RU2800917C1 - Method of obtaining a knockout of the cd209 gene in bos taurus embryos by transducing zygotes with adeno-associated viruses encoding sacas9 and the corresponding guide rna - Google Patents
Method of obtaining a knockout of the cd209 gene in bos taurus embryos by transducing zygotes with adeno-associated viruses encoding sacas9 and the corresponding guide rna Download PDFInfo
- Publication number
- RU2800917C1 RU2800917C1 RU2022131269A RU2022131269A RU2800917C1 RU 2800917 C1 RU2800917 C1 RU 2800917C1 RU 2022131269 A RU2022131269 A RU 2022131269A RU 2022131269 A RU2022131269 A RU 2022131269A RU 2800917 C1 RU2800917 C1 RU 2800917C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- gene
- embryos
- adeno
- bos taurus
- vol
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Область техникиTechnical field
Изобретение относится к области молекулярной биотехнологии и касается метода редактирования генома, в первую очередь, получения нокаута выбранных генов, в данном случае CD209. Изобретение может быть использовано для получения животных с нокаутом гена CD209, приводящим к устойчивости животных к некоторым патогенам.The invention relates to the field of molecular biotechnology and concerns a method for editing the genome, first of all, obtaining a knockout of selected genes, in this case CD209. The invention can be used to produce animals with a knockout of the CD209 gene, leading to animal resistance to certain pathogens.
Изобретение создано при финансовой поддержке Министерства Науки и Высшего образования Российской Федерации в рамках Соглашения № 075-15-2019-1661 от 31.10.2019 на базе Центра высокоточного редактирования и генетических технологий для биомедицины (ЦВРГТБ) ИБГ РАН.The invention was created with the financial support of the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation under Agreement No. 075-15-2019-1661 dated October 31, 2019 on the basis of the Center for High-Precision Editing and Genetic Technologies for Biomedicine (CVRGTB) of the IBG RAS.
Уровень техникиState of the art
Редактирование и модификация генома – это современные подходы, которые позволяют получать животных с требуемыми характеристиками: составом молока [1, 2], объемом мышц [3, 4] или устойчивостью к инфекционным заболеваниям [5, 6]. На сегодняшний день получены генетически модифицированные представители различных видов, в том числе грызуны [7, 8], приматы [9, 10] и крупный рогатый скот [6, 11, 12]. Основной способ генетической модификации и редактирования генома животных – внесение модификаций в геном эмбрионов на ранних стадиях развития. Для достижения этой цели используют различные методики: трансплантацию генетически модифицированных in vitro ЭСК в полость бластоцисты с последующим формированием мозаичного зародыша [13, 14], или доставку реагентов для редактирования генов в развивающиеся эмбрионы путем инъекции РНК или ДНК в зиготу или ооцит [15-20] или электропорации зиготы [21-23]. Основным недостатком этих методов является то, что они требуют дорогостоящего оборудования и высокой квалификации операторов.Genome editing and modification are modern approaches that make it possible to obtain animals with the required characteristics: milk composition [1, 2], muscle volume [3, 4], or resistance to infectious diseases [5, 6]. To date, genetically modified representatives of various species have been obtained, including rodents [7, 8], primates [9, 10], and cattle [6, 11, 12]. The main method of genetic modification and editing of the animal genome is the introduction of modifications into the genome of embryos at early stages of development. To achieve this goal, various methods are used: transplantation of in vitro genetically modified ESCs into the blastocyst cavity with subsequent formation of a mosaic embryo [13, 14], or delivery of reagents for gene editing to developing embryos by injecting RNA or DNA into the zygote or oocyte [15-20 ] or electroporation of the zygote [21-23]. The main disadvantage of these methods is that they require expensive equipment and highly skilled operators.
Генетическая модификация клеток (в том числе эмбрионов) путем трансдукции - простой метод: требуется только базовое лабораторное оборудование (CO2-инкубаторы, микроскопы); нет необходимости делать микроинъекции; вирусы, используемые для трансдукции, могут производиться в другом месте и легко транспортируются. Поэтому производство трансгенных эмбрионов может осуществляться вблизи ферм (где лаборатории зачастую оснащены лишь базовым оборудованием). Таким образом, такой подход позволит выполнить все необходимые процедуры (извлечение эмбрионов, генную модификацию и перенос эмбрионов животному) в одном месте, снизив риск повреждения эмбрионов при транспортировке.Genetic modification of cells (including embryos) by transduction is a simple method: only basic laboratory equipment is required (CO2 incubators, microscopes); no need for microinjections; the viruses used for transduction can be produced elsewhere and are easily transported. Therefore, the production of transgenic embryos can be carried out near farms (where laboratories are often equipped with only basic equipment). Thus, this approach will allow to perform all the necessary procedures (embryo extraction, genetic modification and transfer of embryos to an animal) in one place, reducing the risk of damage to the embryos during transportation.
Для доставки генетического материала в зиготу можно использовать различные типы вирусов. Для этих процедур используют ретровирусы [24], особенно лентивирусы [25], аденовирусы [26] и аденоассоциированные вирусы [27].Various types of viruses can be used to deliver genetic material to the zygote. Retroviruses [24], especially lentiviruses [25], adenoviruses [26], and adeno-associated viruses [27] are used for these procedures.
Аденоассоциированные вирусы (ААВ) широко используются в области получения генетически модифицированных клеток и организмов. Было показано, что ААВ служат эффективным инструментом для получения трансгенных мезенхимальных стволовых клеток свиньи [28], сперматозоидов и эмбрионов [29], нейронов взрослых мышей [30], мышиных [26, 27] и бычьих эмбрионов [27].Adeno-associated viruses (AAV) are widely used in the field of obtaining genetically modified cells and organisms. It has been shown that AAVs serve as an effective tool for obtaining transgenic porcine mesenchymal stem cells [28], spermatozoa and embryos [29], adult mouse neurons [30], mouse [26, 27], and bovine embryos [27].
Аденоассоциированные вирусы имеют значительно меньшие вирионы по сравнению с ретровирусами или аденовирусами. Их небольшой (около 20 нм) размер [31, 32] облегчает проникновение вириона ААВ в зародыш.Adeno-associated viruses have significantly smaller virions compared to retroviruses or adenoviruses. Their small size (about 20 nm) [31, 32] facilitates the penetration of the AAV virion into the embryo.
ААВ традиционно считаются безопасной вирусной векторной платформой из-за того, что вирус-помощник необходим для возникновения инфекции в естественных условиях. Аденоассоциированный вирус может инфицировать клетку, но для цикла его размножения требуется вирус-помощник, такой как аденовирус или вирус простого герпеса. Все серотипы рекомбинантных векторов ААВ, созданных в отсутствие хелперных вирусов, рассматриваются как агенты группы риска 1 (агенты, не связанные с заболеванием у здоровых взрослых людей), если трансген не кодирует для токсического или потенциально туморогенного гена. Следовательно, многие рекомбинантные векторы ААВ можно использовать без дополнительных опасений по поводу биобезопасности [33].AAVs have traditionally been considered a safe viral vector platform due to the fact that a helper virus is required for infection to occur in vivo. An adeno-associated virus can infect a cell, but it requires a helper virus, such as adenovirus or herpes simplex virus, for its cycle of reproduction. All serotypes of recombinant AAV vectors generated in the absence of helper viruses are considered risk group 1 agents (agents not associated with disease in healthy adults) unless the transgene encodes for a toxic or potentially tumorigenic gene. Therefore, many recombinant AAV vectors can be used without additional biosafety concerns [33].
В рамках данного изобретения трансдукция бычьих эмбрионов с помощью ААВ была выбрана в качестве потенциального подхода к редактированию генома. Пять различных серотипов ААВ использовали для оценки их способности доставлять генетический материал в эмбрионы крупного рогатого скота.Within the scope of this invention, transduction of bovine embryos with AAV has been selected as a potential approach to genome editing. Five different AAV serotypes were used to evaluate their ability to deliver genetic material to bovine embryos.
У млекопитающих CD209 (также известный как DC-SIGN; специфичная для дендритных клеток молекула межклеточной адгезии) является одним из ключевых белков, участвующих во многих иммунологических событиях. CD209 представляет собой лектиновый рецептор С-типа, присутствующий на поверхности макрофагов и дендритных клеток [34]. Являясь частью первой линии врожденного иммунитета, CD209 довольно не специфически распознает широкий круг возбудителей: вирусы, бактерии, грибы, протисты. Во время коэволюции в системах хозяин/патоген некоторые патогены научились использовать CD209 для дальнейшего распространения (например, CD209+ DC используются для переноса вирионов ВИЧ из места контакта на слизистой оболочке в кровоток и лимфатические узлы) и, таким образом, поражать различные типы клеток. Влияние CD209 на разные стадии инфекционного процесса показано для ВИЧ [35], вируса гепатита С [36], вируса Эбола, вируса Денге, коронавирусов, микобактерий туберкулеза [37, 38], лейшманий [39] и другими инфекционными агентами (обзор в [40]).In mammals, CD209 (also known as DC-SIGN; a dendritic cell-specific cell-cell adhesion molecule) is one of the key proteins involved in many immunological events. CD209 is a C-type lectin receptor present on the surface of macrophages and dendritic cells [34]. Being part of the first line of innate immunity, CD209 recognizes a wide range of pathogens rather non-specifically: viruses, bacteria, fungi, protists. During co-evolution in host/pathogen systems, some pathogens have learned to use CD209 to spread further (for example, CD209+ DCs are used to transport HIV virions from a mucosal contact site to the bloodstream and lymph nodes) and thus infect different cell types. The effect of CD209 on different stages of the infectious process has been shown for HIV [35], hepatitis C virus [36], Ebola virus, Dengue virus, coronaviruses, Mycobacterium tuberculosis [37, 38], Leishmania [39] and other infectious agents (reviewed in [40 ]).
Один из возможных механизмов, связанных с CD209, защиты патогенов от иммунной системы был выяснен для вирусов ВИЧ и гепатита С. Было показано, что даже если обычно после связывания с CD209 патогены интернализуются в протеасомы для будущей презентации антигена, при определенных обстоятельствах (таких как наличие дополнительных рецепторов) после связывания CD209 ВГС и ВИЧ частицы могут интернализоваться в специализированные, нелизосомальные, эндосомы с низким рН [36, 41, 42]. Недавно было продемонстрировано, что мыши с нокаутом CD209 менее восприимчивы к инфекции Toxoplasma gondii: инвазия и распространение паразитов происходили медленнее, а смертность снизилась [43].One of the possible mechanisms associated with CD209 to protect pathogens from the immune system has been elucidated for HIV and hepatitis C viruses. It has been shown that even though normally, after binding to CD209, pathogens internalize into proteasomes for future antigen presentation, under certain circumstances (such as the presence additional receptors) after CD209 binding to HCV and HIV, the particles can be internalized into specialized, nonlysosomal, low pH endosomes [36, 41, 42]. It has recently been demonstrated that CD209 knockout mice are less susceptible to Toxoplasma gondii infection: parasite invasion and spread were slower and mortality decreased [43].
Недавно было показано, что некоторые изоформы CD209 могут влиять на развитие резистентности коров к заражению паратуберкулезом [44-46]. Более того, сообщалось, что сверхэкспрессия CD209 в бычьих макрофагах in vitro приводит к усилению аденовирусной инфекции [47]. Таким образом, получение нокаута CD209 актуально для лучшего понимания механизмов инфекции при паратуберкулезе и аденовирусах. Получение такого нокаута потенциально может позволить животным стать устойчивыми к различным инфекциям.It has recently been shown that some isoforms of CD209 can influence the development of resistance of cows to infection with paratuberculosis [44-46]. Moreover, overexpression of CD209 in bovine macrophages in vitro has been reported to lead to increased adenovirus infection [47]. Thus, obtaining a CD209 knockout is relevant for a better understanding of the mechanisms of infection in paratuberculosis and adenoviruses. Obtaining such a knockout could potentially allow animals to become resistant to various infections.
Краткое описание изобретенияBrief description of the invention
Задачей заявляемого изобретения является разработка метода получения эмбрионов Bos taurus с нокаутом гена CD209 и получение соответствующих эмбрионов.The objective of the claimed invention is to develop a method for obtaining Bos taurus embryos with a knockout of the CD209 gene and obtaining the corresponding embryos.
Задача решается тем, что с использованием ААВ, кодирующих компоненты системы CRISPR/Cas9, разработан соответствующий метод и получены эмбрионы Bos taurus с нокаутом гена CD209, для чего:The problem is solved by using AAVs encoding components of the CRISPR/Cas9 system, an appropriate method has been developed and Bos taurus embryos with a knockout of the CD209 gene have been obtained, for which:
1. На основе вектора px601 (SEQ ID NO: 1) была получена плазмидная конструкция px601+CD209-sg, содержащая гидовую РНК (SEQ ID NO: 2) против соответствующего участка (3 экзона гена Bos taurus) гена CD209, под контролем U6 промотора и ОРС гена saCas9 под контролем CAG промотора.1. Based on the px601 vector (SEQ ID NO: 1), a px601+CD209-sg plasmid construct was obtained containing a guide RNA (SEQ ID NO: 2) against the corresponding region (exon 3 of the Bos taurus gene) of the CD209 gene, under the control of the U6 promoter and ORF of the saCas9 gene under the control of the CAG promoter.
2. Был разработан способ получения эмбрионов с нуль-аллелем гена CD209, характеризующийся следующими стадиями:2. A method was developed for obtaining embryos with a null allele of the CD209 gene, characterized by the following stages:
а) Сборка в клетках упаковочной линии HEK293T стока ААВ, содержащего ОРС saCas9 и гидовую РНК;a) Assembly in cells of the HEK293T packaging line of AAV stock containing saCas9 ORF and guide RNA;
б) In vitro оплодотворение яйцеклеток Bos taurus сперматозоидами Bos taurus;b) In vitro fertilization of Bos taurus eggs with Bos taurus spermatozoa;
в) Инфекция эмбрионов ААВ;c) AAV embryo infection;
г) Проведение анализа наличия сдвига рамки считывания в гене CD209 в бластоцистах (г), путем амплификации целевого участка гена CD209 с праймерами cd209-check-f (SEQ ID NO: 3) и cd209-check-r (SEQ ID NO: 4) с последующим секвенированием фрагмента с использованием праймера cd209-check-r (SEQ ID NO: 4).d) Analysis of the presence of a frameshift in the CD209 gene in blastocysts (d) by amplifying the target region of the CD209 gene with primers cd209-check-f (SEQ ID NO: 3) and cd209-check-r (SEQ ID NO: 4) followed by sequencing of the fragment using primer cd209-check-r (SEQ ID NO: 4).
Технический результат изобретения: разработан способ генетического редактирования эмбрионов Bos taurus и получены эмбрионы с нуль-аллелем гена CD209.The technical result of the invention: a method for genetic editing of Bos taurus embryos was developed and embryos with a null allele of the CD209 gene were obtained.
Краткое описание чертежейBrief description of the drawings
На Фиг. 1 представлена схема взаимного расположения первых экзонов гена CD209, гидовой РНК и праймеров для анализа генотипа.On FIG. 1 shows a diagram of the mutual arrangement of the first exons of the CD209 gene, guide RNA, and primers for genotype analysis.
На Фиг. 2 представлены хроматограммы, полученные в результате секвенирования мозаичных эмбрионов: двоящиеся сиквенсы, соответствующий мозаичным эмбрионам в части клеток которых произошло редактирование генома.On FIG. Figure 2 shows chromatograms obtained as a result of sequencing of mosaic embryos: duplicated sequences corresponding to mosaic embryos in some cells of which genome editing has occurred.
Осуществление изобретенияImplementation of the invention
Способ осуществляется следующим образом:The method is carried out as follows:
1. Подбор гидовой РНК для внесения разреза в ген bCD209 с целью внесения сдвина рамки считывания осуществлялся с использованием онлайн инструмента CRISPOR TEFOR (http://crispor.tefor.net/) с учетом последующего использования нуклеазы SаCas9. Была подобрана гидовая РНК (CD209-sg, последовавательности SEQ ID NO: 1) к третьему экзону гена bCD209. В результате NHEJ-репарации после их разрезания должен образовываться сдвиг рамки считывания в первом экзоне, приводящий к изменению аминокислотной последовательности белка и преждевременному образованию стоп-кодона (Фиг. 1). Выбранную сгРНК мы заклонировали в плазмидный вектор px601, предназначенный для одновременной экспрессии белка saCas9 и сгРНК. Последовательность гидовой РНК была синтезирована с использованием двух олигонуклеотидов SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 6.1. Selection of guide RNA for making a cut in the bCD209 gene in order to introduce a reading frame shift was carried out using the CRISPOR TEFOR online tool (http://crispor.tefor.net/), taking into account the subsequent use of the SaCas9 nuclease. A guide RNA (CD209-sg, SEQ ID NO: 1) was matched to the third exon of the bCD209 gene. As a result of NHEJ repair after their cutting, a frameshift in the first exon should be formed, leading to a change in the amino acid sequence of the protein and premature formation of a stop codon (Fig. 1). We cloned the selected sgRNA into the px601 plasmid vector designed for simultaneous expression of the saCas9 protein and sgRNA. The guide RNA sequence was synthesized using two oligonucleotides SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 6.
Разрезание вектора проводили с использованием рестриктазы BbsI-HF (New England Biolabs), дефосфорилирование вектора с помощью фермента FastAP (Thermofisher Scientific), затем очистка в агарозном геле и последующее выделение с помощью набора Monarch DNA Gel Extraction Kit. Vector digestion was performed using BbsI-HF restriction enzyme (New England Biolabs), vector dephosphorylation with FastAP enzyme (Thermofisher Scientific), followed by agarose gel purification and subsequent isolation with the Monarch DNA Gel Extraction Kit.
Олигонуклеотиды фосфорилировались с использованием фермента PNK kinase (Thermofisher Scientific), отжигались друг с другом и лигировались с приготовленным ранее вектором и использованием фермента T4 DNA ligase (Thermofisher Scientific). Лигазная смесь трансформировалась в компетентные клетки штамма XL1blue (Евроген). Скрининг колоний осуществлялся с использованием пцр-наборов компании Изоген и праймеров U6-forv (SEQ ID NO: 7) и реверсного праймера, использовавшегося для клонирования. По две колонии, содержащие сгРНК, наращивались в ночной культуре и выделялись с помощью набора Monarch Plasmid Miniprep Kit. Анализ полученных плазмид проводили методом секвенирования по Сэнгеру. Сиквенс полученных плазмид осуществлялся с использованием праймера U6-forv (SEQ ID NO: 7) компанией Евроген. Анализ сиквенсов проводился с использованием программного обеспечения Chromas.The oligonucleotides were phosphorylated using the PNK kinase enzyme (Thermofisher Scientific), annealed to each other and ligated to the previously prepared vector using the T4 DNA ligase enzyme (Thermofisher Scientific). The ligation mixture was transformed into competent cells of the XL1blue strain (Evrogen). Colony screening was performed using Isogen PCR kits and primers U6-forv (SEQ ID NO: 7) and the reverse primer used for cloning. Two colonies each containing sgRNA were grown in overnight culture and isolated using the Monarch Plasmid Miniprep Kit. The obtained plasmids were analyzed by Sanger sequencing. The sequencing of the obtained plasmids was carried out using primer U6-forv (SEQ ID NO: 7) by Eurogen. Sequence analysis was performed using Chromas software.
2. Протестированную конструкцию, выделенную набором Maxiprep Plasmid Purification Kit (Qiagen) вместе с плазмидами Rep2-Cap и pHelper (обе – Agilent) использовали для трансфекции клеток HEK293. Рекомбинантные ААВ получали как описано в [49]. Прикрепленные клетки HEK293Т поддерживали в среде DMEM с высоким содержанием глюкозы (Gibco, США), с добавлением 10% об./об. фетальной бычьей сыворотки (FBS, Biosera Europe, Франция) и пенициллина со стрептомицином. Трансфекцию проводили линейным ПЭИ (полиэтиленимин, масс. 25000) (Polysciences, США) Через 72 ч после трансфекции клетки лизировали 0,5% об./об. Triton X-100, 5 мкг/мл РНКазы А и 10 мкг/мл ДНКазы А (Calbiochem, США) в течение 1 ч при 37°С с встряхиванием. Затем осветленную и концентрированную вирусную суспензию загружали в модифицированную версию йодиксанола (Sigma Aldrich, США) со ступенчатым градиентом плотности (60%, 40% и 25%) [50] и подвергали ультрацентрифугированию в течение 1 ч при 350 000 g и 18°С. Фракцию, содержащую ААВ, подвергали диализу с использованием мембраны 100 кДа против буфера для хранения (PBS, 350 мМ NaCl, 0,1% Pluronic F-68 (Gibco)), а очищенную суспензию дополнительно концентрировали и стерилизовали [51]. Для определения титра использовали метод, основанный на использовании праймеров и флуоресцентного зонда, нацеленного на последовательности ITR (Inverted terminal Repeats) [52]. Отсутствие белковых примесей во время приготовления подтверждали окрашиванием серебром (ThermoFisher, США). 2. The tested construct isolated with the Maxiprep Plasmid Purification Kit (Qiagen) along with Rep2-Cap and pHelper plasmids (both Agilent) was used to transfect HEK293 cells. Recombinant AAVs were obtained as described in [49]. Adherent HEK293T cells were maintained in high glucose DMEM (Gibco, USA) supplemented with 10% v/v. fetal bovine serum (FBS, Biosera Europe, France) and penicillin with streptomycin. Transfection was performed with linear PEI (polyethyleneimine, wt. 25,000) (Polysciences, USA). 72 h after transfection, cells were lysed with 0.5% v/v. Triton X-100, 5 μg/ml RNase A and 10 μg/ml DNase A (Calbiochem, USA) for 1 h at 37°C with shaking. Then, the clarified and concentrated viral suspension was loaded into a modified version of iodixanol (Sigma Aldrich, USA) with a stepwise density gradient (60%, 40%, and 25%) [50] and subjected to ultracentrifugation for 1 h at 350,000 g and 18°C. The fraction containing AAV was dialyzed using a 100 kDa membrane against storage buffer (PBS, 350 mM NaCl, 0.1% Pluronic F-68 (Gibco)), and the purified suspension was further concentrated and sterilized [51]. The titer was determined using a method based on the use of primers and a fluorescent probe targeting ITR (Inverted terminal Repeats) sequences [52]. The absence of protein impurities during preparation was confirmed by silver staining (ThermoFisher, USA).
3. Получение яйцеклеток 3. Egg retrieval
Ооциты были выделены из яичников, полученных на местных скотобойнях. Полученные после забоя и разделки туши яичники транспортировали в лабораторию в течение 3-4 часов при температуре 38.5оС. Выделение ооцит-кумулюсных комплексов (содержащих ооциты и вспомогательные клетки кумулюса) из яичников проводили путём аспирации в результате пунктирования крупных фолликулов. Аспирацию производили с помощью предварительно нагретой до температуры 38.5оС среды G-MOPS (Vitrolife, Швеция) посредством инсулиновых шприцов (объёмом 1 мл) с иглой 30G.Oocytes were isolated from ovaries obtained from local slaughterhouses. The ovaries obtained after slaughter and butchering the carcass were transported to the laboratory within 3-4 hours at a temperature of 38.5 ° C. The isolation of oocyte-cumulus complexes (containing oocytes and auxiliary cumulus cells) from the ovaries was performed by aspiration as a result of puncturing large follicles. Aspiration was performed using G-MOPS medium (Vitrolife, Sweden) preheated to a temperature of 38.5 ° C using insulin syringes (1 ml) with a 30G needle.
Полученные ооциты затем были подвергнуты процедуре созревания in vitro (IVM - in vitro maturation) для достижения стадии метафазы второго деления мейоза, что необходимо для возможности оплодотворения ооцитов. Для этого ооцит-кумулюсные комплексы помещали в среду BO-IVM medium (IVF Bioscience, UK), покрытую слоем парафинового масла (Sage, USA) для предотвращения испарения и изменения осмолярности среды, и культивировали при температуре 38.5оС в увлажненной температуре в атмосфере 6.5% CO2 и 5%O2 в пластиковых чашках Петри диаметром 60 мм.The resulting oocytes were then subjected to in vitro maturation (IVM - in vitro maturation) to reach the metaphase stage of the second division of meiosis, which is necessary for the possibility of fertilization of oocytes. To do this, oocyte-cumulus complexes were placed in a BO-IVM medium (IVF Bioscience, UK) coated with a layer of paraffin oil (Sage, USA) to prevent evaporation and changes in the osmolarity of the medium, and cultivated at a temperature of 38.5 ° C in a humidified temperature in an atmosphere of 6.5 % CO2 and 5% O2 in plastic Petri dishes with a diameter of 60 mm.
4. Подготовка сперматозоидов 4. Preparation of spermatozoa
Для проведения экстракорпорального оплодотворения была использована криоконсервированная сперма. Для криоконсервации свежую сперму, полученную путём донирования, помещали в 0,2 мл лунки, изготовленные во фторопластовой плате, помещенному над поверхностью жидкого азота. Плату со спермой инкубировали над жидким азотом над высотой 5 см в течение 1,5-2 минут после чего погружали непосредственно в жидкий азот. После удаления платы из жидкого азота, гранулы спермы собирали и помещали для хранения в сосуд Дьюара.Cryopreserved sperm was used for in vitro fertilization. For cryopreservation, fresh sperm obtained by donation was placed in 0.2 ml wells made in a fluoroplastic plate placed above the surface of liquid nitrogen. The sperm plate was incubated over liquid nitrogen over a height of 5 cm for 1.5-2 minutes, after which it was immersed directly in liquid nitrogen. After removing the liquid nitrogen board, the semen pellets were collected and placed in a Dewar vessel for storage.
Криоконсервированную сперму размораживали при температуре 37оС в течение 1 минуты, а затем центрифугировали в градиенте плотности (80% Percoll SpermGrad (Vitrolife, Швеция)) объёмом 3 мл в течение 10 минут при 700g. После центрифугирования осадок отмывали с помощью буферного раствора SpermRinse buffer medium SpermGrad (Vitrolife, Швеция), с добавлением 5 МЕ/мл гепарина в течение 5 минут при 350g.Cryopreserved sperm was thawed at 37 ° C for 1 minute and then centrifuged in a density gradient (80% Percoll SpermGrad (Vitrolife, Sweden)) with a volume of 3 ml for 10 minutes at 700g. After centrifugation, the pellet was washed with SpermRinse buffer medium SpermGrad (Vitrolife, Sweden), supplemented with 5 IU/ml heparin for 5 minutes at 350g.
5. Экстракорпоральное оплодотворение5. In vitro fertilization
Для проведения экстракорпорального оплодотворения сперматозоиды (в концентрации ~1*106-2*106 в мл) и ооцит-кумулюсные комплексы помещали в среду BO-IVF medium (IVF Bioscience, UK) на 15 часов для оплодотворения. Затем эмбрионы трижды отмывали в среде BO-IVF medium (IVF Bioscience, UK). Процедуру жкстракорпорального оплодотворения производили в CO2-инкубаторе при температуре 38.5°C в увлажненной атмосфере, содержащей 6.5%CO2 и 5%O2. For in vitro fertilization, spermatozoa (at a concentration of ~1*10 6 -2*10 6 per ml) and oocyte-cumulus complexes were placed in BO-IVF medium (IVF Bioscience, UK) for 15 hours for fertilization. The embryos were then washed three times in BO-IVF medium (IVF Bioscience, UK). The procedure of intracorporeal fertilization was carried out in a CO 2 incubator at a temperature of 38.5°C in a humidified atmosphere containing 6.5% CO 2 and 5% O 2 .
6. Трансдукция эмбрионов и культивирование 6. Embryo transduction and culture
Культивирование эмбрионов производили в CO2-инкубаторе при температуре 38.5°C в увлажненной атмосфере, содержащей 6.5%CO2, эмбрионы культивировали в среде BO-IVC medium (IVF Bioscience, UK), покрытой слоем парафинового масла (Sage, USA) для предотвращения испарения и изменения осмолярности среды. Культивирование эмбрионов осуществляли до стадии бластоцисты (170-180 часов культивирования) без смены среды. Embryos were cultured in a CO 2 incubator at 38.5°C in a humidified atmosphere containing 6.5% CO 2 ; embryos were cultured in BO-IVC medium (IVF Bioscience, UK) coated with a layer of paraffin oil (Sage, USA) to prevent evaporation and changes in the osmolarity of the medium. Embryos were cultured up to the blastocyst stage (170-180 hours of cultivation) without changing the medium.
Трансдукцию эмбрионов осуществляли с помощью аденоассоциированных вирусов. Для этого в среду для культивирования эмбрионов (в тот момент, когда эмбрионы находились на стадии зиготы) добавляли вирионы ААВ в концентрации 5*109 вирусных геномов в расчёте на 100 мкл культуральной среды.Embryo transduction was performed using adeno-associated viruses. To do this, AAV virions were added to the medium for cultivating embryos (at the moment when the embryos were at the zygote stage) at a concentration of 5*10 9 viral genomes per 100 μl of the culture medium.
7. Анализ генотипа эмбрионов. На 7 день после трансдукции эмбрионы отмывали от среды в TE-буфере (10 мМ Tris, 1 мМ ЭДТА), лизировали в 5 мкл буфера для лизиса бластоцист (0,1 М Tris-HCl, 0,1 M KCl, 0,02% Gelatin, 0,45% Tween-20, 0,125 mg Proteinase K) в течение 20 минут при температуре 56 градусов, а затем 10 минут при температуре 95 градусов. Используя лизат в качестве матрицы, амплифицировали целевой фрагмент с использованием 10 пМ праймеров SEQ ID NO: 3 и SEQ ID NO: 4 и Phire Tissue Direct PCR Master Mix (Thermofisher) по протоколу: денатурация 98°С - 30 сек; далее следовало 35 циклов: 98°С - 5 сек, 63°С - 5 сек; 72°С - 10 сек; и последний синтез 72°С - 1 мин. После прохождения реакции ПЦР-смесь очищали в 1,5% агарозном геле, полученный продукт выделяли набором Monarch DNA Gel Extraction Kit, секвенировали в компании Евроген и использованием праймера SEQ ID NO:4. Полученные сиквенсы можно подразделить на две категории: сиквенсы дикого типа, последовательность в которых соответствует дикому типу, и двоящиеся сиквенсы, демонстрирующие мозаицизм эмбриона (Фиг. 2).7. Analysis of the genotype of embryos. On day 7 after transduction, the embryos were washed from the medium in TE buffer (10 mM Tris, 1 mM EDTA), lysed in 5 µl of blastocyst lysis buffer (0.1 M Tris-HCl, 0.1 M KCl, 0.02% Gelatin, 0.45% Tween-20, 0.125 mg Proteinase K) for 20 minutes at 56 degrees followed by 10 minutes at 95 degrees. Using the lysate as a template, the target fragment was amplified using 10 pM primers SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4 and Phire Tissue Direct PCR Master Mix (Thermofisher) according to the protocol: denaturation 98°C - 30 sec; followed by 35 cycles: 98°C - 5 sec, 63°C - 5 sec; 72°C - 10 sec; and the last synthesis 72°C - 1 min. After the reaction, the PCR mixture was purified in a 1.5% agarose gel, the resulting product was isolated using the Monarch DNA Gel Extraction Kit, sequenced at Eurogen using primer SEQ ID NO:4. The resulting sequences can be divided into two categories: wild-type sequences, in which the sequence corresponds to the wild-type, and duplicated sequences, demonstrating embryonic mosaicism (Fig. 2).
Пример 1. Получение эмбрионов Bos taurus с редактированным геном CD209 в части клеток. По результатам секвенирования по Сэнгеру были обнаружены 3 эмбриона из 22 проверенных, содержащих инсерции и делеции в области PAM-сайта. Сиквенсы этих эмбрионов представлены на фигуре 2. Инсерции и делеции произошли на расстоянии в три нуклеотида от PAM сайта (самом вероятном месте разрезания SaCas9). В первом эмбрионе произошла делеция delTTGAACAG и инсерция insAT, во втором эмбрионе делеция delTTG и инсерция insA, в третьем эмбрионе делеция delGAACCAG и инсерция insATAG.Example 1. Obtaining Bos taurus embryos with edited CD209 gene in part of the cells. Based on the results of Sanger sequencing, 3 out of 22 tested embryos were found to contain insertions and deletions in the PAM site region. The sequences of these embryos are presented in figure 2. Insertions and deletions occurred at a distance of three nucleotides from the PAM site (the most likely site of cutting SaCas9). The first embryo had a delTTGAACAG deletion and an insAT insertion, the second embryo had a delTTG deletion and an insA insertion, and the third embryo had a delGAACCAG deletion and an insATAG insertion.
Список литературы:Bibliography:
1. Clark A.J. Genetic modification of milk proteins // Am. J. Clin. Nutr. 1996. Vol. 63, №4. P. 633-638.1. Clark A.J. Genetic modification of milk proteins // Am. J.Clin. Nutr. 1996 Vol. 63, no. 4. P. 633-638.
2. Shepelev M.V., Kalinichenko S.V., Deykin A.V., Korobko I.V. Production of Recombinant Proteins in the Milk of Transgenic Animals: Current State and Prospects // Acta Naturae. 2018. Vol. 10, №3. P. 40-47.2. Shepelev M.V., Kalinichenko S.V., Deykin A.V., Korobko I.V. Production of Recombinant Proteins in the Milk of Transgenic Animals: Current State and Prospects // Acta Naturae. 2018 Vol. 10, no. 3. P. 40-47.
3. Tabebordbar M., Zhu K., Cheng J.K.W., Chew W.L., Widrick J.J., Yan W.X., Maesner C., Wu E.Y., Xiao R., Ran F.A., Cong L., Zhang F., Vandenberghe L.H., Church G.M., Wagers A.J. In vivo gene editing in dystrophic mouse muscle and muscle stem cells // Science. 2016. Vol. 351, №6271. P. 407-411.3. Tabebordbar M., Zhu K., Cheng J.K.W., Chew W.L., Widrick J.J., Yan W.X., Maesner C., Wu E.Y., Xiao R., Ran F.A., Cong L., Zhang F., Vandenberghe L.H., Church G.M., Wagers A.J. In vivo gene editing in dystrophic mouse muscle and muscle stem cells // Science. 2016. Vol. 351, No. 6271. P. 407-411.
4. Bengtsson N.E., Hall J.K., Odom G.L., Phelps M.P., Andrus C.R., Hawkins R.D., Hauschka S.D., Chamberlain J.R., Chamberlain J.S. Muscle-specific CRISPR/Cas9 dystrophin gene editing ameliorates pathophysiology in a mouse model for Duchenne muscular dystrophy // Nat. Commun. 2017. Vol.8, №14454.4. Bengtsson N.E., Hall J.K., Odom G.L., Phelps M.P., Andrus C.R., Hawkins R.D., Hauschka S.D., Chamberlain J.R., Chamberlain J.S. Muscle-specific CRISPR/Cas9 dystrophin gene editing ameliorates pathophysiology in a mouse model for Duchenne muscular dystrophy // Nat. commun. 2017. Vol.8, No. 14454.
5. Xu K., Zhou Y., Mu Y., Liu Z., Hou S., Xiong Y., Fang L., Ge C., Wei Y., Zhang X., Xu C., Che J., Fan Z., Xiang G., Guo J., Shang H., Li H., Xiao S., Li J., Li K. CD163 and pAPNdouble-knockout pigs are resistant to PRRSV and TGEV and exhibit decreased susceptibility to PDCoV while maintaining normal production performance // Elife. 2020. Vol.9, №e57132. 5. Xu K., Zhou Y., Mu Y., Liu Z., Hou S., Xiong Y., Fang L., Ge C., Wei Y., Zhang X., Xu C., Che J., Fan Z., Xiang G., Guo J., Shang H., Li H., Xiao S., Li J., Li K. CD163 and pAPNdouble-knockout pigs are resistant to PRRSV and TGEV and exhibit decreased susceptibility to PDCoV while Maintaining normal production performance // Elife. 2020. Vol.9, No. e57132.
6. Yuan M., Zhang J., Gao Y., Yuan Z., Zhu Z., Wei Y., Wu T., Han J., Zhang Y. HMEJ-based safe-harbor genome editing enables efficient generation of cattle with increased resistance to tuberculosis // J. Biol. Chem. 2021. Vol.296, №100497.6. Yuan M., Zhang J., Gao Y., Yuan Z., Zhu Z., Wei Y., Wu T., Han J., Zhang Y. HMEJ-based safe-harbor genome editing enables efficient generation of cattle with increased resistance to tuberculosis // J. Biol. Chem. 2021. Vol.296, No. 100497.
7. Anderson K.R., Haeussler M., Watanabe C., Janakiraman V., Lund J., Modrusan Z., Stinson J., Bei Q., Buechler A., Yu C., Thamminana S.R., Tam L., Sowick M.A., Alcantar T., O'Neil N., Li J., Ta L., Lima L., Roose-Girma M., Rairdan X., Durinck S., Warming S. CRISPR off-target analysis in genetically engineered rats and mice // Nat Methods. 2018. Vol.15. Р. 512–514. 7. Anderson K.R., Haeussler M., Watanabe C., Janakiraman V., Lund J., Modrusan Z., Stinson J., Bei Q., Buechler A., Yu C., Thamminana S.R., Tam L., Sowick M.A. , Alcantar T., O'Neil N., Li J., Ta L., Lima L., Roose-Girma M., Rairdan X., Durinck S., Warming S. CRISPR off-target analysis in genetically engineered rats and mice // Nat Methods. 2018.Vol.15. R. 512–514.
8. Bruter A.V., Korshunova D.S., Kubekina M.V., Sergiev P.V., Kalinina A.A., Ilchuk L.A., Silaeva Y.Y., Korshunov E.N., Soldatov V.O., Deykin A.V. Novel transgenic mice with Cre-dependent co-expression of GFP and human ACE2: a safe tool for study of COVID-19 pathogenesis // Transgenic Res. 2021. Vol.30. Р. 289–301. 8. Bruter A.V., Korshunova D.S., Kubekina M.V., Sergiev P.V., Kalinina A.A., Ilchuk L.A., Silaeva Y.Y., Korshunov E.N., Soldatov V.O., Deykin A.V. Novel transgenic mice with Cre-dependent co-expression of GFP and human ACE2: a safe tool for studying of COVID-19 pathogenesis // Transgenic Res. 2021. Vol.30. R. 289–301.
9. Chan A.W., Chong K.Y., Martinovich C., Simerly C., Schatten G. Transgenic monkeys produced by retroviral gene transfer into mature oocytes // Science. 2001. Vol.291. Р. 309–312. 9. Chan A.W., Chong K.Y., Martinovich C., Simerly C., Schatten G. Transgenic monkeys produced by retroviral gene transfer into mature oocytes // Science. 2001. Vol.291. R. 309–312.
10. Qiu P., Jiang J., Liu Z., Cai Y., Huang T., Wang Y., Liu Q., Nie Y., Liu F., Cheng J., Li Q., Tang Y.C., Poo M.M., Sun Q., Chang H.C. BMAL1 knockout macaque monkeys display reduced sleep and psychiatric disorders // Natl. Sci. Rev. 2019. Vol.6. Р. 87–100. 10. Qiu P., Jiang J., Liu Z., Cai Y., Huang T., Wang Y., Liu Q., Nie Y., Liu F., Cheng J., Li Q., Tang Y.C., Poo M.M., Sun Q., Chang H.C. BMAL1 knockout macaque monkeys display reduced sleep and psychiatric disorders // Natl. sci. Rev. 2019.Vol.6. R. 87–100.
11. Sun Z., Wang M., Han S., Ma S., Zou Z., Ding F., Li X., Li L., Tang B., Wang H., Li N., Che H., Dai Y. Production of hypoallergenic milk from DNA-free beta-lactoglobulin (BLG) gene knockout cow using zinc-finger nucleases mRNA // Sci. Rep. 2018. Vol.8, №15430. 11. Sun Z., Wang M., Han S., Ma S., Zou Z., Ding F., Li X., Li L., Tang B., Wang H., Li N., Che H., Dai Y. Production of hypoallergenic milk from DNA-free beta-lactoglobulin (BLG) gene knockout cow using zinc-finger nucleases mRNA // Sci. Rep. 2018. Vol.8, No. 15430.
12. Proudfoot C., Carlson D.F., Huddart R., Long C.R., Pryor J.H., King T.J., Lillico S.G., Mileham A.J., McLaren D.G., Whitelaw C.B., Fahrenkrug S.C. Genome edited sheep and cattle // Transgenic Res. 2015. Vol.24. Р. 147–153. 12. Proudfoot C., Carlson D.F., Huddart R., Long C.R., Pryor J.H., King T.J., Lillico S.G., Mileham A.J., McLaren D.G., Whitelaw C.B., Fahrenkrug S.C. Genome edited sheep and cattle // Transgenic Res. 2015. Vol.24. R. 147–153.
13. Sumiyama K., Matsumoto N., Garçon-Yoshida J., Ukai H., Ueda H.R., Tanaka Y. Easy and efficient production of completely embryonic-stem-cell-derived mice using a micro-aggregation device // PloS. one. 2018. Vol.13.e0203056. 13. Sumiyama K., Matsumoto N., Garçon-Yoshida J., Ukai H., Ueda H.R., Tanaka Y. Easy and efficient production of completely embryonic-stem-cell-derived mice using a micro-aggregation device // PloS. one. 2018. Vol.13.e0203056.
14. Tachibana M., Sparman M., Ramsey C., Ma H., Lee H.S., Penedo M.C., Mitalipov S. Generation of chimeric rhesus monkeys // Cell. 2012. Vol.148. Р. 285–295. 14. Tachibana M., Sparman M., Ramsey C., Ma H., Lee H.S., Penedo M.C., Mitalipov S. Generation of chimeric rhesus monkeys, Cell. 2012. Vol.148. R. 285–295.
15. Whitworth K.M., Benne J.A., Spate L.D., Murphy S.L., Samuel M.S., Murphy C.N., Richt J.A., Walters E., Prather R.S., Wells K.D. Zygote injection of CRISPR/Cas9 RNA successfully modifies the target gene without delaying blastocyst development or altering the sex ratio in pigs // Transgenic Res. 2017. Vol.26.Р. 97–107. 15. Whitworth K.M., Benne J.A., Spate L.D., Murphy S.L., Samuel M.S., Murphy C.N., Richt J.A., Walters E., Prather R.S., Wells K.D. Zygote injection of CRISPR/Cas9 RNA successfully modifies the target gene without delaying blastocyst development or altering the sex ratio in pigs // Transgenic Res. 2017. Vol.26.R. 97–107.
16. Tan M., van Tol H., Mokry M., Stout T., Roelen B. Microinjection induces changes in the transcriptome of bovine oocytes // Sci. Rep. 2020. Vol.10, №11211. 16. Tan M., van Tol H., Mokry M., Stout T., Roelen B. Microinjection induces changes in the transcriptome of bovine oocytes, Sci. Rep. 2020. Vol.10, No. 11211.
17. Su X., Chen W., Cai Q., Liang P., Chen Y., Cong P., Huang J. Production of non-mosaic genome edited porcine embryos by injection of CRISPR/Cas9 into germinal vesicle oocytes // J. Genet. Genomics. 2019. Vol.46. Р. 335–342. 17. Su X., Chen W., Cai Q., Liang P., Chen Y., Cong P., Huang J. Production of non-mosaic genome edited porcine embryos by injection of CRISPR/Cas9 into germinal vesicle oocytes // J. Genet. Genomics. 2019. Vol.46. R. 335–342.
18. Brinster R.L., Chen H.Y., Warren R., Sarthy A., Palmiter R.D. Regulation of metallothionein - thymidine kinase fusion plasmids injected into mouse eggs // Nature. 1982. Vol.296. Р. 39–42.18. Brinster R.L., Chen H.Y., Warren R., Sarthy A., Palmiter R.D. Regulation of metallothionein - thymidine kinase fusion plasmids injected into mouse eggs // Nature. 1982. Vol.296. R. 39–42.
19. Delerue F., Ittner L.M. Generation of Genetically Modified Mice through the Microinjection of Oocytes // Jo. V. E. 2017. Vol.124, №55765. 19. Delerue F., Ittner L.M. Generation of Genetically Modified Mice through the Microinjection of Oocytes // Jo. V. E. 2017. Vol.124, No. 55765.
20. Palmiter R.D., Brinster R.L., Hammer R.E., Trumbauer M.E., Rosenfeld M.G., Birnberg N.C., Evans R.M. Dramatic growth of mice that develop from eggs microinjected with metallothionein-growth hormone fusion genes // Nature. 1982. Vol.300. Р. 611–615. 20. Palmiter R.D., Brinster R.L., Hammer R.E., Trumbauer M.E., Rosenfeld M.G., Birnberg N.C., Evans R.M. Dramatic growth of mice that develop from eggs microinjected with metallothionein-growth hormone fusion genes // Nature. 1982. Vol.300. R. 611–615.
21. Hashimoto M., Takemoto T. Electroporation enables the efficient mRNA delivery into the mouse zygotes and facilitates CRISPR/Cas9-based genome editing // Sci. Rep. 2015. Vol.5, №11315.21. Hashimoto M., Takemoto T. Electroporation enables the efficient mRNA delivery into the mouse zygotes and facilitates CRISPR/Cas9-based genome editing // Sci. Rep. 2015. Vol.5, No. 11315.
22. Qin W., Dion S.L., Kutny P.M., Zhang Y., Cheng A.W., Jillette N.L., Malhotra A., Geurts A.M., Chen Y.G., Wang H. Efficient CRISPR/Cas9-Mediated Genome Editing in Mice by Zygote Electroporation of Nuclease // Genetics. 2015. Vol.200. Р. 423–430. 22. Qin W., Dion S.L., Kutny P.M., Zhang Y., Cheng A.W., Jillette N.L., Malhotra A., Geurts A.M., Chen Y.G., Wang H. Efficient CRISPR/Cas9-Mediated Genome Editing in Mice by Zygote Electroporation of Nuclease // Genetics. 2015. Vol.200. R. 423–430.
23. Chen S., Lee B., Lee A.Y., Modzelewski A.J., He L. Highly Efficient Mouse Genome Editing by CRISPR Ribonucleoprotein Electroporation of Zygotes // J. Biol. Chem. 2016. Vol.291. Р. 14457–14467. 23. Chen S., Lee B., Lee A.Y., Modzelewski A.J., He L. Highly Efficient Mouse Genome Editing by CRISPR Ribonucleoprotein Electroporation of Zygotes // J. Biol. Chem. 2016. Vol.291. R. 14457–14467.
24. Haskell R.E., Bowen R.A. Efficient production of transgenic cattle by retroviral infection of early embryos // Mol. Reprod. Dev. 1995. Vol.40. Р.386–390. 24. Haskell R.E., Bowen R.A. Efficient production of transgenic cattle by retroviral infection of early embryos // Mol. reproduction. dev. 1995. Vol.40. R.386-390.
25. Xu Y.N., Uhm S.J., Koo B.C., Kwon M.S., Roh J.Y., Yang J.S., Choi H.Y., Heo Y.T., Cui X.S., Yoon J.H., Ko D.H., Kim T., Kim N.H. Production of transgenic Korean native cattle expressing enhanced green fluorescent protein using a FIV-based lentiviral vector injected into MII oocytes // J. Genet. Genomics. 2013. Vol.40. Р. 37–43.25. Xu Y.N., Uhm S.J., Koo B.C., Kwon M.S., Roh J.Y., Yang J.S., Choi H.Y., Heo Y.T., Cui X.S., Yoon J.H., Ko D.H., Kim T., Kim N.H. Production of transgenic Korean native cattle expressing enhanced green fluorescent protein using a FIV-based lentiviral vector injected into MII oocytes // J. Genet. Genomics. 2013. Vol.40. R. 37–43.
26. Yoon Y., Wang D., Tai P., Riley J., Gao G., Rivera-Pérez J.A. Streamlined ex vivo and in vivo genome editing in mouse embryos using recombinant adeno-associated viruses // Nat. Commun. 2018. Vol.9, №412.26. Yoon Y., Wang D., Tai P., Riley J., Gao G., Rivera-Pérez J.A. Streamlined ex vivo and in vivo genome editing in mouse embryos using recombinant adeno-associated viruses // Nat. commun. 2018. Vol.9, No. 412.
27. Mizuno N., Mizutani E., Sato H., Kasai M., Ogawa A., Suchy F., Yamaguchi T., Nakauchi, H. Intra-embryo Gene Cassette Knockin by CRISPR/Cas9-Mediated Genome Editing with Adeno-Associated Viral Vector // iScience. 2018. Vol. 9. Р. 286–297.27. Mizuno N., Mizutani E., Sato H., Kasai M., Ogawa A., Suchy F., Yamaguchi T., Nakauchi, H. Intra-embryo Gene Cassette Knockin by CRISPR/Cas9-Mediated Genome Editing with Adeno -Associated Viral Vector // iScience. 2018 Vol. 9. R. 286–297.
28. Stiehler M., Duch M., Mygind T., Li H., Ulrich-Vinther M., Modin C., Baatrup A., Lind M., Pedersen F.S., Bünger C.E. Optimizing viral and non-viral gene transfer methods for genetic modification of porcine mesenchymal stem cells // Adv. Exp. Med. Biol. 2006. Vol.585. Р. 31–48.28. Stiehler M., Duch M., Mygind T., Li H., Ulrich-Vinther M., Modin C., Baatrup A., Lind M., Pedersen F.S., Bünger C.E. Optimizing viral and non-viral gene transfer methods for genetic modification of porcine mesenchymal stem cells // Adv. Exp. Med. Biol. 2006. Vol.585. R. 31–48.
29. Zeng W., Tang L., Bondareva A., Honaramooz A., Tanco V., Dores C., Megee S., Modelski M., Rodriguez-Sosa J.R., Paczkowski M., Silva E., Wheeler M., Krisher R.L., Dobrinski I. Viral transduction of male germline stem cells results in transgene transmission after germ cell transplantation in pigs // Biol. Reprod. 2013. Vol. 88, №27.29. Zeng W., Tang L., Bondareva A., Honaramooz A., Tanco V., Dores C., Megee S., Modelski M., Rodriguez-Sosa J.R., Paczkowski M., Silva E., Wheeler M. , Krisher R.L., Dobrinski I. Viral transduction of male germline stem cells results in transgene transmission after germ cell transplantation in pigs // Biol. reproduction. 2013. Vol. 88, No. 27.
30. Chan K.Y., Jang M.J., Yoo B.B., Greenbaum A., Ravi N., Wu W.L., Sánchez-Guardado L., Lois C., Mazmanian S.K., Deverman B.E., Gradinaru V. Engineered AAVs for efficient noninvasive gene delivery to the central and peripheral nervous systems // Nat. Neurosci. 2017. Vol.20. Р. 1172–1179.30. Chan K.Y., Jang M.J., Yoo B.B., Greenbaum A., Ravi N., Wu W.L., Sánchez-Guardado L., Lois C., Mazmanian S.K., Deverman B.E., Gradinaru V. Engineered AAVs for efficient noninvasive gene delivery to the central and peripheral nervous systems // Nat. neurosci. 2017. Vol.20. R. 1172–1179.
31. Naso M.F., Tomkowicz B., Perry W.L. 3rd, Strohl W.R. Adeno-Associated Virus (AAV) as a Vector for Gene Therapy // BioDrugs. 2017. Vol.31. Р. 317–334.31. Naso MF, Tomkowicz B., Perry WL 3rd , Strohl WR Adeno-Associated Virus (AAV) as a Vector for Gene Therapy // BioDrugs. 2017. Vol.31. R. 317–334.
32. Wu Z., Yang H., Colosi P. Effect of genome size on AAV vector packaging // Mol. Ther. 2010. Vol. 18. Р. 80–86.32. Wu Z., Yang H., Colosi P. Effect of genome size on AAV vector packaging, Mol. Ther. 2010 Vol. 18. R. 80–86.
33. Dismuke D.J., Tenenbaum L., Samulski R.J. Biosafety of recombinant adeno-associated virus vectors // Curr. Gene Ther. 2013. Vol. 13. Р. 434–452.33. Dismuke D.J., Tenenbaum L., Samulski R.J. Biosafety of recombinant adeno-associated virus vectors // Curr. Gene Ther. 2013. Vol. 13. R. 434-452.
34. McGreal E.P., Miller J.L., Gordon S. Ligand recognition by antigen-presenting cell C-type lectin receptors // Curr. Opin. Immunol. 2005. Vol. 17. Р. 18–24.34. McGreal E.P., Miller J.L., Gordon S. Ligand recognition by antigen-presenting cell C-type lectin receptors, Curr. Opin. Immunol. 2005 Vol. 17. R. 18–24.
35. Geijtenbeek T.B., Kwon D.S., Torensma R., van Vliet S.J., van Duijnhoven G.C., Middel J., Cornelissen I.L., Nottet H.S., KewalRamani V.N., Littman D.R., Figdor C.G., van Kooyk Y. DC-SIGN, a dendritic cell-specific HIV-1-binding protein that enhances trans-infection of T cells // Cell. 2000. Vol. 100. Р. 587–597.35. Geijtenbeek T.B., Kwon D.S., Torensma R., van Vliet S.J., van Duijnhoven G.C., Middel J., Cornelissen I.L., Nottet H.S., KewalRamani V.N., Littman D.R., Figdor C.G., van Kooyk Y. DC-SIGN, a dendritic cell -specific HIV-1-binding protein that enhances trans-infection of T cells // Cell. 2000 Vol. 100. R. 587–597.
36. Ludwig I.S., Lekkerkerker A.N., Depla E., Bosman F., Musters R.J., Depraetere S., van Kooyk Y., Geijtenbeek T.B. Hepatitis C virus targets DC-SIGN and L-SIGN to escape lysosomal degradation // J. Virol. 2004. Vol. 78. Р. 8322–8332.36. Ludwig I.S., Lekkerkerker A.N., Depla E., Bosman F., Musters R.J., Depraetere S., van Kooyk Y., Geijtenbeek T.B. Hepatitis C virus targets DC-SIGN and L-SIGN to escape lysosomal degradation // J. Virol. 2004 Vol. 78. R. 8322–8332.
37. Geijtenbeek T.B., Van Vliet S.J., Koppel E.A., Sanchez-Hernandez M., Vandenbroucke-Grauls C.M., Appelmelk B., Van Kooyk Y. Mycobacteria target DC-SIGN to suppress dendritic cell function // J. Exp. Med. 2003. Vol. 197. Р.7–17.37. Geijtenbeek T.B., Van Vliet S.J., Koppel E.A., Sanchez-Hernandez M., Vandenbroucke-Grauls C.M., Appelmelk B., Van Kooyk Y. Mycobacteria target DC-SIGN to suppress dendritic cell function // J. Exp. Med. 2003 Vol. 197. R.7–17.
38. Tailleux L., Pham-Thi N., Bergeron-Lafaurie A., Herrmann J.L., Charles P., Schwartz O., Scheinmann P., Lagrange P.H., de Blic J., Tazi A., Gicquel B., Neyrolles O. DC-SIGN induction in alveolar macrophages defines privileged target host cells for mycobacteria in patients with tuberculosis // PLoS. Med. 2005.Vol. 2, №e381.38. Tailleux L., Pham-Thi N., Bergeron-Lafaurie A., Herrmann J.L., Charles P., Schwartz O., Scheinmann P., Lagrange P.H., de Blic J., Tazi A., Gicquel B., Neyrolles O. DC-SIGN induction in alveolar macrophages defines privileged target host cells for mycobacteria in patients with tuberculosis // PLoS. Med. 2005 Vol. 2, no. e381.
39. Caparrós E., Serrano D., Puig-Kröger A., Riol L., Lasala F., Martinez I., Vidal-Vanaclocha F., Delgado R., Rodríguez-Fernández J.L., Rivas L., Corbí A.L., Colmenares M.. Role of the C-type lectins DC-SIGN and L-SIGN in Leishmania interaction with host phagocytes // Immunobiology. 2005. Vol. 210. Р. 185–193.39. Caparrós E., Serrano D., Puig-Kröger A., Riol L., Lasala F., Martinez I., Vidal-Vanaclocha F., Delgado R., Rodríguez-Fernández J.L., Rivas L., Corbí A.L., Colmenares M.. Role of the C-type lectins DC-SIGN and L-SIGN in Leishmania interaction with host phagocytes // Immunobiology. 2005 Vol. 210. R. 185-193.
40. Rahimi N. C-type Lectin CD209L/L-SIGN and CD209/DC-SIGN: Cell Adhesion Molecules Turned to Pathogen Recognition Receptors // Biology. 2020. Vol. 10, №1.40. Rahimi N. C-type Lectin CD209L/L-SIGN and CD209/DC-SIGN: Cell Adhesion Molecules Turned to Pathogen Recognition Receptors // Biology. 2020 Vol. 10, no. 1.
41. Kwon D.S., Gregorio G., Bitton N., Hendrickson W.A., Littman D.R. DC-SIGN-mediated internalization of HIV is required for trans-enhancement of T cell infection // Immunity. 2002. Vol.16. Р. 135–144.41. Kwon D.S., Gregorio G., Bitton N., Hendrickson W.A., Littman D.R. DC-SIGN-mediated internalization of HIV is required for trans-enhancement of T cell infection // Immunity. 2002. Vol.16. R. 135–144.
42. Miyauchi K., Kim Y., Latinovic O., Morozov V., Melikyan G.B. HIV enters cells via endocytosis and dynamin-dependent fusion with endosomes // Cell. 2009. Vol. 137. P. 433–444.42. Miyauchi K., Kim Y., Latinovic O., Morozov V., Melikyan G.B. HIV enters cells via endocytosis and dynamin-dependent fusion with endosomes // Cell. 2009 Vol. 137. P. 433–444.
43. Njiri O.A., Zhang X., Zhang Y., Wu B., Jiang L., Li Q., Liu W., Chen T. CD209 C-Type Lectins Promote Host Invasion, Dissemination, and Infection of Toxoplasma gondii // Front Immunol. 2020.Vol.11, №656.43. Njiri O.A., Zhang X., Zhang Y., Wu B., Jiang L., Li Q., Liu W., Chen T. CD209 C-Type Lectins Promote Host Invasion, Dissemination, and Infection of Toxoplasma gondii // Front Immunol. 2020.Vol.11, No.656.
44. Kumar S., Kumar S., Singh R.V., Chauhan A., Kumar A., Bharati J., Singh S.V. Association of genetic variability in CD209 gene with bovine paratuberculosis disease: a case-control study in the Indian cattle population // Anim. Biotechnol. 2020. Vol.28. Р.1–8.44. Kumar S., Kumar S., Singh R.V., Chauhan A., Kumar A., Bharati J., Singh S.V. Association of genetic variability in CD209 gene with bovine paratuberculosis disease: a case-control study in the Indian cattle population // Anim. Biotechnol. 2020. Vol.28. R.1–8.
45. Gopi B., Singh R.V., Kumar S., Kumar S., Chauhan A., Kumar A., Singh S.V. Single-nucleotide polymorphisms in CLEC7A, CD209 and TLR4 gene and their association with susceptibility to paratuberculosis in Indian cattle // J. Genet. 2020. Vol.99, №14.45. Gopi B., Singh R.V., Kumar S., Kumar S., Chauhan A., Kumar A., Singh S.V. Single-nucleotide polymorphisms in CLEC7A, CD209 and TLR4 gene and their association with susceptibility to paratuberculosis in Indian cattle // J. Genet. 2020. Vol.99, No.14.
46. Canive M., Casais R., Jimenez J.A., Blanco-Vazquez C., Amado J., Garrido J.M., Juste R.A., Alonso-Hearn M. Correlations between single nucleotide polymorphisms in bovine CD209, SLC11A1, SP110 and TLR2 genes and estimated breeding values for several traits in Spanish Holstein cattle // Heliyon. 2020. Vol.6, №e04254.46. Canive M., Casais R., Jimenez J.A., Blanco-Vazquez C., Amado J., Garrido J.M., Juste R.A., Alonso-Hearn M. Correlations between single nucleotide polymorphisms in bovine CD209, SLC11A1, SP110 and TLR2 genes and estimated breeding values for several traits in Spanish Holstein cattle // Heliyon. 2020. Vol.6, No.e04254.
47. Günther P.S., Mikeler E., Hamprecht K., Schneider-Schaulies J., Jahn G., Dennehy K.M. CD209/DC-SIGN mediates efficient infection of monocyte-derived dendritic cells by clinical adenovirus 2C isolates in the presence of bovine lactoferrin // J. Gen. Virol. 2011. Vol.92. Р.1754–1759.47. Günther P.S., Mikeler E., Hamprecht K., Schneider-Schaulies J., Jahn G., Dennehy K.M. CD209/DC-SIGN mediates efficient infection of monocyte-derived dendritic cells by clinical adenovirus 2C isolates in the presence of bovine lactoferrin // J. Gen. Virol. 2011. Vol.92. R.1754–1759.
48. Danilov K.A., Vassilieva S.G., Polikarpova A.V., Starikova A.V., Shmidt A.A., Galkin I.I., Tsitrina A.A., Egorova T.V., Orlov S.N., Kotelevtsev Y.V. In vitro assay for the efficacy assessment of AAV vectors expressing microdystrophin // Exp. Cell Res. 2020. Vol.392, №112033.48. Danilov K.A., Vassilieva S.G., Polikarpova A.V., Starikova A.V., Shmidt A.A., Galkin I.I., Tsitrina A.A., Egorova T.V., Orlov S.N., Kotelevtsev Y.V. In vitro assay for the efficacy assessment of AAV vectors expressing microdystrophin // Exp. Cell Res. 2020. Vol.392, No. 112033.
49. Buclez P.O., Dias Florencio G., Relizani K., Beley C., Garcia L., Benchaouir R.. Rapid, scalable, and low-cost purification of recombinant adeno-associated virus produced by baculovirus expression vector system // Mol. Ther. Methods. Clin. Dev. 2016. Vol.3, №16035.49. Buclez P.O., Dias Florencio G., Relizani K., Beley C., Garcia L., Benchaouir R.. Rapid, scalable, and low-cost purification of recombinant adeno-associated virus produced by baculovirus expression vector system // Mol . Ther. methods. Clin. dev. 2016. Vol.3, No. 16035.
50. Zolotukhin S., Byrne B.J., Mason E., Zolotukhin I., Potter M., Chesnut K., Summerford C., Samulski R.J., Muzyczka N. Recombinant adeno-associated virus purification using novel methods improves infectious titer and yield // Gene Ther. 1999. Vol.6. Р.973–985.50. Zolotukhin S., Byrne B.J., Mason E., Zolotukhin I., Potter M., Chesnut K., Summerford C., Samulski R.J., Muzyczka N. Recombinant adeno-associated virus purification using novel methods improves infectious titer and yield / / Gene Ther. 1999. Vol.6. R.973-985.
51. Aurnhammer C., Haase M., Muether N., Hausl M., Rauschhuber C., Huber I., Nitschko H., Busch U., Sing A., Ehrhardt A., Baiker A. Universal real-time PCR for the detection and quantification of adeno-associated virus serotype 2-derived inverted terminal repeat sequences // Hum. Gene Ther. Methods. 2012. Vol.23. Р.18–28.51. Aurnhammer C., Haase M., Muether N., Hausl M., Rauschhuber C., Huber I., Nitschko H., Busch U., Sing A., Ehrhardt A., Baiker A. Universal real-time PCR for the detection and quantification of adeno-associated virus serotype 2-derived inverted terminal repeat sequences // Hum. Gene Ther. methods. 2012. Vol.23. R.18-28.
--->--->
Перечень последовательностейSequence listing
DTD Version: V1_3 DTD Version: V1_3
File Name: CD209 в эмбрионах Bos taurus .xml File Name: CD209 in Bos taurus embryos .xml
Software Name: WIPO Sequence Software Name: WIPO Sequence
Software Version: 2.1.2 Software Version: 2.1.2
Production Date: 2022-11-03 Production Date: 2022-11-03
General Information:General Information:
Current application / IP Office: RU Current application / IP Office: US
Current application / Applicant file reference: non Current application / Applicant file reference: none
Applicant name: Федеральное государственное бюджетное учреждение Applicant name: Federal state budget institution
науки Институт биологии гена Российской академии наукSciences Institute of Gene Biology, Russian Academy of Sciences
Applicant name / Language: ru Applicant name / Language: en
Applicant name / Name Latin: Institute of Gene Biology Russian Applicant name / Name Latin: Institute of Gene Biology
Academy of SciencesAcademy of Sciences
Invention title: Способ получения нокаута гена CD209 в эмбрионах Bos Invention title: Method for producing CD209 gene knockout in Bos embryos
taurus путем трансдукции зигот аденоассоциированными вирусами, taurus by transduction of zygotes with adeno-associated viruses,
кодирующими saCas9 и соответствующую гидовую РНК ( ru )encoding saCas9 and the corresponding guide RNA (ru)
Sequence Total Quantity: 7 Sequence Total Quantity: 7
Sequences:sequences:
Sequence Number (ID): 1 Sequence Number (ID): 1
Length: 7446 Length: 7446
Molecule Type: DNA Molecule Type: DNA
Features Location/Qualifiers: Features Location/Qualifiers:
- source, 1..7446 -source, 1..7446
> mol_type, other DNA > mol_type, other DNA
> organism, synthetic construct > organisms, synthetic constructs
Residues: Residents:
cctgcaggca gctgcgcgct cgctcgctca ctgaggccgc ccgggcgtcg cctgcaggca gctgcgcgct cgctcgctca ctgaggccgc cggggcgtcg
ggcgaccttt 60ggcgaccttt 60
ggtcgcccgg cctcagtgag cgagcgagcg cgcagagagg gagtggccaa ggtcgcccgg cctcagtgag cgagcgagcg cgcagagagg gagtggccaa
ctccatcact 120ctccatcact 120
aggggttcct gcggcctcta gactcgaggc gttgacattg attattgact aggggttcct gcggcctcta gactcgaggc gttgacattg attattgact
agttattaat 180agttattaat 180
agtaatcaat tacggggtca ttagttcata gcccatatat ggagttccgc agtaatcaat tacggggtca ttagttcata gcccatatat ggagttccgc
gttacataac 240gttacataac 240
ttacggtaaa tggcccgcct ggctgaccgc ccaacgaccc ccgcccattg ttacggtaaa tggcccgcct ggctgaccgc ccaacgaccc ccgcccattg
acgtcaataa 300acgtcaataa 300
tgacgtatgt tcccatagta acgccaatag ggactttcca ttgacgtcaa tgacgtatgt tcccatagta acgccaatag ggactttcca ttgacgtcaa
tgggtggagt 360tgggtggagt 360
atttacggta aactgcccac ttggcagtac atcaagtgta tcatatgcca atttacggta aactgcccac ttggcagtac atcaagtgta tcatatgcca
agtacgcccc 420agtacgcccc 420
ctattgacgt caatgacggt aaatggcccg cctggcatta tgcccagtac ctattgacgt caatgacggt aaatggcccg cctggcatta tgcccagtac
atgaccttat 480atgaccttat 480
gggactttcc tacttggcag tacatctacg tattagtcat cgctattacc gggactttcc tacttggcag tacatctacg tattagtcat cgctattacc
atggtgatgc 540atggtgatgc 540
ggttttggca gtacatcaat gggcgtggat agcggtttga ctcacgggga ggttttggca gtacatcaat gggcgtggat agcggtttga ctcacggggga
tttccaagtc 600tttccaagtc 600
tccaccccat tgacgtcaat gggagtttgt tttggcacca aaatcaacgg tccaccccat tgacgtcaat gggagtttgt tttggcacca aaatcaacgg
gactttccaa 660gactttccaa 660
aatgtcgtaa caactccgcc ccattgacgc aaatgggcgg taggcgtgta aatgtcgtaa caactccgcc ccattgacgc aaatgggcgg taggcgtgta
cggtgggagg 720cggtgggagg 720
tctatataag cagagctctc tggctaacta ccggtgccac catggcccca tctatataag cagagctctc tggctaacta ccggtgccac catggcccca
aagaagaagc 780aagaagaagc 780
ggaaggtcgg tatccacgga gtcccagcag ccaagcggaa ctacatcctg ggaaggtcgg tatccacgga gtcccagcag ccaagcggaa ctacatcctg
ggcctggaca 840ggcctggaca 840
tcggcatcac cagcgtgggc tacggcatca tcgactacga gacacgggac tcggcatcac cagcgtgggc tacggcatca tcgactacga gacacgggac
gtgatcgatg 900gtgatcgatg 900
ccggcgtgcg gctgttcaaa gaggccaacg tggaaaacaa cgagggcagg ccggcgtgcg gctgttcaaa gaggccaacg tggaaaacaa cgagggcagg
cggagcaaga 960cggagcaaga 960
gaggcgccag aaggctgaag cggcggaggc ggcatagaat ccagagagtg gaggcgccag aaggctgaag cggcgggaggc ggcatagaat ccagagagtg
aagaagctgc 1020aagaagctgc 1020
tgttcgacta caacctgctg accgaccaca gcgagctgag cggcatcaac tgttcgacta caacctgctg accgaccaca gcgagctgag cggcatcaac
ccctacgagg 1080ccctacgagg 1080
ccagagtgaa gggcctgagc cagaagctga gcgaggaaga gttctctgcc ccagagtgaa gggcctgagc cagaagctga gcgaggaaga gttctctgcc
gccctgctgc 1140gccctgctgc 1140
acctggccaa gagaagaggc gtgcacaacg tgaacgaggt ggaagaggac acctggccaa gagaagaggc gtgcacaacg tgaacgaggt ggaagaggac
accggcaacg 1200accggcaacg 1200
agctgtccac caaagagcag atcagccgga acagcaaggc cctggaagag agctgtccac caaagagcag atcagccgga acagcaaggc cctggaagag
aaatacgtgg 1260aaatacgtgg 1260
ccgaactgca gctggaacgg ctgaagaaag acggcgaagt gcggggcagc ccgaactgca gctggaacgg ctgaagaaag acggcgaagt gcggggcagc
atcaacagat 1320atcaacagat 1320
tcaagaccag cgactacgtg aaagaagcca aacagctgct gaaggtgcag tcaagaccag cgactacgtg aaagaagcca aacagctgct gaaggtgcag
aaggcctacc 1380aaggcctacc 1380
accagctgga ccagagcttc atcgacacct acatcgacct gctggaaacc accagctgga ccagagcttc atcgacacct acatcgacct gctggaaacc
cggcggacct 1440cggcggacct 1440
actatgaggg acctggcgag ggcagcccct tcggctggaa ggacatcaaa actatgaggg acctggcgag ggcagcccct tcggctggaa ggacatcaaa
gaatggtacg 1500gaatggtacg 1500
agatgctgat gggccactgc acctacttcc ccgaggaact gcggagcgtg agatgctgat gggccactgc acctacttcc ccgaggaact gcggagcgtg
aagtacgcct 1560aagtacgcct 1560
acaacgccga cctgtacaac gccctgaacg acctgaacaa tctcgtgatc acaacgccga cctgtacaac gccctgaacg acctgaacaa tctcgtgatc
accagggacg 1620accagggacg 1620
agaacgagaa gctggaatat tacgagaagt tccagatcat cgagaacgtg agaacgagaa gctggaatat tacgagaagt tccagatcat cgagaacgtg
ttcaagcaga 1680ttcaagcaga 1680
agaagaagcc caccctgaag cagatcgcca aagaaatcct cgtgaacgaa agaagaagcc caccctgaag cagatcgcca aagaaatcct cgtgaacgaa
gaggatatta 1740gaggatatta 1740
agggctacag agtgaccagc accggcaagc ccgagttcac caacctgaag agggctacag agtgaccagc accggcaagc ccgagttcac caacctgaag
gtgtaccacg 1800gtgtaccacg 1800
acatcaagga cattaccgcc cggaaagaga ttattgagaa cgccgagctg acatcaagga cattaccgcc cggaaagaga ttattgagaa cgccgagctg
ctggatcaga 1860ctggatcaga 1860
ttgccaagat cctgaccatc taccagagca gcgaggacat ccaggaagaa ttgccaagat cctgaccatc taccagagca gcgaggacat ccaggaagaa
ctgaccaatc 1920ctgaccaatc 1920
tgaactccga gctgacccag gaagagatcg agcagatctc taatctgaag tgaactccga gctgacccag gaagagatcg agcagatctc taatctgaag
ggctataccg 1980ggctataccg 1980
gcacccacaa cctgagcctg aaggccatca acctgatcct ggacgagctg gcacccacaa cctgagcctg aaggccatca acctgatcct ggacgagctg
tggcacacca 2040tggcacacca 2040
acgacaacca gatcgctatc ttcaaccggc tgaagctggt gcccaagaag acgacaacca gatcgctatc ttcaaccggc tgaagctggt gcccaagaag
gtggacctgt 2100gtggacctgt 2100
cccagcagaa agagatcccc accaccctgg tggacgactt catcctgagc cccagcagaa agagatcccc accaccctgg tggacgactt catcctgagc
cccgtcgtga 2160cccgtcgtga 2160
agagaagctt catccagagc atcaaagtga tcaacgccat catcaagaag agagaagctt catccagagc atcaaagtga tcaacgccat catcaagaag
tacggcctgc 2220tacggcctgc 2220
ccaacgacat cattatcgag ctggcccgcg agaagaactc caaggacgcc ccaacgacat cattatcgag ctggcccgcg agaagaactc caaggacgcc
cagaaaatga 2280cagaaaatga 2280
tcaacgagat gcagaagcgg aaccggcaga ccaacgagcg gatcgaggaa tcaacgagat gcagaagcgg aaccggcaga ccaacgagcg gatcgaggaa
atcatccgga 2340atcatccgga 2340
ccaccggcaa agagaacgcc aagtacctga tcgagaagat caagctgcac ccaccggcaa agagaacgcc aagtacctga tcgagaagat caagctgcac
gacatgcagg 2400gacatgcagg 2400
aaggcaagtg cctgtacagc ctggaagcca tccctctgga agatctgctg aaggcaagtg cctgtacagc ctggaagcca tccctctgga agatctgctg
aacaacccct 2460aacaacccct 2460
tcaactatga ggtggaccac atcatcccca gaagcgtgtc cttcgacaac tcaactatga ggtggaccac atcatcccca gaagcgtgtc cttcgacaac
agcttcaaca 2520agcttcaaca 2520
acaaggtgct cgtgaagcag gaagaaaaca gcaagaaggg caaccggacc acaaggtgct cgtgaagcag gaagaaaaca gcaagaaggg caaccggacc
ccattccagt 2580ccattccagt 2580
acctgagcag cagcgacagc aagatcagct acgaaacctt caagaagcac acctgagcag cagcgacagc aagatcagct acgaaacctt caagaagcac
atcctgaatc 2640atcctgaatc 2640
tggccaaggg caagggcaga atcagcaaga ccaagaaaga gtatctgctg tggccaaggg caagggcaga atcagcaaga ccaagaaaga gtatctgctg
gaagaacggg 2700gaagaacggg 2700
acatcaacag gttctccgtg cagaaagact tcatcaaccg gaacctggtg acatcaacag gttctccgtg cagaaagact tcatcaaccg gaacctggtg
gataccagat 27602760
acgccaccag aggcctgatg aacctgctgc ggagctactt cagagtgaac acgccaccag aggcctgatg aacctgctgc ggagctactt cagagtgaac
aacctggacg 2820aacctggacg 2820
tgaaagtgaa gtccatcaat ggcggcttca ccagctttct gcggcggaag tgaaagtgaa gtccatcaat ggcggcttca ccagctttct gcggcggaag
tggaagttta 2880tggaagttta 2880
agaaagagcg gaacaagggg tacaagcacc acgccgagga cgccctgatc agaaagagcg gaacaagggg tacaagcacc acgccgagga cgccctgatc
attgccaacg 2940attgccaacg 2940
ccgatttcat cttcaaagag tggaagaaac tggacaaggc caaaaaagtg ccgatttcat cttcaaagag tggaagaaac tggacaaggc caaaaaagtg
atggaaaacc 3000atggaaaacc 3000
agatgttcga ggaaaagcag gccgagagca tgcccgagat cgaaaccgag agatgttcga ggaaaagcag gccgagagca tgcccgagat cgaaaccgag
caggagtaca 3060caggagtaca 3060
aagagatctt catcaccccc caccagatca agcacattaa ggacttcaag aagagatctt catcaccccc caccagatca agcacattaa ggacttcaag
gactacaagt 3120gactacaagt 3120
acagccaccg ggtggacaag aagcctaata gagagctgat taacgacacc acagccaccg ggtggacaag aagcctaata gagagctgat taacgacacc
ctgtactcca 3180ctgtactcca 3180
cccggaagga cgacaagggc aacaccctga tcgtgaacaa tctgaacggc ccgggaagga cgacaagggc aacaccctga tcgtgaacaa tctgaacggc
ctgtacgaca 3240ctgtacgaca 3240
aggacaatga caagctgaaa aagctgatca acaagagccc cgaaaagctg aggacaatga caagctgaaa aagctgatca acaagagccc cgaaaagctg
ctgatgtacc 3300ctgatgtacc 3300
accacgaccc ccagacctac cagaaactga agctgattat ggaacagtac accacgaccc ccagacctac cagaaactga agctgattat ggaacagtac
ggcgacgaga 3360ggcgacgaga 3360
agaatcccct gtacaagtac tacgaggaaa ccgggaacta cctgaccaag agaatcccct gtacaagtac tacgaggaaa ccgggaacta cctgaccaag
tactccaaaa 3420tactccaaaa 3420
aggacaacgg ccccgtgatc aagaagatta agtattacgg caacaaactg aggacaacgg ccccgtgatc aagaagatta agtattacgg caacaaactg
aacgcccatc 3480aacgcccatc 3480
tggacatcac cgacgactac cccaacagca gaaacaaggt cgtgaagctg tggacatcac cgacgactac cccaacagca gaaacaaggt cgtgaagctg
tccctgaagc 3540tccctgaagc 3540
cctacagatt cgacgtgtac ctggacaatg gcgtgtacaa gttcgtgacc cctacagatt cgacgtgtac ctggacaatg gcgtgtacaa gttcgtgacc
gtgaagaatc 3600gtgaagaatc 3600
tggatgtgat caaaaaagaa aactactacg aagtgaatag caagtgctat tggatgtgat caaaaaagaa aactactacg aagtgaatag caagtgctat
gaggaagcta 3660gaggaagcta 3660
agaagctgaa gaagatcagc aaccaggccg agtttatcgc ctccttctac agaagctgaa gaagatcagc aaccaggccg agtttatcgc ctccttctac
aacaacgatc 3720aacaacgatc 3720
tgatcaagat caacggcgag ctgtatagag tgatcggcgt gaacaacgac tgatcaagat caacggcgag ctgtatagag tgatcggcgt gaacaacgac
ctgctgaacc 3780ctgctgaacc 3780
ggatcgaagt gaacatgatc gacatcacct accgcgagta cctggaaaac ggatcgaagt gaacatgatc gacatcacct accgcgagta cctggaaaac
atgaacgaca 3840atgaacgaca 3840
agaggccccc caggatcatt aagacaatcg cctccaagac ccagagcatt agaggccccc caggatcatt aagacaatcg cctccaagac ccagagcatt
aagaagtaca 3900aagaagtaca 3900
gcacagacat tctgggcaac ctgtatgaag tgaaatctaa gaagcaccct gcacagacat tctgggcaac ctgtatgaag tgaaatctaa gaagcaccct
cagatcatca 3960cagatcatca 3960
aaaagggcaa aaggccggcg gccacgaaaa aggccggcca ggcaaaaaag aaaagggcaa aaggccggcg gccacgaaaa aggccggcca ggcaaaaaag
aaaaagggat 4020aaaaagggat 4020
cctacccata cgatgttcca gattacgctt acccatacga tgttccagat cctacccata cgatgttcca gattacgctt acccatacga tgttccagat
tacgcttacc 4080tacgcttacc 4080
catacgatgt tccagattac gcttaagaat tcctagagct cgctgatcag catacgatgt tccagattac gcttaagaat tcctagagct cgctgatcag
cctcgactgt 4140cctcgactgt 4140
gccttctagt tgccagccat ctgttgtttg cccctccccc gtgccttcct gccttctagt tgccagccat ctgttgtttg cccctccccc gtgccttcct
tgaccctgga 4200tgaccctgga 4200
aggtgccact cccactgtcc tttcctaata aaatgaggaa attgcatcgc aggtgccact cccactgtcc tttcctaata aaatgaggaa attgcatcgc
attgtctgag 4260attgtctgag 4260
taggtgtcat tctattctgg ggggtggggt ggggcaggac agcaaggggg taggtgtcat tctattctgg ggggtggggt ggggcaggac agcaaggggg
aggattggga 4320aggattggga 4320
agagaatagc aggcatgctg gggaggtacc gagggcctat ttcccatgat agagaatagc aggcatgctg gggaggtacc gagggcctat ttcccatgat
tccttcatat 4380tccttcatat 4380
ttgcatatac gatacaaggc tgttagagag ataattggaa ttaatttgac ttgcatatac gatacaaggc tgttagagag ataattggaa ttaatttgac
tgtaaacaca 4440tgtaaacaca 4440
aagatattag tacaaaatac gtgacgtaga aagtaataat ttcttgggta aagatattag tacaaaatac gtgacgtaga aagtaataat ttcttgggta
gtttgcagtt 4500gtttgcagtt 4500
ttaaaattat gttttaaaat ggactatcat atgcttaccg taacttgaaa ttaaaattat gttttaaaat ggactatcat atgcttaccg taacttgaaa
gtatttcgat 4560gtatttcgat 4560
ttcttggctt tatatatctt gtggaaagga cgaaacaccg gagaccacgg ttcttggctt tatatatctt gtggaaagga cgaaacaccg gagaccacgg
caggtctcag 4620caggtctcag 4620
ttttagtact ctggaaacag aatctactaa aacaaggcaa aatgccgtgt ttttagtact ctggaaacag aatctactaa aacaaggcaa aatgccgtgt
ttatctcgtc 4680ttatctcgtc 4680
aacttgttgg cgagattttt gcggccgcag gaacccctag tgatggagtt aacttgttgg cgagattttt gcggccgcag gaacccctag tgatggagtt
ggccactccc 4740ggccactccc 4740
tctctgcgcg ctcgctcgct cactgaggcc gggcgaccaa aggtcgcccg tctctgcgcg ctcgctcgct cactgaggcc gggcgaccaa aggtcgcccg
acgcccgggc 4800acgcccgggc 4800
tttgcccggg cggcctcagt gagcgagcga gcgcgcagct gcctgcaggg tttgcccggg cggcctcagt gagcgagcga gcgcgcagct gcctgcaggg
gcgcctgatg 4860gcgcctgatg 4860
cggtattttc tccttacgca tctgtgcggt atttcacacc gcatacgtca cggtattttc tccttacgca tctgtgcggt atttcacacc gcatacgtca
aagcaaccat 4920aagcaaccat 4920
agtacgcgcc ctgtagcggc gcattaagcg cggcgggtgt ggtggttacg agtacgcgcc ctgtagcggc gcattaagcg cggcgggtgt ggtggttacg
cgcagcgtga 4980cgcagcgtga 4980
ccgctacact tgccagcgcc ttagcgcccg ctcctttcgc tttcttccct ccgctacact tgccagcgcc ttagcgcccg ctcctttcgc tttcttccct
tcctttctcg 5040tccttttctcg 5040
ccacgttcgc cggctttccc cgtcaagctc taaatcgggg gctcccttta ccacgttcgc cggctttccc cgtcaagctc taaatcgggg gctcccttta
gggttccgat 5100gggttccgat 5100
ttagtgcttt acggcacctc gaccccaaaa aacttgattt gggtgatggt ttagtgcttt acggcacctc gaccccaaaa aacttgattt gggtgatggt
tcacgtagtg 5160tcacgtagtg 5160
ggccatcgcc ctgatagacg gtttttcgcc ctttgacgtt ggagtccacg ggccatcgcc ctgatagacg gtttttcgcc ctttgacgtt ggagtccacg
ttctttaata 5220ttctttaata 5220
gtggactctt gttccaaact ggaacaacac tcaactctat ctcgggctat gtggactctt gttccaaact ggaacaacac tcaactctat ctcgggctat
tcttttgatt 5280tcttttgatt 5280
tataagggat tttgccgatt tcggtctatt ggttaaaaaa tgagctgatt tataagggat tttgccgatt tcggtctatt ggttaaaaaa tgagctgatt
taacaaaaat 5340taacaaaaat 5340
ttaacgcgaa ttttaacaaa atattaacgt ttacaatttt atggtgcact ttaacgcgaa ttttaacaaa atattaacgt ttacaatttt atggtgcact
ctcagtacaa 5400ctcagtacaa 5400
tctgctctga tgccgcatag ttaagccagc cccgacaccc gccaacaccc tctgctctga tgccgcatag ttaagccagc cccgacaccc gccaacaccc
gctgacgcgc 5460gctgacgcgc 5460
cctgacgggc ttgtctgctc ccggcatccg cttacagaca agctgtgacc cctgacgggc ttgtctgctc ccggcatccg cttacagaca agctgtgacc
gtctccggga 5520gtctccggga 5520
gctgcatgtg tcagaggttt tcaccgtcat caccgaaacg cgcgagacga gctgcatgtg tcagaggttt tcaccgtcat caccgaaacg cgcgagacga
aagggcctcg 5580aagggcctcg 5580
tgatacgcct atttttatag gttaatgtca tgataataat ggtttcttag tgatacgcct atttttatag gttaatgtca tgataataat ggtttcttag
acgtcaggtg 5640acgtcaggtg 5640
gcacttttcg gggaaatgtg cgcggaaccc ctatttgttt atttttctaa gcacttttcg gggaaatgtg cgcggaaccc ctatttgttt atttttctaa
atacattcaa 5700atacattcaa 5700
atatgtatcc gctcatgaga caataaccct gataaatgct tcaataatat atatgtatcc gctcatgaga caataaccct gtaaatgct tcaataatat
tgaaaaagga 5760tgaaaaagga 5760
agagtatgag tattcaacat ttccgtgtcg cccttattcc cttttttgcg agagtatgag tattcaacat ttccgtgtcg cccttattcc cttttttgcg
gcattttgcc 5820gcattttgcc 5820
ttcctgtttt tgctcaccca gaaacgctgg tgaaagtaaa agatgctgaa ttcctgtttt tgctcaccca gaaacgctgg tgaaagtaaa agatgctgaa
gatcagttgg 5880gatcagttgg 5880
gtgcacgagt gggttacatc gaactggatc tcaacagcgg taagatcctt gtgcacgagt gggttacatc gaactggatc tcaacagcgg taagatcctt
gagagttttc 5940gagagttttc 5940
gccccgaaga acgttttcca atgatgagca cttttaaagt tctgctatgt gccccgaaga acgttttcca atgatgagca cttttaaagt tctgctatgt
ggcgcggtat 6000ggcgcggtat 6000
tatcccgtat tgacgccggg caagagcaac tcggtcgccg catacactat tatcccgtat tgacgccggg caagagcaac tcggtcgccg catacactat
tctcagaatg 6060tctcagaatg 6060
acttggttga gtactcacca gtcacagaaa agcatcttac ggatggcatg acttggttga gtactcacca gtcacagaaa agcatcttac ggatggcatg
acagtaagag 6120acagtaagag 6120
aattatgcag tgctgccata accatgagtg ataacactgc ggccaactta aattatgcag tgctgccata accatgagtg ataacactgc ggccaactta
cttctgacaa 6180cttctgacaa 6180
cgatcggagg accgaaggag ctaaccgctt ttttgcacaa catgggggat cgatcggagg accgaaggag ctaaccgctt ttttgcacaa catgggggat
catgtaactc 6240catgtaactc 6240
gccttgatcg ttgggaaccg gagctgaatg aagccatacc aaacgacgag gccttgatcg ttgggaaccg gagctgaatg aagccatacc aaacgacgag
cgtgacacca 6300cgtgacacca 6300
cgatgcctgt agcaatggca acaacgttgc gcaaactatt aactggcgaa cgatgcctgt agcaatggca acaacgttgc gcaaactatt aactggcgaa
ctacttactc 6360ctacttactc 6360
tagcttcccg gcaacaatta atagactgga tggaggcgga taaagttgca tagcttcccg gcaacaatta atagactgga tggaggcggga taaagttgca
ggaccacttc 6420ggaccacttc 6420
tgcgctcggc ccttccggct ggctggttta ttgctgataa atctggagcc tgcgctcggc ccttccggct ggctggttta ttgctgataa atctggagcc
ggtgagcgtg 6480ggtgagcgtg 6480
gaagccgcgg tatcattgca gcactggggc cagatggtaa gccctcccgt gaagccgcgg tatcattgca gcactggggc cagatggtaa gccctcccgt
atcgtagtta 6540atcgtagtta 6540
tctacacgac ggggagtcag gcaactatgg atgaacgaaa tagacagatc tctacacgac ggggagtcag gcaactatgg atgaacgaaa tagacagatc
gctgagatag 6600gctgagatag 6600
gtgcctcact gattaagcat tggtaactgt cagaccaagt ttactcatat gtgcctcact gattaagcat tggtaactgt cagaccaagt ttactcatat
atactttaga 6660atactttaga 6660
ttgatttaaa acttcatttt taatttaaaa ggatctaggt gaagatcctt ttgatttaaa acttcatttt taatttaaaa ggatctagggt gaagatcctt
tttgataatc 6720tttgataatc 6720
tcatgaccaa aatcccttaa cgtgagtttt cgttccactg agcgtcagac tcatgaccaa aatcccttaa cgtgagtttt cgttccactg agcgtcagac
cccgtagaaa 67806780
agatcaaagg atcttcttga gatccttttt ttctgcgcgt aatctgctgc agatcaaagg atcttcttga gatcctttttt ttctgcgcgt aatctgctgc
ttgcaaacaa 6840ttgcaaacaa 6840
aaaaaccacc gctaccagcg gtggtttgtt tgccggatca agagctacca aaaaaccacc gctaccagcg gtggtttgtt tgccggatca agagctacca
actctttttc 6900actctttttc 6900
cgaaggtaac tggcttcagc agagcgcaga taccaaatac tgttcttcta cgaaggtaac tggcttcagc agagcgcaga taccaaatac tgttcttcta
gtgtagccgt 6960gtgtagccgt 6960
agttaggcca ccacttcaag aactctgtag caccgcctac atacctcgct agttaggcca ccacttcaag aactctgtag caccgcctac atacctcgct
ctgctaatcc 7020ctgctaatcc 7020
tgttaccagt ggctgctgcc agtggcgata agtcgtgtct taccgggttg tgttaccagt ggctgctgcc agtggcgata agtcgtgtct taccgggttg
gactcaagac 7080gactcaagac 7080
gatagttacc ggataaggcg cagcggtcgg gctgaacggg gggttcgtgc gatagttacc ggataaggcg cagcggtcgg gctgaacggg gggttcgtgc
acacagccca 7140acacagccca 7140
gcttggagcg aacgacctac accgaactga gatacctaca gcgtgagcta gcttggagcg aacgacctac accgaactga gatacctaca gcgtgagcta
tgagaaagcg 7200tgagaaagcg 7200
ccacgcttcc cgaagggaga aaggcggaca ggtatccggt aagcggcagg ccacgcttcc cgaagggaga aaggcggaca ggtatccggt aagcggcagg
gtcggaacag 7260gtcggaacag 7260
gagagcgcac gagggagctt ccagggggaa acgcctggta tctttatagt gagagcgcac gagggagctt ccagggggaa acgcctggta tctttatagt
cctgtcgggt 7320cctgtcgggt 7320
ttcgccacct ctgacttgag cgtcgatttt tgtgatgctc gtcagggggg ttcgccacct ctgacttgag cgtcgatttt tgtgatgctc gtcagggggg
cggagcctat 7380cggagcctat 7380
ggaaaaacgc cagcaacgcg gcctttttac ggttcctggc cttttgctgg ggaaaaacgc cagcaacgcg gccttttttac ggttcctggc cttttgctgg
ccttttgctc 7440ccttttgctc 7440
acatgt acatgt
7446 7446
Sequence Number (ID): 2 Sequence Number (ID): 2
Length: 26 Length: 26
Molecule Type: RNA Molecule Type: RNA
Features Location/Qualifiers: Features Location/Qualifiers:
- source, 1..26 - source, 1..26
> mol_type, other RNA > mol_type, other RNA
> organism, Bos taurus > organism, Bos taurus
Residues: residences:
gatgctcact caccttgaac cagagt gatgctcact caccttgaac cagagt
26 26
Sequence Number (ID): 3 Sequence Number (ID): 3
Length: 22 Length: 22
Molecule Type: DNA Molecule Type: DNA
Features Location/Qualifiers: Features Location/Qualifiers:
- source, 1..22 - source, 1..22
> mol_type, other DNA > mol_type, other DNA
> organism, synthetic construct > organisms, synthetic constructs
Residues: Residents:
tgaacacaag gagccagatg ac tgaacacaag gagccagatg ac
22 22
Sequence Number (ID): 4 Sequence Number (ID): 4
Length: 20 Length: 20
Molecule Type: DNA Molecule Type: DNA
Features Location/Qualifiers: Features Location/Qualifiers:
- source, 1..20 - source, 1..20
> mol_type, other DNA > mol_type, other DNA
> organism, synthetic construct > organisms, synthetic constructs
Residues: Residents:
gcactgaccc tgagccaaat gcactgaccc tgagccaaat
20 20
Sequence Number (ID): 5 Sequence Number (ID): 5
Length: 25 Length: 25
Molecule Type: DNA Molecule Type: DNA
Features Location/Qualifiers: Features Location/Qualifiers:
- source, 1..25 - source, 1..25
> mol_type, other DNA > mol_type, other DNA
> organism, synthetic construct > organisms, synthetic constructs
Residues: Residents:
caccgcctca aactgtgtag tggtc caccgcctca aactgtgtag tggtc
25 25
Sequence Number (ID): 6 Sequence Number (ID): 6
Length: 25 Length: 25
Molecule Type: DNA Molecule Type: DNA
Features Location/Qualifiers: Features Location/Qualifiers:
- source, 1..25 - source, 1..25
> mol_type, other DNA > mol_type, other DNA
> organism, synthetic construct > organisms, synthetic constructs
Residues: Residents:
aaacgaccac tacacagttt gaggc aaacgaccac tacacagttt gaggc
25 25
Sequence Number (ID): 7 Sequence Number (ID): 7
Length: 21 Length: 21
Molecule Type: DNA Molecule Type: DNA
Features Location/Qualifiers: Features Location/Qualifiers:
- source, 1..21 - source, 1..21
> mol_type, other DNA > mol_type, other DNA
> organism, synthetic construct > organisms, synthetic constructs
Residues: Residents:
gagggcctat ttcccatgat t gagggcctat ttcccatgat t
21 21
<---<---
Claims (6)
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2800917C1 true RU2800917C1 (en) | 2023-08-01 |
Family
ID=
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20210181215A1 (en) * | 2017-10-31 | 2021-06-17 | The University Court Of The University Of Aberdeen | Treatment and diagnosis of anaemia |
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20210181215A1 (en) * | 2017-10-31 | 2021-06-17 | The University Court Of The University Of Aberdeen | Treatment and diagnosis of anaemia |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
DEYKIN A.V. et al.:"Using CRISPR/Cas9 for generation the cd209 knockout is a way to get cattle breeds resistant to the Bovine leukemia virus", INSISA: E3S Web of Conferences, 2020, 176, 01007. * |
OWEN J.R. et al.: "One-step generation of a targeted knock-in calf using the CRISPR-Cas9 system in bovine zygotes", BMC Genomics, 2021, v. 22(118): 1-11. HASKELL R.E. et al.: "Efficient production of transgenic cattle by retroviral infection of early embryos", Mol. Reprod. Dev., 1995, v.40: 386-390. ДЕЙКИН А.В.: "Современные подходы и перспективы использования технологии модификации генома при моделировании патологических состояний человека на животных моделях", RUSSIAN SCIENTIST, 2017, т.1 (2): 16-17. McGreal E.P. et al.: "Ligand recognition by antigen-presenting cell C-type lectin receptors", Curr. Opin. Immunol., 2005, v. 17: 18-24. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US11827910B2 (en) | Delivery of CAS9 via ARRDC1-mediated microvesicles (ARMMs) | |
CN107619829B (en) | The method that GINS2 gene knockouts are carried out to mescenchymal stem cell using CRISPR-CAS systems | |
CN107760684B (en) | The method that RBM17 gene knockouts are carried out to mescenchymal stem cell using CRISPR-CAS systems | |
CN111108207A (en) | Genome editing means for gene therapy of genetic disorders and gene therapy in combination with viral vectors | |
KR102096731B1 (en) | Compositions and methods for inhibiting endogenous immunoglobulin genes and producing transgenic human idiotype antibodies | |
KR20210149060A (en) | RNA-induced DNA integration using TN7-like transposons | |
TW201026322A (en) | Methods and compositions for use of a coccidiosis vaccine | |
CN1468250A (en) | Production of humanized antibodies in transgenic animals | |
CN106520709A (en) | Anterograde monosynaptic transneuronal tracking system | |
CN113444179B (en) | anti-GPC 3antibody and pharmaceutical composition containing same | |
CN112159809B (en) | gRNA of target CTGF gene and application thereof | |
CN109843303A (en) | The primary B cell and its preparation and application of genome editor | |
CN111139233A (en) | Broad-spectrum neutralizing anti-EV 71, CA16, CA10 and CA6 human-mouse chimeric IgM monoclonal antibody and application | |
CN101646774A (en) | Be used to produce albumen, particularly treat with proteic high transcriptional activity cell strain | |
RU2800917C1 (en) | Method of obtaining a knockout of the cd209 gene in bos taurus embryos by transducing zygotes with adeno-associated viruses encoding sacas9 and the corresponding guide rna | |
US20020055172A1 (en) | Multiple promoter expression constructs and methods of use | |
CN110964725A (en) | sgRNA for specifically identifying pig KIT gene and coding DNA, KIT and application thereof | |
CN115212297A (en) | Genetically engineered medicine for treating inflammatory arthritis and preparation method thereof | |
CN103149110A (en) | Method for detecting bitter substance dina based on receptor sensor | |
KR20230107335A (en) | Multi-transgenic pigs with growth hormone receptor knockout for xenotransplantation | |
CN1274814C (en) | Method for raising efficiency for producing transgenic animal | |
CN111518221B (en) | Recombinant IL-15 fusion protein and application thereof | |
CN113227386A (en) | KIR7.1 gene therapy vectors and methods of use thereof | |
CN114774468B (en) | Allele molecular marker and anti-blue-ear-disease pig group construction method | |
CN107778364B (en) | N L RP7 gene affecting early embryonic development of sheep and application thereof |