SU1218513A1 - Method of producing diagnostic fluorescent influenza immunoglobulin - Google Patents
Method of producing diagnostic fluorescent influenza immunoglobulin Download PDFInfo
- Publication number
- SU1218513A1 SU1218513A1 SU843728252A SU3728252A SU1218513A1 SU 1218513 A1 SU1218513 A1 SU 1218513A1 SU 843728252 A SU843728252 A SU 843728252A SU 3728252 A SU3728252 A SU 3728252A SU 1218513 A1 SU1218513 A1 SU 1218513A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- influenza
- immunoglobulin
- producing diagnostic
- solution
- diagnostic fluorescent
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C23—COATING METALLIC MATERIAL; COATING MATERIAL WITH METALLIC MATERIAL; CHEMICAL SURFACE TREATMENT; DIFFUSION TREATMENT OF METALLIC MATERIAL; COATING BY VACUUM EVAPORATION, BY SPUTTERING, BY ION IMPLANTATION OR BY CHEMICAL VAPOUR DEPOSITION, IN GENERAL; INHIBITING CORROSION OF METALLIC MATERIAL OR INCRUSTATION IN GENERAL
- C23C—COATING METALLIC MATERIAL; COATING MATERIAL WITH METALLIC MATERIAL; SURFACE TREATMENT OF METALLIC MATERIAL BY DIFFUSION INTO THE SURFACE, BY CHEMICAL CONVERSION OR SUBSTITUTION; COATING BY VACUUM EVAPORATION, BY SPUTTERING, BY ION IMPLANTATION OR BY CHEMICAL VAPOUR DEPOSITION, IN GENERAL
- C23C22/00—Chemical surface treatment of metallic material by reaction of the surface with a reactive liquid, leaving reaction products of surface material in the coating, e.g. conversion coatings, passivation of metals
- C23C22/86—Regeneration of coating baths
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Materials Engineering (AREA)
- Mechanical Engineering (AREA)
- Metallurgy (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Description
Изобретение относитс к медицине, в частности иммунологии, и может быть использовано в вакционно сьшо роточном деле при производстве флуоресцирующих антител дл экспресс- диагностики гриппа.The invention relates to medicine, in particular, immunology, and can be used in vaccine-based production in the production of fluorescent antibodies for the rapid diagnosis of influenza.
Целью изобретени вл етс уско рение способа и повыше1ше выхода конечного продукта.The aim of the invention is to accelerate the process and increase the yield of the final product.
Способ по сн етс следующим примером .The method is illustrated by the following example.
К 0,3%-ному водному ра:створу риванола при посто нном перемешивании добавл ют сьторртку кролика, и о4ун- ную к вирусу гриппа A(H3N2) и имеющую специ1 ч«сквй титр в РТГА 1 /640 На 500 МП раствора риванола берут 100 МП сьшЪротки. Через 1ч после добавле)ш сьворотки рН смеси довод т раствором едкого натри до 7,1 и выдерживают в течение 15 ч при , при этом выпадает плетшей рса- Д(Ж альбумина. Иадосадочную жид- kocTbf содержащую глобулины, отдел ют центрифугированием в течение 30 мин |фи факторе разделени F - 1000.To a 0.3% aqueous solution of rivanol with continuous stirring is added a rabbit pulp, and ounine to the influenza A virus (H3N2) and having a special “squay titer in rtga 1/640 Rimer of 500 MP rivanol is taken 100 megapixel downstream. After 1 hour after the addition, the pH of the mixture was adjusted to 7.1 with a solution of sodium hydroxide and maintained for 15 hours, and the psA-D (F albumin. Iadosadochny liquid cocTbf containing globulins fell out, and separated min | fi separation factor F - 1000.
Дл ОЧИСТКИ глобулина от риванола в надос щочную жидкость добавл ют 7% шорй :тог6 натри . После 30 мин перемешива1а{Я осадок отдел ют фильт- ровага ем через бумажный фильтр.For the CLEANING of globulin from rivanol, 7% of shortened sodium tog is added to the supernatant. After 30 minutes of mixing, the precipitate is separated by filtering through a paper filter.
Профильтрованный раствор охлаждают До 4 с, после чего в него добавл ют равный насыценного раствора сернокислого аммони и выдерживают ри той же температуре в течение 12ч. Осадок отдел ют центрифугированием в течение 45 мин при F в 2500, а затем разводат забуфе- рекнын физиологическим раствором рН 7,2 ДО объема, равного 1/3 исходного объема сыворотки, что составл ет 33 мл.The filtered solution is cooled to 4 s, after which it is added to an equal saturated solution of ammonium sulphate and maintained at the same temperature for 12 hours. The precipitate was separated by centrifugation for 45 minutes at F at 2500, and then diluted with buffered physiological solution pH 7.2 to a volume equal to 1/3 of the initial volume of serum, which is 33 ml.
Очистку выделенного IgG осуществл ют гельхроматографией на колонке с сефадексом G-25 при помощи абРедактор Т. ЯноваPurification of the isolated IgG was performed by gelchromatography on a Sephadex G-25 column using abReditor T. Janova
Составитель Т. КозловаCompiled by T. Kozlova
Техред А.Кравчук Корректор 0. Лугова Tehred A. Kravchuk Proofreader 0. Lugov
5588/25588/2
Тираж 660 Подписное ВНИИПИ Государственного комитета СССРCirculation 660 Subscription VNIIPI USSR State Committee
по делам изобретений и открытий 113035, Москва, Ж-35, Раушска наб., д. 4/5for inventions and discoveries 113035, Moscow, Zh-35, Raushsk nab., 4/5
Й оизводственно-полиграГфи геское предпри тие, г Ужгород, ул. Проектна ,4I production and printing plant, Uzhgorod, st. Project, 4
сррбциометра. Дл дальнейшей работы отбирают фракции IgG максимального светопоглощени при длине волны 280 нм. Всего собирают 80% иммуноглобулинов- , иммунологическа активность которых в РТГА с гомологичным антигеном составл ет 1/640. По результатам электрофоретического контрол установлено, что вьоделенна srrbtsiometry. For further work, IgG fractions of maximum light absorption at a wavelength of 280 nm are selected. A total of 80% of immunoglobulins are harvested, the immunological activity of which is 1/640 in RTGA with a homologous antigen. According to the results of electrophoretic control, it has been established that
фракци не содержит других сывороточных белков, кроме IgG, при этом концентраци белка в собранном растворе составл ет 2,4 об.%.the fraction does not contain other whey proteins, except IgG, while the protein concentration in the collected solution is 2.4 vol.%.
В полученный раствор добавл ютIn the resulting solution is added
0,5 М карбонатный буферный раствор до рН 9,3.0.5 M carbonate buffer solution to pH 9.3.
Операцию коныогации IgGсфлуоре- сцеинизотиоцианатом (ФИТЦ), исполь- зуемы м в качестве флуорохрома дл The operation of konyogatsiya IgGfluorececeinisothiocyanate (FITC), used as a fluorochrome for
метки иммуноглобулина, провод т добавлением 24 мг ФИТЦ к 50 мл 2,4%-ного раствора IgG.Смесь выдерживают в течение 2 ч при 22 С.Immunoglobulin labels are carried out by adding 24 mg of FITC to 50 ml of a 2.4% IgG solution. The mixture is kept for 2 hours at 22 C.
Полученный контлогат подвергаютThe received contrate is subjected to
очистке от несв завшегос Ш1и, на колонке с гелем сефадекса G-50,После этого производ т фракционирование мечешлх шшуноглобулинов на ДЕАЕ-целлюлозе по известной метоДике .After cleansing from a gel with Sephadex G-50, after that, the mashins of shushonoglobulins were fractionated on DEAE-cellulose according to a well-known method.
В конъюгат внос т консервант - 1%-ный раствор мертиол та натри в соотношении 1:10000, замораживают до -20°С и лиофшшзируют.A preservative is added to the conjugate — a 1% solution of merthiol sodium in a ratio of 1: 10,000, frozen to -20 ° C and freeze-dried.
В данном примере получают флуоресцирующий И1в1уноглобулин с об- ратньш крас щим титром, равным 32, и обратным титром неспецифической активности, равным В.In this example, a fluorescent I1v1unoglobulin is obtained with a reverse dye titer of 32 and a reverse titer of nonspecific activity equal to B.
Таким образом, за сч$т сокращени экспозиции при проведении конъюгации происходит ускорение способа в 10 раз (2 ч против 20 ч по прототипу ) и повышение выхода конечногоThus, at the expense of reducing the exposure during the conjugation, the method is accelerated by a factor of 10 (2 h versus 20 h of the prototype) and the yield of the final
продукта за счет повышени крас щего титра в 4 раза (16-32 против 4-8 по прототипу).product by increasing the coloring titer by 4 times (16-32 versus 4-8 of the prototype).
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU843728252A SU1218513A1 (en) | 1984-04-18 | 1984-04-18 | Method of producing diagnostic fluorescent influenza immunoglobulin |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU843728252A SU1218513A1 (en) | 1984-04-18 | 1984-04-18 | Method of producing diagnostic fluorescent influenza immunoglobulin |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1218513A1 true SU1218513A1 (en) | 1986-10-15 |
Family
ID=21114222
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU843728252A SU1218513A1 (en) | 1984-04-18 | 1984-04-18 | Method of producing diagnostic fluorescent influenza immunoglobulin |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1218513A1 (en) |
-
1984
- 1984-04-18 SU SU843728252A patent/SU1218513A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Шкваржил Ф,, Фрагнер И. Наш опыт с приготовлением животных антиглобулинов, меченных флуоресцеин - изотиоцианатом. Журнал гигиены,- эпидемиологии, микробиологии и иммуно- логии. Прага: 1965, с. 9, № 4, с 459-467. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4550019A (en) | Manufacture and use of fowl egg antibodies | |
Kohanteb et al. | Detection of Leishmania donovani soluble antigen and antibody in the urine of visceral leishmaniasis patients | |
DE3061547D1 (en) | Process of preparation of an intravenous immunoglobulin solution, containing concentrated igm | |
IE46754B1 (en) | A glycoprotein and process for the production thereof | |
Ran et al. | Tumor‐associated immunogolobulins. The elution of IgG2 from mouse tumors | |
Turner et al. | Characterization of human antibodies to Salmonella typhi by gel-filtration and antigenic analysis | |
US4215036A (en) | Modified grass pollen antigens | |
US4322403A (en) | Method for the preparation of an immune globulin solution suitable for intravenous use | |
Ivanyi et al. | The specificity of serum factors in lymphocyte transformation in periodontal disease | |
EP0009715A1 (en) | Ubiquitary tissue protein PP8 and process for its preparation | |
EP0014756A1 (en) | Placenta-specific tissue protein PP10 and process for its enrichment | |
Wolff et al. | A two-component system of human serum agglutinating gelatine-coated erythrocytes | |
CA1187076A (en) | Protein pp.sub.9, process for its enrichment and its isolation and its use | |
EP0131424B1 (en) | Improvements in or relating to antibody preparations | |
DE3316464A1 (en) | VIRUSANTIGEN, METHOD FOR ITS DETERMINATION AND APPLICATION IN DIAGNOSIS AND THERAPY (VACCINE) | |
DE2616984C3 (en) | Method for the isolation and purification of a placenta-specific glycoprotein | |
SU1218513A1 (en) | Method of producing diagnostic fluorescent influenza immunoglobulin | |
Hechemy et al. | Absorption of Rickettsia rickettsii antibodies by Rickettsia rickettsii antigens in four diagnostic tests | |
US4232004A (en) | Antibody-specific solid phase immunoadsorbent, preparation thereof, and antibody purification therewith | |
Bray et al. | Anticollagen antibodies following thermal trauma | |
Helms et al. | Studies on Equine Immunoglobulins: II. Antigenic Interrelationships Among Horse IgG, IgG (T) and Antipneumococcal γ1-Component | |
DE2404265C3 (en) | Method of delivering immunoglobulins | |
DE2126128A1 (en) | Medical test procedure, reagent and additive to perform the procedure | |
US4256732A (en) | Modified grass pollen antigens | |
CH643860A5 (en) | LEUCINE-Rich 3.1-S-ALPHA-2-GLYCOPROTEIN, METHOD FOR THE PRODUCTION AND USE THEREOF. |