SU1180771A1 - Method of glucose electrochemical determination and electrode for accomplishment of same - Google Patents

Method of glucose electrochemical determination and electrode for accomplishment of same Download PDF

Info

Publication number
SU1180771A1
SU1180771A1 SU843744192A SU3744192A SU1180771A1 SU 1180771 A1 SU1180771 A1 SU 1180771A1 SU 843744192 A SU843744192 A SU 843744192A SU 3744192 A SU3744192 A SU 3744192A SU 1180771 A1 SU1180771 A1 SU 1180771A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
electrode
glucose
potential
enzyme
minutes
Prior art date
Application number
SU843744192A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Юозас Юозович Кулис
Наримантас Казевич Ченас
Вальдемарас Йонович Разумас
Андрюс Стасевич Самалюс
Пранас Пранович Микульскис
Original Assignee
Институт биохимии АН ЛитССР
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт биохимии АН ЛитССР filed Critical Институт биохимии АН ЛитССР
Priority to SU843744192A priority Critical patent/SU1180771A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1180771A1 publication Critical patent/SU1180771A1/en

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

1. Способ электрохимического определени  глюкозы, заключающийс  в наложении потенциала на ф ерментньй электрод, отличаю14ийс . тем, что, с целью повышени  чувствительности , перед наложением потенциала ферментный электрод выдерживают в анализируемом растворе при 7,0 рН 6 7,5 в течение 1,5-12 мин, после чего измер ют количество электричества , пропорциональное содержанию глюкозы. 2.Электрод дл  электрохимического определени  глюкозы, содержащий токопровод щий слой, соединенньй с токоотводом и ферментньй слой, отличающийс  тем, что, с целью, повышени  чувствительности определени , электрод допо тшительно снабжен слоем сажевой пасты, размещенным меж ду токопровод щим и ферментным сло (О ми. 3.Электрод по п.2, отличающийс  тем, что токопровод щий слой выполнен из комплекса N-метилфеназини  и тетрадиано-п-хинодимета; на.1. A method for the electrochemical determination of glucose, which involves imposing a potential on an enzyme electrode, is different. In order to increase the sensitivity, before applying the potential, the enzyme electrode is kept in the analyzed solution at 7.0 pH 6 7.5 for 1.5-12 minutes, after which the amount of electricity proportional to the glucose content is measured. 2. An electrode for the electrochemical determination of glucose containing a conductive layer connected to a current lead and an enzymatic layer, characterized in that, in order to increase the detection sensitivity, the electrode is additionally provided with a layer of soot paste placed between the conductor and the enzyme layer (O 3. Electrode according to claim 2, characterized in that the conductive layer is made of a complex of N-methylphenazini and tetradian-p-chinodimet;

Description

г Изобретение относитс  к аналитической химии и может быть использовано в медицине дл  определени  концентрации глюкозы. Цель изобретени  увеличение чувствительности способа. Пример 1. Определение глю-козы на электроде, модифицированном сажей. Стеклоуглеродный электрод с рабо чей поверхностью 0,1 см получают путем нанесени  на его поверхность 1 мг пасты из сажи марки ПМ-105 и воды (1:2 по весу). Затем на электрод нанос т 10 мкл раствора глюкозооксидазы (60 мкМ), наверх надевшрт диализную мембрану и закрепл ю ее резиновым кольцом. Далее электрод погружают в 0,1 М фосфатньй буфер рН 7,0 в электролизной  чейке и задают ему потенциал 0,0 В отноои тельно Ag/AgCl электрода сравнени . После 10 мин ввод т 10 или 20 шсМ глюкозы и провод т накопление в течение 1,5-8 мин. По истечении этого времени бипол рным ключом включают потенциал 0,4 В и определ ют количе ство накопленного электричества в течение 10 с. В табл. 1 приведены данные завис мости накопленного электричества от времени накоплени  при определении глюкозы (рП 7,0; 0,1 М фосфатный буфер). Таблица 712 руют путем адсорбцш из 052%-ного водного -раствора редокс полимера поливинилпиримидина,, кватернизованного 2-бромбензохиноном в течение 5 мин. Затем электрод промывают водой , на его поверхность нанос т 10 мкл раствора гл окозооксидазы (60 мкМ), наверх надевают диалР1зную мембрану, которую закрепл ют резиновым кольцом. Электрод погружают в 0,1 М фосфатньй буфер (рН 7,0) в Электролизной  чейке и задают потенциал 0,03 В относительно Ag/AgCl электрода сравнени ,После 10 мин ввод т 20-200 мМ (ин-гервал концентраций дл  построени  калибровочного графика) глюкозы и провод т накопление в течение 1,5 или 4 мин. По истечении этого времени бипол рным клю-чом 2 включают потенциал 0,4 В и определ ют количество накопленного электричества в течение 30 с. Данные определени  глюкозы (рН 7,05 0,1 М фосфатньй буферный раствор) приведены в табл. 2. Таблица 2The invention relates to analytical chemistry and can be used in medicine to determine the concentration of glucose. The purpose of the invention is to increase the sensitivity of the method. Example 1. Determination of glucose on a modified carbon black electrode. A glassy carbon electrode with a working surface of 0.1 cm is obtained by applying 1 mg of PM-105 carbon black paste and water (1: 2 by weight) to its surface. Then, 10 µl of a glucose oxidase solution (60 µM) was applied to the electrode, the dialysis membrane was put on top and secured with a rubber ring. Next, the electrode is immersed in a 0.1 M phosphate buffer pH 7.0 in the electrolysis cell and set to a potential of 0.0 V relative to the Ag / AgCl reference electrode. After 10 minutes, 10 or 20 ppm of glucose is injected and accumulated for 1.5-8 minutes. After this time, the potential of 0.4 V is turned on with a bipolar key and the amount of accumulated electricity is determined for 10 s. In tab. Figure 1 shows the data on the dependence of accumulated electricity on the accumulation time in determining glucose (pP 7.0; 0.1 M phosphate buffer). Table 712 is ruled by adsorbing from a 052% aqueous solution of polyvinylpyrimidine redox polymer quaternized with 2-bromobenzoquinone for 5 minutes. Then, the electrode is washed with water, 10 µl of a solution of gl ocosoxidase (60 µM) is applied to its surface, and a dial phosphate membrane is put on top, which is fixed with a rubber ring. The electrode is immersed in a 0.1 M phosphate buffer (pH 7.0) in the Electrolysis cell and a potential of 0.03 V relative to the Ag / AgCl reference electrode is set. After 10 min, 20–200 mM are introduced (concentration range for plotting the calibration graph a) glucose and accumulate for 1.5 or 4 minutes. After this time, the bipolar switch 2 includes a potential of 0.4 V and the amount of accumulated electricity is determined for 30 s. Data for determination of glucose (pH 7.05 0.1 M phosphate buffer solution) is given in Table. 2. Table 2

р и М е р 2. Определение глюкозы на электроде, модифицирован- 55 и p and M e p 2. Determination of glucose on the electrode, modified 55 and

ном редокс полимером.Mr. Redox polymer.

Стеклоу глеродный электрод с поверхностью О,1 см модифициИз табл. 2 видно, что при времени накоплени  1,5 или 4 мин график определени  глюкозы линеен до 110Glass electrode with a surface of 0, 1 cm modification. Table. 2 that when the accumulation time is 1.5 or 4 min, the glucose determination graph is linear to 110

дел определени  метаболита составл ет 20 мкМ. Электрод сохран ет работоспособность 5 дн« 70 мкМ соответственно. Нижний npe 3 Пример 3. Определение накоп лени  элекуричества глюкозы в зависимости от времени и степени модификации электрода редокс полимером. Стеклоуглеродный электрод с рабочей поверхностью 0,1 см модифицируют путем адсорбции из 0,2%-ного этапольного раствора полигидрохлорида в течение 2 или 5 мин. Затем электрод промывают этанолом и водой, погружают в 0,1 М фосфатный буфер (рН 7,0) и путем записи циклической вольтамперограммы определ ют степень модификации электрода редокс группами , составл ющую 0,3 и 0,5 нмоль-см соответственно. Затем на поверхность электрода нанос т 10 мкл раствора глюкозооксидазы (60 мкМ), покрывают диализной мембраной, которую закрепл ют резиновым кольцом. Электроду задают потенциал 0,0 В относительно Ag/AgCl электрода сравнени . После 10 мин ввод т 80 мкМ глюкозы и прово д т накопление в течение 1,5; 3; 5; 8; 12 мин. По истечении этого времени бипол рным кольцом 2 включают потенциал 0,4 В и определ ют количество накопленного электричества в течение 30 с. Данные зависимости количества накопленного электричества глюкозы от времени и степени модификации электрода (концентраци  глюкозы 80 мкМ в 0,1 М фосфатном буфере, рН 7,0, t 25 с) приведены в табл. 3. Таблица 3the metabolite determination count is 20 µM. The electrode remains operable for 5 days ≈ 70 μM, respectively. Lower npe 3 Example 3. Determination of glucose electrolyte accumulation depending on time and degree of electrode modification of the redox polymer. A glassy carbon electrode with a working surface of 0.1 cm is modified by adsorption from a 0.2% stadol solution of polyhydrochloride for 2 or 5 minutes. The electrode is then washed with ethanol and water, immersed in a 0.1 M phosphate buffer (pH 7.0) and the degree of modification of the electrode with redox groups of 0.3 and 0.5 nmol-cm, respectively, is determined by recording the cyclic voltammogram. Then, 10 µl of the glucose oxidase solution (60 µM) is applied to the electrode surface, covered with a dialysis membrane, which is fixed with a rubber ring. The electrode sets a potential of 0.0 V relative to the Ag / AgCl reference electrode. After 10 minutes, 80 µM of glucose is injected and accumulated for 1.5; 3; five; eight; 12 min After this time, the potential of 0.4 V is switched on by the bipolar ring 2 and the amount of accumulated electricity is determined for 30 s. The data on the amount of accumulated glucose electricity on time and degree of electrode modification (glucose concentration 80 µM in 0.1 M phosphate buffer, pH 7.0, t 25 s) is given in Table. 3. Table 3

Из приведенных данных видно, что предельна  величина накопленного 71 электричества достигаетс  при времени накоплени  более 12 мин. Количество накопленного электричества увеличиваетс  с увеличением степени модификации электрода редокс полимером . Пример 4. Определение глюкозы на электроде из токопровод щего органического комплекса. Электрод, полученный путем прессовани  токопровод щего комплекса тетрациано-п-хинодиметана и N-метилфеназини , с рабочей поверхностью 0,3 см , содержащий под диализной мембраной 10 мкм раствора глюкозооксидазы (60 мкМ), погружают в 0,1 М фосфатный буфер (рН 7,0) в электролизной  чейке. Электроду задают потенциал 0,3 В относительно Ag/AgCl электрода сравнени  и вьщерживают 10 мин. После этого ввод т 10200 мкМ (интервал концентраций дл  построени  калибровочного графика) глюкозы и провод т накопление в течение 5-10 мин. По истечении этого времени бипол рным ключом включают потенциал 0,0 В и в течение 60 с определ ют количество накопленного электричества. Данные зависимости накопленного электричества при определении глюкозы (рН 7,0; 0,1 М фосфатный буфер) приведены в табл. 4. Таблица 4From the above data it can be seen that the limit value of accumulated 71 electricity is reached at accumulation time of more than 12 minutes The amount of accumulated electricity increases with an increase in the degree of modification of the electrode by the redox polymer. Example 4. Determination of glucose on an electrode from a conductive organic complex. An electrode obtained by pressing a conductive complex of tetracyano-p-quinodimethane and N-methylphenazine with a working surface of 0.3 cm, containing a 10 µm glucose oxidase solution (60 µM) under the dialysis membrane, is immersed in 0.1 M phosphate buffer (pH 7 , 0) in the electrolysis cell. The electrode sets a potential of 0.3 V relative to the Ag / AgCl reference electrode and is held for 10 minutes. After that, 10200 µM (concentration range for plotting the calibration graph) of glucose are introduced and accumulated for 5-10 minutes. After this time, the potential of 0.0 V is turned on with a bipolar key and the amount of accumulated electricity is determined within 60 s. These dependences of the accumulated electricity in the determination of glucose (pH 7.0; 0.1 M phosphate buffer) are given in Table. 4. Table 4

Продолжение табл. 4 Из приведенных данных видно, что количество накопленного электричества с использованием токопровод щих комплексов пропорционально количеству глюкозы и времени накоплени . Нижний предел определени  метаболита составл ет 10 мкМ. Пример 5. Определение глюкозы в крови. Исследовани  провод т аналогично примеру 4 за исключением введени  0,1 мл дес тикратно разбавленной буферным раствором крови человека вмес то раствора глюкозы в электрохимичес кую  чейку объемом 5 мл. При времени накоплени  10 мин количество накопленного электричества составл ет 2,35 мкКл. Концентраци  глюкозы в крови, рассчитанна  на основе калибровочного графика, составл ет (с учетом разбавлений) 5,1 мМ(91,9 мг.% что близко физиологическому уровню метаболита (80-100 мг.%). Пример 6. Определение концентрации лактата. Графитовый электрод с рабочей площадью электрода 0,15 см погружают в 9,2 мкМ раствора цитохрома В в 0,1 М фосфатном буфере (рН 7,0) в течение 2 ч. Потом электрод отмывают тем же буфером и погружают в 2 мл буферного раствора в электролизной  чейке. На электрод задают потенциал величиной 0,2 В относитель но Ag/AgCl электрода сравнени . После 10 мин ввод т 10 ,004-; 0,2 мМ L-лактата (интервагГконцентрации дл  построени  калибровочного графика) и провод т накопление в течение 5 или 20 мин. По истечении это го времени бипол рным ключом 2 включают потенциал 0,2 В и определ ют количество накопленного электричест ,ва в течение 2с. Данные определени  лактата (рН 7, 0,1 М фосфатный буферный растворt 25С) приведены в табл. 5. Из приведенных данных строитс  калибровочньй график зависимости количества накопленного электричества от концентрации L-лактата в  чейке.Continued table. 4 From the above data it can be seen that the amount of accumulated electricity using conductive complexes is proportional to the amount of glucose and the time of accumulation. The lower limit of metabolite determination is 10 µM. Example 5. Determination of glucose in the blood. The studies were carried out analogously to example 4, except for the introduction of 0.1 ml of ten-fold diluted human blood buffer solution of glucose instead of glucose solution into a 5 ml electrochemical cell. With a storage time of 10 minutes, the amount of accumulated electricity is 2.35 µC. The glucose concentration in the blood, calculated on the basis of the calibration graph, is (including dilutions) 5.1 mM (91.9 mg.%, Which is close to the physiological level of the metabolite (80-100 mg.%). Example 6. Determination of lactate concentration. A graphite electrode with a working electrode area of 0.15 cm is immersed in 9.2 μM of cytochrome B solution in 0.1 M phosphate buffer (pH 7.0) for 2 hours. Then the electrode is washed with the same buffer and immersed in 2 ml of buffer solution. in the electrolysis cell. A potential of 0.2 V relative to the Ag / AgCl electrode is set on the electrode After 10 minutes, 10,004-; 0.2 mM L-lactate (the interval of concentration to build the calibration graph) are introduced and accumulated for 5 or 20 minutes. After this time, a potential of 0.2 B and determine the amount of accumulated electrical power for 2 s. The data for determining lactate (pH 7, 0.1 M phosphate buffer solution 25 ° C) are given in Table 5. From the given data, a calibration graph is plotted based on the amount of accumulated electricity on L-lactate in the cell.

Таблица 5 Калибровочный график определени  лактата линеен до 0,16 и 0,44 мкМ при 5 и 20 мин накоплени . Нижний предел определени  метаболита составл ет 0,020 (5 мин накоплени ) или 0,032 мкМ (20 мин накоплени ). Электрод сохран ет работоспособность в тетечение 7 дн. Пример 7. Определение лактата в слюне. Аналогично примеру 6 за исключением введени  10 мкл дес тикратно разбавленной буферным раствором слюны вместо раствора лактата. При времени накоплени  20 мин количество накопленного электричества составл ет 5,9; 6,4 и 7,5 мкКл дл  разных образцов. Концентраци  молочной кислоты в слюне, рассчитанна  на основе калибровочного графика, составл ет 0,59; 0,64 и 0,76 мМ, что близко физиологическому уровню метаболита (7,4 мг.% по известным данным). Пример 8. Определение концентрации Н,0,. На поверхность графитового ;Электрода, импрегнированного парафи7Table 5 The calibration graph for determining lactate is linear to 0.16 and 0.44 µM at 5 and 20 min accumulation. The lower limit of metabolite determination is 0.020 (5 min of accumulation) or 0.032 µM (20 min of accumulation). The electrode remains operable for 7 days. Example 7. Determination of lactate in saliva. Analogously to Example 6 except for injecting 10 µl of ten times diluted with a buffer solution of saliva instead of a solution of lactate. With a storage time of 20 minutes, the amount of accumulated electricity is 5.9; 6.4 and 7.5 µC for different samples. The concentration of lactic acid in the saliva, calculated on the basis of the calibration graph, is 0.59; 0.64 and 0.76 mM, which is close to the physiological level of the metabolite (7.4 mg.% According to known data). Example 8. The determination of the concentration of H, 0 ,. On the surface of graphite; Electrode, impregnated paraffin7

ном (0,018 см) нанос т Ю мкл раствора дероксидазы растительного происхождени  (10 мкМ) в 0,1 М фосфатцитратном буфере (рН 5,2). Раствор фиксируют на поверхности при помощи диализной мембраны, закрепл емой на корпусе электрода резиновым кольцом Электрод погружают в электрохимическую  чейку, содержащую 25 мл М фосфат-цитратного буфера:, рН 5,2, t , задают потенциал 0,4 В относительно Ag/AgCl электрода сравнени , и вьщерживают при нем 10 мин. После этого в  чейку ввод т 0,2 мл 0,63-3,78 мМ (интервал концентраций дл  построени  калибровочного графика) раствор перекиси водорода в том же буферном растворе и провод т накопление электричества в течение 1 или 2 мин (в реакционной смеси из-за разбавлени  концентрации составл ет 5-30 мкМ). По истечении времени накоплени  бипол рным ключом включают потенциал 0,0 В и определ ют количество накопленного электричества в течение 2 с с задержкой начала измерени  120 мс.(0.018 cm) is applied with 10 μl of a solution of vegetable deoxidase (10 µM) in 0.1 M phosphate citrate buffer (pH 5.2). The solution is fixed on the surface by means of a dialysis membrane fixed on the body of the electrode with a rubber ring. The electrode is immersed in an electrochemical cell containing 25 ml of M phosphate-citrate buffer: pH 5.2, t, set a potential of 0.4 V relative to the Ag / AgCl electrode compare, and hold it for 10 minutes. Thereafter, 0.2 ml of 0.63-3.78 mM (concentration range for plotting the calibration graph) is injected into the cell, hydrogen peroxide solution in the same buffer solution, and electricity is accumulated for 1 or 2 minutes (in the reaction mixture from - for dilution the concentration is 5-30 µM). After the accumulation time has expired, a potential of 0.0 V is switched on with a bipolar key and the amount of accumulated electricity is determined for 2 s with a start delay of 120 ms.

Данные определени  (рН 5,2; 0,1 М фосфат-цитратный буферный раствор , t ) приведены в табл. 6These determinations (pH 5.2; 0.1 M phosphate-citrate buffer solution, t) are given in Table. 6

180771180771

Таблица 6Table 6

Из приведенных данньгх видно, что при времени накоплени  1 или 2 мин калибровочные графики определени  перекипи водорода линейны до 30 . Нижний предел определени  И202 5 мкМ. Электрод сохран ет работоспособность в течение мес ца при 4 С.From the data given it can be seen that, with an accumulation time of 1 or 2 min, the calibration graphs for determining the hydrogen peroxide are linear up to 30. The lower limit of detection is 20 μM. The electrode remains operable for a month at 4 C.

Claims (3)

1. Способ электрохимического’ определения глюкозы, заключающийся в наложении потенциала на ф ерментный электрод, отличающийся, тем, что, с целью повышения чувствительности,’ перед наложением потенциа ла ферментный электрод выдерживают в анализируемом растворе при 7,0^ pH έ 7,5 в течение 1,5-12 мин, · после чего измеряют количество электричества, пропорциональное содержанию глюкозы.1. The method of electrochemical determination of glucose, which consists in imposing a potential on an enzyme electrode, characterized in that, in order to increase the sensitivity, the enzyme electrode is kept in the analyzed solution at 7.0 ^ pH έ 7.5 V before applying potential for 1.5-12 minutes, after which measure the amount of electricity proportional to the glucose content. 2. Электрод для электрохимического определения глюкозы, содержащий токопроводящий слой, соединенный с токоотводом и ферментный слой, отличающийся тем, что, с целью, повышения чувствительности определения, электрод дополнительно снабжен слоем сажевой пасты, размещенным между токопроводящим и ферментным слоя- § ми.2. An electrode for the electrochemical determination of glucose, containing a conductive layer connected to a down conductor and an enzyme layer, characterized in that, in order to increase the detection sensitivity, the electrode is further provided with a carbon black paste layer located between the conductive and enzyme layers - § mi. 3. Электрод по п.2, отличающийся тем, что токопроводящий слой выполнен из комплекса N-метилфеназиния и тетрациано-п-хинодимета^ на.3. The electrode according to claim 2, characterized in that the conductive layer is made of a complex of N-methylphenazinium and tetracyano-p-quinodimetry.
SU843744192A 1984-05-24 1984-05-24 Method of glucose electrochemical determination and electrode for accomplishment of same SU1180771A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU843744192A SU1180771A1 (en) 1984-05-24 1984-05-24 Method of glucose electrochemical determination and electrode for accomplishment of same

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU843744192A SU1180771A1 (en) 1984-05-24 1984-05-24 Method of glucose electrochemical determination and electrode for accomplishment of same

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1180771A1 true SU1180771A1 (en) 1985-09-23

Family

ID=21120370

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU843744192A SU1180771A1 (en) 1984-05-24 1984-05-24 Method of glucose electrochemical determination and electrode for accomplishment of same

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1180771A1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2646476C2 (en) * 2012-04-30 2018-03-05 Цилаг Гмбх Интернэшнл Improved procedure and system of analyte measurement

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Колб Б.Г. и Камьшников B.C. Справочник по клинической химии, Минск: Беларусь, 1982, с. 168-171. Патент US № 3623960, кл. G 01 N 27/46, опублик. 1971. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2646476C2 (en) * 2012-04-30 2018-03-05 Цилаг Гмбх Интернэшнл Improved procedure and system of analyte measurement
RU2696267C2 (en) * 2012-04-30 2019-08-01 Цилаг Гмбх Интернэшнл Improved analyte measurement technique and system

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4935105A (en) Methods of operating enzyme electrode sensors
US5312590A (en) Amperometric sensor for single and multicomponent analysis
Harrison et al. Characterization of perfluorosulfonic acid polymer coated enzyme electrodes and a miniaturized integrated potentiostat for glucose analysis in whole blood
US4127448A (en) Amperometric-non-enzymatic method of determining sugars and other polyhydroxy compounds
CA2358464C (en) Disposable test strips with integrated reagent/blood separation layer
Palleschi et al. Amperometric tetrathiafulvalene-mediated lactate electrode using lactate oxidase absorbed on carbon foil
Zen et al. A selective voltammetric method for uric acid detection at Nafion®-coated carbon paste electrodes
EP1021720B1 (en) Electrochemical determination of fructosamine
JPH0617889B2 (en) Biochemical sensor
Tierney et al. Electroanalysis of glucose in transcutaneously extracted samples
Karube et al. Microbiosensors for acetylcholine and glucose
JP2007268289A (en) Small volume in vitro analyte sensor
KR19990077833A (en) Biosensor, iontophoretic sampling system, and methods of use thereof
RU2005123794A (en) METHOD FOR DETERMINING THE CONCENTRATION OF THE STUDY IN THE PHYSIOLOGICAL SAMPLE
Zen et al. Voltammetric determination of serotonin in human blood using a chemically modified electrode
Milardović et al. Glucose determination in blood samples using flow injection analysis and an amperometric biosensor based on glucose oxidase immobilized on hexacyanoferrate modified nickel electrode
CN105572199A (en) Working electrode biological reactant and electrode type test strip
CN107543847A (en) A kind of anti-interference electrochemical sensor and its method of testing
Wang et al. Preconcentration of uric acid at a carbon paste electrode
EP1511999A1 (en) Electrochemical biosensor
Cui et al. Differential Thick‐Film Amperometric Glucose Sensor with an Enzyme‐Immobilized Nitrocellulose Membrane
SU1180771A1 (en) Method of glucose electrochemical determination and electrode for accomplishment of same
RU2049991C1 (en) Method and active member for detecting metabolites in biological fluids
Genshaw Enzyme electrode for determining glucose in whole blood.
Wang et al. Miniature tissue based voltammetric bioelectrodes