SE445116B - MAKE CULTURE CELLS ON MICROBATORS WITH FIBRONECTINE LAYERS - Google Patents
MAKE CULTURE CELLS ON MICROBATORS WITH FIBRONECTINE LAYERSInfo
- Publication number
- SE445116B SE445116B SE7907573A SE7907573A SE445116B SE 445116 B SE445116 B SE 445116B SE 7907573 A SE7907573 A SE 7907573A SE 7907573 A SE7907573 A SE 7907573A SE 445116 B SE445116 B SE 445116B
- Authority
- SE
- Sweden
- Prior art keywords
- cells
- microcarriers
- water
- particles
- substance
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/0068—General culture methods using substrates
- C12N5/0075—General culture methods using substrates using microcarriers
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
- C12N2533/70—Polysaccharides
Description
7907573-5 De klassiska metoderna för odling av förankrings- lberoende celler utnyttjar glas- eller plastskålar eller rullflaskor, i vilka man kan erhålla ett lager (“monolager") av celler. överföring av en sådan teknik till större skala har tidigare endast inneburit en ökning av antalet odlings- kärl, vilket medfört att byte av medium, subkultivering, skörd av celler etc. inneburit ett mycket stort antal manuella operationer under sterila betingelser. 7907573-5 The classical methods for culturing anchorage-dependent cells use glass or plastic bowls or roller bottles, in which one can obtain a layer ("monolayer") of cells, transfer of such a technique to a larger scale has previously only meant an increase of the number of culture vessels, which meant that medium change, subcultivation, harvesting of cells, etc. involved a very large number of manual operations under sterile conditions.
En klar förbättring i jämförelse med ovannämnda metod har uppnåtts genom införandet av s.k. mikrobärarkultur.A clear improvement in comparison with the above-mentioned method has been achieved by the introduction of so-called microcarrier culture.
Celler får i denna teknik fästa sig och tillväxa på små partiklar, vilka med hjälp av långsam omrörning kan hållas suspenderade i näringsmediet. Dessa partiklar erbjuder en radikalt mycket större yta per volymenhet odlingskärl och ger alltså möjligheter till odling av stora cellmängder i en enda odlingstank. Både för arbete i laboratorie- och storskala erbjuder denna teknik avsevärda fördelar i fråga om krav på utrymme, arbetskraft och direkta driftskostnader.In this technique, cells are allowed to attach and grow on small particles, which can be kept suspended in the nutrient medium by means of slow stirring. These particles offer a radically much larger area per unit volume of culture vessels and thus provide opportunities for culturing large amounts of cells in a single culture tank. For both laboratory and large-scale work, this technology offers significant advantages in terms of space, manpower and direct operating costs.
En metod som använder en sådan mikrobärarkultur finns beskriven i uppsatsen “Microcarrier culture of animal cells" av A L van Wezel i Tissue Culture, Methods and Applications, P F Kruse Jr. och M K Patterson Jr, Eds., Academic Press (1973) sid. 372-377. Det härvid använda bärarmaterialet ut- gjordes av pärlor av med epíklorhydrin tvärbunden dextran, substituerad med dietylaminoetylgrupper. Detta bärarmate- rials lämplighet är baserat på att materialet uppfyller följande krav, som ställs på ett gott bärarmaterial förutom olöslighet i vatten: Densiteten i närvaro av vatten (dvs. i vattensvällt tillstånd för material svällbara i vatten) bör företrädes- vis vara obetydligt skilt från densiteten för den vatten- haltiga omgivning i vilken bärarmaterialet används för uppnående av en homogen suspension av partiklar under för- siktig omrörning, dvs. i allmänhet bör densiteten ligga inom området 0,95 - 1,20 g/ml, företrädesvis 1,00 - 1,10 g/ml, speciellt 1,02 - 1,05 g/ml. 7907573-5 Partiklarna bör tillhöra en snäv fraktion för upp- nående av enhetlig effektiv kapacitet och jämn vidhäftning och tillväxt av cellerna. I allmänhet används en medelpar- tikelstorlek inom området 100 - 500 jun, företrädesvis i omrâdet 150 - 300 Jpm.A method that uses such a microcarrier culture is described in the essay "Microcarrier culture of animal cells" by AL van Wezel in Tissue Culture, Methods and Applications, PF Kruse Jr. and MK Patterson Jr., Eds., Academic Press (1973) p. 372 The carrier material used in this case consisted of beads of dextran crosslinked with epichlorohydrin, substituted by diethylaminoethyl groups.The suitability of this carrier material is based on the material meeting the following requirements, which are imposed on a good carrier material in addition to insolubility in water: of water (ie in the water-swollen state for materials swellable in water) should preferably be slightly different from the density of the aqueous environment in which the carrier material is used to achieve a homogeneous suspension of particles with gentle agitation, i.e. in In general, the density should be in the range 0.95 - 1.20 g / ml, preferably 1.00 - 1.10 g / ml, especially 1.02 - 1.05 g / ml. belong to a narrow fraction to achieve uniform effective capacity and even adhesion and growth of the cells. In general, an average particle size in the range 100 - 500 .mu.m is used, preferably in the range 150 - 300 .mu.m.
Partiklarna bör vara släta (innefattande företrädes- vis sfärisk eller sfäroid form) för god cellvidhäftning och minsta möjliga avskavning vid kollisioner mellan par- tiklarna samt tåla den mekaniska påfrestningen vid suspen- deringen så att de inte sönderfaller i mindre delar. I Transparens underlättar mikroskopiska studier av växande kulturer.The particles should be smooth (including preferably a spherical or spheroidal shape) for good cell adhesion and the least possible abrasion in the event of collisions between the particles and withstand the mechanical stress of the suspension so that they do not decompose into smaller parts. Transparency facilitates microscopic studies of growing cultures.
Partiklarna måste vara icke-toxiska gentemot primära celler, upprättade cellinjer och stammar av diploida cel- ler från människor och djur.The particles must be non-toxic to primary cells, established cell lines and strains of diploid cells from humans and animals.
Partiklarnas upptag av andra komponenter från od- lingsmediet än sådana som deltager i mekanismen för cel- lernas vidhäftning till partiklarna bör vara försumbart.The uptake by the particles of components from the culture medium other than those involved in the mechanism of cell adhesion to the particles should be negligible.
Det finns emellertid vissa begränsningar med de kända mikrobärarna. Dessa begränsningar yttrar sig på så sätt att det i några fall av ej känd anledning har visat sig vara svårt att odla humana diploida celler på nämnda bärare. Bindningen mellan cell och mikrobärare med joni- serbara grupper, vilken bindning initialt är elektrovalent men sekundärt förstärks med andra typer av sammanhållande krafter av mekanisk och/eller kemisk natur, är ej alltid tillräckligt stark. Som ett exempel kan nämnas att vissa typer av lymfoida celler inte fäster till mikrobärarna.However, there are some limitations with the known microcarriers. These limitations manifest themselves in such a way that in some cases for unknown reasons it has proved difficult to grow human diploid cells on said carrier. The bond between cell and microcarrier with ionizable groups, which bond is initially electrovalent but secondarily strengthened with other types of cohesive forces of a mechanical and / or chemical nature, is not always strong enough. As an example, certain types of lymphoid cells do not attach to the microcarriers.
Celler kan också lossna antingen under tillväxten eller vid vidmakthållande av kulturen. Detta har exempelvis iakt- tagits vid odling av en del normala fibroblaster.Cells can also loosen either during growth or when the culture is maintained. This has been observed, for example, in the culture of some normal fibroblasts.
Andra celltyper har visat sig binda så bra till existe- tande mikrobärare att problem har uppstått då man velat fri- göra cellerna i och för skörd eller överföring. Den gängse metoden i detta sammanhang är trypsinering, dvs. behandling 7907573-5 av kulturen med ett proteolytiskt enzym. Extensiv tryp- sinering leder till att cellerna skadas eller dör.Other cell types have been shown to bind so well to existing microcarriers that problems have arisen when they wanted to free the cells for harvesting or transfer. The usual method in this context is trypsinization, ie. treatment 7907573-5 of the culture with a proteolytic enzyme. Extensive trypsinization leads to cell damage or death.
Användning av existerande mikrobärare har ej heller medfört någon fördel vad gäller kravet på närvaro av rela- tivt höga koncentrationer av serum i kulturmediet för att optimal celltillväxt skall erhållas. Serum är den i cellod- lingssammanhang ojämförligt största utgiftsposten på kemi- kaliesidan.The use of existing microcarriers has also not brought any advantage in terms of the requirement for the presence of relatively high concentrations of serum in the culture medium in order to obtain optimal cell growth. Serum is by far the largest item of expenditure on the chemicals side in the cell culture context.
Ett ändamål med föreliggande uppfinning är därför att åstadkomma ett sätt att odla och/eller fästa celler i ett odlingsmedium innehållande sfäriska mikrobärare, vilka uppfyller ovan nämnda på mikrobärare ställda krav och därut- över inte är behäftade med ovan nämnda nackdelar hos de kända mikrobärarna utan kan användas för fästning och od- ling av celler även i sådana system, där nu existerande mikrobärare ger tekniska problem.An object of the present invention is therefore to provide a method of culturing and / or attaching cells in a culture medium containing spherical microcarriers, which meet the above-mentioned requirements for microcarriers and moreover do not suffer from the above-mentioned disadvantages of the known microcarriers but can can be used for attachment and culture of cells even in such systems, where existing microcarriers present technical problems.
Uppfinningen baserar sig på utnyttjandet av den bio- specifika affinitet som föreligger mellan â ena sidan vissa polypeptider och å andra sidan ett eller flera proteiner, som går under benämningen fibronektiner och förekommer i serum samt i membraner hos de flesta celltyper. Genom att fästa den ena av dessa komponenter till en mikrobärare erhållas konjugat, som i närvaro av den andra komponen- ten kan binda till celler.The invention is based on the utilization of the bio-specific affinity that exists between, on the one hand, certain polypeptides and, on the other hand, one or more proteins, which go under the name fibronectins and occur in serum and in membranes of most cell types. By attaching one of these components to a microcarrier, conjugates are obtained, which in the presence of the other component can bind to cells.
I enlighet härmed kännetecknas sättet enligt uppfin- ningen av att som mikrobärare används sfäriska partiklar av ett i vatten olösligt men svällbart, tvärbundet, orga- niskt makromolekylärt ämne, vilka partiklar i sitt ytskikt uppvisar kovalent bunden polypeptid med förmåga att bio- specifikt binda fibronektin och vilka partiklar i vatten- svällt tillstånd har en densitet inom området 1,00-1,10 g/ml och en medelpartikelstorlek inom området 100-500 um.Accordingly, the method according to the invention is characterized in that spherical particles of a water-insoluble but swellable, crosslinked, organic macromolecular substance are used as microcarriers, which particles in their surface layer have covalently bound polypeptide capable of bio-specifically binding fibronectin and which particles in the water-swollen state have a density in the range 1.00-1.10 g / ml and an average particle size in the range 100-500 μm.
(Uttrycket polypeptid omfattar här och i kraven även prote- iner). 7907573-5 Det makromolekylära ämnet kan exempelvis vara en i vatten olöslig men företrädesvis svällbar polymer, som ej är toxisk gentemot cellerna. Det makromolekylära ämnet kan med fördel vara en eventuellt tvärbunden polysackarid, som är olöslig men svällbar i vatten.(The term polypeptide here and in the claims also includes proteins). The macromolecular substance may be, for example, a water-insoluble but preferably swellable polymer which is not toxic to the cells. The macromolecular substance may advantageously be an optionally crosslinked polysaccharide, which is insoluble but swellable in water.
Enligt uppfinningen är det speciellt fördelaktigt att använda partiklar med så små porer att substansen till övervägande del stannar på partiklarnas yta och inte träng- er in i porerna och att från cellodlingen bildade högmole- kylära substanser inte heller går in i porerna i nämnvärd utsträckning.According to the invention, it is particularly advantageous to use particles with such small pores that the substance predominantly remains on the surface of the particles and does not penetrate into the pores and that high-molecular substances formed from cell culture do not enter the pores to any appreciable extent either.
Enligt en utföringsform anbringas substansen i form av ett ytskikt på en partikel av annat material. Härvid föredrages som nämnda substans kollagen eller nedbrytnings- produkter därav såsom gelatin. Vidare enligt denna ut- föringsform föredrages att substansen har bundits till partikelmaterialet med bindningar som kan motstå normala odlings- och tvättbetingelser, speciellt kovalenta bind- ningar. Ett stort antal metoder för åstadkommande av ko- valenta bindningar har beskrivits i litteraturen i samband med koppling av polypeptider till bärare på polysackarid- eller proteinbasis. Sålunda har exempelvis koppling med hjälp av cyanhalogenider beskrivits i amerikanska patent- skriften 3 645 852, med cyanater i amerikanska patentskrif- ten 3 788 948 och med tiol-disulfidutbytesreaktioner i tyska "Offenlegungsschrift" 2 808 515.According to one embodiment, the substance is applied in the form of a surface layer to a particle of another material. In this case, collagen or degradation products thereof such as gelatin are preferred as said substance. Furthermore, according to this embodiment, it is preferred that the substance has been bound to the particulate material with bonds that can withstand normal culture and washing conditions, especially covalent bonds. A large number of methods for effecting covalent bonds have been described in the literature in connection with the coupling of polypeptides to polysaccharide or protein-based carriers. Thus, for example, coupling by means of cyanogen halides has been described in U.S. Pat. No. 3,645,852, with cyanates in U.S. Pat. No. 3,788,948 and with thiol disulfide exchange reactions in German Offenlegungsschrift 2,808,515.
Enligt en annan utföringsform av uppfinningen använ- des som mikrobärare sådana av kollagen eller nedbrytnings- produkter därav, vilka eventuellt har tvärbundits för upp- nående av önskad olöslighet i vatten.According to another embodiment of the invention, those of collagen or degradation products thereof are used as microcarriers, which may have been crosslinked to achieve the desired insolubility in water.
Enligt en annan aspekt av uppfinningen frigöres cel- lerna när så önskas, från bäraren med proteolytiskt enzym (t.ex. kollagenas, när substansen är kollagen eller gelatin) efter avslutad tillväxt av cellerna. Speciellt vid fallet med kollagenas kan man på ett enkelt sätt frigöra fullt livsdugliga celler i gott utbyte. (Kollagenas är betydligt 19o7s7s~s 6 skonsammare för cellerna än trypsin.) Partiklarna kan vara neutrala eller kan förutom nämnda substans i ytskiktet uppvisa jonbytande grupper. De jonby- tande grupperna kan vara i och för sig kända anjon- eller katjonbytande grupper såsom aminogrupper eller karboxyl- grupper.According to another aspect of the invention, the cells are released, when desired, from the carrier with proteolytic enzyme (eg collagenase, when the substance is collagen or gelatin) after the end of growth of the cells. Especially in the case of collagenase, one can easily release fully viable cells in good yield. (Collagenase is significantly gentler on the cells than trypsin.) The particles may be neutral or, in addition to said substance in the surface layer, may have ion-exchanging groups. The ion exchange groups may be per se known anion or cation exchange groups such as amino groups or carboxyl groups.
Såsom tidigare nämnts förekommer fibronektin på cellytor. Vid vissa celltyper, exempelvis vid transfor- merade celler, är halten fibronektin låg. Vid applicering av sättet enligt uppfinningen på denna typ av celler kan fibronektin tillsättes systemet i någon lämplig form, exempelvis genom tillsats av serum eller genom användning av mikrobärare som i sitt ytskikt uppvisar fibronektin.As previously mentioned, fibronectin is present on cell surfaces. In some cell types, for example in transformed cells, the content of fibronectin is low. When applying the method according to the invention to this type of cell, fibronectin can be added to the system in any suitable form, for example by adding serum or by using microcarriers which have fibronectin in their surface layer.
Polypeptider med förmåga att biospecifikt binda fibronektin förekommer å andra sidan i allmänhet på cellytor i för sättet enligt uppfinningen tillräcklig mängd, varför några speciel- la åtgärder för att säkerställa dessas närvaro ej behöver vidtagas.Polypeptides capable of biospecifically binding fibronectin, on the other hand, generally occur on cell surfaces in an amount sufficient for the method of the invention, so that no special measures need be taken to ensure their presence.
Uppfinningen kommer i det följande att illustreras närmare av ett antal exempel.The invention will be further illustrated in the following by a number of examples.
EXEMPEL 1 Tillväxt av Vero-celler på mikrobärare (Vero är en etablerad cellinje som härletts från ap- njurceller /African Green monkey/ och är kommersiellt till- gänglig från Flow Laboratories, Ltd., Irwine, England.) Autoklaverade mikrobärare (från exempel BIV,se nedan) i en mängd motsvarande 30 mg torrsubstans suspenderades i en petriskål i 10 ml Dulbecco's medium (Smith, J.D., Freeman, G., Vogt, M. och Dulbecco, R. (1960) Virology 12, 185-196.) innehållande 4 mM glutamin och 10% fetalt , kalv- serum samt med en initial cellkoncentration av 2'105 celler/ml.EXAMPLE 1 Growth of Vero Cells on Microcarriers (Vero is an established cell line derived from monkey kidney cells / African Green monkey / and is commercially available from Flow Laboratories, Ltd., Irwine, England.) Autoclaved microcarriers (from Example BIV , see below) in an amount corresponding to 30 mg of dry matter was suspended in a petri dish in 10 ml of Dulbecco's medium (Smith, JD, Freeman, G., Vogt, M. and Dulbecco, R. (1960) Virology 12, 185-196.) containing 4 mM glutamine and 10% fetal, calf serum and with an initial cell concentration of 2'105 cells / ml.
Tillväxt fick äga rum i en C02-inkubator vid 37°C under 160 timmar och mättes genom infärgning av cellkärnor med 0,1% kristallviolett och mikroskopräkning. Parallellt före- togs en odling under identiska betingelser med Cytodexq1 7907573-5 (en mikrobärare baserad på tvärbundet dextran som deriva- tiserats med dietylaminoetylgrupper, kommersiellt till- gänglig från Pharmacia Fine Chemicals AB, Uppsala, Sverige).Growth was allowed to occur in a CO 2 incubator at 37 ° C for 160 hours and was measured by staining cell nuclei with 0.1% crystal violet and microscope counting. In parallel, a culture was performed under identical conditions with Cytodexq1 7907573-5 (a microcarrier based on cross-linked dextran derivatized with diethylaminoethyl groups, commercially available from Pharmacia Fine Chemicals AB, Uppsala, Sweden).
I bägge odlingarna hade efter 18 timmar cirka 2'104 celler/ml fäst sig vid mikrobärarna. Efter 160 timmar hade detta antal i bägge odlingarna ökat till drygt 106 /ml.In both cultures, after 18 hours, approximately 2'104 cells / ml had adhered to the microcarriers. After 160 hours, this number had increased to just over 106 / ml in both cultures.
EXEMPEL 2 Skörd av celler från mikrobärare 0,5 ml suspension av mikrobärare (från exempel BV samt Cytodex 1) från Exempel 1 överfördes till centrifugrör.EXAMPLE 2 Harvesting of microcarrier cells 0.5 ml of microcarrier suspension (from Example BV and Cytodex 1) from Example 1 was transferred to centrifuge tubes.
Genom lätt centrifugering (acceleration till 200xg och inbromsning, totalt 5 minuter) avskildes supernatanten.By light centrifugation (acceleration to 200xg and deceleration, a total of 5 minutes), the supernatant was separated.
Mikrobärarna tvättades 2 gånger med 1 ml 0,03% EDTA i Puck's saltlösning (Puck, T.T., Cieciura, S.J. och Robinson, A. (1958) Journal of Experimental Medicine lgg, 945-956) och en gång med 1 ml Puck's saltlösning ej innehållande EDTA.The microcarriers were washed twice with 1 ml of 0.03% EDTA in Puck's saline (Puck, TT, Cieciura, SJ and Robinson, A. (1958) Journal of Experimental Medicine lgg, 945-956) and once with 1 ml of Puck's saline. containing EDTA.
Efter den sista centrifugeringen tillsattes 1 ml enzymlös- ning i Puck's saltlösning, 0,05% kollagenas (Boehringer- Mannheim, Mannheim, Tyskland) eller 0,05 % trypsin (Serva, Feinbiochemica GmbH & Co., Heidelberg, Tyskland). Efter 5 och 10 minuters inkubation vid 37OC räknades antalet fri- satta celler (se tabell 1).After the last centrifugation, 1 ml of enzyme solution was added to Puck's saline, 0.05% collagenase (Boehringer-Mannheim, Mannheim, Germany) or 0.05% trypsin (Serva, Feinbiochemica GmbH & Co., Heidelberg, Germany). After 5 and 10 minutes of incubation at 37 ° C, the number of released cells was counted (see Table 1).
TABELL 1 Frigörande av Vero-celler från mikrobärare. Mätvär- dena är medelvärden av dubbelprov.TABLE 1 Release of Vero cells from microcarriers. The measured values are mean values of duplicate samples.
Mikrobärare Tillsats Antal frigjorda celler (%) Efter 5 min. Efter 10 min.Microcarrier Additive Number of cells released (%) After 5 min. After 10 min.
Gelatinmikrobärare kollagenas i Puck's salt- lösning 76 97 trypsin i Puck's saltlösning 48 80 Puck's saltlösning ej best. 4 Cytodex()1 kollagenas i Puck's saltlösning 9 38 trypsin i Puck's saltlösning 21 61 Puck's saltlösning ej best. 1 7907573-5 8 Sålunda möjliggjorde odlingen enligt föreliggande uppfin- ning avsevärt högre utbyte vid frisättningen av de bundna cel- lerna speciellt vid användning av kollagenas vid frisättningen.Gelatin microcarrier collagenase in Puck's saline solution 76 97 trypsin in Puck's saline solution 48 80 Puck's saline solution not best. 4 Cytodex () 1 collagenase in Puck's saline solution 9 38 trypsin in Puck's saline solution 21 61 Puck's saline solution not best. Thus, the culture of the present invention enabled significantly higher yields upon release of the bound cells, especially when using collagenase upon release.
EXEMPEL 3 Odling av Vero-celler på gelatin-SephadexC>G50 och Cytodex -1 I en flaska med magnetisk omrörning suspenderades 0,0375 ml packade mikrobärare från Exempel BII och 1 x 105 celler per ml odlingsmedium (Dulbecco's modifierade Eagle's medium med 7,5 % fetalt kalvserum, 4 mM glutamin och 20 mM HEPES (4- (2-hydroxietyl)-1-piperazinetansulfonsyra)buffert). Tillväxten fick ske vid 37°C i närvaro av vattenmättad luft (5 % C02) var- vid flaskan roterades med en hastighet av 60 varv per minut.EXAMPLE 3 Cultivation of Vero Cells on Gelatin-SephadexC> G50 and Cytodex -1 In a flask with magnetic stirring, 0.0375 ml of packed microcarriers from Example BII and 1 x 105 cells per ml of culture medium were suspended (Dulbecco's modified Eagle's medium with 7.5 % fetal calf serum, 4 mM glutamine and 20 mM HEPES (4- (2-hydroxyethyl) -1-piperazinethanesulfonic acid) buffer). The growth was allowed to take place at 37 ° C in the presence of water-saturated air (5% CO 2), whereby the bottle was rotated at a speed of 60 revolutions per minute.
Odling på Cytodex 1 företogs under identiska betingelser.Cultivation on Cytodex 1 was performed under identical conditions.
Tillväxten mätt i antal celler per ml odlingsmedium är redo- visad i Tabell 2.Growth measured in number of cells per ml of culture medium is reported in Table 2.
TABELL-2 tid gelatin-Sephadex ® G50 Cytodex ® 1 tim celler/ml celler/ml 19 6 11,5 x 10: 7,65 x 10â 41 26,8 x 10 12,2 x 10 65 31,6 X 104 22,0 X 104 4 4 97 49 x 10 34,5 x 10 138 56 x 104 57 X 104 161 64,6 X 104 57 x 104 Notabel är den betydligt snabbare tillväxten på gelatin- Sephadex G50 i början av odlingen. Denna skillnad mellan de olika mikrobärarna kan ytterligare ökas om cellkulturerna omsätts upprepade gånger efter 2 - 4 dagars inkubation.TABLE-2 time gelatin-Sephadex ® G50 Cytodex ® 1 hr cells / ml cells / ml 19 6 11.5 x 10: 7.65 x 10â 41 26.8 x 10 12.2 x 10 65 31.6 X 104 22 .0 X 104 4 4 97 49 x 10 34.5 x 10 138 56 x 104 57 X 104 161 64.6 X 104 57 x 104 Notable is the significantly faster growth of gelatin- Sephadex G50 at the beginning of the culture. This difference between the different microcarriers can be further increased if the cell cultures are reacted repeatedly after 2 - 4 days of incubation.
De i ovanstående utföringsexempel använda mikrobärarna framställdes på följande sätt: A. Framställning av aktiverade mikrobärare I. 10 g med epiklorhydrin tvärbundet dextran i form av sfärisku partiklar (Sephadex G50 från Pharmacia Fine Chemicals AB, Uppsala, Sverige) tvättas på glasfilter med vatten och överföres till ett 500 ml kärl med vatten till en total volym vatten plus partiklar av 300 ml. 12 g natrium- 7907573-5 hydroxid löst i 15 ml vatten och 0,1 g natriumborhydrid till- sättes. Blandningen värms till 60°C. 38 ml epiklorhydrin till- sätts och blandningen får reagera i 2 h, varefter partiklarna tvättas med vatten på glasfilter och avsuges.The microcarriers used in the above embodiments were prepared as follows: A. Preparation of activated microcarriers I. 10 g of epichlorohydrin crosslinked dextran in the form of spherical particles (Sephadex G50 from Pharmacia Fine Chemicals AB, Uppsala, Sweden) are washed on glass filters with water and transferred to a 500 ml vessel with water to a total volume of water plus particles of 300 ml. 12 g of sodium hydroxide dissolved in 15 ml of water and 0.1 g of sodium borohydride are added. The mixture is heated to 60 ° C. 38 ml of epichlorohydrin are added and the mixture is allowed to react for 2 hours, after which the particles are washed with water on a glass filter and filtered off with suction.
II. 40 ml sedimenterade partiklar av med epiklor- hydrin tvärbundet dextran (Sephadex Chemicals AB, Uppsala, Sverige) eller av tvärbunden agaros CL4B från Pharmacia Fine Chemicals AB, Uppsala, G50 från Pharmacia Fine (Sepharose Sverige) och 20 ml vatten överföres till ett 250 ml kärl och försättes med 60 ml bromcyanlösning (80 mg CNBr/ml H20). Bland- ningen får reagera vid pH 11,4 och 4°C i 6 minuter. Därefter tvättas partiklarna på glasfilter med 1000 ml 0,1 M natrium- vätekarbonatlösning.II. 40 ml of sedimented particles of dextran cross-linked with epichlorohydrin (Sephadex Chemicals AB, Uppsala, Sweden) or of cross-linked agarose CL4B from Pharmacia Fine Chemicals AB, Uppsala, G50 from Pharmacia Fine (Sepharose Sweden) and 20 ml of water are transferred to a 250 ml vessel and add 60 ml of bromocyanine solution (80 mg CNBr / ml H 2 O). The mixture is allowed to react at pH 11.4 and 4 ° C for 6 minutes. The particles are then washed on a glass filter with 1000 ml of 0.1 M sodium bicarbonate solution.
B. Koppling av_proteiner eller peptider till aktiverade mikrobärare 1 q protein (polypeptid) löses i 50 ml 0,1 M NaHCO3 innehållande 0,5 M NaCl i vatten (pH 8,0) under värm- ning vid behov och pH justeras till 9,5 - 10,5. Lösningen sättes till enligt A. ovan aktiverade mikrobärare och bland- ningen omröres i ett dygn vid rumstemperatur, varefter par- tiklarna tvättas omväxlande med 0,2 M Na-acetat-buffert med 0,5 M NaCl i vatten (pH 4,5) Och 0,2 M NaHCO3 med 0,5 M NaCl i vatten (pH 8,0) på glasfilter och avsuges.B. Coupling of proteins or peptides to activated microcarriers 1 q of protein (polypeptide) is dissolved in 50 ml of 0.1 M NaHCO 3 containing 0.5 M NaCl in water (pH 8.0) with heating if necessary and the pH is adjusted to 9, 5 - 10.5. The solution is added according to A. activated microcarriers above and the mixture is stirred for 24 hours at room temperature, after which the particles are washed alternately with 0.2 M Na-acetate buffer with 0.5 M NaCl in water (pH 4.5). And 0.2 M NaHCO 3 with 0.5 M NaCl in water (pH 8.0) on glass filter and aspirated.
I. Kollagen (Kollagen typ I från Sigma Chemical Company, Saint Louis, Missouri, USA) kopplades pâ ovan angiv- na sätt till aktiverad Sephadex G50 från A I.I. Collagen (Collagen type I from Sigma Chemical Company, Saint Louis, Missouri, USA) was coupled in the above manner to activated Sephadex G50 from A I.
Utbyte : 11 mg kollagen/g torr produkt. Partikelstorlek 160 - 200/um,densitet 1,03 g/ml.Yield: 11 mg collagen / g dry product. Particle size 160 - 200 .mu.m, density 1.03 g / ml.
II. Gelatin (gelatin typ III från Sigma Chemical Company, saint Louis, Missouri, USA) kopplades på ovan angiv- na sätt till aktiverad Sephadex G50 från A I.II. Gelatin (type III gelatin from Sigma Chemical Company, Saint Louis, Missouri, USA) was coupled to the activated I I. Sephadex G50 activated above.
Utbyte : 4 mg gelatin/g torr produkt. Partikelstorlek 160 - 200/um, densitet 1,03 g/ml.Yield: 4 mg gelatin / g dry product. Particle size 160 - 200 .mu.m, density 1.03 g / ml.
III. Kollagen (samma som vid I ova?š)kopp1ades på ovan angivna sätt till aktiverad Sepharose CL 43 från A [1_ Utbyte : 80 mg kollagen/g torr produkt. Partikelstorlek 100 - 150/um, densitet 1,02 g/ml. 7907573-5 10 IV. Gelatin (samma som vid II ovaxëkopplades på ovan angivna sätt till aktiverad Sepharose CL 43 från A 11, Utbyte : 95 mg gelatin/g torr produkt. Partikelstorlek 100 - 150/um, densitet 1,02 g/ml.III. Collagen (same as in I ova? Š) was coupled in the above manner to activated Sepharose CL 43 from A [1_ Yield: 80 mg collagen / g dry product. Particle size 100 - 150 .mu.m, density 1.02 g / ml. 7907573-5 10 IV. Gelatin (same as in II was waxed in the above manner to activated Sepharose CL 43 from A 11, Yield: 95 mg gelatin / g dry product. Particle size 100 - 150 .mu.m, density 1.02 g / ml.
V. Kollagen (samma som vid I ovan) kopplades på ovan angivna sätt till aktiverad Sephadex G50 från A II.V. Collagen (same as in I above) was coupled as above to activated Sephadex G50 from A II.
Utbyte : 19 mg kollagen/g torr produkt. Partikelstorlek 130-150/um, densitet 1,04 g/ml.Yield: 19 mg collagen / g dry product. Particle size 130-150 .mu.m, density 1.04 g / ml.
VI. Gelatin (samma som vid II ovan) kopplades på ovan angivna sätt till Sephadex G50 från A II.WE. Gelatin (same as in II above) was coupled as above to Sephadex G50 from A II.
Utbyte : 12,5 mg gelatin/g torr produkt. Partikelstorlek 130 - 180/um, densitet 1,04 g/ml.Yield: 12.5 mg gelatin / g dry product. Particle size 130 - 180 .mu.m, density 1.04 g / ml.
Ovan angivna värden för partikelstorlek och densitet av- ser partiklar i vattensvällt tillstånd.The above values for particle size and density refer to particles in a water-swollen state.
Claims (7)
Priority Applications (5)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SE7907573A SE445116B (en) | 1979-09-12 | 1979-09-12 | MAKE CULTURE CELLS ON MICROBATORS WITH FIBRONECTINE LAYERS |
FR8018992A FR2464994A1 (en) | 1979-09-12 | 1980-09-03 | PROCESS FOR CULTURING CELLS IN A CULTURE MEDIUM CONTAINING PARTICULATE MICRO CARRIERS |
GB8028984A GB2059991B (en) | 1979-09-12 | 1980-09-08 | Cultivating cells on particulate microcariers |
DE19803033885 DE3033885A1 (en) | 1979-09-12 | 1980-09-09 | METHOD FOR BREEDING CELLS |
JP12785980A JPS5651981A (en) | 1979-09-12 | 1980-09-12 | Cell cultivating method |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SE7907573A SE445116B (en) | 1979-09-12 | 1979-09-12 | MAKE CULTURE CELLS ON MICROBATORS WITH FIBRONECTINE LAYERS |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SE7907573L SE7907573L (en) | 1981-03-13 |
SE445116B true SE445116B (en) | 1986-06-02 |
Family
ID=20338813
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SE7907573A SE445116B (en) | 1979-09-12 | 1979-09-12 | MAKE CULTURE CELLS ON MICROBATORS WITH FIBRONECTINE LAYERS |
Country Status (5)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS5651981A (en) |
DE (1) | DE3033885A1 (en) |
FR (1) | FR2464994A1 (en) |
GB (1) | GB2059991B (en) |
SE (1) | SE445116B (en) |
Families Citing this family (25)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2470794A1 (en) * | 1979-12-05 | 1981-06-12 | Pasteur Institut | NOVEL MICROPARTICLES, THEIR PREPARATION AND THEIR APPLICATIONS IN BIOLOGY, PARTICULARLY TO THE CULTURE OF HUMAN DIPLOID CELLS |
SE456164B (en) * | 1980-08-20 | 1988-09-12 | Kjell Nilsson | PROCEDURE FOR IMMOBILIZATION, CULTURE AND SUBSEQUENT RELEASE OF ANIMAL CELLS AND MICROBELLERS OF GELATIN WITH ABSORBED ANIMAL CELLS |
EP0097907A3 (en) * | 1982-06-25 | 1985-01-09 | Flow General, Inc. | Cell culture microcarriers |
JPS59164723A (en) * | 1983-03-10 | 1984-09-17 | Koken:Kk | Substrate containing regenerated collagen fibril and its preparation |
FR2543158B1 (en) * | 1983-03-24 | 1985-11-15 | Inst Nat Sante Rech Med | MEDIUM FOR CULTURING ANIMAL CELLS WITHOUT SERUM, WITHOUT HORMONES AND WITHOUT GROWTH FACTORS AND METHODS OF PRIMARY CULTURE AND OF OBTAINING CELL LINES USING THE SAME |
CS244812B2 (en) * | 1983-04-29 | 1986-08-14 | Ciba Geigy | Production method of propiferating plant cell agglomerates |
DE3402927A1 (en) * | 1984-01-28 | 1985-08-08 | Pfeifer & Langen, 5000 Köln | CELL CULTURE MICROCARRIERS, METHOD FOR THE PRODUCTION THEREOF AND THEIR USE FOR GROWING ANCHOR-DEPENDENT CELLS |
EP0192705A1 (en) * | 1984-08-28 | 1986-09-03 | Massachusetts Institute Of Technology | Detachment of anchorage-dependent cells from microcarriers |
JPH0732B2 (en) * | 1985-02-26 | 1995-01-11 | 富士デヴイソン化学株式会社 | Cell culture carrier and cell culture method |
DE3689400T2 (en) * | 1985-04-04 | 1994-04-07 | Verax Corp | FILLED MICRO SPONGE FOR IMMOBILIZING BIOACTIVE MATERIALS. |
US5100783A (en) | 1985-05-10 | 1992-03-31 | Verax Corporation | Weighted microsponge for immobilizing bioactive material |
DD274336A3 (en) * | 1985-10-03 | 1989-12-20 | Npo Biolar | Process for obtaining a microcarrier substance for cell cultivation |
EP0243151B1 (en) * | 1986-04-22 | 1992-12-16 | Ajinomoto Co., Inc. | Modified microbially-produced cellulose gel and complex thereof with animal cell |
US4876332A (en) * | 1987-10-08 | 1989-10-24 | Regents Of The Univeristy Of Minnesota | Polypeptides with type IV collagen activity |
DE3739649A1 (en) * | 1987-11-23 | 1989-06-22 | Immuno Ag | METHOD FOR DETACHING CELL CULTURES FROM MICROCARRIERS |
EP0318286A3 (en) * | 1987-11-26 | 1990-10-31 | Katakura Chikkarin Co., Ltd. | A substratum for cell culture and its production and use |
JPH0626970B2 (en) * | 1989-10-27 | 1994-04-13 | 有限会社ティアイエンジニアリング | Carrier |
US5719051A (en) * | 1989-12-22 | 1998-02-17 | Immuno Aktiengesellschaft | Perfusion system and a method for the large scale production of virus or virus antigen |
AT393356B (en) * | 1989-12-22 | 1991-10-10 | Immuno Ag | METHOD FOR PRODUCING TBE VIRUS ANTIGES |
IL115728A0 (en) * | 1994-10-25 | 1996-01-19 | Boehringer Mannheim Gmbh | Biomaterial containing epithelial cells and use thereof as a transplant |
DE4438015A1 (en) * | 1994-10-25 | 1996-05-02 | Boehringer Mannheim Gmbh | Bio-materials for treating skin wounds, e.g. burns, senile ulcers and diabetic wounds |
AU1335699A (en) * | 1997-10-25 | 1999-05-17 | Boehringer Mannheim Gmbh | Modified microcarriers and their use in cell cryoconservation |
WO1999021963A1 (en) * | 1997-10-25 | 1999-05-06 | Roche Diagnostics Gmbh | Autodegradable microcarriers and their use |
GB0606430D0 (en) * | 2006-03-31 | 2006-05-10 | Ge Healthcare Uk Ltd | Method for cell based assays |
DE102008036576A1 (en) * | 2008-07-31 | 2010-02-04 | Gelita Ag | Particles of collagen material and method of manufacture |
Family Cites Families (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SE169293C1 (en) * | 1958-03-13 | 1959-11-10 | ||
SE358894B (en) * | 1961-10-25 | 1973-08-13 | Pharmacia Ab | |
GB1013585A (en) * | 1963-04-22 | 1965-12-15 | Pharmacia Ab | Improvements in or relating to ion-exchange materials |
SE337223B (en) * | 1967-05-23 | 1971-08-02 | Pharmacia Ab | |
SE343210B (en) * | 1967-12-20 | 1972-03-06 | Pharmacia Ab | |
SE404553B (en) * | 1977-03-04 | 1978-10-09 | Pharmacia Diagnostics Ab | PUTTING DETERMINATION METHODS INVOLVING BIOSPECIFIC AFFINITY REACTIONS |
-
1979
- 1979-09-12 SE SE7907573A patent/SE445116B/en not_active IP Right Cessation
-
1980
- 1980-09-03 FR FR8018992A patent/FR2464994A1/en active Granted
- 1980-09-08 GB GB8028984A patent/GB2059991B/en not_active Expired
- 1980-09-09 DE DE19803033885 patent/DE3033885A1/en active Granted
- 1980-09-12 JP JP12785980A patent/JPS5651981A/en active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS5651981A (en) | 1981-05-09 |
JPH0154992B2 (en) | 1989-11-21 |
FR2464994A1 (en) | 1981-03-20 |
GB2059991A (en) | 1981-04-29 |
DE3033885A1 (en) | 1981-04-02 |
GB2059991B (en) | 1983-09-14 |
SE7907573L (en) | 1981-03-13 |
DE3033885C2 (en) | 1988-04-07 |
FR2464994B1 (en) | 1985-04-12 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
SE445116B (en) | MAKE CULTURE CELLS ON MICROBATORS WITH FIBRONECTINE LAYERS | |
JP7217765B2 (en) | Cell media and methods | |
Levine et al. | Microcarrier cell culture: new methods for research-scale application | |
Carani et al. | Growth of three established cell lines on glass microcarriers | |
US6214618B1 (en) | Microcarrier beads having a styrene copolymer core and a covalently linked tri-methylamine exterior | |
US20100136647A1 (en) | Method for production of cell attachment and culture surfaces | |
Reuveny et al. | Factors affecting cell attachment, spreading, and growth on derivatized microcarriers. I. Establishment of working system and effect of the type of the amino‐charged groups | |
Hu et al. | Serial propagation of mammalian cells on microcarriers | |
JP2008067720A (en) | Method for cultivating cell and propagating virus | |
US6146891A (en) | Methods for cultivating cells and propagating viruses | |
EP1576148B1 (en) | Process for coating cell-culture support | |
Thilly et al. | [15] Microcarrier culture: A homogeneous environment for studies of cellular biochemistry | |
US20110039336A1 (en) | Product for cell culture | |
Reuveny et al. | Factors effecting cell attachment, spreading, and growth on derivatized microcarriers: II introduction of hydrophobic elements | |
JPS60237991A (en) | Fine particle carrier for cell culture, its production and culture of scaffold dependent cell using the same | |
US20060252152A1 (en) | Attachment of cells to surfaces | |
Kuo et al. | Growth of anchorage dependent mammalian cells on glycine-derivatized polystyrene in suspension culture | |
EP0066726B1 (en) | Use of a water-swellable and water-insoluble polymeric substance with quaternary amino groups as microcarrier for culturing of anchorage dependant cells | |
JPH02234670A (en) | Base material for cell culture | |
KR101639454B1 (en) | Scalable process for culturing per.c6 cells and producing products therefrom | |
JPS63501474A (en) | A method for producing a microcarrier for culturing cells and a microcarrier produced by the method | |
JPH04278081A (en) | Method for culturing cell | |
JP2022151223A (en) | Method for purifying hematopoietic cells | |
JPH04281784A (en) | Incubation of cho cell and production of cell-grown product | |
JPH0491787A (en) | Carrier for cell culture |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
NAL | Patent in force |
Ref document number: 7907573-5 Format of ref document f/p: F |
|
NUG | Patent has lapsed |
Ref document number: 7907573-5 Format of ref document f/p: F |