RU2795460C1 - Method for determining dnase activity in real time - Google Patents
Method for determining dnase activity in real time Download PDFInfo
- Publication number
- RU2795460C1 RU2795460C1 RU2021138490A RU2021138490A RU2795460C1 RU 2795460 C1 RU2795460 C1 RU 2795460C1 RU 2021138490 A RU2021138490 A RU 2021138490A RU 2021138490 A RU2021138490 A RU 2021138490A RU 2795460 C1 RU2795460 C1 RU 2795460C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- dnase activity
- substrate
- dnase
- intercalating dye
- reaction
- Prior art date
Links
Images
Abstract
Description
Область техникиTechnical field
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к молекулярной биологии и медицинской микробиологии и может быть использовано как в научно-исследовательской, так и в практической работе для определения наличия ДНКазной активности в образцах и бактериологической диагностики ряда микроорганизмов.The invention relates to biotechnology, in particular to molecular biology and medical microbiology, and can be used both in research and practical work to determine the presence of DNase activity in samples and bacteriological diagnosis of a number of microorganisms.
Уровень техникиState of the art
ДНКазы - это ферменты, которые расщепляет ДНК по фосфодиэфирным связям на олигонуклеотидные фрагменты или отдельные нуклеотиды.DNases are enzymes that cleave DNA at phosphodiester bonds into oligonucleotide fragments or single nucleotides.
Тест на определение ДНКазной активности является распространенным для идентификации патогенных микроорганизмов [Gerceker и др., 2009].The test for the determination of DNase activity is common for the identification of pathogenic microorganisms [Gerceker et al., 2009].
Ряд клинически значимых эукариотических и прокариотических микроорганизмов продуцируют ДНКазы как факторы вирулентности. К ним относятся грамположительные бактериальные патогены, такие как Staphylococcus aureus, и виды стрептококков, такие как Streptococcus pyogenes [Berends и др., 2010].A number of clinically significant eukaryotic and prokaryotic microorganisms produce DNases as virulence factors. These include gram-positive bacterial pathogens such as Staphylococcus aureus and streptococcal species such as Streptococcus pyogenes [Berends et al., 2010].
В настоящее время существуют разнообразные методики и среды для определения дезоксирибинуклеазной (ДНКазной) активности.Currently, there are various methods and media for the determination of deoxyribinuclease (DNase) activity.
1. Методика Калиниченко Н.Ф., Овчаренко О.И., Бирюкова С.В. «Об определении ДНКазы у микроорганизмов» (ЖМЭИ, 1968, №12, с. 11-14); Изобретение SU 1693058 А1 (Кишиневский государственный медицинский университет) 23.11.1991 «Способ определения ДНКазной активности микроорганизмов»; Изобретение RU 2684721 С1 (Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Тихоокеанский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (RU) 11.04.2019 «Питательная среда для определения ДНКазной активности у патогенных грамположительных бактерий»; Приказ Минздрава СССР от 22.04.1985 №535 «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений описана среда для определения ДНКазной активности бактерий»; Экспресс-метод на чашках с агаром предложенный [JEFFRIES, HOLTMAN, GUSE, 1957]; Шрайер модифицировал ДНКазный тест-агар, в котором для определения активности ДНКазы используется толуидиновый синий [Schreier, 1969]; Дезоксирибонуклеат-агар с акридиновым оранжевым предложен [Detection of nuclease activity in semisolid and broth cultures - PubMed,] для определения нуклеазной активности и множество других коммерчески представленных сред, содержащих в своем составе ДНК-агар. Эти тесты имеют ряд недостатков, в том числе длительное время для просмотра результатов ДНКазной активности бактерий и дороговизна использованных компонентов.1. Methods Kalinichenko N.F., Ovcharenko O.I., Biryukova S.V. "On the determination of DNase in microorganisms" (ZHMEI, 1968, No. 12, pp. 11-14); Invention SU 1693058 A1 (Chisinau State Medical University) 11/23/1991 "Method for determining the DNase activity of microorganisms"; Invention RU 2684721 C1 (Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education "Pacific State Medical University" of the Ministry of Health of the Russian Federation (RU) 04/11/2019 "Nutritious medium for determining DNase activity in pathogenic gram-positive bacteria"; Order of the USSR Ministry of Health dated 04/22/1985 No. 535 "About the unification of microbiological (bacteriological) research methods used in clinical diagnostic laboratories of medical institutions, a medium for determining the DNase activity of bacteria is described"; Express method on agar plates proposed by [JEFFRIES, HOLTMAN, GUSE, 1957]; Schreier modified DNase test agar, which uses toluidine blue to detect DNase activity [Schreier, 1969]; Detection of nuclease activity in semisolid and broth cultures - PubMed,] to determine nuclease activity, and many other commercially available media containing DNA agar. These tests have a number of disadvantages, including a long time to review the results of the DNase activity of bacteria and the high cost of the components used.
2. Еще одним аналогом заявляемого изобретения по совокупности признаков является метод, представленный [Gerceker и др., 2009] как экспресс-тест для обнаружения ДНКазной активности микроорганизмов: «ДНКазная пробирка». В этом методе бактерии добавляют в бульонную среду, содержащую ДНК, и отслеживается деградация ДНК, вызванная ДНКазой бактерией, путем прогона электрофореза в агарозном геле. Однако данный метод позволяет наблюдать ДНКазную активность в реальном времени.2. Another analogue of the claimed invention in terms of the combination of features is the method presented by [Gerceker et al., 2009] as a rapid test for the detection of DNase activity of microorganisms: "DNase tube". In this method, bacteria are added to a broth medium containing DNA and DNA degradation caused by a DNase bacterium is monitored by running agarose gel electrophoresis. However, this method makes it possible to observe DNase activity in real time.
3. Наиболее близким аналогом заявляемого изобретения по совокупности признаков является метод представленный [Е и др., 2019] в исследовании с использованием флуоресцентно меченых олигонуклеотидов для диагностики микроорганизмов, продуцирующих нуклеазы, однако исследователи предложили самозамыкающиеся шпильки, использование которых может коммерчески не выгодно.3. The closest analogue of the claimed invention in terms of the set of features is the method presented [E et al., 2019] in a study using fluorescently labeled oligonucleotides for the diagnosis of microorganisms producing nucleases, however, the researchers proposed self-locking hairpins, the use of which may not be commercially profitable.
Изобретение решает задачу определения наличия неспецифической ДНКазной активности в режиме реального времени.The invention solves the problem of determining the presence of non-specific DNase activity in real time.
Поставленная задача решается за счет того, что:The task is solved due to the fact that:
1. Предлагается анализировать ДНКазную активность на субстрате, полученном отжигом двух взаимокомплементарных олигонуклеотидов (один олигонуклеотид содержит на 5'-конце флуоресцентный краситель, тогда как на 3'-конце второго находится гаситель флуоресценции).1. It is proposed to analyze DNase activity on a substrate obtained by annealing two mutually complementary oligonucleotides (one oligonucleotide contains a fluorescent dye at the 5'-end, while a fluorescence quencher is located at the 3'-end of the second).
2. Предлагается использовать в качестве субстрата сверхспирализованную плазмидную ДНК в присутствии интеркалирующего красителя.2. It is proposed to use supercoiled plasmid DNA as a substrate in the presence of an intercalating dye.
3. Предлагается использовать в качестве субстрата ДНК олигонуклеотиды, в присутствии интеркалирующего красителя3. It is proposed to use oligonucleotides as a DNA substrate in the presence of an intercalating dye
Технический результат данного изобретения заключается в определении наличия неспецифической ДНКазной активности в режиме реального времени.The technical result of this invention is to determine the presence of non-specific DNase activity in real time.
Для решения технической проблемы и достижения заявленного технического результата предлагается анализировать ДНКазную активность на субстрате, полученном отжигом двух взаимокомплементарных олигонуклеотидов (один олигонуклеотид содержит на 5'-конце флуоресцентный краситель, тогда как на 3'-конце второго находится гаситель флуоресценции).To solve the technical problem and achieve the claimed technical result, it is proposed to analyze the DNase activity on a substrate obtained by annealing two complementary oligonucleotides (one oligonucleotide contains a fluorescent dye at the 5'-end, while a fluorescence quencher is located at the 3'-end of the second).
Предлагается также использовать в качестве субстрата сверхспирализованную плазмидную ДНК, в присутствии интеркалирующего красителя.It is also proposed to use supercoiled plasmid DNA as a substrate in the presence of an intercalating dye.
Предлагается также использовать в качестве субстрата ДНК олигонуклеотиды, в присутствии интеркалирующего красителя.It is also proposed to use oligonucleotides as a DNA substrate in the presence of an intercalating dye.
Технический результат достигается путем использования субстрата, полученного путем отжига двух взаимокомплементарных олигонуклеотидов: один олигонуклеотид содержит на 3'-конце флуоресцентный краситель, тогда как на 3'-конце второго находится находился гаситель флуоресценции. Равновесная смесь пары олигонуклеотидов в буфере, содержащим (10 мМ Трис-HCl рН 8,0, 25 мМ NaCl), подвергается нагреву в кипящей водяной бане в течении 3 мин. В пробирки, предназначенные для проведения реакции ПЦР в реальном времени, вносится субстрат флуоресцентно-меченных олигонуклеотидов, образец, а также реакционный буфер для работы ДНКазы, включающий кофакторы и необходимую буферную систему для поддержания рН в реакционной смеси. Реакция гидролиза флуоресцентно-меченных олигонуклеотидов детектируется в режиме реального времени в соответствующем ПЦР-приборе при оптимальной температуре для работы фермента.The technical result is achieved by using a substrate obtained by annealing two complementary oligonucleotides: one oligonucleotide contains a fluorescent dye at the 3'-end, while a fluorescence quencher is located at the 3'-end of the second. An equilibrium mixture of a pair of oligonucleotides in buffer containing (10 mM Tris-HCl pH 8.0, 25 mM NaCl) is heated in a boiling water bath for 3 minutes. A substrate of fluorescently labeled oligonucleotides, a sample, as well as a reaction buffer for DNase activity, including cofactors and the necessary buffer system to maintain pH in the reaction mixture, are introduced into tubes intended for real-time PCR reactions. The hydrolysis reaction of fluorescently labeled oligonucleotides is detected in real time in an appropriate PCR instrument at the optimum temperature for enzyme operation.
Технический результат также достигается путем использования субстрата плазмидной ДНК в присутствии интеркалирующего красителя. В пробирки, предназначенные для проведения реакции ПЦР в реальном времени, вноситься смесь, содержащая плазмидный субстрат, прошедший инкубацию с интеркалирующим красителем EVA Green, образец, свободный от РНК, а также реакционный буфер для работы ДНКазы, включающий кофакторы и необходимую буферную систему для поддержания рН в реакционной смеси. Реакция гидролиза плазмидной ДНК детектируется в режиме реального времени в соответствующем ПЦР-приборе при оптимальной температуре для работы фермента.The technical result is also achieved by using a plasmid DNA substrate in the presence of an intercalating dye. A mixture containing a plasmid substrate that has been incubated with the EVA Green intercalating dye, an RNA-free sample, and a reaction buffer for DNase activity, including cofactors and the necessary buffer system to maintain pH in the reaction mixture. The plasmid DNA hydrolysis reaction is detected in real time in an appropriate PCR instrument at the optimum temperature for enzyme operation.
Технический результат также достигается путем использования субстрата ДНК олигонуклеотидов в присутствии интеркалирующего красителя. Равновесная смесь пары олигонуклеотидов в буфере, содержащем 10 мМ Трис-HCl рН 8,0, 25 мМ NaCl, подвергается нагреву в кипящей водяной бане в течении 3 мин. В пробирки, предназначенные для проведения реакции ПЦР в реальном времени, вносится смесь, содержащая ДНК олигонуклеотидный субстрат, прошедший инкубацию с интеркалирующим красителем EVA Green, образец свободный от РНК, а также реакционный буфер для работы ДНКазы, включающий кофакторы и необходимую буферную систему для поддержания рН в реакционной смеси. Реакция гидролиза ДНК олигонуклеотидного субстрата детектируется в режиме реального времени в соответствующим ПЦР-приборе при оптимальной температуре для работы фермента.The technical result is also achieved by using the DNA substrate of oligonucleotides in the presence of an intercalating dye. An equilibrium mixture of a pair of oligonucleotides in a buffer containing 10 mM Tris-HCl pH 8.0, 25 mM NaCl is heated in a boiling water bath for 3 minutes. A mixture containing a DNA oligonucleotide substrate that has been incubated with the EVA Green intercalating dye, an RNA-free sample, and a reaction buffer for DNase activity, including cofactors and the necessary buffer system to maintain pH in the reaction mixture. The DNA hydrolysis reaction of the oligonucleotide substrate is detected in real time in an appropriate PCR instrument at the optimum temperature for enzyme operation.
Изобретение иллюстрируется нижеследующими примерамиThe invention is illustrated by the following examples.
Пример 1.Example 1
Готовилась смесь пары олигонуклеотидов, представленных в таблице 1 () по 10 мкМ каждого олигонуклеотида в буфере, содержащем 10 мМ Трис-HCl рН 8,0, 25 мМ NaCl. Данная смесь прогревалась в кипящей водяной бане в течении 3 мин, после чего она остывала до комнатной температуры.Prepared a mixture of a pair of oligonucleotides presented in table 1 () 10 μm of each oligonucleotide in a buffer containing 10 mm Tris-HCl pH 8.0, 25 mm NaCl. This mixture was heated in a boiling water bath for 3 min, after which it cooled to room temperature.
Пример 2.Example 2
Готовилась смесь пары олигонуклеотидов, представленных в таблице 2 по 10 мкМ каждого олигонуклеотида в буфере, содержащем 10 мМ Трис-HCl рН 8,0, 25 мМ NaCl. Данная смесь прогревалась в кипящей водяной бане в течении 3 мин, после чего она остывала до комнатной температуры.Prepared a mixture of a pair of oligonucleotides presented in table 2, 10 μm of each oligonucleotide in a buffer containing 10 mm Tris-HCl pH 8.0, 25 mm NaCl. This mixture was heated in a boiling water bath for 3 min, after which it cooled to room temperature.
Пример 3.Example 3
В тонкостенные пробирки на 100 мкл вносилась смесь объемом 25 мкл, содержащая 7 мкл субстрата флуоресцентно-меченных олигонуклеотидов до концентрации 2,8 мкМ, 1 мкл исследуемого образца с ферментативным препаратом ДНКазы колицин Е9 с концентрациями в реакционной смеси 0,8 мкМ, 0,4 мкМ, 0,2 мкМ, а также 2,5 мкл реакционного буфера для работы, включающий кофакторы и необходимую буферную систему для поддержания рН в реакционной смеси концентрация буфера в реакционной смеси (трис-HCl 50 мМ, NaCl 80 мМ, MgCl2 10 мМ). Реакцию гидролиза флуоресцентно-меченных олигонуклеотидов детектировали в режиме реального времени в соответствующем ПЦР-приборе при температуре 30°. Результаты представлены на фигуре 1: график выхода флуоресценции при инкубации флуоресцентно-меченных олигонуклеотидов с 1-0,8 мкМ, 0,5-0,4 мкМ, 0,1-0,2 мкМ ДНКазы. (ROX+Q) - флуоресцентно-меченные олигонуклеотиды; (ROX+колицин) - ДНКаза с флуоресцентно-меченным олигонуклеотидом R-SD10 up (Rox).A mixture of 25 µL containing 7 µL of the substrate of fluorescently labeled oligonucleotides to a concentration of 2.8 µM, 1 µL of the test sample with the enzymatic preparation of DNase colicin E9 with concentrations in the reaction mixture of 0.8 µM, 0.4 μM, 0.2 μM, as well as 2.5 μl of the reaction buffer for work, including cofactors and the necessary buffer system to maintain pH in the reaction mixture, the concentration of the buffer in the reaction mixture (Tris-
Пример 4.Example 4
В тонкостенные пробирки на 100 мкл вносилась смесь объемом 25 мкл, содержащая 2,5 мкл плазмидного pRSF-Duet-1 субстрата до конечной концентрации в реакционной смеси 8 нМ, прошедшего инкубацию в течение 30 минут с 2,25 мкМ интеркалирующим красителем EVA Green, 1 мкл исследуемого образца с ферментативным препаратом ДНКазы колицин Е9 с концентрациями в реакционной смеси 0,8 мкМ, 0,4 мкМ, 0,24 мкМ, а также 2,5 мкл реакционного буфера для работы, включающего кофакторы и необходимую буферную систему для поддержания рН в реакционной смеси концентрация буфера в реакционной смеси (трис-HCl 50 мМ, NaCl 80 мМ, MgCl2 10 мМ). Реакцию гидролиза плазмидного субстрата детектировали в режиме реального времени в соответствующем ПЦР-приборе при температуре 30°. Результаты представлены на фигуре 2: график падения выхода флуоресценции в зависимости от времени при внесении 0,1-0,08 мкМ ДНКазы к 200 нг субстрата, 0,3*2000,24 мкМ ДНКазы к 200 нг субстрата, 0,5*200-0,4 мкМ ДНКазы к 200 нг субстрата, (краситель + колицин) - субстрат с EVA Green; (плазмида без колицина) - EVA Green с ДНКазой без ДНК.A 25 µl mixture containing 2.5 µl of pRSF-Duet-1 plasmid substrate was added to 100 µl thin-walled tubes to a final concentration in the reaction mixture of 8 nM, which was incubated for 30 minutes with 2.25 µM intercalating dye EVA Green, 1 µl of the test sample with the enzyme preparation of DNase colicin E9 with concentrations in the reaction mixture of 0.8 µM, 0.4 µM, 0.24 µM, as well as 2.5 µl of the reaction buffer for work, including cofactors and the necessary buffer system to maintain pH in reaction mixture buffer concentration in the reaction mixture (Tris-
Пример 5.Example 5
В тонкостенные пробирки на 100 мкл вносилась смесь объемом 25 мкл, содержащая 1 мкл ДНК олигонуклеотидного субстрата до конечной концентрации в реакционной смеси 0,20 мкМ субстрата, прошедшего инкубацию в течение 30 минут с 2,25 мкМ интеркалирующим красителем EVA Green, 1 мкл исследуемого образца с ферментативным препаратом ДНКазы колицин Е9 с концентрациями в реакционной смеси 0,8 мкМ, 0,32 мкМ, 1,6 мкМ, а также 2,5 мкл реакционного буфера для работы, включающего кофакторы и необходимую буферную систему для поддержания рН в реакционной смеси концентрация буфера в реакционной смеси (трис-HCl 50 мМ, NaCl 80 мМ, MgCl2 10 мМ). Реакцию гидролиза олигонуклеотидного субстрата детектировали в режиме реального времени в соответствующим ПЦР-приборе при температуре 30°. Результаты представлены на фигуре 3: график падения выхода флуоресценции в зависимости от времени при различном количестве ДНКазы: 0,8; 0,32, 0,16 мкМ; ДНКазы на 0,25 мкМ субстрата. (K-) - субстрат с интеркалирующим красителем; (K+) - интеркалирующий красителеь с ДНКазой.A mixture of 25 µl containing 1 µl of oligonucleotide substrate DNA was added to thin-walled test tubes per 100 µl to a final concentration in the reaction mixture of 0.20 µM of the substrate, which was incubated for 30 minutes with 2.25 µM of the EVA Green intercalating dye, 1 µl of the test sample with the enzymatic preparation of DNase colicin E9 with concentrations in the reaction mixture of 0.8 μM, 0.32 μM, 1.6 μM, as well as 2.5 μl of the reaction buffer for work, including cofactors and the necessary buffer system to maintain pH in the reaction mixture concentration buffer in the reaction mixture (Tris-
Пример 6.Example 6
В тонкостенные пробирки на 100 мкл вносилась смесь объемом 25 мкл, содержащая 7 мкл субстрата флуоресцентно-меченных олигонуклеотидов до концентрации 2,8 мкМ, 5 мкл образца культуральной жидкости Staphylococcus aureus, а также 2,5 мкл реакционного буфера для работы, включающего кофакторы и необходимую буферную систему для поддержания рН в реакционной смеси концентрация буфера в реакционной смеси (трис-HCl 50 мМ, NaCl 10 мМ, CaCl2 10 мМ). Реакцию гидролиза флуоресцентно-меченных олигонуклеотидов детектировали в режиме реального времени в соответствующим ПЦР-приборе при температуре 30°. Результаты на фигуре 4: График сигнала флюоресценции в образцах с флуоресцентно-меченными олигонуклеотидами: RQ - субстрат в присутствии культуральной жидкости St. aureus; (K-) - флуоресцентно-меченные олигонуклеотиды со средой LB; (K+) - культуральная жидкость St. aureus с флуоресцентно-меченным олигонуклеотидом R-SD10 up (Rox).A 25 µl mixture containing 7 µl of a substrate of fluorescently labeled oligonucleotides to a concentration of 2.8 µM, 5 µl of a Staphylococcus aureus culture liquid sample, and 2.5 µl of reaction buffer for work, including cofactors and the necessary buffer system to maintain pH in the reaction mixture buffer concentration in the reaction mixture (Tris-
Пример 7.Example 7
В тонкостенные пробирки на 100 мкл вносилась смесь объемом 25 мкл, содержащая 2,5 мкл плазмидного pRSF-Duet-1 субстрата до конечной концентрации в реакционной смеси 8 нМ, прошедшего инкубацию в течение 30 минут с 2,25 мкМ интеркалирующим красителем EVA Green, 5 мкл образца культуральной жидкости Staphylococcus aureus, прошедшего инкубацию с РНКазой А до полного гидролиза РНК присутствующей в питательной среде, а также 2,5 мкл реакционного буфера для работы, включающего кофакторы и необходимую буферную систему для поддержания рН в реакционной смеси концентрация буфера в реакционной смеси (трис-HCl 50 мМ, NaCl 10 мМ, CaCl2 10 мМ). Реакцию гидролиза плазмидного субстрата детектировали в режиме реального времени в соответствующем ПЦР-приборе при температуре 30°. Результаты на фигуре 5: График сигнала флюоресценции в образцах с 100 нг плазмидной ДНК pRSFDuet-1, красителем EVA Green 2,25 скМ в присутствии культуральной жидкости: St. aureus и щелочного буфера; (О-) - соответствующий образец в отсутствии субстрата; (K+) - соответствующий образец в отсутствии субстрата и интеркалирующего красителя; (K-)- субстрат с интеркалирующим красителем и средой LB; (KC) - интеркалирующий краситель со средой LB; (С) - среда LB; (Е) - интеркалирующий краситель.A mixture of 25 µl containing 2.5 µl of the plasmid pRSF-Duet-1 substrate was added to thin-walled tubes per 100 µl to a final concentration in the reaction mixture of 8 nM, which was incubated for 30 minutes with 2.25 µM of intercalating dye EVA Green, 5 µl of a sample of the cultural liquid of Staphylococcus aureus, which was incubated with RNase A until complete hydrolysis of the RNA present in the nutrient medium, as well as 2.5 µl of the reaction buffer for work, including cofactors and the necessary buffer system to maintain pH in the reaction mixture buffer concentration in the reaction mixture ( tris-
Пример 8.Example 8
В тонкостенные пробирки на 100 мкл вносилась смесь объемом 25 мкл, содержащая 1 мкл ДНК олигонуклеотидного субстрата до конечной концентрации в реакционной смеси 0,20 мкМ субстрата, прошедшего инкубацию в течение 30 минут с 2,25 мкМ интеркалирующим красителем EVA Green, 5 мкл образца культуральной жидкости Staphylococcus aureus, прошедшего инкубацию с РНКазой А до полного гидролиза РНК присутствующей в питательной среде, а также 2,5 мкл реакционного буфера для работы, включающего кофакторы и необходимую буферную систему для поддержания рН в реакционной смеси концентрация буфера в реакционной смеси (трис-HCl 50 мМ, NaCl 10 мМ, CaCl2 10 мМ). Реакцию гидролиза олигонуклеотидного субстрата детектировали в режиме реального времени в соответствующем ПЦР-приборе при температуре 30°. Результаты представлены на фигуре 6: График сигнала флюоресценции в образцах с 2,8 μMol олигонуклеотидами, красителем EVA Green 2,25 мкМ в присутствии культуральной жидкости St. aureus и щелочного буфера; (О-) - соответствующий образец в отсутствии субстрата; (K+) -соответствующий образец в отсутствии субстрата и интеркалирующего красителя; (K-)- субстрат с интеркалирующим красителем и средой LB; (KC) - интеркалирующий краситель со средой LB; (С) - среда LB;; (Е) - интеркалирующий краситель.A mixture of 25 µl containing 1 µl of DNA of the oligonucleotide substrate was added to thin-walled tubes per 100 µl to a final concentration in the reaction mixture of 0.20 µM of the substrate, which was incubated for 30 minutes with 2.25 µM of the intercalating dye EVA Green, 5 µl of the culture sample. liquid of Staphylococcus aureus, which was incubated with RNase A until complete hydrolysis of the RNA present in the nutrient medium, as well as 2.5 μl of the reaction buffer for work, including cofactors and the necessary buffer system to maintain pH in the reaction mixture, the concentration of the buffer in the reaction mixture (Tris-
ЛитератураLiterature
1. Berends Е.Т.М. и др. Nuclease expression by Staphylococcus aureus facilitates escape from neutrophil extracellular traps // J. Innate Immun. 2010. T. 2. №6. C. 576-586.1. Berends E.T.M. Nuclease expression by Staphylococcus aureus facilitates escape from neutrophil extracellular traps // J. Innate Immun. 2010. T. 2. No. 6. C. 576-586.
2. E M. и др. Oligomer based real-time detection of microorganisms producing nuclease enzymes // Analyst. 2019. T. 144. №4. C. 1379-1385.2. E M. et al. Oligomer based real-time detection of microorganisms producing nuclease enzymes // Analyst. 2019. T. 144. No. 4. C. 1379-1385.
3. Gerceker D. и др. A new, simple, rapid test for detection of DNase activity of microorganisms: DNase Tube test // J. Gen. Appl. Microbiol. 2009. T. 55. №4. C. 291-294.3. Gerceker D. et al. A new, simple, rapid test for detection of DNase activity of microorganisms: DNase Tube test // J. Gen. Appl. microbiol. 2009. T. 55. No. 4. C. 291-294.
4. JEFFRIES CD., HOLTMAN D.F., GUSE D.G. Rapid method for determining the activity of microorganisms on nucleic acids. // J. Bacteriol. 1957. T. 73. №4. С. 590-591.4. JEFFRIES CD., HOLTMAN D.F., GUSE D.G. Rapid method for determining the activity of microorganisms on nucleic acids. // J. Bacteriol. 1957. T. 73. No. 4. pp. 590-591.
5. Schreier J.B. Modification of deoxyribonuclease test medium for rapid identification of Serratia marcescens. //Am. J. Clin. Pathol. 1969. T. 51. №6. С 711-716.5. Schreier J.B. Modification of deoxyribonuclease test medium for rapid identification of Serratia marcescens. // Am. J.Clin. Pathol. 1969. T. 51. No. 6. C 711-716.
6. Detection of nuclease activity in semisolid and broth cultures - PubMed [Электронный ресурс]. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/4185235/ (дата обращения: 22.04.2021).6. Detection of nuclease activity in semisolid and broth cultures - PubMed [Electronic resource]. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/4185235/ (accessed 04/22/2021).
Claims (1)
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2795460C1 true RU2795460C1 (en) | 2023-05-03 |
Family
ID=
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2329305C2 (en) * | 2001-03-01 | 2008-07-20 | Дзе Джонс Хопкинс Юниверсити | Quantitative assay allowing simultaneous detection and identification of bacterial infections |
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2329305C2 (en) * | 2001-03-01 | 2008-07-20 | Дзе Джонс Хопкинс Юниверсити | Quantitative assay allowing simultaneous detection and identification of bacterial infections |
Non-Patent Citations (1)
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Váradi et al. | Methods for the detection and identification of pathogenic bacteria: past, present, and future | |
Uphoff et al. | Detection of Mycoplasma contamination in cell cultures | |
JP6603956B2 (en) | Method for detecting the presence of microorganisms in non-purified samples using polymerase activity as an indicator | |
Amita et al. | Qualitative evaluation of mycobacterial DNA extraction protocols for polymerase chain reaction | |
JP2013537399A5 (en) | ||
JP2010532986A (en) | Improved microbial detection | |
US20220098645A1 (en) | Fast and portable microfluidic detection system as an alternative to salmonella's classical culture method | |
RU2795460C1 (en) | Method for determining dnase activity in real time | |
RU2551208C1 (en) | SET OF OLIGONUCLEOTIDE PRIMERS AND FLUORESCENTLY LABELLED PROBE FOR IDENTIFICATION OF Burkholderia mallei AND ITS DIFFERENTIATION FROM Burkholderia pseudomallei | |
Moustafa et al. | Development of loop-mediated isothermal amplification–based diagnostic assays for detection of Pasteurella multocida and hemorrhagic septicemia–associated P multocida serotype B: 2 | |
Aurna | Rapid identification of Klebsiella pneumoniae using PCR based method targeting 16S rRNA gene | |
CN104032000A (en) | Method and kit for detecting bacillus cereus | |
RU2703803C1 (en) | SET OF OLIGONUCLEOTIDE PRIMERS Ft 101 AND A METHOD FOR DETERMINING FRANCISELLA TULARENSIS (VERSIONS) | |
Clancy et al. | Culture confirmation of Listeria monocytogenes using tmRNA as a diagnostics target | |
Shchit et al. | Detection of Tularemia Agent DNA by Loop Mediated Isothermal Amplification | |
Venkateswari et al. | Evaluating the Diagnostic Performance of PCR Targeting Insertion Sequence (IS6110) for the Detection of Extra-pulmonary Tuberculosis | |
RU2439159C1 (en) | OLIGONUCLEOTIDE PROBE FOR IDENTIFICATION OF CAUSATIVE AGENTS OF GLANDERS AND MELIOIDOSIS B. pseudomallei AND B. mallei | |
RU2556810C1 (en) | SET OF OLIGONUCLEOTIDE PRIMERS AND FLUORESCENTLY LABELLED PROBE FOR IDENTIFICATION OF Burkholderia pseudomallei | |
RU2583001C1 (en) | Set of oligonucleotide primers and fluorescent-labelled probe for identifying dna agents of coccidioidomycosis coccidioides immitis and coccidioides posadasii | |
RU2458142C1 (en) | Diagnostic technique for biomaterials for presence of agrobacteria | |
Loonen | Developments for improved diagnosis of bloodstream infections | |
UA112731U (en) | METHOD OF QUALITATIVE AND QUANTITATIVE DETERMINATION OF BIFIDOBACTERIA CONTENT BY USING SPECIFIC PRIMERS BY POLYMERASE CHAIN RACING RACING | |
WO2016153355A2 (en) | Novel isolation and amplification process control | |
Goraya | Do conventional bacterial cultures have a future in diagnostic bacteriology? Mohsan Ullah Goraya1 | |
Class et al. | Patent application title: Methods for Detection of Micro-Organisms Inventors: Christopher John Stanley (Cambridge, GB) Stuart Wilson (London, GB) Assignees: MICROSEN MEDTECH LIMITED |