a specific activity of 3080 CTA / mg. The yield of urokinase is 98%.
Пример. 16000 мл свежесобранной мочи человека активностью 13 СТА/МЛ пропускают через колонкуExample. 16000 ml of fresh human urine with 13 CTA / ML activity passed through a column
2,220 см, заполненную пористым стек-fО ке урокиназу, что не удаетс при ис- лом МПС 1,150-ЁГХ, в течение ночи. Отмывку от балластных белков провод т 0,1 М раствором трис-НС1 буфера, рН 10. Элюцию урокинаэы осуществл ют 2%-ным водным раствором аммиака. По- f5 лучают 170 мл бесцеветного раствора концентрированной очищенной yi тккна- зы, удельна активность 3900 о ГЛ/мг , выход 96%.2,220 cm, filled with a porous stack of urokinase, which does not work with an ISP 1,150-YOGH islam, overnight. Washing of ballast proteins was performed with a 0.1 M solution of Tris-HCl buffer, pH 10. Urokinae was eluted with a 2% aqueous solution of ammonia. 170 ml of a solutionless solution of concentrated purified yi tcnase are obtained at a f5, specific activity 3900 o HL / mg, yield 96%.
Предлагаемый способ позвол ет по- 20 лучать в одну стадию с выходом 80-98% препарат урокиназы с удельной активностью до 4500 СТА/мг. Дл получени высокоочищенного препарата предусматриваетс проведение общеприн тых xpo- -S матографических операций.The proposed method allows obtaining in one stage with a yield of 80-98% a preparation of urokinase with a specific activity up to 4500 CTA / mg. In order to obtain a highly purified preparation, conventional xpo-S matrix operations are performed.
Сорбенты, используемые в предлагаемом способе, обеспечивают достаточно полный выход фермента. Ранее дл получени урокиназы эти сорбенты 30 не использовались.The sorbents used in the proposed method, provide a fairly complete yield of the enzyme. Previously, these sorbents 30 were not used to obtain urokinase.
Предлагаемый способ обладает значительными преимуществами перед известными , прежде всего он прост в изготовлении , так как выделение и очи- 35 стка фермента происходит в один этап с использованием одного сорбента. Очистка обеспечиваетс отмывкой колонки экспериментально подобранным буферным раствором, после чего очу- 40 ществл етс элюци фермента.The proposed method has significant advantages over the known ones; first of all, it is simple to manufacture, since the isolation and purification of the enzyme occurs in one stage using a single sorbent. Purification is accomplished by washing the column with an experimentally selected buffer solution, after which the enzyme is eluted.
Установлено, что урокиназа достаточно прочно св зываетс с пористыми кремнеземами и лигнином. Вследствие этого, отмывку производ т буферными 45 растворами с достаточно высоким рН, что обеспечивает удаление большинства примесных белков. Интервал рН буферных растворов, при которых удал ютс примесные белки, но не происхо- 50 дит вымывание фермента, должен находитьс в пределах 8-10. Отключение рН в одну или другую сторону не обеспечивает необходимые чистоту и выход препарата.Urokinase has been found to be fairly strongly bound to porous silica and lignin. Consequently, washing is performed with buffer 45 solutions with a sufficiently high pH, which ensures the removal of most impurity proteins. The pH range of the buffer solutions at which impurity proteins are removed, but the enzyme is not washed out, should be in the range of 8-10. Disabling the pH in one direction or the other does not provide the necessary purity and yield of the drug.
Вли ние рН отмывающего буферного раствора на очистку урокиназы показано в таблице.The effect of the pH of the washing buffer solution on the purification of urokinase is shown in the table.
пользовании различных буферных растворов . Более высокий процент аммиака дл десорбции не желателен, так как это не повышает выход фермента, а приводит лишь к повы1 1е П1ой растворимости матрицы сорбента.using different buffer solutions. A higher percentage of ammonia is not desirable for desorption, since this does not increase the yield of the enzyme, but leads only to an increase in the solubility of the sorbent matrix.
Пред.пагаемый способ обладает тех- но.чогичпостью, так как легко осуществим при стерильных услорнлх т про- М1,шшенньсх масштабах. РСуль 1-у;1ал},иа жидкость и буферные растворы стерильно подаютс в колонку, которую предварительно стерилизуют и герметизируют . Контроль за процессо:- осуществл ют с помощью проточного спектрофотометра . Сорбенты используют многократно ,они не содержат вредных примесей , их сорбционные св(йства восстанавливаютс после прогтуск-чпи че- рет колонку 4%-ного растпора л. тмиа- ка.The previous method has a technical character, since it can be easily implemented with sterile conditions of pro-M1, of a large scale. Scaffolds 1u; 1al}, and the liquid and buffer solutions are sterilely fed into a column, which is pre-sterilized and sealed. Process monitoring: - carried out using a flow spectrophotometer. Sorbents are used repeatedly, they do not contain harmful impurities, their sorption properties (they are restored after progtusk-chpi through a column of 4% rasporov l. Tmiaka.
Кроме того, пред.пагаемы -1 способом при использовании в алчестве сорСеп- та лигнина возможно получать npen-iiia- ты, обладающие высоко удельной активностью . Это св зано с тем, что лигнин более специфически св зываетс с урокиназой по сравпегшю с пористым кремнеземом.In addition, it is possible to obtain npen-iiites that have a high specific activity when used in the form of a lignin separator lignin. This is due to the fact that lignin is more specifically bound to urokinase in comparison with porous silica.
Предлагаемы способ в осп рои водим в аналитическом и njieiu ipaTiiaHoM вариантах, он может прш енлтьси ф1 получени урокиназы в лаборатори х и медицинской пром11Ш1Л(. Биологические показатели полученных препаратов (при использоваь ип зтог о способа) свидетельствуют о вотможнос- ти их использовани дл е;и1Ц1ПП,1,The proposed method can be tested in analytical and njieiu ipaTiiaHoM variants, it can be used to obtain urokinase in laboratories and medical industry (.The biological indicators of the preparations obtained (using the method type) show their possible use for it; I1TS1PP, 1,
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU853973496A SU1325076A1 (en) | 1985-10-30 | 1985-10-30 | Method of recovering and purifying urokinase from biological fluids |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU853973496A SU1325076A1 (en) | 1985-10-30 | 1985-10-30 | Method of recovering and purifying urokinase from biological fluids |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1325076A1 true SU1325076A1 (en) | 1987-07-23 |
Family
ID=21204143
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU853973496A SU1325076A1 (en) | 1985-10-30 | 1985-10-30 | Method of recovering and purifying urokinase from biological fluids |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1325076A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0379545A1 (en) * | 1988-06-10 | 1990-08-01 | Damon Biotech Inc | Recovery of urokinase compounds. |
-
1985
- 1985-10-30 SU SU853973496A patent/SU1325076A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Авторское свидетельство СССР N 584034, кл. С 12 N 9/72, 1975. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0379545A1 (en) * | 1988-06-10 | 1990-08-01 | Damon Biotech Inc | Recovery of urokinase compounds. |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN104109202B (en) | Method for adsorbing human prothrombin complex from plasma | |
US3957582A (en) | Purification of urokinase | |
HU219828B (en) | Process for the isolation and purification of vitamin k dependent proteins | |
SU1325076A1 (en) | Method of recovering and purifying urokinase from biological fluids | |
CN1250567C (en) | Method of purifying calcium ion-binding protein | |
CN105837685A (en) | Method for purifying ulinastatin based on anion exchange resin | |
JP3315158B2 (en) | Glutathione purification method | |
Wu et al. | Protein C separation from human blood plasma Cohn fraction IV-1 using immobilized metal affinity chromatography | |
NO914886L (en) | CHYMOSINE RECOVERY AND CLEANING | |
RU2047620C1 (en) | Method of flavine-adenine dinucleotide purification | |
JPS6120268B2 (en) | ||
SU721449A1 (en) | Method of preparing sorbent for isolating and purifying serine proteases | |
JPS5982340A (en) | Purification of abscisic acid | |
SU1242521A1 (en) | Method of producing cellulolytic ferment complex from filtrate of aspergillus terreus bkm f2220 fungus cultural liquid | |
SU668348A1 (en) | Method of separating alpha-amylase | |
RU2056941C1 (en) | Method of lysine isolation from cultural fluid | |
JPH01104166A (en) | Purification of acidic protease | |
SU538018A1 (en) | Method for isolation and purification of acid proteinase from solutions | |
CN117244533A (en) | Adsorbent for recycling and pretreatment of acetonitrile waste liquid and preparation method and application thereof | |
JPS63102679A (en) | Recovery of urokinase | |
JPH06245786A (en) | Method for purifying colominic acid | |
CN1246331C (en) | Method for purifying recombined human interferon alpha-2b by using affinity chromatography of expanded bed pigment | |
CN109628527A (en) | A kind of method that gradient pH method prepares thymidine | |
SU1273392A1 (en) | Method of cleaning trypsin | |
SU524376A1 (en) | Method for separation of choleraic vibrio neiraminesade enzyme |