RU2807740C1 - Method of microclonal propagation of manchurian kirkazona (aristolochia manshuriensis kom.) - Google Patents
Method of microclonal propagation of manchurian kirkazona (aristolochia manshuriensis kom.) Download PDFInfo
- Publication number
- RU2807740C1 RU2807740C1 RU2023112512A RU2023112512A RU2807740C1 RU 2807740 C1 RU2807740 C1 RU 2807740C1 RU 2023112512 A RU2023112512 A RU 2023112512A RU 2023112512 A RU2023112512 A RU 2023112512A RU 2807740 C1 RU2807740 C1 RU 2807740C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- propagation
- explants
- nutrient medium
- microsalts
- microshoots
- Prior art date
Links
- 241000041623 Aristolochia manshuriensis Species 0.000 title claims abstract description 22
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 21
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims abstract description 51
- CIWBSHSKHKDKBQ-JLAZNSOCSA-N Ascorbic acid Chemical compound OC[C@H](O)[C@H]1OC(=O)C(O)=C1O CIWBSHSKHKDKBQ-JLAZNSOCSA-N 0.000 claims abstract description 15
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims abstract description 15
- NWBJYWHLCVSVIJ-UHFFFAOYSA-N N-benzyladenine Chemical compound N=1C=NC=2NC=NC=2C=1NCC1=CC=CC=C1 NWBJYWHLCVSVIJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 12
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 12
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 claims abstract description 10
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 claims abstract description 8
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 claims abstract description 8
- 239000012670 alkaline solution Substances 0.000 claims abstract description 7
- 229960005070 ascorbic acid Drugs 0.000 claims abstract description 7
- 239000002689 soil Substances 0.000 claims abstract description 6
- 238000012546 transfer Methods 0.000 claims abstract description 5
- 238000005406 washing Methods 0.000 claims abstract description 5
- 239000002211 L-ascorbic acid Substances 0.000 claims abstract description 3
- 235000000069 L-ascorbic acid Nutrition 0.000 claims abstract description 3
- VYPKFHFVKFKHMK-UHFFFAOYSA-N 2-(1h-indol-2-yl)butanoic acid Chemical compound C1=CC=C2NC(C(C(O)=O)CC)=CC2=C1 VYPKFHFVKFKHMK-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 13
- 239000005982 Indolylbutyric acid Substances 0.000 claims description 13
- 239000002609 medium Substances 0.000 abstract description 44
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 7
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 6
- 241000894007 species Species 0.000 abstract description 5
- 241000726094 Aristolochia Species 0.000 abstract description 3
- 239000006870 ms-medium Substances 0.000 abstract description 2
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 17
- SEOVTRFCIGRIMH-UHFFFAOYSA-N indole-3-acetic acid Chemical compound C1=CC=C2C(CC(=O)O)=CNC2=C1 SEOVTRFCIGRIMH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 238000011161 development Methods 0.000 description 7
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 7
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 7
- DHMQDGOQFOQNFH-UHFFFAOYSA-N Glycine Chemical compound NCC(O)=O DHMQDGOQFOQNFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- PVNIIMVLHYAWGP-UHFFFAOYSA-N Niacin Chemical compound OC(=O)C1=CC=CN=C1 PVNIIMVLHYAWGP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 239000000463 material Substances 0.000 description 6
- 239000010413 mother solution Substances 0.000 description 6
- 229930195732 phytohormone Natural products 0.000 description 6
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 5
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 5
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 5
- 230000000144 pharmacologic effect Effects 0.000 description 5
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 5
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 5
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L Magnesium sulfate Chemical compound [Mg+2].[O-][S+2]([O-])([O-])[O-] CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 4
- 235000010323 ascorbic acid Nutrition 0.000 description 4
- 239000011668 ascorbic acid Substances 0.000 description 4
- 230000008569 process Effects 0.000 description 4
- 238000013337 sub-cultivation Methods 0.000 description 4
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 4
- 239000004471 Glycine Substances 0.000 description 3
- JZRWCGZRTZMZEH-UHFFFAOYSA-N Thiamine Natural products CC1=C(CCO)SC=[N+]1CC1=CN=C(C)N=C1N JZRWCGZRTZMZEH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 230000000843 anti-fungal effect Effects 0.000 description 3
- 230000000259 anti-tumor effect Effects 0.000 description 3
- 229940121375 antifungal agent Drugs 0.000 description 3
- 239000003963 antioxidant agent Substances 0.000 description 3
- 230000003078 antioxidant effect Effects 0.000 description 3
- 235000006708 antioxidants Nutrition 0.000 description 3
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 3
- 239000002934 diuretic Substances 0.000 description 3
- 230000001882 diuretic effect Effects 0.000 description 3
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 3
- 229960002449 glycine Drugs 0.000 description 3
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 3
- 230000017074 necrotic cell death Effects 0.000 description 3
- 235000001968 nicotinic acid Nutrition 0.000 description 3
- 229960003512 nicotinic acid Drugs 0.000 description 3
- 239000011664 nicotinic acid Substances 0.000 description 3
- 150000002989 phenols Chemical class 0.000 description 3
- 208000010110 spontaneous platelet aggregation Diseases 0.000 description 3
- 239000003206 sterilizing agent Substances 0.000 description 3
- 235000019157 thiamine Nutrition 0.000 description 3
- KYMBYSLLVAOCFI-UHFFFAOYSA-N thiamine Chemical compound CC1=C(CCO)SCN1CC1=CN=C(C)N=C1N KYMBYSLLVAOCFI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 229960003495 thiamine Drugs 0.000 description 3
- 239000011721 thiamine Substances 0.000 description 3
- 230000035899 viability Effects 0.000 description 3
- 229940088594 vitamin Drugs 0.000 description 3
- 229930003231 vitamin Natural products 0.000 description 3
- 235000013343 vitamin Nutrition 0.000 description 3
- 239000011782 vitamin Substances 0.000 description 3
- 239000005631 2,4-Dichlorophenoxyacetic acid Substances 0.000 description 2
- HXKWSTRRCHTUEC-UHFFFAOYSA-N 2,4-Dichlorophenoxyaceticacid Chemical compound OC(=O)C(Cl)OC1=CC=C(Cl)C=C1 HXKWSTRRCHTUEC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- PAWQVTBBRAZDMG-UHFFFAOYSA-N 2-(3-bromo-2-fluorophenyl)acetic acid Chemical compound OC(=O)CC1=CC=CC(Br)=C1F PAWQVTBBRAZDMG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- NGSWKAQJJWESNS-UHFFFAOYSA-N 4-coumaric acid Chemical compound OC(=O)C=CC1=CC=C(O)C=C1 NGSWKAQJJWESNS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- FJKROLUGYXJWQN-UHFFFAOYSA-N 4-hydroxybenzoic acid Chemical compound OC(=O)C1=CC=C(O)C=C1 FJKROLUGYXJWQN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- ZHJGWYRLJUCMRT-UHFFFAOYSA-N 5-[6-[(4-methylpiperazin-1-yl)methyl]benzimidazol-1-yl]-3-[1-[2-(trifluoromethyl)phenyl]ethoxy]thiophene-2-carboxamide Chemical compound C=1C=CC=C(C(F)(F)F)C=1C(C)OC(=C(S1)C(N)=O)C=C1N(C1=C2)C=NC1=CC=C2CN1CCN(C)CC1 ZHJGWYRLJUCMRT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 2
- 229930192334 Auxin Natural products 0.000 description 2
- UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L Calcium chloride Chemical compound [Cl-].[Cl-].[Ca+2] UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- QXNVGIXVLWOKEQ-UHFFFAOYSA-N Disodium Chemical class [Na][Na] QXNVGIXVLWOKEQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000206672 Gelidium Species 0.000 description 2
- 241000193986 Kalmia latifolia Species 0.000 description 2
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 2
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 description 2
- 235000010419 agar Nutrition 0.000 description 2
- 230000000844 anti-bacterial effect Effects 0.000 description 2
- 230000003110 anti-inflammatory effect Effects 0.000 description 2
- 230000000078 anti-malarial effect Effects 0.000 description 2
- 230000002365 anti-tubercular Effects 0.000 description 2
- 239000002363 auxin Substances 0.000 description 2
- KGBXLFKZBHKPEV-UHFFFAOYSA-N boric acid Chemical compound OB(O)O KGBXLFKZBHKPEV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000004327 boric acid Substances 0.000 description 2
- 239000001110 calcium chloride Substances 0.000 description 2
- 229910001628 calcium chloride Inorganic materials 0.000 description 2
- 235000011148 calcium chloride Nutrition 0.000 description 2
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 2
- HVYWMOMLDIMFJA-DPAQBDIFSA-N cholesterol Chemical compound C1C=C2C[C@@H](O)CC[C@]2(C)[C@@H]2[C@@H]1[C@@H]1CC[C@H]([C@H](C)CCCC(C)C)[C@@]1(C)CC2 HVYWMOMLDIMFJA-DPAQBDIFSA-N 0.000 description 2
- JZCCFEFSEZPSOG-UHFFFAOYSA-L copper(II) sulfate pentahydrate Chemical compound O.O.O.O.O.[Cu+2].[O-]S([O-])(=O)=O JZCCFEFSEZPSOG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 2
- UQHKFADEQIVWID-UHFFFAOYSA-N cytokinin Natural products C1=NC=2C(NCC=C(CO)C)=NC=NC=2N1C1CC(O)C(CO)O1 UQHKFADEQIVWID-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000004062 cytokinin Substances 0.000 description 2
- 230000006866 deterioration Effects 0.000 description 2
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 description 2
- 238000005286 illumination Methods 0.000 description 2
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 2
- SURQXAFEQWPFPV-UHFFFAOYSA-L iron(2+) sulfate heptahydrate Chemical compound O.O.O.O.O.O.O.[Fe+2].[O-]S([O-])(=O)=O SURQXAFEQWPFPV-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- QANMHLXAZMSUEX-UHFFFAOYSA-N kinetin Chemical compound N=1C=NC=2N=CNC=2C=1NCC1=CC=CO1 QANMHLXAZMSUEX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229910052943 magnesium sulfate Inorganic materials 0.000 description 2
- 235000019341 magnesium sulphate Nutrition 0.000 description 2
- JSPANIZMKMFECH-UHFFFAOYSA-L manganese(II) sulfate dihydrate Chemical compound O.O.[Mn+2].[O-]S([O-])(=O)=O JSPANIZMKMFECH-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 229910000402 monopotassium phosphate Inorganic materials 0.000 description 2
- 235000019796 monopotassium phosphate Nutrition 0.000 description 2
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 2
- PJNZPQUBCPKICU-UHFFFAOYSA-N phosphoric acid;potassium Chemical compound [K].OP(O)(O)=O PJNZPQUBCPKICU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- OTYBMLCTZGSZBG-UHFFFAOYSA-L potassium sulfate Chemical compound [K+].[K+].[O-]S([O-])(=O)=O OTYBMLCTZGSZBG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 229910052939 potassium sulfate Inorganic materials 0.000 description 2
- 235000011151 potassium sulphates Nutrition 0.000 description 2
- LXNHXLLTXMVWPM-UHFFFAOYSA-N pyridoxine Chemical compound CC1=NC=C(CO)C(CO)=C1O LXNHXLLTXMVWPM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- RWVGQQGBQSJDQV-UHFFFAOYSA-M sodium;3-[[4-[(e)-[4-(4-ethoxyanilino)phenyl]-[4-[ethyl-[(3-sulfonatophenyl)methyl]azaniumylidene]-2-methylcyclohexa-2,5-dien-1-ylidene]methyl]-n-ethyl-3-methylanilino]methyl]benzenesulfonate Chemical compound [Na+].C1=CC(OCC)=CC=C1NC1=CC=C(C(=C2C(=CC(C=C2)=[N+](CC)CC=2C=C(C=CC=2)S([O-])(=O)=O)C)C=2C(=CC(=CC=2)N(CC)CC=2C=C(C=CC=2)S([O-])(=O)=O)C)C=C1 RWVGQQGBQSJDQV-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 2
- RZLVQBNCHSJZPX-UHFFFAOYSA-L zinc sulfate heptahydrate Chemical compound O.O.O.O.O.O.O.[Zn+2].[O-]S([O-])(=O)=O RZLVQBNCHSJZPX-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- OILXMJHPFNGGTO-UHFFFAOYSA-N (22E)-(24xi)-24-methylcholesta-5,22-dien-3beta-ol Natural products C1C=C2CC(O)CCC2(C)C2C1C1CCC(C(C)C=CC(C)C(C)C)C1(C)CC2 OILXMJHPFNGGTO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- KSEBMYQBYZTDHS-HWKANZROSA-M (E)-Ferulic acid Natural products COC1=CC(\C=C\C([O-])=O)=CC=C1O KSEBMYQBYZTDHS-HWKANZROSA-M 0.000 description 1
- PRPINYUDVPFIRX-UHFFFAOYSA-N 1-naphthaleneacetic acid Chemical compound C1=CC=C2C(CC(=O)O)=CC=CC2=C1 PRPINYUDVPFIRX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- NGSWKAQJJWESNS-ZZXKWVIFSA-M 4-Hydroxycinnamate Natural products OC1=CC=C(\C=C\C([O-])=O)C=C1 NGSWKAQJJWESNS-ZZXKWVIFSA-M 0.000 description 1
- 229940090248 4-hydroxybenzoic acid Drugs 0.000 description 1
- OQMZNAMGEHIHNN-UHFFFAOYSA-N 7-Dehydrostigmasterol Natural products C1C(O)CCC2(C)C(CCC3(C(C(C)C=CC(CC)C(C)C)CCC33)C)C3=CC=C21 OQMZNAMGEHIHNN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- DFYRUELUNQRZTB-UHFFFAOYSA-N Acetovanillone Natural products COC1=CC(C(C)=O)=CC=C1O DFYRUELUNQRZTB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000758795 Aristolochiaceae Species 0.000 description 1
- 206010020649 Hyperkeratosis Diseases 0.000 description 1
- 206010061218 Inflammation Diseases 0.000 description 1
- FAIXYKHYOGVFKA-UHFFFAOYSA-N Kinetin Natural products N=1C=NC=2N=CNC=2C=1N(C)C1=CC=CO1 FAIXYKHYOGVFKA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- POIRVLZGTSWEMG-UHFFFAOYSA-N Magnoflorin Natural products N1CCC2=CC(OC)=C(O)C3=C2C1CC1=CC=C(OC)C(O)=C13 POIRVLZGTSWEMG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000218922 Magnoliophyta Species 0.000 description 1
- 244000061176 Nicotiana tabacum Species 0.000 description 1
- 235000002637 Nicotiana tabacum Nutrition 0.000 description 1
- 206010030113 Oedema Diseases 0.000 description 1
- 206010037660 Pyrexia Diseases 0.000 description 1
- 206010037779 Radiculopathy Diseases 0.000 description 1
- 208000004078 Snake Bites Diseases 0.000 description 1
- 239000005708 Sodium hypochlorite Substances 0.000 description 1
- HFCYZXMHUIHAQI-UHFFFAOYSA-N Thidiazuron Chemical compound C=1C=CC=CC=1NC(=O)NC1=CN=NS1 HFCYZXMHUIHAQI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000003425 Tyrosinase Human genes 0.000 description 1
- 108060008724 Tyrosinase Proteins 0.000 description 1
- HZYXFRGVBOPPNZ-UHFFFAOYSA-N UNPD88870 Natural products C1C=C2CC(O)CCC2(C)C2C1C1CCC(C(C)=CCC(CC)C(C)C)C1(C)CC2 HZYXFRGVBOPPNZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 244000290333 Vanilla fragrans Species 0.000 description 1
- 235000009499 Vanilla fragrans Nutrition 0.000 description 1
- 235000012036 Vanilla tahitensis Nutrition 0.000 description 1
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 1
- 230000001133 acceleration Effects 0.000 description 1
- 230000009471 action Effects 0.000 description 1
- 239000013543 active substance Substances 0.000 description 1
- 230000001154 acute effect Effects 0.000 description 1
- 230000000202 analgesic effect Effects 0.000 description 1
- 230000000954 anitussive effect Effects 0.000 description 1
- 230000000507 anthelmentic effect Effects 0.000 description 1
- 230000001833 anti-estrogenic effect Effects 0.000 description 1
- 230000001929 anti-hepatotoxic effect Effects 0.000 description 1
- 230000002514 anti-leishmanial effect Effects 0.000 description 1
- 230000002927 anti-mitotic effect Effects 0.000 description 1
- 230000000840 anti-viral effect Effects 0.000 description 1
- 239000000729 antidote Substances 0.000 description 1
- 239000003430 antimalarial agent Substances 0.000 description 1
- 239000002592 antimutagenic agent Substances 0.000 description 1
- 230000006907 apoptotic process Effects 0.000 description 1
- BBFQZRXNYIEMAW-UHFFFAOYSA-N aristolochic acid I Chemical compound C1=C([N+]([O-])=O)C2=C(C(O)=O)C=C3OCOC3=C2C2=C1C(OC)=CC=C2 BBFQZRXNYIEMAW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- LGJMUZUPVCAVPU-UHFFFAOYSA-N beta-Sitostanol Natural products C1CC2CC(O)CCC2(C)C2C1C1CCC(C(C)CCC(CC)C(C)C)C1(C)CC2 LGJMUZUPVCAVPU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000004166 bioassay Methods 0.000 description 1
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 description 1
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 1
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 1
- 230000036772 blood pressure Effects 0.000 description 1
- 230000000747 cardiac effect Effects 0.000 description 1
- 230000003177 cardiotonic effect Effects 0.000 description 1
- 239000005018 casein Substances 0.000 description 1
- BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N casein, tech. Chemical compound NCCCCC(C(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CC(C)C)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(C(C)O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(COP(O)(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(N)CC1=CC=CC=C1 BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000021240 caseins Nutrition 0.000 description 1
- 230000001989 choleretic effect Effects 0.000 description 1
- 235000012000 cholesterol Nutrition 0.000 description 1
- 230000002759 chromosomal effect Effects 0.000 description 1
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 1
- PYRZPBDTPRQYKG-UHFFFAOYSA-N cyclopentene-1-carboxylic acid Chemical compound OC(=O)C1=CCCC1 PYRZPBDTPRQYKG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 231100000433 cytotoxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000001472 cytotoxic effect Effects 0.000 description 1
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 1
- 230000034994 death Effects 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- 210000003743 erythrocyte Anatomy 0.000 description 1
- 239000000328 estrogen antagonist Substances 0.000 description 1
- KSEBMYQBYZTDHS-HWKANZROSA-N ferulic acid Chemical compound COC1=CC(\C=C\C(O)=O)=CC=C1O KSEBMYQBYZTDHS-HWKANZROSA-N 0.000 description 1
- 229940114124 ferulic acid Drugs 0.000 description 1
- KSEBMYQBYZTDHS-UHFFFAOYSA-N ferulic acid Natural products COC1=CC(C=CC(O)=O)=CC=C1O KSEBMYQBYZTDHS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000001785 ferulic acid Nutrition 0.000 description 1
- 239000003457 ganglion blocking agent Substances 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 208000006750 hematuria Diseases 0.000 description 1
- 210000003494 hepatocyte Anatomy 0.000 description 1
- 230000002218 hypoglycaemic effect Effects 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 description 1
- 238000001802 infusion Methods 0.000 description 1
- 230000000977 initiatory effect Effects 0.000 description 1
- 208000014674 injury Diseases 0.000 description 1
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 1
- 229960000367 inositol Drugs 0.000 description 1
- CDAISMWEOUEBRE-GPIVLXJGSA-N inositol Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)[C@@H]1O CDAISMWEOUEBRE-GPIVLXJGSA-N 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 229960001669 kinetin Drugs 0.000 description 1
- 230000006651 lactation Effects 0.000 description 1
- 230000007721 medicinal effect Effects 0.000 description 1
- LWJROJCJINYWOX-UHFFFAOYSA-L mercury dichloride Chemical compound Cl[Hg]Cl LWJROJCJINYWOX-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 1
- 235000010755 mineral Nutrition 0.000 description 1
- OIQXEJQVKIZMOC-UHFFFAOYSA-N n-(3-methylbutan-2-yl)-7h-purin-6-amine Chemical compound CC(C)C(C)NC1=NC=NC2=C1NC=N2 OIQXEJQVKIZMOC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000017066 negative regulation of growth Effects 0.000 description 1
- 230000000324 neuroprotective effect Effects 0.000 description 1
- 230000005305 organ development Effects 0.000 description 1
- 229940094443 oxytocics prostaglandins Drugs 0.000 description 1
- 239000003415 peat Substances 0.000 description 1
- 230000035699 permeability Effects 0.000 description 1
- ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N phenol group Chemical group C1(=CC=CC=C1)O ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000029553 photosynthesis Effects 0.000 description 1
- 238000010672 photosynthesis Methods 0.000 description 1
- 150000003180 prostaglandins Chemical class 0.000 description 1
- 235000008160 pyridoxine Nutrition 0.000 description 1
- 239000011677 pyridoxine Substances 0.000 description 1
- 206010061928 radiculitis Diseases 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 239000004576 sand Substances 0.000 description 1
- CDAISMWEOUEBRE-UHFFFAOYSA-N scyllo-inosotol Natural products OC1C(O)C(O)C(O)C(O)C1O CDAISMWEOUEBRE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- SUKJFIGYRHOWBL-UHFFFAOYSA-N sodium hypochlorite Chemical compound [Na+].Cl[O-] SUKJFIGYRHOWBL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- HCXVJBMSMIARIN-PHZDYDNGSA-N stigmasterol Chemical compound C1C=C2C[C@@H](O)CC[C@]2(C)[C@@H]2[C@@H]1[C@@H]1CC[C@H]([C@H](C)/C=C/[C@@H](CC)C(C)C)[C@@]1(C)CC2 HCXVJBMSMIARIN-PHZDYDNGSA-N 0.000 description 1
- 229940032091 stigmasterol Drugs 0.000 description 1
- BFDNMXAIBMJLBB-UHFFFAOYSA-N stigmasterol Natural products CCC(C=CC(C)C1CCCC2C3CC=C4CC(O)CCC4(C)C3CCC12C)C(C)C BFDNMXAIBMJLBB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000016831 stigmasterol Nutrition 0.000 description 1
- 208000003265 stomatitis Diseases 0.000 description 1
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 1
- 229940126680 traditional chinese medicines Drugs 0.000 description 1
- QURCVMIEKCOAJU-UHFFFAOYSA-N trans-isoferulic acid Natural products COC1=CC=C(C=CC(O)=O)C=C1O QURCVMIEKCOAJU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 210000001635 urinary tract Anatomy 0.000 description 1
- 229940011671 vitamin b6 Drugs 0.000 description 1
- 239000002023 wood Substances 0.000 description 1
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии растений и может быть использовано для размножения редких и лекарственных древесных видов рода кирказоновые (Aristolochia L.), в том числе для кирказона маньчжурского (A. manshuriensis Kom.).The invention relates to plant biotechnology and can be used for propagation of rare and medicinal tree species of the genus Kirkazonaceae (AristolochiaL.), including for the Manchurian kirkazon (A. manshuriensis Kom.).
Кирказон маньчжурский - древесная лиана из рода Aristolochia (сем. Aristolochiaceae), эндемик небольшой части Восточной Азии; его ареал ограничен юго-западом Приморского края, п-овом Корея и Мукденской провинцией Восточного Китая. Уязвимый вид на границе ареала. Природные популяции A. manshuriensis находятся в угнетенном состоянии, самовозобновление вида незначительное. Вид внесен в Красные книги РСФСР (1988), Российской Федерации (2008) и Приморского края (2008).Kirkazon Manchurian is a woody vine of the genus Aristolochia (family Aristolochiaceae ), endemic to a small part of East Asia; its range is limited to the southwest of Primorsky Krai, the Korean Peninsula and the Mukden province of Eastern China. Vulnerable species on the border of its range. Natural populations of A. manshuriensis are in a depressed state, and self-renewal of the species is insignificant. The species is included in the Red Books of the RSFSR (1988), the Russian Federation (2008) and the Primorsky Territory (2008).
Учеными определено, что вещества, выделенные из A. manshuriensis, обладают лекарственными свойствами [1]. Арисканин А ингибирует агрегацию тромбоцитов; р-кумаровая кислота обладает противобактериальным, противогрибковым, антигепатотоксическим, противогиперхолестериновым, нейрозащитным и желчегонным действием. Феруловая кислота показывает противомитотическое, противотуберкулезное, цитотоксическое, противогрибковое, противоэстрогенное, противогепатоксическое свойство, также ингибирует агрегацию тромбоцитов, является антиоксидантом; p-гидроскибензойная кислота активирует синтез простогландинов, замедляет действие эритроцитов, является противоядием, антимутагеном. Магнофлорин - ганглионарный блокатор, препятствует повышению артериального давления. Олеанолевая кислота обладает противоопухолевым, кардиотоническим, мочегонным, гипогликемическим, противотуберкулезным, противоплазмодиевым и противомалярийным действием, снижает проницаемость капилляров крови, способствует восстановлению и появлению гепатоцитов, ингибирует агрегацию тромбоцитов, запускает апоптоз, является малотоксичным. β-цитостерол имеет противоопухолевый, противовоспалительный, противокашлевый эффект, препятствует повышению холестерина, ингибирует склеивание тромбоцитов и тирозиназу. Стигмастерол проявляет противоопухолевое, противолейшманивое, противомалярийное, противовирусное действие. Ванильная кислота обладает противобактериальными, противогрибковыми, противовоспалительными, противоглистными свойствами, является антиоксидантом [1].Scientists have determined that substances isolated from A. manshuriensis have medicinal properties [1]. Ariscanin A inhibits platelet aggregation; p -coumaric acid has antibacterial, antifungal, antihepatotoxic, antihypercholesterol, neuroprotective and choleretic effects. Ferulic acid shows antimitotic, antituberculosis, cytotoxic, antifungal, antiestrogenic, antihepatoxic properties, also inhibits platelet aggregation, and is an antioxidant; p -hydroxybenzoic acid activates the synthesis of prostaglandins, slows down the action of red blood cells, and is an antidote and antimutagen. Magnoflorin is a ganglion blocker that prevents an increase in blood pressure. Oleanoleic acid has antitumor, cardiotonic, diuretic, hypoglycemic, antituberculosis, antiplasmodium and antimalarial effects, reduces the permeability of blood capillaries, promotes the restoration and appearance of hepatocytes, inhibits platelet aggregation, triggers apoptosis, and is low-toxic. β-cytosterol has an antitumor, anti-inflammatory, antitussive effect, prevents the increase in cholesterol, inhibits platelet adhesiveness and tyrosinase. Stigmasterol exhibits antitumor, antileishmanial, antimalarial, and antiviral effects. Vanilla acid has antibacterial, antifungal, anti-inflammatory, anthelmintic properties, and is an antioxidant [1].
В тибетской медицине применяют подземные части, древесину используют в корейской и китайской медицине как мочегонное; настой пьют при ревматизме и радикулите [2, 3, 4]. Из стеблей A. manshuriensis был создан препарат, влияющий в разных дозах на частоту сердечных сокращений [5]. Применяется при сердечных и почечных отеках, воспалениях мочевыводящих путей. Назначают также для снижения температуры и увеличения лактации [3]. Кирказон маньчжурский издавна применяют наружно как болеутоляющее средство, а также используют при укусах змей, при териотоксикозах, также при стоматите, диуретических явлениях, гематурии [1,2].In Tibetan medicine, underground parts are used, wood is used in Korean and Chinese medicine as a diuretic; The infusion is drunk for rheumatism and radiculitis [2, 3, 4]. A drug was created from the stems of A. manshuriensis that affects heart rate in different doses [5]. Used for cardiac and renal edema, inflammation of the urinary tract. It is also prescribed to reduce fever and increase lactation [3]. Kirkazon Manchurian has long been used externally as an analgesic, and is also used for snake bites, theriotoxicosis, and also for stomatitis, diuretic phenomena, and hematuria [1,2].
В настоящее время проблема сохранения и восстановления природных популяций кирказона маньчжурского стоит остро в связи с неконтролируемым сбором лианы на лекарственное сырье. Подбор методов массового размножения растений для их дальнейшего доращивания и высаживания в природные популяции - путь для восстановления истощенных по численности. Метод микроклонального размножения позволяет получить генетически однородные растения-регенеранты в больших количествах. Микрорастения могут быть использованы в фармакологии как источник ценных биологически активных веществ и для интродукции и реинтродукции.Currently, the problem of preserving and restoring natural populations of the Manchurian plant is acute due to the uncontrolled collection of vines for medicinal raw materials. The selection of methods for mass propagation of plants for their further growing and planting in natural populations is the way to restore those that are depleted in numbers. The microclonal propagation method makes it possible to obtain genetically homogeneous regenerated plants in large quantities. Microplants can be used in pharmacology as a source of valuable biologically active substances and for introduction and reintroduction.
Известен метод микроклонального размножения A. manshuriensis [6], включающий культивирование на питательной среде, содержащей минеральные макро- и микросоли по прописи Мурасиге и Скуга (MS) [7], а также различные вещества с цитокининовой и ауксиновой активностью. В качестве цитокининов использовали 6-бензиламинопурин (6-БАП), N6-(2-изопентил) аденин (2ip), 6-фурфуриламинопурин (кинетин), а также применяли препараты Дропп, Цитодеф, Мицефит. Из веществ с ауксиновой активностью использовали альфа-нафтилуксусную кислоту (НУК), индолилмасляную кислоту (ИМК), 3-индолилуксусную кислоту (ИУК) и 2,4-дихлорфеноксиуксусную кислоту (2,4-Д). Для снижения фенольной нагрузки на микропобеги дополнительно вводили в питательную среду активированный уголь.A known method for microclonal propagation of A. manshuriensis [6], including cultivation on a nutrient medium containing mineral macro- and microsalts according to the recipe of Murashige and Skoog (MS) [7], as well as various substances with cytokinin and auxin activity. The cytokinins used were 6-benzylaminopurine (6-BAP), N6-(2-isopentyl) adenine (2ip), 6-furfurylaminopurine (kinetin), and the drugs Dropp, Cytodef, Mycefit were also used. Of the substances with auxin activity, alpha-naphthylacetic acid (NAA), indolylbutyric acid (IBA), 3-indolylacetic acid (IAA) and 2,4-dichlorophenoxyacetic acid ( 2,4-D) were used. To reduce the phenolic load on microshoots, activated carbon was additionally introduced into the nutrient medium.
Недостатком известного способа является многовариантность используемых веществ, что приводит к удлинению периода субкультивирования, увеличению материальных и трудовых затрат. Несмотря на присутствие в составе активированного угля во всех вариантах отмечалось побурение среды, вероятно, из-за большего выделения фенольных соединений. Таким образом, даже дополнительное внесение веществ в состав питательной среды не позволило авторам получить жизнеспособные микрорастения - через 2-3 пассажа сформировавшиеся микропобеги погибали.The disadvantage of this known method is the versatility of the substances used, which leads to an extension of the subcultivation period and an increase in material and labor costs. Despite the presence of activated carbon in all variants, browning of the medium was observed, probably due to a greater release of phenolic compounds. Thus, even the additional addition of substances to the nutrient medium did not allow the authors to obtain viable microplants - after 2-3 passages, the formed microshoots died.
Также известен способ микроклонального размножения A. manshuriensis [8], включающий стерилизацию первичных эксплантов хлоридом ртути (II), посадка первичных эксплантов на 10 вариантов питательных сред с макро- и микросолями по прописи WPM [9] и MS с добавлением витаминов: никотиновой кислоты - 0.5 и 1.0 мг/л, пиридоксина - 0.5 и 1.0 мг/л, глицина - 1.0 мг/л, аскорбиновой кислоты - 0.5 мг/л, тиамин - 0.5 мг/л, гидролизата казеина - 80.0 мг/л, мезо-инозитола - 50.0 мг/л, кинетина - 0.2 мг/л; фитогормонов: ИМК - 0.5, 1.0 и 1.5 мг/л и ИУК - 0.5, 1. 1.5, 4 и 8 мг/л, 2ip - 4 и 8 мг/л. Ежедневные пассажи проводили в течении двух недель для уменьшения в среде фенолов, выделяемых эксплантами.There is also a known method for microclonal propagation of A. manshuriensis [8], including sterilization of primary explants with mercury (II) chloride, planting primary explants on 10 variants of nutrient media with macro- and microsalts according to the WPM recipe [9] and MS with the addition of vitamins: nicotinic acid - 0.5 and 1.0 mg/l, pyridoxine - 0.5 and 1.0 mg/l, glycine - 1.0 mg/l, ascorbic acid - 0.5 mg/l, thiamine - 0.5 mg/l, casein hydrolyzate - 80.0 mg/l, meso-inositol - 50.0 mg/l, kinetin - 0.2 mg/l; phytohormones: IBA - 0.5, 1.0 and 1.5 mg/l and IAA - 0.5, 1.1.5, 4 and 8 mg/l, 2ip - 4 and 8 mg/l. Daily passages were carried out for two weeks to reduce phenols released by explants in the medium.
Недостатком данного способа является длительность обработки агрессивным стерилизующим агентом, что ведет к высокой гибели первичных эксплантов. Ежедневные пересадки на свежую питательную среду приводят не только к увеличению материальных и трудовых затрат, но и увеличению длительности периода получения чистой культуры. Кроме того, дополнительные пересадки стерильных объектов могут увеличить вероятность заражения исходных эксплантов.The disadvantage of this method is the duration of treatment with an aggressive sterilizing agent, which leads to high mortality of primary explants. Daily transplants to a fresh nutrient medium lead not only to an increase in material and labor costs, but also to an increase in the duration of the period for obtaining a pure culture. In addition, additional transfers of sterile objects may increase the likelihood of contamination of the original explants.
Так же недостатком известного способа является использование питательных сред с множественными компонентами и относительно высокой концентрацией фитогормонов, что влияет на генетическую изменчивость клеток растений, что недопустимо при микроразмножении и при дальнейшем применении в лекарственных целях полученных растений-регенерантов. Also The disadvantage of this known method is the use of nutrient media with multiple components and a relatively high concentration of phytohormones, which affects the genetic variability of plant cells, which is unacceptable for micropropagation and for further use of the resulting regenerated plants for medicinal purposes.
Наиболее близким техническим решением по микроклонированию A. manshuriensis, является способ клонального микроразмножения, включающий вычленение апикальных и латеральных почек, стерилизацию гипохлоритом натрия (экспозиция 7-10 мин). Посадка на питательные среды, содержащие макро- и микросоли по прописи MS с добавлением 0.8 мг/л 6-БАП и 0.05 мг/л ИУК. Как следует из работ авторов, размножение микропобегов и их последующее укоренение на среде, содержащей макро- и микросоли по прописи MS, с добавлением 20 мг/л сахарозы и ИМК в концентрации 3-5 мг/л осуществляли, помещая несколько черенков в колбы. The closest technical solution for microcloning A. manshuriensis is the method of clonal micropropagation, including isolation of apical and lateral buds, sterilization with sodium hypochlorite (exposure 7-10 min). Planting on nutrient media containing macro- and microsalts according to the MS recipe with the addition of 0.8 mg/l 6-BAP and 0.05 mg/l IAA. As follows from the authors’ works, the propagation of microshoots and their subsequent rooting on a medium containing macro- and microsalts according to the MS recipe, with the addition of 20 mg/l sucrose and IBA at a concentration of 3-5 mg/l, was carried out by placing several cuttings in flasks.
Дальнейшую адаптацию растений-регенерантов к условиям ex vitro проводили, высаживая на смесь песка, торфа и дерновой листовой земли в соотношении 1:1:1, предварительно простерилизованной при 85-90°С в течение 1-2 ч [10].Further adaptation of regenerated plants to ex vitro conditions was carried out by planting them on a mixture of sand, peat and turf leaf soil in a ratio of 1:1:1, previously sterilized at 85-90°C for 1-2 hours [10].
К недостаткам данного технического решения следует отнести:The disadvantages of this technical solution include:
- недостаточно высокий процент укоренения микропобегов (50%);- insufficiently high percentage of microshoots rooting (50%);
- длительность обработки агрессивным стерилизующим агентом может приводить к высокой гибели первичных эксплантов;- the duration of treatment with an aggressive sterilizing agent can lead to high mortality of primary explants;
- многоэтапный период субкультивирования за счет использования разных питательных сред для развития адвентивных почек, роста побегов и укоренения микрорастений, вследствие чего удлиняется процесс получения полноценных микропобегов и возрастают материальные и трудовые затраты. В конечном результате усложняется процесс получения растений-регенерантов A. manshuriensis. Этот факт может привести к увеличению генетической (в том числе и хромосомной) изменчивости клеток растений, что является недопустимым при дальнейшем использовании полученных растений-регенерантов в качестве фармакологического сырья;- a multi-stage period of subcultivation due to the use of different nutrient media for the development of adventitious buds, shoot growth and rooting of microplants, as a result of which the process of obtaining full-fledged microshoots is lengthened and material and labor costs increase. As a result, the process of obtaining regenerated A. manshuriensis plants becomes more complicated. This fact can lead to an increase in genetic (including chromosomal) variability of plant cells, which is unacceptable for the further use of the resulting regenerated plants as pharmacological raw materials;
- жизнеспособность получаемых микрорастений может ухудшаться из-за культивирования нескольких микропобегов в одной колбе, поскольку высока вероятность переплетения образующихся корней;- the viability of the resulting microplants may deteriorate due to the cultivation of several microshoots in one flask, since there is a high probability of intertwining of the resulting roots;
- велика вероятность передачи патогенов от одного зараженного экспланта в колбе всем остальным эксплантам, что снижает их жизнеспособность.- there is a high probability of transmission of pathogens from one infected explant in a flask to all other explants, which reduces their viability.
Технической проблемой, поставленной при создании изобретения, является разработка эффективного способа получения жизнеспособных микрорастений A. manshuriensis для реинтродукции и интродукции при сокращении периода субкультивирования микрорастений для использования полученных растений как фармакологического сырья и, как следствие, снижении материальных и трудовых затрат.The technical problem posed when creating the invention is the development of an effective method for obtaining viable microplants of A. manshuriensis for reintroduction and introduction while reducing the period of subcultivation of microplants for using the resulting plants as pharmacological raw materials and, as a result, reducing material and labor costs.
Указанная техническая проблема решается тем, что в известном способе микроклонального размножения A. manshuriensis, включая отбор эксплантов и их стерилизацию, культивирование стерильных эксплантов на питательной среде на основе макро- и микросолей MS, размножение и укоренение микропобегов на питательной среде на основе макро- и микросолей MS, перевод укорененных микропобегов в условия открытого почвогрунта, согласно изобретению, стадии культивирования и размножения ведут на единой питательной среде на основе макро- и микросолей MS, в которую дополнительно вводят 0.1-0.7 мг/л 6-БАП и 0.5 мг/л аскорбиновой кислоты. При этом в качестве питательной среды для укоренения микропобегов берут среду MS с половинным содержанием макро- и микросолей с добавлением 0.1-1.0 мг/л ИМК. This technical problem is solved by the fact that in the known method of microclonal propagation of A. manshuriensis , including the selection of explants and their sterilization, cultivation of sterile explants on a nutrient medium based on macro- and microsalts MS, propagation and rooting of microshoots on a nutrient medium based on macro- and microsalts MS, transfer of rooted microshoots to open soil conditions, according to the invention, the cultivation and propagation stages are carried out on a single nutrient medium based on macro- and microsalts MS, into which 0.1-0.7 mg/l 6-BAP and 0.5 mg/l ascorbic acid are additionally added . In this case, MS medium with half the content of macro- and microsalts with the addition of 0.1-1.0 mg/l IBA is used as a nutrient medium for rooting microshoots.
Проведение стадий культивирования и размножения на единой питательной среде способствует хорошему развитию адвентивных почек, росту и размножению побегов и получению жизнеспособных микропобегов. Кроме того, это значительно уменьшает длительность цикла получения полноценных микрорастений, поскольку исключает период привыкания побегов к следующему варианту питательной среды. Это так же позволяет снизить материальные и трудовые затраты.Carrying out the stages of cultivation and propagation on a single nutrient medium contributes to the good development of adventitious buds, the growth and reproduction of shoots and the production of viable microshoots. Moreover, it is significant reduces the duration of the cycle for obtaining full-fledged microplants, since it eliminates the period of adaptation of shoots to the next version of the nutrient medium. This also allows you to reduce material and labor costs.
Дополнительное введение 6-бензиламинопурина в концентрации 0.1-0.7 мг/л позволяет активировать покоящиеся почки первичного экспланта и стимулировать рост побега. Использование 6-БАП в концентрации больше 0.7 мг/л приводит к обводнению микропобегов, а использование 6-БАП в концентрации менее 0.1 мг/л не обеспечивает получение полноценно развитых микропобегов A. manshuriensis.Additional administration of 6-benzylaminopurine at a concentration of 0.1-0.7 mg/l makes it possible to activate the dormant buds of the primary explant and stimulate shoot growth. The use of 6-BAP in a concentration greater than 0.7 mg/l leads to watering of microshoots, and the use of 6-BAP in a concentration less than 0.1 mg/l does not ensure the production of fully developed microshoots of A. manshuriensis .
Введение в питательную среду витамина С (аскорбиновой кислоты), являющегося антиоксидантом и принимающего участие в процессах деления и фотосинтеза, обеспечивает получение полноценных растений-регенерантов с сохранением генотипа исходных растений. Присутствие аскорбиновой кислоты в питательной среде предотвращает выделение эксплантами фенольных соединений, способных привести к помутнению питательной среды, некротизации нижней части побега и ухудшению проводимости питательных веществ и, как следствие, к снижению качества получаемых микропобегов. The introduction of vitamin C (ascorbic acid), which is an antioxidant and takes part in the processes of division and photosynthesis, into the nutrient medium ensures the production of full-fledged regenerated plants while preserving the genotype of the original plants. The presence of ascorbic acid in the nutrient medium prevents the release of phenolic compounds by explants, which can lead to clouding of the nutrient medium, necrotization of the lower part of the shoot and deterioration in the conductivity of nutrients and, as a consequence, to a decrease in the quality of the resulting microshoots.
Введение в питательную среду аскорбиновой кислоты в концентрации менее 0.4 мг/л практически не влияет на рост и развитие микропробегов in vitro. Введение ее в концентрации более 0.6 мг/л нецелесообразно, т.к. при этом отмечалось угнетение ростовых процессов у микрорастений. The introduction of ascorbic acid into the nutrient medium at a concentration of less than 0.4 mg/l has virtually no effect on the growth and development of microbes in vitro . Introducing it in a concentration of more than 0.6 mg/l is impractical, because At the same time, inhibition of growth processes in microplants was noted.
Использование для укоренения микропобегов A. manshuriensis питательной среды, содержащей половинную концентрацию растворенных в дистиллированной воде солей по прописи MS с дополнительным введением ИМК позволяет получать полноценные укорененные жизнеспособные микрорастения при уменьшенных материальных и трудовых затратах. The use of a nutrient medium containing half the concentration of salts dissolved in distilled water according to the MS recipe with the additional introduction of IBA for rooting microshoots of A. manshuriensis allows one to obtain fully rooted, viable microplants with reduced material and labor costs.
Введение в питательную среду фитогормона ИМК в диапазоне 0.1-1.0 мг/л приводит к ускорению заложения корневых зачатков и развитию придаточных корней. Увеличение концентрации ИМК более 1.0 мг/л приводит к формированию плотного каллуса на основании черенка с ухудшением укоренения микропобегов in vitro. Использование концентрации ИМК менее 0,1 мг/л практически не влияет на укореняемость микропобегов и на развитие корневой системы.The introduction of the phytohormone IBA into the nutrient medium in the range of 0.1-1.0 mg/l leads to an acceleration of the initiation of root primordia and the development of adventitious roots. An increase in the concentration of IBA to more than 1.0 mg/l leads to the formation of dense callus at the base of the cutting with deterioration of the rooting of microshoots in vitro . The use of an IBA concentration of less than 0.1 mg/l has virtually no effect on the rooting of microshoots and the development of the root system.
С целью уменьшения влияния агрессивного стерилизующего агента на первичный эксплант целесообразно стерилизацию эксплантов проводить с помощью последовательной обработки мыльно-щелочным раствором в течение 10-15 мин. и 0.1-0.2 %-м раствором диацида в течение 1-2 мин. с трехкратным отмыванием стерильной дистиллированной водой.In order to reduce the influence of an aggressive sterilizing agent on the primary explant, it is advisable to sterilize explants using sequential treatment with a soap-alkaline solution for 10-15 minutes. and 0.1-0.2% diacide solution for 1-2 minutes. with washing three times with sterile distilled water.
Обработка мыльно-щелочным раствором менее 10 мин не вело к гибели наружной инфекции, в то время как обработка мыльно-щелочным раствором более 15 мин приводило к травмированию и некрозу первичного экспланта.Treatment with a soap-alkaline solution for less than 10 minutes did not lead to the death of the external infection, while treatment with a soap-alkaline solution for more than 15 minutes led to injury and necrosis of the primary explant.
Применение раствора диацида способствует качественной поверхностной стерилизации эксплантов. Использование раствора диацида в концентрации менее 0.1 % недостаточно для получения стерильной культуры, а концентрация раствора более 0.2 % приводит к некрозу тканей первичного экспланта.The use of diacid solution promotes high-quality surface sterilization of explants. The use of a diacid solution in a concentration of less than 0.1% is not enough to obtain a sterile culture, and a solution concentration of more than 0.2% leads to necrosis of the primary explant tissue.
Обработка оптимальной для нашей задачи концентрацией диацида менее 1 минуты не дает нужного эффекта, а при обработке более 2 минут 0.2 % раствором диацида наблюдается некроз обрабатываемых поверхностей.Treatment with the optimal diacid concentration for our task for less than 1 minute does not give the desired effect, and when treated for more than 2 minutes with a 0.2% diacid solution, necrosis of the treated surfaces is observed.
Экспериментально установлено, что для получения жизнеспособных микрорастений в качестве эксплантов необходимо брать побеги текущего года длиной 0.7-1.5 см с одной-двумя пазушными почками.It has been experimentally established that in order to obtain viable microplants, it is necessary to take shoots of the current year 0.7-1.5 cm long with one or two axillary buds as explants.
Выращивание каждого микропобега в отдельной культуральный сосуд так же способствует достижению заявленного технического результата, поскольку не позволяет корням микрорастений переплетаться и при переносе в почвогрунт они не травмируются. Кроме того выращивание каждого микропобега в отдельном культуральном сосуде предотвращает передачу патогенов между эксплантами.Growing each microshoot in a separate culture vessel also helps achieve the stated technical result, since it does not allow the roots of microplants to intertwine and they are not injured when transferred to the soil. In addition, growing each microshoot in a separate culture vessel prevents the transfer of pathogens between explants.
Изобретение иллюстрируются следующими фигурами: на фиг. показаны этапы микроклонального размножения A. manshuriensis, где : а) развитие пазушных почек; б) рост микропобегов; в) укорененные микрорастения.The invention is illustrated by the following figures: FIG. the stages of microclonal reproduction of A. manshuriensis are shown, where: a) development of axillary buds; b) growth of microshoots; c) rooted microplants.
В табл. 1 приведены составы питательных сред для получения полноценных микрорастений A. manshuriensis. In table Table 1 shows the compositions of nutrient media for obtaining complete microplants of A. manshuriensis.
В табл. 2. приведены показатели, характеризующие жизнеспособность получаемых микрорастений A. manshuriensis.In table 2. indicators characterizing the viability of the resulting A. manshuriensis microplants are given.
Способ иллюстрируется следующими примерами.The method is illustrated by the following examples.
Для проведения способа микроклонального размножения A. manshuriensis предварительно готовим питательную среду для получения микропобегов (стадия культивирования и размножения) и питательную среду для укоренения следующим образом (содержание компонентов приведены в табл. 1):To carry out the method of microclonal propagation of A. manshuriensis , we first prepare a nutrient medium for obtaining microshoots (cultivation and propagation stage) and a nutrient medium for rooting as follows (the contents of components are given in Table 1):
для приготовления 1 литра базовой питательной среды для культивирования и размножения в первый мерный стакан наливают 50 мл маточного раствора, содержащего макросоли по прописи MS: аммоний нитрат, калий дигидрофосфат, сульфат магния, кальций хлорид, тетрагидрат нитрата кальция, калия сульфат и 5 мл маточного раствора, содержащего микросоли по прописи MS: борная кислота, дигидрат сульфата марганца, пентагидрат сульфата меди, дигидрат молибдата натрия, гептагидрат сульфата цинка. Затем добавляют 5 мл маточного раствора: гептагидрат сульфата железа (II), 2-водную динатриевую соль этилендиаминтетрауксусной кислоты, витамины: аскорбиновую кислоту, глицин, тиамин и никотиновую кислоту; фитогормон: 6-БАП (при этом фитогормон берут в разных количествах - 0.5 и 1.2 мг/л), все перемешивают.to prepare 1 liter of basic nutrient medium for cultivation and propagation, pour 50 ml of a mother solution containing macrosalts according to MS prescription into the first measuring cup: ammonium nitrate, potassium dihydrogen phosphate, magnesium sulfate, calcium chloride, calcium nitrate tetrahydrate, potassium sulfate and 5 ml of mother solution , containing microsalts according to the MS prescription: boric acid, manganese sulfate dihydrate, copper sulfate pentahydrate, sodium molybdate dihydrate, zinc sulfate heptahydrate. Then add 5 ml of the mother solution: iron (II) sulfate heptahydrate, 2-water disodium salt of ethylenediaminetetraacetic acid, vitamins: ascorbic acid, glycine, thiamine and nicotinic acid; phytohormone: 6-BAP (in this case, the phytohormone is taken in different quantities - 0.5 and 1.2 mg/l), everything is mixed.
В другом мерном стакане растворяют сахарозу при перемешивании. Подготовленный раствор сахарозы вносят в первый мерный стакан и доводят общий объем до 500 мл дистиллированной водой, рН питательной среды доводят до 4.6-4.8. В третьем мерном стакане смешивают навеску агар-агара с 500 мл дистиллированной воды и нагревают до полного его растворения. Затем все растворы объединяют.Dissolve sucrose in another measuring cup while stirring. The prepared sucrose solution is added to the first measuring cup and the total volume is adjusted to 500 ml with distilled water, the pH of the nutrient medium is adjusted to 4.6-4.8. In a third measuring cup, mix a sample of agar-agar with 500 ml of distilled water and heat until it is completely dissolved. Then all solutions are combined.
Подготовленную питательную среду разливают по пробиркам по 5 мл в каждую, закрывают ватно-марлевыми пробками и стерилуют автоклавированием при 0.8 атм в течении 20 минут. После автоклавирования питательной среде дают остыть и отстояться 1-2 дня.The prepared nutrient medium is poured into test tubes of 5 ml each, closed with cotton-gauze stoppers and sterilized by autoclaving at 0.8 atm for 20 minutes. After autoclaving, the nutrient medium is allowed to cool and settle for 1-2 days.
Для приготовления 1 литра питательной среды для укоренения в первый мерный стакан наливают 25 мл маточного раствора, содержащего макросоли по прописи MS: аммоний нитрат, калий дигидрофосфат, сульфат магния, кальций хлорид, тетрагидрат нитрата кальция, калия сульфат и 2.5 мл маточного раствора, содержащего микросоли по прописи MS: борная кислота, дигидрат сульфата марганца, пентагидрат сульфата меди, дигидрат молибдата натрия, гептагидрат сульфата цинка. Затем добавляют 2.5 мл маточного раствора: гептагидрат сульфата железа (II), 2-водную динатриевую соль этилендиаминтетрауксусной кислоты, витамины: глицин, тиамин и никотиновую кислоту; фитогормон ИМК в количестве 0.5 мг/л, все перемешивают. To prepare 1 liter of nutrient medium for rooting, pour 25 ml of a mother solution containing macrosalts according to the MS prescription into the first measuring cup: ammonium nitrate, potassium dihydrogen phosphate, magnesium sulfate, calcium chloride, calcium nitrate tetrahydrate, potassium sulfate and 2.5 ml of a mother solution containing microsalts according to MS prescription: boric acid, manganese sulfate dihydrate, copper sulfate pentahydrate, sodium molybdate dihydrate, zinc sulfate heptahydrate. Then add 2.5 ml of the mother solution: iron (II) sulfate heptahydrate, 2-water disodium salt of ethylenediaminetetraacetic acid, vitamins: glycine, thiamine and nicotinic acid; phytohormone IMC in an amount of 0.5 mg/l, everything is mixed.
В отдельном мерном стакане смешивают навеску агар-агара с 500 мл дистиллированной воды и нагревают до полного его растворения. In a separate measuring glass, mix a sample of agar-agar with 500 ml of distilled water and heat until it is completely dissolved.
В другом мерном стакане растворяют сахарозу при перемешивании. Подготовленный раствор сахарозы вносят в первый мерный стакан и доводят общий объем до 500 мл дистиллированной водой, рН питательной среды доводят до 4.6-4.8. Затем объединяют все растворы.Dissolve sucrose in another measuring cup while stirring. The prepared sucrose solution is added to the first measuring cup and the total volume is adjusted to 500 ml with distilled water, the pH of the nutrient medium is adjusted to 4.6-4.8. Then combine all the solutions.
Подготовленную питательную среду разливают по пробиркам по 5 мл в каждую, закрывают ватно-марлевыми пробками и стерилизуют автоклавированием при 0.8 атм в течении 20 мин. После автоклавирования питательной среде дают остыть и отстояться 1-2 дня.The prepared nutrient medium is poured into test tubes of 5 ml each, closed with cotton-gauze stoppers and sterilized by autoclaving at 0.8 atm for 20 minutes. After autoclaving, the nutrient medium is allowed to cool and settle for 1-2 days.
Пример 1. Example 1.
Первичный эксплант - побеги текущего года длиной 0.7 см с одной-двумя пазушными почками - последовательно обрабатывают мыльно-щелочным раствором в течение 10 мин. и 0.2% раствором диацида в течение 1 мин с трехкратным отмыванием стерильной дистиллированной водой, после чего эксплант помещают вертикально на питательную среду для культивирования и размножения с содержанием 0.5 мг/л 6-БАП. Первичные экспланты берут в количестве 10 шт в трехкратной повторности. Экспланты культивируют в течение 3 недель при температуре 24±1°С, 16-часовом фотопериоде (16/8), освещении белыми люминесцентными лампами с интенсивностью 4 тыс. лк. и относительной влажности воздуха около 70%. После культивирования полученные микропобеги переносят на свежую питательную среду этого же состава для дальнейшего размножения микропобегов, на которой культивируют в течении трех недель. Затем микропобеги помещают в отдельные культуральные сосуды на питательную среду для укоренения, содержащую 0.5 мг/л ИМК.The primary explant - shoots of the current year 0.7 cm long with one or two axillary buds - is sequentially treated with a soap-alkaline solution for 10 minutes. and 0.2% diacid solution for 1 min with washing three times with sterile distilled water, after which the explant is placed vertically on a nutrient medium for cultivation and propagation containing 0.5 mg/l 6-BAP. Primary explants are taken in the amount of 10 pieces in triplicate. Explants are cultured for 3 weeks at a temperature of 24±1°C, a 16-hour photoperiod (16/8), and illumination with white fluorescent lamps with an intensity of 4 thousand lux. and relative air humidity of about 70%. After cultivation, the resulting microshoots are transferred to a fresh nutrient medium of the same composition for further propagation of microshoots, on which they are cultivated for three weeks. Then the microshoots are placed in separate culture vessels on a nutrient medium for rooting containing 0.5 mg/l IBA.
Результаты культивирования представлены в табл. 2 и на фиг. а и б.The cultivation results are presented in table. 2 and fig. a and b.
Пример 2.Example 2.
Подготовленную питательную среду разливают по пробиркам по 5 мл в каждую, закрывают ватно-марлевыми пробками и стерилизуют автоклавированием при 0.8 атм в течении 20 мин. После автоклавирования питательной среде дают остыть и отстояться 1-2 дня. The prepared nutrient medium is poured into test tubes of 5 ml each, closed with cotton-gauze stoppers and sterilized by autoclaving at 0.8 atm for 20 minutes. After autoclaving, the nutrient medium is allowed to cool and settle for 1-2 days.
Перед посадкой проводят стерилизацию первичных эксплантов - побегов текущего года длиной 1.5 см с одной-двумя пазушными почками - последовательной обработкой мыльно-щелочным раствором в течение 15 мин и 0.1% раствором диацида в течение 2 мин с трехкратным отмыванием стерильной дистиллированной водой, после чего эксплант помещают вертикально на питательную среду для культивирования и размножения с содержанием 1.2 мг/л 6-БАП. Первичные экспланты берут в количестве 10 шт в трехкратной повторности. Экспланты культивируют в течение 3 недель при температуре 24±1°С, 16-часовом фотопериоде (16/8), освещении белыми люминесцентными лампами с интенсивностью 4 тыс. лк. и относительной влажности воздуха около 70%. После культивитрования полученные микропобеги переносят на свежую питательную среду этого же состава для дальнейшего размножения микропобегов, на которой культивируют в течении трех недель. Затем микропобеги помещают в отдельные культуральные сосуды на питательную среду для укоренения, содержащую 0.5 мг/л ИМК.Before planting, sterilization of primary explants - shoots of the current year 1.5 cm long with one or two axillary buds - is carried out by sequential treatment with a soap-alkaline solution for 15 minutes and 0.1% diacid solution for 2 minutes with three times washing with sterile distilled water, after which the explant is placed vertically onto a nutrient medium for cultivation and propagation containing 1.2 mg/l 6-BAP. Primary explants are taken in the amount of 10 pieces in triplicate. Explants are cultured for 3 weeks at a temperature of 24±1°C, a 16-hour photoperiod (16/8), and illumination with white fluorescent lamps with an intensity of 4 thousand lux. and relative air humidity of about 70%. After cultivation, the resulting microshoots are transferred to a fresh nutrient medium of the same composition for further propagation of microshoots, on which they are cultivated for three weeks. Then the microshoots are placed in separate culture vessels on a nutrient medium for rooting containing 0.5 mg/l IBA.
Результаты культивирования представлены в табл. 2 и на фиг. а и б.The cultivation results are presented in table. 2 and fig. a and b.
Пример 3.Example 3.
Подготовленную питательную среду для укоренения разливают в культуральные сосуды, в частности, используя для этого пробирки, в каждую из которых наливают по 5 мл закрывают ватно-марлевыми пробками и стерилизуют автоклавированием при 0.8 атм в течении 20 мин. После автоклавирования питательной среде дают остыть и отстояться 1-2 дня. The prepared nutrient medium for rooting is poured into culture vessels, in particular, using test tubes, into each of which 5 ml is poured, closed with cotton-gauze stoppers and sterilized by autoclaving at 0.8 atm for 20 minutes. After autoclaving, the nutrient medium is allowed to cool and settle for 1-2 days.
Перед посадкой для укоренения эксплант помещают вертикально на питательную среду для укоренения, содержащую 0.5 мг/л ИМК.Before planting for rooting, the explant is placed vertically on a nutrient medium for rooting containing 0.5 mg/l IBA.
Экспланты берут в количестве 10 шт в трехкратной повторности, культивируют при температуре 24±1°С, 16-часовом фотопериоде (16/8), освещении белыми люминесцентными лампами с интенсивностью 4 тыс. лк. и относительной влажности воздуха около 70%. Образование и рост корней происходит в течении 4 недель. К этому времени микрорастения достигают 23.85±2.73 мм высоты и имеют 3.0±0.41 шт. листовых узлов и 8.33±2.19 шт. корней при длине корней 23.33 мм. Explants are taken in quantities of 10 in triplicate, cultivated at a temperature of 24±1°C, a 16-hour photoperiod (16/8), and illuminated with white fluorescent lamps with an intensity of 4 thousand lux. and relative air humidity of about 70%. Root formation and growth occurs within 4 weeks. By this time, microplants reach 23.85±2.73 mm in height and have 3.0±0.41 pieces. leaf nodes and 8.33±2.19 pcs. roots with a root length of 23.33 mm.
После этого полученные полноценные микрорастения с хорошо развитой корневой системой высаживают в подготовленный почвогрунт для возможного дальнейшего использования при реинтродукции и интродукции, или использования полученных растений как фармакологического сырья.After this, the resulting full-fledged microplants with a well-developed root system are planted in prepared soil for possible further use during reintroduction and introduction, or the use of the resulting plants as pharmacological raw materials.
Вид укорененных микрорастений представлен на фиг. в.The view of rooted microplants is shown in Fig. V.
Как видно из результатов, представленных в таблице 2, описываемый способ обеспечивает достижение заявленного технического результата и полученные жизнеспособные микрорастения A. manshuriensis могут быть использованы для реинтродукции и интродукции при сокращении периода субкультивирования микрорастений и для использования полученных растений как фармакологического сырья. As can be seen from the results presented in Table 2, the described method achieves the stated technical result and the resulting viable microplants of A. manshuriensis can be used for reintroduction and introduction while reducing the period of subcultivation of microplants and for using the resulting plants as pharmacological raw materials.
ЛитератураLiterature
1. Zhou J., Xie G., Yan X. Encyclopedia of traditional chinese medicines: molecular structures, pharmacological activities, natural sources and applications. V. I - 557 p.; V. II - 525 p.; V. III - 669 p.; V. IV - 636 p.; V. V - 601p.; V. VI - 730p. Berlin - Heidelberg: Springer-Verlag. 2011.1. Zhou J., Xie G., Yan X. Encyclopedia of traditional Chinese medicines: molecular structures, pharmacological activities, natural sources and applications. V. I - 557 p.; V. II - 525 p.; V. III - 669 p.; V. IV - 636 p.; V.V - 601p.; V. VI - 730p. Berlin - Heidelberg: Springer-Verlag. 2011.
2. Растительные ресурсы СССР. Т. 1 Цветковые растения, их химический состав, использование // отв. ред. А.А. Федоров. Л.: Наука, 1984. 464 с.2. Plant resources of the USSR. T. 1 Flowering plants, their chemical composition, use // resp. ed. A.A. Fedorov. L.: Nauka, 1984. 464 p.
3. Чхве Тхэсоп. Лекарственные растения. М.: Медицина, 1987. 607 с.3. Choi Taesop. Medicinal plants. M.: Medicine, 1987. 607 p.
4. Teng L., Shaw D., Barnes J. Traditional Chinese herbal medicine // Pharmaceutical J. 2006. V. 276. P. 361-363.4. Teng L., Shaw D., Barnes J. Traditional Chinese herbal medicine // Pharmaceutical J. 2006. V. 276. P. 361-363.
5. Chiang P.-C., Chao T.-T., Wei Y.-K. Pharmacological studies on commercial «Mo-tung» - a Chinese drug from Aristolochia masnhuriensis Komarov // Acta pharmaceutica sinica. 1956. V. 4. N. 3. P. 187-196.5. Chiang P.-C., Chao T.-T., Wei Y.-K. Pharmacological studies on commercial “Mo-tung” - a Chinese drug from Aristolochia masnhuriensis Komarov // Acta pharmaceutica sinica. 1956. V. 4. N. 3. P. 187-196.
6. Доан Т.Т. Особенности клонального микроразмножения редких и лекарственных растений (Euonymus nana Bieb., Dioscorea nipponica Makino., Dioscorea caucasia Lipsky. и Aristolochia manshuriensis Kom.): дис. - Рос. гос. аграр. ун-т, 2013.6. Doan T.T. Features of clonal micropropagation of rare and medicinal plants (Euonymus nana Bieb., Dioscorea nipponica Makino., Dioscorea caucasia Lipsky. and Aristolochia manshuriensis Kom.): dis. - Ross. state agrarian univ., 2013.
7. Murashige T, and Skoog F 1962 A revised medium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultures Physiologia Plantarum 15 pp 473-497.7. Murashige T, and Skoog F 1962 A revised medium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultures Physiologia Plantarum 15 pp 473-497.
8. Demidenko E N, Berseneva S A Features of Microclonal Reproduction and Organogenesis of the Far Eastern Species Aristolochia Manshuriensis Kom. as a Biological Resource, IOP Conf. Series: Earth and Environmental Science 670 (2021) 012014.8. Demidenko E N, Berseneva S A Features of Microclonal Reproduction and Organogenesis of the Far Eastern Species Aristolochia Manshuriensis Kom. as a Biological Resource, IOP Conf. Series: Earth and Environmental Science 670 (2021) 012014.
9. Lloyd G., McCown B. Commercially feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot tip culture // Comb. Proc. Intl. Plant Prop. Soc. - 1980. 30. P. 421-427.9. Lloyd G., McCown B. Commercially feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot tip culture // Comb. Proc. Intl. Plant Prop. Soc. - 1980. 30. P. 421-427.
10. п. РФ № 2662682, МПК A01H 4/00; A01H 5/00, опубл. 21.06.2018.10. clause of the Russian Federation No. 2662682, IPC A01H 4/00; A01H 5/00, publ. 06/21/2018.
Claims (1)
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2807740C1 true RU2807740C1 (en) | 2023-11-21 |
Family
ID=
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2662682C2 (en) * | 2016-12-21 | 2018-07-26 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Главный ботанический сад им. Н.В. Цицина Российской академии наук (ГБС РАН) | Method for micropropagation of manchurian birthwort (aristolochia manshuriensis kom.) |
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2662682C2 (en) * | 2016-12-21 | 2018-07-26 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Главный ботанический сад им. Н.В. Цицина Российской академии наук (ГБС РАН) | Method for micropropagation of manchurian birthwort (aristolochia manshuriensis kom.) |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
DEMIDENKO E N, Features of Microclonal Reproduction and Organogenesis of the Far Eastern Species Aristolochia Manshuriensis Kom. as a Biological Resource, IOP Conf. Series: Earth and Environmental Science 670 (2021) 012014. ДОАН Т.Т., Особенности клонального микроразмножения редких и лекарственных растений (Euonymus nana Bieb., Dioscorea nipponica Makino., Dioscorea caucasia Lipsky. и Aristolochia manshuriensis Kom.): дис. - Рос. гос. аграр. ун-т, 2013. MURASHIGE T, and Skoog F 1962 A revised medium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultures Physiologia Plantarum 15 pp. 473-497. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Mahendran et al. | Direct somatic embryogenesis of Malaxis densiflora (A. Rich.) Kuntze | |
Khan et al. | In vitro regeneration protocol of Rauvolfia serpentina L | |
Chakraborty et al. | An efficient protocol for in vitro regeneration of Podophyllum hexandrum, a critically endangered medicinal plant | |
Vilcherrez-Atoche et al. | Micropropagation of Cattleya maxima J. Lindley in culture medium with banana flour and coconut water | |
KUSUMOTO et al. | Effect of organic matter on the growth of Cymbidium protocorms cultured in vitro | |
RU2807740C1 (en) | Method of microclonal propagation of manchurian kirkazona (aristolochia manshuriensis kom.) | |
Hatano et al. | Somatic embryogenesis and plant regeneration from the anther of Aconitum carmichaeli Debx | |
Tevfik et al. | Clonal micropropagation of Thymus vulgaris L. | |
Xu et al. | Efficient in vitro plant regeneration of Pinellia ternata (Thunb) Breit | |
RU2751913C1 (en) | Nutrient medium for microclonal reproduction of continental aralia continentalis kitag | |
RU2815450C1 (en) | Method for clonal micropropagation of coast redwoods (sequoia sempervirens linnaeus) | |
Azad et al. | In vitro regeneration and ex vitro establishment of an antidiabetic plant-Gynura Procumbens (Lour.) Merr | |
CN110604053A (en) | In-vitro culture rapid propagation method of holly | |
Bimal et al. | Plant regeneration from nodal explants of Adhatoda vasica Nees | |
RU2788851C1 (en) | Method for microclonal reproduction of potatoes in culture in vitro | |
Tiwari et al. | Efficient in vitro establishment and multiplication of Picrorhiza kurroa Royle ex Benth through in vitro raised seedlings | |
RU2735622C2 (en) | Method of reducing vitrification of walnut microplants in culture in vitro | |
KR102508620B1 (en) | Method for mass production of Salvia mitiorrhiza Bunge using leaf segment culture | |
CN116019110B (en) | Method for promoting chrysanthemum cutting rooting | |
Ram | MICRO-PROPAGATION, PLANT PIRIFORMOSPORA INDICA OF DIPCA | |
RU2718254C1 (en) | Method for cultivation of callus culture of common wormwood (artemisia vulgaris l.) | |
Patel et al. | Standardization of Protocol for in vitro Micropropagation of Phyllanthus niruri: An Important Medicinal Plant | |
RU2590586C1 (en) | METHOD OF PRODUCING TYLOSIS CULTURE OF POISON PARSLEY (Conium maculatum L) | |
KR20110010871A (en) | Mass propagation method of adventitious root phyllanthus urinaria | |
Subbaiya et al. | In vitro rapid multiplication of Solanum trilobatum L. From shoot tip explants |