SU1055732A1 - Method of recovering growth factor of nerve tissue from snake poison - Google Patents

Method of recovering growth factor of nerve tissue from snake poison Download PDF

Info

Publication number
SU1055732A1
SU1055732A1 SU823417689A SU3417689A SU1055732A1 SU 1055732 A1 SU1055732 A1 SU 1055732A1 SU 823417689 A SU823417689 A SU 823417689A SU 3417689 A SU3417689 A SU 3417689A SU 1055732 A1 SU1055732 A1 SU 1055732A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
solution
sephadex
column
ammonium acetate
ion
Prior art date
Application number
SU823417689A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Эне Пауловна Сийгур
Вийве Юльюсовна Ярве
Антс Аугустович Тара
Юри Романович Сийгур
Original Assignee
Институт Химической И Биологической Физики Ан Эсср
Опытный Завод Органического Синтеза И Биопрепаратов Института Химии Ан Эсср
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт Химической И Биологической Физики Ан Эсср, Опытный Завод Органического Синтеза И Биопрепаратов Института Химии Ан Эсср filed Critical Институт Химической И Биологической Физики Ан Эсср
Priority to SU823417689A priority Critical patent/SU1055732A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1055732A1 publication Critical patent/SU1055732A1/en

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

СПОСОБ ВЬЩЕЛЕНИЯ ФАКТОРА РОСТА НЕРВНОЙ ТКАНИ ИЗ ЗМЕИНОГО ЯДА, предусматривающий растворение  да в буферном растворе с последующим центрифугированием гельфильтра; цию полученной «адосадочной жидкости на сефадексе в присутствии буферного раствора и ионообменную хроматографию с использование элюента с повышающейс  ионной силой, о т л и - . чаю щ и и с   тем, что, с целью упрощени  процесса и повышени  выхода целевого продукта, в качестве исходного используют  д гюрзы, гельфильтрацию осуществл ют на сефадексе G-100, ионообменную хроматографию - , на колонке с карбоксиметилцеллюлрзой, в качестве буферного раствора в процессе используют 0,19-0,21 М раствор уксуснокислого аммони  с рН 6,4-6,6, а в качестве элюента используют указанный радтвор в градиенте кон центрации от 0,19-0,21 до 0,95 1 ,05 м;THE METHOD OF INCREASING THE GROWTH FACTOR OF NERVOUS TISSUE FROM SNAIL POISON, providing for the dissolution and in a buffer solution, followed by centrifugation of the gel filter; of the resulting adiposic liquid on Sephadex in the presence of a buffer solution and ion-exchange chromatography using eluent with increasing ionic strength, about tl and -. Since, in order to simplify the process and increase the yield of the target product, dyurgy is used as the starting material, gel filtration is carried out on Sephadex G-100, ion-exchange chromatography - on a column with carboxymethylcellulose, as a buffer solution in the process 0.19-0.21 M ammonium acetate solution with a pH of 6.4-6.6 is used, and the indicated radar is used as an eluent in a concentration gradient from 0.19-0.21 to 0.95-1.05 m;

Description

Изобретение относитс  к промышленности биоа тивных веществ и пред ставл ет собой способ получени  фа тора роста нервной ткани (ФРНТ) из  да гюрзы, усиливающего рост и диф ференцировку симпатических и эмбр нальных сенсорных нервных клеток, введение ФРНТ животному, начина  с перэого дн  розвдени , вызывает гипертрофию симпатической нервной си темы, а сенсорные клетки чувствител ны к.ФРНТ только в эмбpиoнaльнo l периоде, ФРНТ используетс  дл  и следовательских работ, а также може быть использован в медицине. Известны способы вьи-гпени  ФРНТ из тканей животных (слкнна  железа мьаии плацента 1 , сердце и др. 2 и биологических жидкостей живот ных, например змеиных  дов, З . Получение ФРНТ из тка.ней кивотных очень трудоемко и не обеспечивает чистоту продукта, так как исто ники препарата представл ют собой многокомпонентную смесь различных белковых инебелковых компонентов разделений которых  вл етс  сложной задачей.. Наиболее эффективным источником фРНТ  вл ютс  зме.иные  ды, готорые содержат только белковые компоненты и имеют стабильный соетав , . ФРНТ обранужен в  дах представ.ителей всех семейств змей 4J . В некоторых  дах определение начальной концентрации ФРНТ невозможно из-за содержани  в них высок токсичных компонентов (например в  де кобры. Обычно  ды элапидов и. виперидов имеют более сильную активность ФРНТ, чем  ды кроталидов. - Состав  да различных змей варьи рует, это св зано с видовой специфичностью  дов, а также с местом обитани  и услови ми существовани , в св зи с этим получение ФРНТ методами , разработанными на  дах одних змей, не пригодно при работе с  дами других. Способ выделени  ФРНТ из  дов среднеазиатских змей не известен. Наиболее близким к изобретению по технической сущности  вл етс  способ выделени  фактора, роста нерв ной ткани из  да песчаной гадюки. (Uipera ammodytes ammodytes), предусматривающий растворение  да в бу ферном растворе - 0,1 М растворе му равьинокислого аммони  рН 4,7} с последующим центрифугированием, гельфильтрацию полученной надосадоч ной жидкости на сефадексе Q-50 в присутствий того же буферного.раствора , обессоливание, высушивание и растворение в .0,08 М трис-цитрат ном буфере, рН 7,3 и ионообменную хроматографию на колонке с СЭ-сефадексомС -25 с использованием элюента с повышающейс  ионной силой - линейного градиента 0,5М NaCl + 0,5 М трис-цитратного буфера (рН 7,3)., в заключение провод т препаративную изоэлектрическую фокусировку в интервале рН 7-10. Получают препарат ФРНТ с биологической активностью 5-10 мг/мл и выходом 0,-05% 4 о Однако применение разных буферных систем на к;аждом этапе очистки вызывает необходимость трудоемких операций- обессоливани  между этапами, применение буферных систем из нелетучих компонентов при лиофилизации вызывает необходимость обессоливанид , применение этапа препаративной изоэлектрическо.й фокусировки требует наличи  дорогой импортной аппаратуры и дорогих И1ушортных амфолитов (рН 7-10). Кроме того, недостатком способа  вл етс  низкий выход препарата (о,05%) . . Цель, изобретени  - упрощение способа и повышение выхода препарата ФРНТ. Поставленна  цель .достигаетс  тем, что согласно способу вьщелени  фактора роста нервной ткани из змеиного  да, предусматривающему растворение  да в буферном растворе с последующим центрифугированием, гельфильтрацию полученной надосадочной хдадкости на сефадексе в присутствии буферного раствора и ионообменную хроматографию с использованием элюен .та с поВЕл ающейс  ионной -силой, в качестве исходного используют  д Згюрзы, гель фильтрацию осуществл ют на сефадексеG-100, ионообменную хроматографию - на колонке с карбоксиметилцеллюлозой , в качестве буферного раствора в процессе используют 0,19-0,21 М раствор уксуснокислого аммони  с рН 6,4-6,6, а в качестве элюента используют указанный раствор в градиенте концентрации от 0,19 0 ,21 до 0,95 - 1,05 М. Изобретение обеспечивает упроще - ние способа за счет исключени  р да стадий (изоэлектрофокусировки, обессоливани ) и проведени  процесса в одном буфере. При.этом выход целевого продукта повьЕиаетс  до 30 раз. В качестве буфера.используют раствор уксуснокислого аммони  с мол рностью 0,19-0,21 М, рН 6,4-6,6 и удельной электропроводностью (14,5 15f5 ) . 10 рС«1-,а в качестве элюента используют линейный градиент из растворов уксуснокислого аммони  0,19-0,21 и 0,95-1,05 М с удельными электропроводност ми растворов (14,4 - 15,5). 10- (63-65). 10р-CIV (рН 6,5-6,6), соответственно . Аммоний уксуснокислый  вл етс  очень гигроскопическим веществом и с целью приготовлени  хорошо воспроизводимых буферных растворов необходим контроль ионной силы раст вора, а самым удобным методом  вл  етс  кондуктометрический метод. Уде на  электропроводность расчитываетс  по формуле V3 pip.c«), где К - константа  чейки кондукто метра, ; Р - сопротивление раствора,Ом Использование уксуснокислого аммони  в качестве буфера на стадии растворени   да обеспечивает создание среды дл  последующего разделени . Гельфильтрации подвергают рас вор  да гюрзы, разделение происходи на геле, причем в качестве гел  ис пользуетс  сверхтонкий еефадекс Сз-100, раздел ющий белки в пределах молекул рного веса 4000-150000 дальтон. Яд гюрзы, содержащий-мнопокомпонентную смесь, раздел етс  на 9 белковых пиков. 1-1 И и V-1X. пикнув которых присутствуют протеазы , нуклеазы, оС -аминооксидаза, и другие вещества, исключаютс . Степень очистки - 5-6 раз. Последующей ионообменной хроматографии подвергают фракции 1V пика Гельфильтрации. В качестве ионита используют избирательно действующую карбоксиметилцеллюлозу и Провод т селективное разделение. На конит нанос т раствор ФРНТ с удельной электропроводностью (14,5 15,5). |} см- (рН 6,4-6,6). При этом основна  часть белка проходит ионообменник, а ФРНТ св зываетс  на катионит, который элюируют линейным градиентом ионной силы. Таким образом, предлагаемый способ заключаетс  в следукадем:  д гюрзы раствор ют в растворе уксуснокислого аммони  (0,19-0,21 м) с удельной электропроводностью (14,5 15,5). см-(рН 6,4-6,6), центрафугируют , осадок выбрасывают, надосадочную жидкость используют дл  Гельфильтрации, гельфильтрацию провод т на йверхтонком сефадексе Q-.100 с раствором 0,19-0,21 М уксуснокислого аммони  с удельной эле тропроводностью .(14,5-15,5) - . см ( рН 6,4-6,6), Полученна  фракци  ФРНТ с приблизительно одинаковым молекул рным весом нанос т непосред ственно на колонку карбоксиметилцеллюлозы . Основна  часть белка про ходит катионит, а ФРНТ св звсваетс  на карбоксиметилцеллкшозу при рН 6,4-6,6 и удельной электропровод- ности раствора (l4,5 - 15,5}-Чдр.см; элюируют Линейным градиентом ионной силой раствора уксуснокислого аммони  (0,19-0,21)-(0,95-1,05 М) с удельной электропроводностью (14,5 15 ,5 105- (бЗ-65;« 10-Ъ.см-(рН 6,4 6 ,б). Фракции ФРНТ собирают и высуимвалот при помощи лиофилизации. Выход 1,5% биологическа  активность 5 10 мг/мл. П р им е р- 1. К 4,9 г  да гюр-. зы добавл ют 35 мл 0,19 М раствора уксуснокислого аммони  с. удельной электропроводностью 14, р.см (рП 6,4)/ с лесь медленно перемешивают в течение 4 ч при , Растворанный  д центрифугируют при 5000 об/мин при 4°С в течение 30 мин Осадок йыбрасывают,надосадочную жидкость используют дл  гельфильтрации . На уравновешенную раствором уксуснокисуюго аммони  (.удельна  электропроводность 14,5-10р.см колрнку со- сверхтонким сефадексом Q-100 fразмер колонки 4,2 140 см) нанос т раствор  да. Колонку элюируют раствором уксуснокислого сшмо.ни  с удельной электропроводностью 14, 5 10()(рН 6,4) со скоростью «13 мл/ч и собирают фракций по 19 мл.. Оптическую-плотность элюата р.егистрируют непрерывно с помощью Увикорда-11. Получают 9 белковых пиков. В IV пике фракции, которые имеют биологическую активность ФРНТ, объедин ют (объем 193 мл). Раствор ФРНТ нанос т на уравновешенную раствором 0,19 М уксуснокислого аммони  удельной электропроводности 14/5-10 р.см(рН 6,4) колонку карбоксиметилцеллюлозы КМ-.52. Через колонку пропускают 0,5 л 0,19 М раствора уксуснокислого агфюни  удельной электро-;проводности 14,510 р. см (рН 6,4) , Скорость элюции 45 мл/ч, собираютс  , фракции по 15 мл. Оптическую пЗютность элюата регистрируют непрерывно с помощью Увикорда, Основна  часть белка проходит катионит в даншлх услови х, а ФРНТ, изоэлектрическую точку выше 8,5, св зываетс  на катионит КМ-52 и его элюируют линейным градиентом ионной силы уксуснокислого аммони  от (0,19 м) удельной электропроводности 14,5р.см (500 мл) до . . 0,95 м) . 63.(500 мп) (рИ 6,4) . Фракции, содержащие биологическую активность ФРНТ, объедин ют (выход 605 ш) и высушивают лиофильно, Характеристика препарата: Выход, мг 76,56 мг (1,56% по белку). Выход по активности , % 98,0 Биологическа  активность , 5Ю мг/мл Степень очистки , раз 64,0 Пример 2. К5,0г  да гюрзы добавл ют 35 .мл 0,2 М раствора уксуснокислого аммони  с удельной электропроводностью 15,0.10.. рН 6,5). Смесь медленно перемеиив .ают в течение 4 ч. Растворенный  д центрифугируют при 5000 об/мин в течение 30 мин при 4С. Осадок выбрасывают, надосадочную жидкость используют дл  гельфильтрации. На уравновешенную 0,2 М раствором уксуснокислого аммони  (удельна  электропроводность 15,0-Ю р- см колонку со сверхтонким сефадексом Q-100 с размером колонки 4,2140 см нанос т раствор  да. Колонку элюируют раствором уксуснокислого аммони  с удельной электропроводностью 15,0 , см(рН 6 ,5) со скоростью 13мл/ч и собирают фракции по 19 мл. Оптическую плотность элюата регистрируют непрерывно с помощью Увикорба-li. Получают 9 белковых пиков, В IV пике фра;кции, которые имеют биологическую активность ФРНТ, объедин ют (сЬбъем 190 мл) .The invention relates to the industry of biologically active substances and is a method of obtaining a growth factor of the nervous tissue (NRTF) from yes, which enhances the growth and differentiation of sympathetic and embryonic sensory nerve cells, the introduction of the NRTT to an animal, starting from the first day of the day, causes hypertrophy of the sympathetic nervous system, and sensory cells are sensitive to the PHRNT only in the embryonic period, the NTF is used for investigative work, and can also be used in medicine. Known methods are vyy-gpeni NGNTs from animal tissues (such as placenta 1, heart and other 2) and animal biological fluids, such as snake venoms, Z. The production of NDTs from tissues of the crotch is very laborious and does not ensure the purity of the product, since the sources of the preparation are a multicomponent mixture of various protein and protein components of the divisions of which is a difficult task .. The most effective source of FRTT are serpentine dyes, which contain only protein components and have a stable compound. , The NTDF is engraved in dahs of representatives of all the families of snakes 4J. In some dah, the initial concentration of the TNNT is impossible to determine because of their high toxic components (for example, decobras. Usually, elapid and .viperides have more powerful Crotalid dyns. - The composition and variety of snakes varies, this is due to the species specificity of the species, as well as to the habitat and the conditions of existence, and therefore the production of NEFT by methods developed on dyes of snakes alone is not suitable for working with dy other . The method of isolating the NTTF from the veneer of Central Asian snakes is not known. The closest to the invention to the technical essence is a method for isolating a factor, the growth of nerve tissue from a sand viper. (Uipera ammodytes ammodytes), providing for dissolution and in a buffer solution - 0.1 M solution of ammonium ammonium pH 4.7}, followed by centrifugation, gel filtration of the obtained supernatant liquid on Sephadex Q-50 in the presence of the same buffer solution, desalting , drying and dissolving in .0.08 M tris-citrate buffer, pH 7.3 and ion-exchange chromatography on a column with SE-Sephadex C-25 using eluent with increasing ionic strength — linear gradient 0.5 M NaCl + 0.5 M tris-citrate buffer (pH 7.3). arativnuyu isoelectric focusing in the range of pH 7-10. An NTDF preparation with a biological activity of 5-10 mg / ml and a yield of 0.05% is obtained. However, the use of different buffer systems per k; each purification step necessitates labor-intensive operations — desalting between stages, the use of buffer systems from nonvolatile components during lyophilization causes the need for desalivanide, the use of the preparative isoelectric focusing stage requires the availability of expensive imported equipment and expensive I-type ampholytes (pH 7-10). In addition, the disadvantage of this method is the low yield of the drug (o, 05%). . The purpose of the invention is to simplify the method and increase the yield of the preparation of the NTF. This aim .dostigaets fact that according to the method vscheleni nerve growth factor from snake venom, and comprising dissolving in a buffer solution, followed by centrifugation, gel filtration hdadkosti resulting supernatant on Sephadex in the presence of buffer and ion exchange chromatography using elyuen .ta with ionic led ayuscheys - force, g Sigurza is used as the source, gel filtration is carried out on G-100 Sephadex, ion exchange chromatography - on a column with carboxymethyl cellulose y, as a buffer solution in the process using 0,19-0,21 M ammonium acetate solution with a pH of 6.4-6.6, and as an eluent use the specified solution in a concentration gradient from 0.19 0, 21 to 0, 95 - 1.05 M. The invention simplifies the process by eliminating a number of stages (isoelectrofocusing, desalting) and carrying out the process in one buffer. At the same time, the yield of the desired product is up to 30 times. Ammonium acetate solution with a molar content of 0.19–0.21 M, pH 6.4–6.6 and specific electrical conductivity (14.5–15f5) is used as a buffer. 10 pC "1-, and a linear gradient from ammonium acetate solutions 0.19-0.21 and 0.95-1.05 M with specific electrical conductivities of solutions (14.4 - 15.5) is used as eluent. 10- (63-65). 10p-CIV (pH 6.5-6.6), respectively. Ammonium acetate is a very hygroscopic substance and in order to prepare well-reproducible buffer solutions, control of the ionic strength of the solution is necessary, and the most convenient method is the conductometric method. Here, the electrical conductivity is calculated by the formula V3 pip.c "), where K is the constant of the conductor meter cell,; P - solution resistance, Ohms. Using ammonium acetate as a buffer at the dissolution stage and ensures the creation of a medium for the subsequent separation. The gel filtration is subjected to a solution and a filter, the separation takes place on a gel, and the hyperfine Cz-100 ephadex, which separates proteins within a molecular weight of 4000-150000 daltons, is used as a gel. The gurzy-containing venom containing a multi-component mixture is divided into 9 protein peaks. 1-1 And and V-1X. By picking up proteases, nucleases, C-aminooxidase, and other substances, are excluded. The degree of cleaning - 5-6 times. Subsequent ion exchange chromatography is subjected to a fraction of 1V gelfiltration peak. A selectively acting carboxymethyl cellulose is used as the ion exchanger and selective separation is carried out. A solution of TNT with a specific electrical conductivity is applied onto conit (14.5 15.5). |} cm- (pH 6.4-6.6). In this case, the main part of the protein passes through the ion exchanger, and the TNTF is bound to a cation exchanger, which is eluted by a linear gradient of ionic strength. Thus, the proposed method consists in the following: the dye is dissolved in an ammonium acetate solution (0.19-0.21 m) with a specific electrical conductivity (14.5 15.5). cm- (pH 6.4-6.6), centrifuged, the precipitate is discarded, the supernatant is used for Gelfiltration, gelfiltration is carried out on an ultrathin Sephadex Q-.100 with a solution of 0.19-0.21 M ammonium acetate with a specific electrical conductivity . (14,5-15,5) -. cm (pH 6.4-6.6). The resulting fraction of PDHT with approximately the same molecular weight is applied directly to the carboxymethylcellulose column. The main part of the protein passes through cation exchanger, and the NDFH is linked to carboxymethylcellulose at pH 6.4-6.6 and the specific electrical conductivity of the solution (l4.5 - 15.5} -Cd cm; eluted by Linear gradient ionic strength of ammonium acetate solution (0,19-0,21) - (0,95-1,05 M) with a specific electrical conductivity (14.5 15, 5 105- (bz-65; "10-b. Cm- (pH 6.4 6 , b). The fractions of NBHT are collected and dried by means of lyophilization. The yield is 1.5% biological activity 5 10 mg / ml. Example 1. To 4.9 g and 35 ml of 0 ml are added. 19 M solution of ammonium acetate with specific electrical conductivity of 14, R. cm (RP 6.4) / s The wood is slowly stirred for 4 hours. The solution is diluted and centrifuged at 5000 rpm at 4 ° C for 30 minutes. The precipitate is dispensed, the supernatant is used for gel filtration. For ammonium acetate balanced with solution (specific electrical conductivity of 14.5 to 10 cm) Column with ultrathin Sephadex Q-100 (column size 4.2–140 cm) is applied with solution yes. The column is eluted with acetic acid solution with specific electrical conductivity of 14.5-10 () (pH 6.4) at a rate of “13 ml / h and collect fractions of 19 ml .. The optical density of the eluate R. segist Surgery continuously with Uwikord-11. Get 9 protein peaks. In the IV peak, the fractions that have the biological activity of the TNTF are combined (volume 193 ml). A solution of NBHT is applied to a column of KM-.52 carboxymethyl cellulose column equilibrated with a solution of 0.19 M ammonium acetate with a specific electrical conductivity of 14 / 5-10 c. (PH 6.4). Through the column, 0.5 l of a 0.19 M solution of agfuni acetate is passed through a specific electrical conductivity of 14.510 r. cm (pH 6.4); Elution rate 45 ml / h; 15 ml fractions are collected. The optical content of the eluate is recorded continuously with Uvikord. The main part of the protein passes through cation exchanger under these conditions, and the NTDF, the isoelectric point above 8.5, is bound to KM-52 cation exchanger and eluted with a linear gradient of ionic strength of ammonium acetate from 0.19 m) specific conductivity of 14.5 p. cm (500 ml) to. . 0.95 m). 63. (500 mp) (rI 6.4). The fractions containing the biological activity of the NEF, are combined (yield 605 w) and freeze-dried. Drug characteristics: Yield, 76.56 mg mg (1.56% for protein). Activity yield,% 98.0 Biological activity, 5 mg / ml U, Purification degree, 64.0 times. Example 2. 35 ml of 0.2 M ammonium acetate solution with a specific conductivity of 15.0. pH 6.5). The mixture is slowly stirring for 4 hours. The dissolved d is centrifuged at 5000 rpm for 30 minutes at 4 ° C. The precipitate is discarded, the supernatant is used for gel filtration. An equilibrated 0.2 M ammonium acetate solution (conductivity of a 15.0-10 p-cm column with ultrathin Sephadex Q-100 with a column size of 4.2140 cm was applied to a solution of yes. The column was eluted with a solution of ammonium acetate with a specific conductivity of 15.0 , cm (pH 6, 5) at a rate of 13 ml / h and collecting 19 ml fractions. The optical density of the eluate is recorded continuously using Uwikorb-li. 9 protein peaks are obtained, B the IV peak fraction; they are put (190 ml).

Раствор ФРНТ нанос т на уравновешенную раствором уксуснокислого аммони  с удельной электропровод- , ностью 15,.(рН 6,5 колонку КМ-52. Через колонку пропускают 0,5 л раствора уксуснокислого аммони  (рН 6,51 с удельной электро- ; проводностью 15,0 КТ. Скорость элюции 45 мл/ч, собираютс  фракции по 15 МП. Оптическую плотность элюата регистрируют непрерывно с помощью Увикорда. Белки, св зывающиес  -на КМ-52 в данных услови х, элюируют линейным градиентом ионной силы 0,2-1,0 М уксуснокислого аммони  от удельной электропроводности раствора .15,0 .СМ- (500 мл) до 64,0 10;р. см (500 мл) при рН 6,5. Фракции, содержащие биологическую активность ФРНТ, объедин ют (выход 588 мл)и высушивают лиофильно.A solution of NGTHs is applied to a balanced ammonium acetate solution with a specific electrical conductivity of 15, (pH 6.5 column of KM-52. 0.5 l of ammonium acetate solution is passed through the column (pH 6.51 with a specific electrical content; conductivity 15 , 0 CT. The elution rate is 45 ml / h, 15 MP fractions are collected. The optical density of the eluate is recorded continuously using Wickord. Proteins that bind to KM-52 under these conditions are eluted with a linear gradient of 0.2-1 ionic strength , 0 M ammonium acetate from the conductivity of the solution .15,0 .SM- (500 ml) to 64.0 10; r. Cm (500 ml) at pH 6.5. The fractions containing the biological activity of TNT, are combined (yield 588 ml) and lyophilized.

Характеристика препарата: Выход,мл 77,52 (1,55% поCharacteristics of the drug: Output, 77.52 ml (1.55% by

белку).squirrel).

Выход по активности , % 98,2 Биологическа The output of the activity,% 98,2 Biological

активности, мг/мл 510 Степень очистки , раз 64,5activity, mg / ml 510 Degree of purification, 64.5 times

Пример 3. К 5,1 г  да гюрзы добавл ют36 мл 0,21 М раствора уксуснокислого аммони  с удельной электропроводностью 15,5 . см рН 6,6), смесь медленно перемешивают в течение 4 ч. Растворенный Example 3. To 5.1 g and yes of a bag, 36 ml of a 0.21 M ammonium acetate solution with an electrical conductivity of 15.5 are added. see pH 6.6), the mixture is slowly stirred for 4 hours. Dissolved

 д центрифугируют при ЬООО об/мин в течение 30 мин, при 4 С. Осадок выбрасывают, надосадочную жидкость используют дл  гельфильтрации. На уравновех енную. 0,21 М раствором уксуснокислого аммони  с удельной электропроводностью 15,5 см колонку со сверхтонким сефадексом G-100 с размером колонки4, с нанос т раствор  да. Колонку элюируют 0,21 М раствором уксуснокислог аммони  с удельной электропроводностью 15,5Ю р-см(рН 6,6) со скоростью 13 МП/ч и собирают фракции по 19 мл;. Оптическую плотность элюата регистрируют непрерывно с помощью Увикорда-И. Получают 9 белковых пиков. В IV пике фракции, которые имеют биологическую активность ФРНТ, объедин ют (объем 196 мThe mixture is centrifuged at BOOO rpm for 30 minutes, at 4 ° C. The precipitate is discarded, the supernatant is used for gel filtration. On balanced. 0.21 M ammonium acetate solution with a specific electrical conductivity of 15.5 cm column with an ultrathin Sephadex G-100 with a column size4, with a solution applied yes. The column was eluted with a 0.21 M ammonium acetic acid solution with a specific electrical conductivity of 15.5 rpm (pH 6.6) at a speed of 13 MP / h and collecting 19 ml fractions; The optical density of the eluate is recorded continuously using Wicord-I. Get 9 protein peaks. At the IV peak, the fractions that have the biological activity of the TNTF are combined (volume 196 m

Раствор ФРНТ нанос т на уравновешенную 0,21 М раствором уксуснокислого аммони  с удельной электропроводностью 15,510/5-см(рН 6,6} колонку КМ-52. Через колонку пропускают 0,5 л 0,21 М раствора уксуснокислого аммони  (рН 6,б1 с удельной электропроводностью 15,)-с Скорость элюации 45 мл/ч, собирают фракции по 15 мл. Оптическую плотность элюата регистрируют непрерывно с помощью Увикорда. Белки, св зывающиес  Па КМ-52 в данных услови х , элюируют линейным градиентом ионной силы уксуснокислого аммони  (1,05 М) от удельной электропроводности раствора 15 ,5 10V-cav|(500 мл) до 65, 0-10 р-с м 550 мл при рН 6,6. Фракции, содержащие биологическую активность ФРНТ, объедин ют (выход 593 ) и высушивают лиофиль но. ФУНТ элюируетс  в данных услови х в первом пике градиента и раздел етс  от протеолитического фермента, имеющего более высокую рН, чем ФРНТ.A solution of NBHT is applied to a balanced 0.21 M ammonium acetate solution with a specific electrical conductivity of 15.510 / 5 cm (pH 6.6} column of KM-52. 0.5 l of a 0.21 M solution of ammonium acetate is passed through the column (pH 6, b1 with a specific electrical conductivity of 15,) - s The elution rate is 45 ml / h, fractions of 15 ml are collected. The optical density of the eluate is recorded continuously using Wicord. Proteins binding Pa KM-52 under these conditions are eluted with a linear gradient of acetic acid ionic strength ammonium (1.05 M) from the specific electrical conductivity of a solution of 15, 5 10V-cav | (500 ml) to 65.0–10 ppm of 550 ml at pH 6.6. The fractions containing the biological activity of NGFH are combined (yield 593) and dried lyophilized. The PDNT is eluted under these conditions at the first peak of the gradient and It comes from a proteolytic enzyme having a higher pH than the NEF.

Характеристика препарата: Выход, мг 79,9 (1,57% поCharacteristics of the drug: Output, mg 79.9 (1.57% by

белку)squirrel)

Выход по активности , % 98,0 Биологическа  активность, мг/мп. 6-10 Степень очистки , раз 63,8 Лиофилизованный препарат ФРНТ полностью сохран ет биологическую активность в течение 24 мес. при хранении при 4.Activity yield,% 98.0 Biological activity, mg / mp. 6-10 Degree of purification, 63.8 times. The lyophilized form NGNT retains its biological activity for 24 months. when stored at 4.

Определение биологической активности ФРНТ выполн ют, по йзвестной методике Д . The determination of the biological activity of the NEFT is carried out according to the well-known method D.

Биологическую активность ФРНТ определ ют с помощью культуры сенсорных ганглиев 8-дневного куриного эмбриона, наблюда  радиаль Ный рост аксонов от гангли .The biological activity of NGNTs was determined using a culture of sensory ganglia of an 8-day-old chicken embryo, and radial growth of axons from the ganglia was observed.

Сенсорные ганглии куриного эмбриона помещают в 3 мл раствора, состо щего из 10% сыворотки крови в культуральной среде W 199, 300 единиц пенициллина и стрептомицина и 0,01-0,05 мл исследуемой пробы, растворенной в этом же растворе. Пробу инкубируют в течение 18-24 ч при . При наличии в растворе ФРНТ можно наблюдать радиальный рост аксонов от гангли . В зависимости от плотности и щирины образовавшегос  венца положительный ответ наThe sensory ganglia of the chicken embryo are placed in 3 ml of a solution consisting of 10% serum in the culture medium W 199, 300 units of penicillin and streptomycin and 0.01-0.05 ml of the test sample dissolved in the same solution. The sample is incubated for 18-24 h at. In the presence of a NTPT solution, one can observe radial growth of axons from the ganglion. Depending on the density and the width of the crown formed, a positive response to

присутствие ФРНТ оценивают по 5-бальной шкале.the presence of NGNT is estimated on a 5-point scale.

За биологическую активность ФРНТ принимают ту минимальную концентрацию препарата в культуральной среде, котора  вызывает +3 - ответ сенсорных ганглиев за 18 ч инкубации по 5-бальной шкале.The minimal concentration of the drug in the culture medium, which causes the +3 - response of the sensory ganglia during the 18 h incubation time on a 5-point scale, is taken for the biological activity of the NEFT.

Технико-экономический эффект изобретени  заключаетс  в экономии змеиного  да за счет увеличени  выхода препарата фРНТ. При этом упрощаетс  процесс очистки ФРНГ из  да гюрзы.The technical and economic effect of the invention is to save the serpentine and by increasing the yield of the preparation FRNT. This simplifies the process of cleaning FRG from yes gurzy.

Claims (1)

СПОСОБ ВВДЕЛЕНИЯ ФАКТОРА РОСТА НЕРВНОЙ ТКАНИ ИЗ ЗМЕИНОГОMETHOD FOR INTRODUCING NERVOUS FABRIC FACTOR FROM SNAKE ЯДА, предусматривающий растворение яда в буферном растворе с последующим центрифугированием? гельфильтрацию полученной надосадочной жидкости на сефадексе в присутствии буферного раствора и ионообменную хроматографию с использованием элюента с повышающейся ионной силой, о т л и - . чаю щ и й с я тем, что, с целью упрощения процесса и повышения / выхода целевого продукта, в качестве исходного используют яд гюрзы, гельфильтрацию осуществляют на сефадексе С-100, ионообменную хроматографию на колонке с карбоксиметилцеллюлозой, в качестве буферного раствора в процессе используют 0,19-0,21 М раствор уксуснокислого аммония с pH 6,4-6,6, а в качестве элюента используют указанный раствор в градиенте концентрации от 0,19-0,21 до 0,95 1,05 М.’ >POISON, which involves dissolving the poison in a buffer solution followed by centrifugation? gel filtration of the obtained supernatant on Sephadex in the presence of a buffer solution and ion-exchange chromatography using an eluent with increasing ionic strength, about t and -. I want to note that, in order to simplify the process and increase / yield the target product, gyurza venom is used as a source, gel filtration is performed on Sephadex C-100, ion-exchange chromatography on a column with carboxymethyl cellulose, and buffer is used in the process 0.19-0.21 M solution of ammonium acetic acid with a pH of 6.4-6.6, and as the eluent use the specified solution in a concentration gradient from 0.19-0.21 to 0.95 1.05 M. '>
SU823417689A 1982-03-31 1982-03-31 Method of recovering growth factor of nerve tissue from snake poison SU1055732A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU823417689A SU1055732A1 (en) 1982-03-31 1982-03-31 Method of recovering growth factor of nerve tissue from snake poison

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU823417689A SU1055732A1 (en) 1982-03-31 1982-03-31 Method of recovering growth factor of nerve tissue from snake poison

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1055732A1 true SU1055732A1 (en) 1983-11-23

Family

ID=21004760

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU823417689A SU1055732A1 (en) 1982-03-31 1982-03-31 Method of recovering growth factor of nerve tissue from snake poison

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1055732A1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2008020744A2 (en) * 2006-08-16 2008-02-21 Wisdom Asset Company Method for extracting the nerve tissue growth factor from v.lebetina linnaeus venom

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Angeletti R.H,, /Bradshaw R.A,: Nerve Yrowth factor from mouse sub maxillary gland, jami noac i d sequence.- Proc, nafn. acad, Sci. U.S., 1971, 68, 2417-2420. 2.Bocchin V, The Nerve Yrowth Factor. Aminoacid composition and phisicochemical properties,- Eur.J . Biochem, 1970, 15, 127-131. 3.Pearce F.L. et al. The isolation and charaetherisat ion of Nerve Yrowth Factor from the vensm of Vipera russelli, in Nerve Yrowth Factor and its Antiserum (Edited by Zainus Eb London, 1972, 3-18. 4.Bailey J.S. et al. A comparaitive study of nerve growth factors .from suake venoms.-Сотр. Biochein. Physiol, 1975, V 51, B, 429-438. S.Levi-Montalcini R. et al . . Cancer Res. 1954, 14 49-57 . *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2008020744A2 (en) * 2006-08-16 2008-02-21 Wisdom Asset Company Method for extracting the nerve tissue growth factor from v.lebetina linnaeus venom
WO2008020744A3 (en) * 2006-08-16 2008-07-10 Wisdom Asset Company Method for extracting the nerve tissue growth factor from v.lebetina linnaeus venom

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Adelstein et al. Isolation and characterization of myosin and two myosin fragments from human blood platelets
Hindennach et al. Ribosomal Proteins: Isolation of Proteins from 50 S Ribosomal Subunits of Escherichia coli
DE2319495C2 (en) Method for the selective, reversible binding of biomolecules to an adsorbent in a chromatographic column
DE2535554A1 (en) BIOLOGICAL PROCEDURE
AT399095B (en) METHOD FOR SEPARATING PROTEINS BY MEANS OF GRADIENT ELUTION AND DEVICE FOR IMPLEMENTING THE METHOD
EP0371067B1 (en) Process and device for purification of m-13 phage dna
SU1375116A3 (en) Method of blood coagulation
Groves et al. Preparation of β-and γ-caseins by column chromatography
Regoeczi et al. Effects of clotting on the label in iodinated fibrinogen in different species
SU1055732A1 (en) Method of recovering growth factor of nerve tissue from snake poison
DE2551966C3 (en) Method of purifying urokinase
SU1228776A3 (en) Method of producing agent for selective inhibition of reproduction of normal and leukemic cells
Norris et al. Purification and preliminary crystallographic studies on azurin and cytochrome c′ from Alcaligenes denitrificans and Alcaligenes sp. NCIB 11015
Synge et al. Bound amino acids in protein-free extracts of Italian ryegrass
Weisinger et al. DNA‐binding protein that induces cell differentiation.
JPS61233694A (en) Growth factor contained in bovine spleen and method of isolating same
WO1997004007A2 (en) Metal-containing ribonucleotide polypeptides
EP0025508B1 (en) Process for the preparation of the third component of the complement as made from human blood plasma
SU1154329A1 (en) Method of obtaining phosphoribulokinase
JPH03279396A (en) Rhodophyceae lectin and production thereof
Lundblad et al. Purification of cathepsin B from oocytes and mature eggs of the sea urchin Brissopsis lyrifera by means of gel filtration
SU1055769A1 (en) Method for isolating oxydase of l-amino acids from poison of vipera lebetina
SU1359298A1 (en) Method of obtaining molecular forms of carboanhydrase
SU411867A1 (en)
SU1255640A1 (en) Method of separating ferredoxine