SU1068475A1 - Method for detecting filiform virus of bees - Google Patents

Method for detecting filiform virus of bees Download PDF

Info

Publication number
SU1068475A1
SU1068475A1 SU823445496A SU3445496A SU1068475A1 SU 1068475 A1 SU1068475 A1 SU 1068475A1 SU 823445496 A SU823445496 A SU 823445496A SU 3445496 A SU3445496 A SU 3445496A SU 1068475 A1 SU1068475 A1 SU 1068475A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
virus
bees
antigen
filiform
detecting
Prior art date
Application number
SU823445496A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Юрий Михайлович Батуев
Олег Федорович Гробов
Григорий Андреевич Надточей
Михаил Леонидович Обухов
Original Assignee
Всесоюзный Ордена Ленина Научно-Исследовательский Институт Экспериментальной Ветеринарии
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всесоюзный Ордена Ленина Научно-Исследовательский Институт Экспериментальной Ветеринарии filed Critical Всесоюзный Ордена Ленина Научно-Исследовательский Институт Экспериментальной Ветеринарии
Priority to SU823445496A priority Critical patent/SU1068475A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1068475A1 publication Critical patent/SU1068475A1/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

СПОСОБ ИНДИКАЦИИ НИТЕВИЦНО-ГО ВИРУСА ПЧЕЛ, включёиоадий постановку реакции двойной иммунодиффузйи в агаре испытуемого антигена с иммунной сывороткой, о-т л и ч а ющ и и с   тем, что, с целью повышени  эффективности способа, в качестве иммунной сыворотки исполь:зуют кроличью гипериммунную сыво ,ротку, полученную с помощью штамма Apis filamentous virus 31.METHOD OF INDICATION OF NITEVITNO-GO-BEAN VIRUS, including setting a double immunodiffusion reaction in the test antigen agar with immune serum, in order to increase the effectiveness of the method, use rabbit as immune serum: hyperimmune syvro, rotoku, obtained using a strain of Apis filamentous virus 31.

Description

O5O5

0000

4; four;

СЛSL

Изобретение относитс  к ветеринарной вирусологии, в .частности к разработке спосо-ба индикации нитевидного вируса пчел (НВП).The invention relates to veterinary virology, in particular, to the development of a method for indicating the filamentous bee virus (CWP).

НВП вызывает заболевание медоносных пчел, сопровождающеес  потерей способности к полету, паргшичом конечностей, наличием гемолимфы молочно-белого цвета, разрушением клеток гемолимфы в пчелиной семье наблюдают посто нную небольшую гибель пчел, либо семь  погибает. В соременных услови х развити  крупных пчеловодческих и матковыводных совхозов НВП может нанести большой экономический утцерб народному хоз йству .CWP causes disease of honeybees, accompanied by loss of ability to flight, pargshichy limbs, the presence of a milky white hemolymph, destruction of hemolymph cells in the bee colony, a constant small death of bees is observed, or seven die. Under modern conditions of development of large beekeeping and mother-farmed state farms, NVP can cause a large economic loss to the national economy.

Морфологические признаки. Частицы НВП эллипсоидной формы, размером 400-100 нм или 450-150 нм, состо т из нуклеокапсида, размером 3000-60 или 3000-40 нм, заключенного в оболочку.Morphological signs. NVP particles of ellipsoidal shape, 400-100 nm or 450-150 nm in size, consist of a nucleocapsid, 3000-60 or 3000-40 nm in size, enclosed in a shell.

Физико-химические свойства. Нуклеокапсид содержит двухнитевую ДНК с молекул рным весом приблизительно 12-10 Дальтонов, плавучие плотности в хлористом цезии целой частицы, нуклеокапсида и ДНК - равн соответственно 1,28; 1,36 и 1,71 r/ Частица НВП содержит примерно 12 белков с молекул рными весами от 13 до 70 кД, которые приблизительнс равномерно распределены между обо-, лочкой и нуклеокапсидом.Physicochemical properties. Nucleocapsid contains a double-stranded DNA with a molecular weight of approximately 12-10 Daltons, floating density in whole particle cesium chloride, nucleocapsid and DNA are 1.28, respectively; 1.36 and 1.71 r / CWP particle contains about 12 proteins with molecular weights from 13 to 70 kDa, which are approximately evenly distributed between the shell, the core and the nucleocapsid.

Биологические свойства. НВП. поражает только медоносных пчел, рабочих особей и маток. Он обнаружен в следующих органах пораженных особей: мозге, вентральном нервном т же, глоточных, верхнечелюстных и восковых железах, жировом теле, большой  довитой железе и резервуаре этой железы,средней кишке,  ичн ках и гемолимфе. Репродукци  вируса отмечена лишь в жировом теле и  ичниках . В инфицированных, клетках жирового тела и  ичниках отмечено разрушение  дерных оболочек. Экспериментальна  инфекци  была вызвана .у йзрослых рабочих пчел при скармливани ,и или иньекции выруссодержащих препаратов. Не удалось заражение пчелиных личинок 1-го возраста, мышат-сосунов , 21-дневных мьвиёй, тараканов и. личинок большой восковой моли. НВП широко распространен в США, Англии, обнаружен в Японии, Новой Зеландии и Италии.Biological properties. NVP. affects only honey bees, workers and queens. It is found in the following organs of the affected individuals: brain, ventral nerve, pharyngeal, maxillary and waxy glands, fatty body, large venous gland and reservoir of this gland, midgut, ova, and hemolymph. Reproduction of the virus is noted only in the fatty body and ovaries. In infected cells of the fatty body and ovaries, the destruction of the nuclear membranes is noted. Experimental infection was caused by adult worker bees when fed, and or by injection of vyrussoderzhaschih drugs. Unable to infect bee larvae of the 1st age, mice-suckers, 21-day old people, cockroaches and. larvae of a large wax moth. NVP is widespread in the USA, England, found in Japan, New Zealand and Italy.

НВП был обнаружен с помощью электронно-ми-кроскопического исследовани  экстрактов из мертвых пчел или гемо 1имфы из живых пчел 1NVP was detected by electron microscopic examination of extracts from dead bees or hemo from a live bee 1

Недостатком известного способа индикации  вл етс  то, что электронный микроскоп  вл етс  уникальной дорогосто щей аппаратурой и не доступен практическим лаборатори м. The disadvantage of the known display method is that the electron microscope is a unique and expensive equipment and is not available in practical laboratories m.

Цель изобретени  - повышение эффективности способа индикации нитевидного вируса пчел.The purpose of the invention is to increase the efficiency of the method of displaying the filamentous bee virus.

Поставленна  цель достигаетс  тем, что согласно способу индикации нитевидного вируса пчел, включающему постановку реакции двойной иммунодиффузии в агаре испытуемого антигена с иммунной сывороткой, в качестве иммунной сыворотки используют кроличью гипериммунную сыворотку , полученную с помощью штамма Apis fiPamentous Virus № 31.The goal is achieved in that according to the method of indicating the filamentous bee virus, including the formulation of the double immunodiffusion reaction in the test antigen agar with immune serum, rabbit hyperimmune serum obtained using Apis fiPamentous Virus No. 31 is used as the immune serum.

Дл  получени  кроличьей гипериммунной сыворотки в качестве антигена испол.ьзуют вирионы НВП ш.та1«ма № 31. Пчеп в количестве 100-150 шту зараженных данным штаммом и погибших от НВП, механически гомогенизируют общеприн тым методом с добавлением 0,01-0,03 М фосфатного буфера рН 7,0-7,2 (1 мл на пчелу). Гомогёнат осветл ют при 1800-2000 g 8-10 мин, супернатант центрифугируют при 8000-10000 g 20-25 мин. Осадок суспендируют в 2-3 мл 0,010 ,03 М фосфатного буфера рН 7,0-7,2 и концентрированную вируссодержйщую суспензию центрифугируют в градиенте плотности сахарозы от 20 до 60% в течение 3-3,5 ч при 3000032000 д. Собирают фракцию, содержащую вирус, при -помощи подход щего шприца с иглой, довод т ее до объема 3-4,5 мл физиологическим раствором, дел т на три .равные части , разливают во флаконы и замораживают .In order to obtain rabbit hyperimmune serum, virions of NVP sh. Tata 1 and ma No. 31 are used as antigens. In the amount of 100-150 pieces infected with this strain and killed by NVP, are mechanically homogenized using the conventional method with the addition of 0.01-0.03 M phosphate buffer pH 7.0-7.2 (1 ml per bee). The homogenate is clarified at 1800-2000 g for 8-10 minutes, the supernatant is centrifuged at 8000-10000 g for 20-25 minutes. The precipitate is suspended in 2-3 ml of 0,010, 03 M phosphate buffer pH 7.0-7.2 and the concentrated vaccinated suspension is centrifuged in a sucrose density gradient from 20 to 60% for 3-3.5 h at 3000032000 d. Collect the fraction, containing a virus, with the help of a suitable syringe with a needle, bring it up to a volume of 3-4.5 ml with physiological saline, divide it into three equal parts, pour into vials and freeze.

Гипериммунизац 1  кроликов. Перед первой инъекцией одНу часть- полученного антигена размораживают, смешивают с полным адъювантом Фрейнда соотношении 1:1 и ввод т кролику в подушечки задних лапок по 0,20 ,3 МП, в бедренные мьшцы по 0,50 ,75 мл и внутрикожно в три точки спины по 0,2-0,3 мл. Вторую инъекцию делают через 21 день, при зтом одну часть антигена размораживают, довод т физиологическим раствором до объема 2-3 мл и ввод т кролику внутривенно. Третью инъекцию делаю внутривенно аналогичным образом череэ 7 дней после второй. Обескровливание кроликов провод т на 7-10 день после третьей инъекции, кровь собирают в стерильную колбу, вБщерживают при З7с до образовани сгустка, отдел ют от стенок стерилной стекл нной пгшочкой и оставл ют при на ночь. На следующий день сыворотку отсасывают, консервируют мертиол том в соотношении 1:5000-1:10000 и запаивают в ампулыGiperimmunizats 1 rabbits. Before the first injection, one part of the resulting antigen is thawed, mixed with a full Freund's adjuvant ratio of 1: 1 and injected into the rabbit in the pads of the hind legs at 0.20, 3 MP, in the femoral muscles at 0.50, 75 ml and intradermally at three points back to 0.2-0.3 ml. A second injection is done after 21 days, with this, one part of the antigen is thawed, brought to a volume of 2-3 ml with physiological saline and injected into the rabbit intravenously. I give the third injection intravenously in the same way 7 days after the second. The exsanguination of rabbits is carried out on the 7-10th day after the third injection, the blood is collected in a sterile flask, held at 3.7 s until a clot forms, separated from the walls of the sterile glass with a sponge and left at night. The next day, the serum is sucked off, preserved with merthiolum in a ratio of 1: 5000-1: 10,000 and sealed in ampoules

Исследуемых пчел в количестве 8-12 штук гомогенизируют механически с добавлением 8-12 мл дистиллированной воды. Гомогёнат оставл ютThe studied bees in the amount of 8-12 pieces are mechanically homogenized with the addition of 8-12 ml of distilled water. Homogenate left

при 1000г2000 g в течение 8-10 мин супернатант центрифугируют при 8000-10000 g в течение 20-25 мин. Образовавшийс  осадок суспендируют в 0,1-0,2 мл дистиллированной воды и используют в качестве с.нтигена. Одновременно аналогичным образом готов  контрольный положительный антиген из пчел, погибших от НВП штамма 31. Используют агар Дифко. В качестве растворител  дл  приготовлени  0,9-1%-ного раствора гел  примен ют 0,1-0,2 М боратный буфер (рН 8,4-8,5) с добавлением 5-8 г хлористого натри  на 1л раствора. Реакцию став т в чашках Петри или на предметном стекле. Учет реакции провод т по формированию полос преципитации.at 1000g2000 g for 8-10 minutes, the supernatant is centrifuged at 8000-10000 g for 20-25 minutes. The precipitate formed is suspended in 0.1-0.2 ml of distilled water and used as an antigen. At the same time, the control positive antigen from bees killed by CGP strain 31 is prepared in the same way. Difco agar is used. The solvent used to prepare a 0.9-1% gel solution is 0.1-0.2 M borate buffer (pH 8.4-8.5) with addition of 5-8 g of sodium chloride per 1 liter of solution. The reaction is placed in Petri dishes or on a slide. Accounting for the reaction is carried out to form precipitation bands.

Данный способ может быть представлен в двух вариантах: макрометодом по Ouchterfoni (1948) и микрметодом по Mansi (1958).This method can be presented in two versions: macro method according to Ouchterfoni (1948) and micro method according to Mansi (1958).

.Макрометод. В чашке Петри или н предметном стекле получают слой агарового гел  толщиной 1,5-2 мм, вырезают лунки диаметром 5-7 мм (рассто ние между лунками 3-6 мм). Лунки заполн ют антисывороткой и антигенами до краев/ инкубируют во влажной камере при комнатной температуре . Учет реакции провод т через 24-36 ч по формированию поло преципитации.Macrohod. In a Petri dish or on a slide, a layer of agar gel 1.5–2 mm thick is obtained; wells with a diameter of 5–7 mm are cut out (the distance between the wells is 3–6 mm). The wells are filled with antiserum and antigens to the brim / incubated in a humid chamber at room temperature. Accounting for the reaction is carried out after 24-36 hours to form a polio precipitation.

Микромет.од. В чги ке Петри или на предметном стекле получают слой агарового гел  толщиной 0,8-1,5 WM (рассто ние между лунками 1,41 ,6 мм). Лунки заполн ют антисывороткой и антигенами до краев, инкубируют во влажной камере при 3537 С . Учет реакции провод т через 3-6 ч по формированию полос преципитации .. Использование микромето а реакции двойной иммуиодиффузии снижает расход реагентов, сокращает врем  получени  результатов реакции .Mikromet.od. A layer of agar gel with a thickness of 0.8-1.5 WM (the distance between the wells is 1.41, 6 mm) is obtained in chgi ke Petri or on a glass slide. The wells are filled with antiserum and antigens to the brim, incubated in a humid chamber at 3537 ° C. Consideration of the reaction is carried out after 3-6 hours for the formation of precipitation bands. Using micromethometry and the reaction of double immunodiffusion reduces the consumption of reagents, shortens the time required to obtain the results of the reaction.

Приготовление антигена дл  реакций . Восемь исследуемых пчел гомогенизируют механически с добавлением 8 мл дистиллированной воды. Гомогенат осветл ют при 1000 g в течение 8 мин, супернатант центрифугируют при 8000 g 20 мин. Образовавшийс  осадок суспендируютPreparation of antigen for reactions. The eight bees studied were mechanically homogenized with the addition of 8 ml of distilled water. The homogenate is clarified at 1000 g for 8 minutes, the supernatant is centrifuged at 8000 g for 20 minutes. The precipitate is suspended

B 0,1 мл дистиллированной воды и используют в качестве антигена. В макро- или микрометоде реакции двойной иммунодиффузии с гомологичной ,антисывороткой полученныйB 0.1 ml of distilled water and used as antigen. In a macro or micro method, dual immunodiffusion reactions with a homologous, antiserum obtained

o антиген образует 1-2 полосы преципитации .o antigen forms 1-2 precipitation bands.

10 исследуемых пчел томог&нкзируют механически с добавлением 10 мл дистиллированной воды. Гомое генат осветл ют при 1500 g в течение 9 мин, супернатант центрифугир5тот при 9000 g в течение 22,5 мин. Образовавшийс  осадок суспендируют в 0,15 мл дистиллированной воды и используют в качест0 ве антигена. В макро- или микрометоде реакции двойной иммунодиффузии с гомологичной антисывороткой полученный антиген образует 1-2 полосы преципитации.The 10 bees under study were mechanized & added with the addition of 10 ml of distilled water. The goat genate was clarified at 1500 g for 9 minutes, the supernatant was centrifuged at 9000 g for 22.5 minutes. The precipitate formed is suspended in 0.15 ml of distilled water and used as an antigen. In the macro- or micro-method of double immunodiffusion reaction with a homologous antiserum, the resulting antigen forms 1-2 precipitation bands.

5five

12 исследуемых пчел гомогенизируют механически с добавлением 12 мл дистиллированной воды. Гомогенат осветл ют при 2000 g в течение 10 .мин, супернатант центри0 фугируют при 10000 g в течение 25 мин. Образовавшийс  осадок суспендируют в О,2 мл дистиллированной воды и используют в качестве антигена. В макро- или мнкро5 методе реакции двойной иммунодиффузии с гомологичной антисывороткой полученный антиген образует 1-2 полосы преципитации.The 12 bees studied are mechanically homogenized with the addition of 12 ml of distilled water. The homogenate is clarified at 2000 g for 10 minutes, the supernatant centrifuged at 10,000 g for 25 minutes. The precipitate is suspended in O, 2 ml of distilled water and used as antigen. In the macro- or mnkro5 method of double immunodiffusion reaction with a homologous antiserum, the resulting antigen forms 1-2 precipitation bands.

Предложенный способ апробированThe proposed method is tested

Q нами с положительньм результатом в лабораторных услови х.Q us with a positive result in the laboratory.

Предложенный способ  вл етс  простым, доступньвл и достоверным. Применение его в ветеринарной практике позволит своевременно вы в5 л ть данный вирус. Способ найдет применение в научно-исследовательских институтах, област х и районных ветбаклаборатори х.The proposed method is simple, accessible and reliable. Its use in veterinary practice will allow you to quickly eradicate this virus. The method will be used in research institutes, regions and district veterinary laboratories x.

Claims (1)

СПОСОБ ИНДИКАЦИИ НИТЕВИЦНОГО ВИРУСА ПЧЕЛ, включающий постановку реакции двойной иммунодиффузии в агаре испытуемого антигена с иммунной сывороткой, отличающ и й с я тем, что, с целью повышения эффективности способа, в качестве иммунной сыворотки исполь.эуют кроличью гипериммунную сыворотку, полученную с помощью штамма Apis fi£amentous virus № 31.METHOD FOR INDICATING A NITEVITSE BEE VIRUS, including the formulation of a double immunodiffusion reaction on an agar of a test antigen with immune serum, characterized in that, in order to increase the efficiency of the method, rabbit hyperimmune serum obtained using Apis strain is used as an immune serum fi £ amentous virus No. 31. >>
SU823445496A 1982-04-07 1982-04-07 Method for detecting filiform virus of bees SU1068475A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU823445496A SU1068475A1 (en) 1982-04-07 1982-04-07 Method for detecting filiform virus of bees

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU823445496A SU1068475A1 (en) 1982-04-07 1982-04-07 Method for detecting filiform virus of bees

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1068475A1 true SU1068475A1 (en) 1984-01-23

Family

ID=21014208

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU823445496A SU1068475A1 (en) 1982-04-07 1982-04-07 Method for detecting filiform virus of bees

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1068475A1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2758862C1 (en) * 2021-05-11 2021-11-02 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Вятский государственный университет" Method for destruction of m.p. pokrovskaya's bacteriophage nucleocapsid

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Baifey L. , Carpenter G.M. и Woods R.D. Properties ofa bi aroentous vlrUs of the honey bee. - Virofogy, 1981, v; 114, l, p.1-2 .(прототип). *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2758862C1 (en) * 2021-05-11 2021-11-02 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Вятский государственный университет" Method for destruction of m.p. pokrovskaya's bacteriophage nucleocapsid

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Harris et al. Studies on the transfer of lymph node cells: I. Appearance of antibody in recipients of cells from donor rabbits injected with antigen
Plowright et al. African swine fever virus in ticks (Ornithodoros moubata, Murray) collected from animal burrows in Tanzania
Johnson et al. Virus isolations from human cases of hemorrhagic fever in Bolivia
Gingrich Acquired humoral immune response of the large milkweed bug, Oncopeltus fasciatus (Dallas), to injected materials
World Health Organization Arboviruses and human disease: report of a WHO scientific group [meeting held in Geneva from 26 September to 1 October 1966]
Ackerman et al. Artificial immunity to Dermacentor variabilis (Acari: Ixodidae): vaccination using tick antigens
Clark A filamentous virus of the honey bee
Mims The Response of Mice to Large Intravenous Injections of Ectromelia Virus: I. The Fate of Injected Virus
Murphy et al. Characterization of Nodamura virus, an arthropod transmissible picornavirus
Hassan et al. Reovirus myocarditis in mice: an electron microscopic, immunofluorescent, and virus assay study
Remington et al. Induced and spontaneous recurrent parasitemia in chronic infections with avirulent strains of Toxoplasma gondii
Spira et al. Antigenic structure of Plasmodium vinckei
SU1068475A1 (en) Method for detecting filiform virus of bees
Bernkopf et al. Studies on bovine and human leptospirosis
Vaughn et al. Susceptibility of an insect tissue culture to infection by virus preparations of the nuclear polyhedrosis of the silkworm (Bombyx mori L.)
Tanada A polyhedrosis virus of the imported cabbageworm and its relation to a polyhedrosis virus of the alfalfa caterpillar
Turner et al. Hemagglutinating virus isolated from cat scratch disease
WEISER Nosema muris n. sp., a new microsporidian parasite of the white mouse (Mus musculus L.)
Pauley An attempt to immunize the blue crab, Callinectes sapidus, with vertebrate red blood cells
Inoue et al. Fluorescent antibody study of an infectious flacherie of the silkworm, Bombyx mori
Hoyte Further observations on the initial development of infections with Babesia bigemina
Lee et al. Electron microscopic observations on the localization and development of sacbrood virus
Flavell The in vitro effects of serum on the adults, metacercariae, and eggs of Opisthorchis viverrini
Behbehani et al. Yaba tumor virus. I. Studies on pathogenesis and immunity
Techasoponmani et al. Use of excretory and secretory products from adult female worms to immunize rats and mice against Angiostrongylus cantonensis infection