SU1033543A1 - Method for preparing mannite - Google Patents
Method for preparing mannite Download PDFInfo
- Publication number
- SU1033543A1 SU1033543A1 SU823419126A SU3419126A SU1033543A1 SU 1033543 A1 SU1033543 A1 SU 1033543A1 SU 823419126 A SU823419126 A SU 823419126A SU 3419126 A SU3419126 A SU 3419126A SU 1033543 A1 SU1033543 A1 SU 1033543A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- mannitol
- carbon source
- producer
- medium
- yield
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ МАННИТА путем культивировани его продуцента на питательной среде, содержащей углеводы в качестве источника углерода, дрожжевой экстракт и необходимые минеральные соли, с последующим концентрированием и кристаллизацией целевого продукта, отличающийс тем, что, с целью повышени выхода маннита и сокращени времени ферментации, .качестве продуцента используют штамм Реп1с11liuni decumbens БИМГ-138.A method for producing mannitol by cultivating its producer on a nutrient medium containing carbohydrates as a carbon source, yeast extract and necessary mineral salts, followed by concentration and crystallization of the target product, characterized in that, in order to increase mannitol yield and reduce fermentation time, the quality producer use the strain Rep1s11liuni decumbens BIMG-138.
Description
со оо елco oo ate
4four
СОWITH
Изобретение относитс к микробиологической промышленности, а именно к способу получени маннита, используемого в пищевой, медицинской и химической промышленност х, парфюмерии, а также при получении поверхностно-ак тивных веществ, олиф, смол и лаков.The invention relates to the microbiological industry, namely to a method for producing mannitol used in the food, medical and chemical industries, in perfumery, as well as in the preparation of surfactants, drying oils, resins and varnishes.
Известен способ получени маннита путем культивировани дрожжей рода Torulopsis на средах, содержащих глю козу или мальтозу, или глицерин, минеральные соли, дрожжевой экстракт при 28-30с, концентрировани под вакуумом и кристаллизацииС.A known method for producing mannitol by cultivating the yeast of the genus Torulopsis on media containing glucose or maltose, or glycerin, mineral salts, yeast extract at 28-30 seconds, concentrating under vacuum and crystallization.
Недостатками способа вхС ютс длительность процесса ферментации и использование дорогосто щей среды. The disadvantages of the inlet method are the duration of the fermentation process and the use of expensive medium.
Наиболее близким к изобретению техническим решением вл етс способ получени маннита, заключающийс в выращивании гриба вида Aspergillus Candidasна питательной среде, содержащейуглеводы , например глюкозу качестве источника углерода, дрожжевой экстракт и минеральные соли, концентрировании и кристаллизации манннта 2.The closest technical solution to the invention is a method for producing mannitol, which consists in growing the fungus Aspergillus Candidas in a nutrient medium containing carbohydrates, such as glucose as a carbon source, yeast extract and mineral salts, concentrating and crystallizing mannnt 2.
Наиболее существенными недостатками известного способа вл ютс невысокий выход маннита (до 50%, длительность ведени ферментации (813 сут, а также использование дорогосто щого компонента среды - глюкозы в качестве источника углерода. The most significant drawbacks of this method are the low yield of mannitol (up to 50%, the duration of maintaining fermentation (813 days, and the use of an expensive component of the medium, glucose, as a carbon source.
Целью изобретени вл етс повышение выхода маннита и сокращение времени ферментации. The aim of the invention is to increase the yield of mannitol and reduce the fermentation time.
Поставленна цель достигаетс тем что согласно способу получени маннита , предусматривающему культивирование его продуцента на питательной среде, содержащей углеводы в качестве источника углерода, дрожжевой экстракт и необходимые минеральные соли, с последующим концентрированием и кристаллизацией целевого продукта , в качестве продуцента используют штамм РепiciIlium decumbens БИМГ-138,The goal is achieved by the fact that according to the method of producing mannitol, which involves cultivating its producer on a nutrient medium containing carbohydrates as a carbon source, yeast extract and necessary mineral salts, followed by concentration and crystallization of the target product, the producer of RepiciIlium decumbens BIMG-138 is used as a producer ,
Штамм гриба Penicillium decumbens БИМГ-138 получен путем многократных пересевов родительской формы Penicillium decumbens и отбор наиболее продуктивных колоний по манниту. Штамм депонирован в музее культур промышленных микроорганизмов института ВНИИГенетика , коллекционный номер ,ЩПМ F175. Штамм хранитс в музее .культур Института микробиологии АН Белорусской ССР при 4-5°С на сус .ло-агаре,The strain of the fungus Penicillium decumbens BIMG-138 obtained by multiple passages of the parent form of Penicillium decumbens and the selection of the most productive colonies for mannitol. The strain is deposited in the Museum of cultures of industrial microorganisms of the Institute of VNIigenetics, collection number, SCHPM F175. The strain is stored in the Museum of Cultures of the Institute of Microbiology of the Academy of Sciences of the Byelorussian SSR at 4-5 ° C on vol-agar
Штамм гриба Penicillium decumbens ,БИМГ-138 имеет следующую характеристику .The strain of the fungus Penicillium decumbens, BIMG-138 has the following characteristics.
Морфологические признаки. Конидиеносцы 50-10-X 2-2,5 мкм гладкие или мелко-шероховатые, часто образуютс в краевой зоне от столоновидных Morphological signs. Conidiophores 50-10-X 2-2.5 microns smooth or finely rough, often formed in the marginal zone from stolonovidnymi
гиф вдоль субстрата. Стеригмы в компактных пучках по 12-15, 7-9 х X 2-2,5 мкм. Конидии эллиптические до шаровидных, 2-2,5 мкм иногда до 3 мкм, в массе зеленоватые, в рыхлых колонках до 100 мкм длины, часто отпадающие в культуре.hyphae along the substrate. Sterigms in compact bundles of 12-15, 7-9 x X 2-2.5 microns. Conidia are elliptical to spherical, 2-2.5 microns sometimes up to 3 microns, greenish in mass, loose columns up to 100 microns in length, often falling away in culture.
Культуральные признаки. Сусло-ага семисуточна колони диаметром 3 см бархатиста , светло-серовато-зеленовато-бела . Воздушный мицелий более развит в центре колонии и имеет хлопкрвидную структуру. На обратной стороне колонии неокрашенные с окружающим бесцветным агаром. Образование спор начинаетс на 4 сут роста.Cultural features. Wort-aga seven-day colonies with a diameter of 3 cm velvety, light grayish-greenish-white. Aerial mycelium is more developed in the center of the colony and has a cotton structure. On the reverse side of the colony is unstained with the surrounding colorless agar. Spore formation begins at 4 days of growth.
Плотна среда Чапека - семисуточна колони диаметром 2,8 см. Колонии бархатистые,, зеленовато-белые. Растут ограничено. Воздушный мицелий развит в центре колонии. Колонии с обратной стороны окрашены в светловато-желтый цвет с окружающим бес цветным агаром. Конидиеносна зона в центре колонии зеленовата . Образование спор происходит на 7 сут. При засеве на плотную питательную среду рост по вл етс на 2 сут, а к 6-7 дню колонии станов тс бархат стими с обильным спорообразованием . В жидкой питательной среде рост по вл етс через 1 сут и к 3-5 сут накапливаетс большое количество грибкой биомассы, состо щей из плотных пеллет, а содержание маннита в культуральной жидкости достигает 13-15 г/л среды.Czapek’s medium is dense — seven-day colonies with a diameter of 2.8 cm. The colonies are velvety, greenish-white. Grow limited. Aerial mycelium is developed in the center of the colony. The colonies on the reverse side are pale yellow in color with the surrounding colorless agar. Conidiophena zone in the center of the colony is greenish. The formation of a dispute occurs on day 7. When sowing on a dense nutrient medium, the growth appears for 2 days, and by 6-7 days the colonies become velvety with abundant sporulation. In a liquid nutrient medium, the growth appears after 1 day and by 3-5 days a large amount of fungal biomass fungus consisting of dense pellets accumulates, and the content of mannitol in the culture fluid reaches 13-15 g / l of medium.
Меласса-агар-семисуточна колони диаметром 3,5 см. Колонии бархатистые , зеленовато-белые, в центре зеленые. Воздушный мицелий сильно развит по всей поверхности колонии, вследствие чего она имеет хлопковидную структуру. На седьмые сутки наблюдаетс слабое -спорообразование.Molasses-agar-seven-day colonies with a diameter of 3.5 cm. The colonies are velvety, greenish-white, green in the center. Aerial mycelium is highly developed over the entire surface of the colony, as a result of which it has a cotton-like structure. On the seventh day, weak spore formation is observed.
Биохимические признаки. Желатину разжижает очень медленно, поверхностно . Молоко пептонизирует, восстанавливает нитраты, крахмал гидролизует.Biochemical signs. Gelatinu dilutes very slowly, superficially. Peptonized milk, restores nitrates, starch hydrolyzes.
Отношение к источникам углерода; ассимилирует рамноэу, арабинозу, ксилозу , фруктозу, манноэу, глюкозу, сахарозу, мальтозу, глицерин, дульцит . Слабо растет на галактозе и практически не утилизирует лактозу.Relation to carbon sources; assimilates rhamnoe, arabinose, xylose, fructose, mannoe, glucose, sucrose, maltose, glycerin, dulcit. It grows poorly on galactose and practically does not utilize lactose.
В качестве источника углерода используют мелассу - отход производства сахара, или сахарозу, или глюкозуMolasses is used as a carbon source - a waste of sugar production, or sucrose, or glucose.
Пример. Посевной материал выращивают на качалке при 27-30°С со скоростью перемешивани 200 качанийExample. The seed is grown on a rocking chair at 27-30 ° C with a stirring speed of 200 rocking
/мин в течение 2 сут в 300 мл колбах Эрленмейера, содержащий 50 мл среды следующего состава, г/л: KHjPO 1) 0,5/ min for 2 days in 300 ml Erlenmeyer flasks containing 50 ml of medium of the following composition, g / l: KHjPO 1) 0.5
.HCl 0,5-, FeS04 0,01; дрожжевой экстракт 5, глюкоза 30. РН среды 6,0. Полученный инокулюм в количестве 10 об.% в стерильную среду . Фого же состава и .подращивают двое суток. Основную среду состава,, г/л: N3N03 2; 1 ; 0,5 КС1 100; FeO4 0,ОГ,- дрожжевой экстракт 17,5) глюкоза 30, рН 5,0, засевают приготовленным 4-х суточным ино кулюмом в количестве 10 о6.%. Культи вирование осуществл ют на качалке в 300 мл колбах Эрленмейера,.содержащих 50 мл среды; при 27-30 с и ско ростй перемешивани 200 качаний/мин. Спуст 96-120 ч мицелий гриба отдел ют фильтрованием. Фильтрат деионизируют на ионообменных смолах, концентрируют под вакуумом дл получени 25-30% раствора маннита и оставл ют кристаллизоватьс на холоду. Выпавшие кристаллы отдел ют.фильтрованием или центрифугирбванием. Выход составл ет 48-50% от использованного источника углерода. Приме р 2. Основную стерильную среду, содержащую г/л: NaNOj 2; КН2Р04 1 «, MgSO -THjO KCl . FeSOji 0,01) дрожжевой экстракт 12,5; глюкоза 30; рй 5,0- засевают приготовленным 4-х суточным посевным материалом в количестве 10 об.%. Культивирование осуществл ют на качалке со скоростью перемешивани 200 качаний/мин при 27-3Q°C в течение 4-6 су в 300 мл колбах Эрленмейера, содержащих по 100 мл среды. Выход маннита составл ет 57,5 от использованного источника углерода. П р и м е р 3. Готов т среду сое-. Тава аналогично примеру 1, но вместо глюкозы внос т 30 гУл сахарозы. Услови культивировани и извлечени маннита те же. Выход маннита составл ет 54,5% от использованного источника углерода. Пример4. Услови куль.тивировани и состай среда аналогичны примеру 2, но вместо глюкозы используют 30 г/л сахарозы. Выход маннита составл ет использованного источника углерода... li р и м е р 5. Услови культивировани и состав среды аналогичны примеру 1, но вместо глк)козы. добавл ют 50 г/л мелассы. Выход маннита составл ет 48,0% от использованного источника углерода. Прим е р. 6. Состав среды и услови культивировани аналогичны примеру 2, но вместо глюкозы добавл ют 50 г/л мелассы. Выход маннита составл ет 64,0% от использованного источника углерода. Использование предлагаемого способа обеспечивает повышение выхода маннита до 64,0% от использованного источника углерода против 50% по известному , сокращение сроков культивировани до 4-5 сут против 8-13 ч по известному , применение дешевой питательной среды (отхода сахарной промыш- ленности - мелассы ..HCl 0.5-, FeS04 0.01; yeast extract 5, glucose 30. The pH of the medium is 6.0. The resulting inoculum in the amount of 10 vol.% In a sterile environment. After the same composition and. Grow two days. The main environment of the composition ,, g / l: N3N03 2; one ; 0.5 KS1 100; FeO4 0, EXHAUST gas, - yeast extract 17.5) glucose 30, pH 5.0, sown with prepared 4-day foreign exchange in an amount of 10 o6.%. Cultivation was carried out on a rocking chair in 300 ml Erlenmeyer flasks containing 50 ml of medium; at 27–30 s and the mixing speed is 200 swings / min. After 96-120 hours, the fungus mycelium is filtered. The filtrate is deionized on ion exchange resins, concentrated under vacuum to obtain a 25-30% solution of mannitol, and allowed to crystallize in the cold. The precipitated crystals are separated by filtration or centrifugation. The yield is 48-50% of the carbon source used. Example 2: The main sterile medium containing g / l: NaNOj 2; KH2P04 1 “, MgSO —THjO KCl. FeSOji 0.01) yeast extract 12.5; glucose 30; PJ 5,0 - sown with prepared 4-day seed in the amount of 10 vol.%. Cultivation was carried out on a shaker with a stirring speed of 200 swings / min at 27-3Q ° C for 4-6 sous in 300 ml Erlenmeyer flasks containing 100 ml of medium. The yield of mannitol is 57.5 from the carbon source used. PRI me R 3. Prepare the medium soy-. Tava is analogous to Example 1, but instead of glucose, 30 gUl of sucrose is added. The conditions for the cultivation and extraction of mannitol are the same. The yield of mannitol is 54.5% of the carbon source used. Example4. The culture conditions and medium are the same as in Example 2, but 30 g / l sucrose is used instead of glucose. The yield of mannitol is the carbon source used ... li p i me r 5. The cultivation conditions and medium composition are similar to example 1, but instead of goats. 50 g / l molasses is added. The yield of mannitol is 48.0% of the carbon source used. Note 6. The composition of the medium and the culture conditions are similar to those of Example 2, but 50 g / l molasses is added instead of glucose. The yield of mannitol is 64.0% of the carbon source used. The use of the proposed method provides an increase in the yield of mannitol to 64.0% of the used carbon source against 50% of the known, reduction of cultivation time to 4-5 days against 8-13 hours of the known, the use of cheap nutrient medium .
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU823419126A SU1033543A1 (en) | 1982-04-08 | 1982-04-08 | Method for preparing mannite |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU823419126A SU1033543A1 (en) | 1982-04-08 | 1982-04-08 | Method for preparing mannite |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1033543A1 true SU1033543A1 (en) | 1983-08-07 |
Family
ID=21005259
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU823419126A SU1033543A1 (en) | 1982-04-08 | 1982-04-08 | Method for preparing mannite |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1033543A1 (en) |
-
1982
- 1982-04-08 SU SU823419126A patent/SU1033543A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
l. Йатеит US. 3622456, кл.1954 37, опублик. 1972. 2. Патент US 3427224, кл.19535, опублик. 1969. / * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4403034A (en) | Ethanol Production | |
EP0223960B1 (en) | Process for the production of arachidonic acid-containing lipids | |
US5407826A (en) | Isolated cultures of microorganisms of Clonostachys Cylindrospora, Gliocladium and Nectria Gliocladioides | |
EP0136805B1 (en) | Industrial-scale process for the production of polyols by fermentation of sugars | |
SU1033543A1 (en) | Method for preparing mannite | |
CA2116003C (en) | Arylalkanoic acid resolution | |
US4245048A (en) | Process for producing coenzyme Q10 | |
US3467579A (en) | Microbiological process for the production of lycopene | |
US4940582A (en) | Antibiotic YI-HU3 | |
US5202244A (en) | Process for producing aphidicolin using the microrganism verticillium sp | |
JPS6131082A (en) | Novel microorganism and preparation of polyol by fermentation using same | |
US5229281A (en) | Process for production of optically active 3-methyladipic acid from squalene using candida lipolytica | |
US3658653A (en) | Process for the preparation of ergotamine and ergocryptine | |
US6242243B1 (en) | Trichosporon sp RRLY-15 (DSM 11829) and its use to prepare S(+)-6-methoxy-methyl-2-naphthalene acetic acid | |
RU2001949C1 (en) | Strain of fungus trichoderma reesei - a producer of cellulolytic enzymes | |
US5217887A (en) | Process for production of (r) methylsuccinic acid from squalene using candida lipolytica | |
RU2034469C1 (en) | Strain of beauveria bassiana micromycet used for manufacture of entomopathogenic preparation | |
SU937517A1 (en) | Process for producing biomass having mushroom aroma | |
Manolov | Ribonuclease production by free and immobilized Aspergillus clavatus cells | |
JP3171417B2 (en) | Method for producing L-threo-hydroxyaspartic acid | |
US3485722A (en) | Fermentative process for producing ergocryptine | |
JPS639834B2 (en) | ||
RU2126831C1 (en) | Strain of fungus pleurotus ostreatus - producer of protein biomass | |
RU2008356C1 (en) | Process of producing l-serine | |
JP3327982B2 (en) | New antibiotic MI481-42F4-A related substance |