RU2786438C1 - Способ инкубации икры лососеобразных рыб в шестилуночных культуральных планшетах с использованием стимуляторов развития - Google Patents
Способ инкубации икры лососеобразных рыб в шестилуночных культуральных планшетах с использованием стимуляторов развития Download PDFInfo
- Publication number
- RU2786438C1 RU2786438C1 RU2021139962A RU2021139962A RU2786438C1 RU 2786438 C1 RU2786438 C1 RU 2786438C1 RU 2021139962 A RU2021139962 A RU 2021139962A RU 2021139962 A RU2021139962 A RU 2021139962A RU 2786438 C1 RU2786438 C1 RU 2786438C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- eggs
- incubation
- fish
- culture plates
- carried out
- Prior art date
Links
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 title claims abstract description 78
- 241001507086 salmonid fish Species 0.000 title abstract 2
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 title description 11
- 239000000021 stimulant Substances 0.000 title description 3
- 241000251468 Actinopterygii Species 0.000 claims abstract description 23
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims abstract description 5
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims abstract description 4
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-M acetate Chemical compound CC([O-])=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 2
- 230000004083 survival Effects 0.000 abstract description 10
- 238000009360 aquaculture Methods 0.000 abstract description 3
- 244000144974 aquaculture Species 0.000 abstract description 3
- 238000005273 aeration Methods 0.000 abstract description 2
- 125000003118 aryl group Chemical group 0.000 abstract description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 2
- 238000009372 pisciculture Methods 0.000 abstract description 2
- 125000000954 2-hydroxyethyl group Chemical group [H]C([*])([H])C([H])([H])O[H] 0.000 abstract 1
- UPCXAARSWVHVLY-UHFFFAOYSA-N tris(2-hydroxyethyl)azanium;acetate Chemical compound CC(O)=O.OCCN(CCO)CCO UPCXAARSWVHVLY-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 23
- 235000019688 fish Nutrition 0.000 description 21
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 21
- 210000002257 embryonic structures Anatomy 0.000 description 18
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 13
- 241000442132 Lactarius lactarius Species 0.000 description 10
- 210000001161 Embryo, Mammalian Anatomy 0.000 description 8
- 238000000034 method Methods 0.000 description 8
- 230000001488 breeding Effects 0.000 description 7
- 230000004720 fertilization Effects 0.000 description 7
- 230000013080 embryo development ending in birth or egg hatching Effects 0.000 description 6
- 230000013144 embryo development ending in seed dormancy Effects 0.000 description 6
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 5
- 238000009792 diffusion process Methods 0.000 description 4
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 4
- 239000000463 material Substances 0.000 description 4
- 230000035812 respiration Effects 0.000 description 4
- 230000029058 respiratory gaseous exchange Effects 0.000 description 4
- 241000277331 Salmonidae Species 0.000 description 3
- 210000000582 Semen Anatomy 0.000 description 3
- 230000012447 hatching Effects 0.000 description 3
- 230000009027 insemination Effects 0.000 description 3
- 239000004033 plastic Substances 0.000 description 3
- 238000005057 refrigeration Methods 0.000 description 3
- 230000002522 swelling Effects 0.000 description 3
- 241000972773 Aulopiformes Species 0.000 description 2
- 210000004544 DC2 Anatomy 0.000 description 2
- 210000004080 Milk Anatomy 0.000 description 2
- 241000277275 Oncorhynchus mykiss Species 0.000 description 2
- 206010062080 Pigmentation disease Diseases 0.000 description 2
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 2
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 2
- 230000002530 ischemic preconditioning Effects 0.000 description 2
- 230000004301 light adaptation Effects 0.000 description 2
- 230000035800 maturation Effects 0.000 description 2
- 244000005706 microflora Species 0.000 description 2
- 230000005012 migration Effects 0.000 description 2
- 235000013336 milk Nutrition 0.000 description 2
- 239000008267 milk Substances 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 2
- 230000019612 pigmentation Effects 0.000 description 2
- 230000001568 sexual Effects 0.000 description 2
- 230000004936 stimulating Effects 0.000 description 2
- GSEJCLTVZPLZKY-UHFFFAOYSA-O tris(2-hydroxyethyl)azanium Chemical compound OCC[NH+](CCO)CCO GSEJCLTVZPLZKY-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 2
- 229940088623 Biologically Active Substance Drugs 0.000 description 1
- 210000002298 Blastodisc Anatomy 0.000 description 1
- 241000346692 Coregoninae Species 0.000 description 1
- 241000765963 Coregonus muksun Species 0.000 description 1
- 241001529297 Coregonus peled Species 0.000 description 1
- 241001483012 Coregonus tugun Species 0.000 description 1
- 241000252233 Cyprinus carpio Species 0.000 description 1
- 210000002816 Gills Anatomy 0.000 description 1
- 241000160777 Hipparchia semele Species 0.000 description 1
- 239000004793 Polystyrene Substances 0.000 description 1
- 241000233667 Saprolegnia Species 0.000 description 1
- 230000036579 abiotic stress Effects 0.000 description 1
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 1
- 150000001242 acetic acid derivatives Chemical class 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 230000033228 biological regulation Effects 0.000 description 1
- 229910052798 chalcogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 150000001787 chalcogens Chemical class 0.000 description 1
- 244000038559 crop plants Species 0.000 description 1
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 238000006062 fragmentation reaction Methods 0.000 description 1
- 230000036039 immunity Effects 0.000 description 1
- 230000003308 immunostimulating Effects 0.000 description 1
- 238000009434 installation Methods 0.000 description 1
- 239000002608 ionic liquid Substances 0.000 description 1
- 230000000366 juvenile Effects 0.000 description 1
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 1
- 230000002503 metabolic Effects 0.000 description 1
- 239000002207 metabolite Substances 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- MYMOFIZGZYHOMD-UHFFFAOYSA-N oxygen Chemical compound O=O MYMOFIZGZYHOMD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 1
- 230000036284 oxygen consumption Effects 0.000 description 1
- 230000000737 periodic Effects 0.000 description 1
- 230000002688 persistence Effects 0.000 description 1
- 230000035479 physiological effects, processes and functions Effects 0.000 description 1
- 229920002223 polystyrene Polymers 0.000 description 1
- 238000009374 poultry farming Methods 0.000 description 1
- 230000003449 preventive Effects 0.000 description 1
- 238000007639 printing Methods 0.000 description 1
- 230000001850 reproductive Effects 0.000 description 1
- 230000004044 response Effects 0.000 description 1
- 229910052717 sulfur Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000028016 temperature homeostasis Effects 0.000 description 1
- 230000035899 viability Effects 0.000 description 1
Images
Abstract
Изобретение относится к рыбоводству, а именно к способам повышения эффективности инкубации икры лососеобразных рыб. Оплодотворенную икру на стадии глазка помещают на инкубацию в холодильную камеру. Инкубацию проводят в культуральных планшетах, в которых икра размещается по 1-3 икринки на лунку планшета и находится в погруженном состоянии в водном растворе арилхалькогенилацетата трис(2-гидроксиэтил)аммония, с химической формулой 4-Cl-C6H4SO2CH2C(O)O-⋅HN+(CH2CH2OH)3, с концентрацией не выше 0,0001%. Изобретение обеспечивает максимальную выживаемость икры без принудительной аэрации и с минимальными трудозатратами. 1 ил., 2 табл., 2 пр.
Description
Нами апробирован способ инкубации икры в шестилуночных полистироловых планшетах без замены или с редкой заменой воды/раствора в течение всего периода инкубации (фиг. 1).
При раздельном размещении икринок по лункам планшета наполовину заполненных инкубационным раствором соблюдаются все условия, необходимые для нормального развития зародыша и обеспечиваются дополнительные преимущества, позволяющие облегчить уход и упростить контроль за процессом без ущерба для выживаемости эмбрионов. Основные принципиальные моменты, это:
- отсутствие необходимости регулярной смены воды/раствора, за счет низкого потребления кислорода и незначительного поступления метаболитов в окружающую среду;
- отсутствие контакта между индивидуальными икринками и, соответственно, отсутствие влияния микроорганизмов, развивающихся на неблагополучной или погибшей икре;
- отсутствие необходимости переносить икру в какие либо емкости на завершающем этапе эмбриогенеза, поскольку количества воды/инкубационного раствора в лунке планшета, с растворенным в ней кислородом, достаточно для временного существования предличинок и выклевывающихся зародышей.
Уровень техники
В России, как и в мировой практике, для улучшения продуктивности сельского хозяйства (растениеводства, птицеводства, животноводства) и в аквакультуре (рыборазведении) используют инкубаторы различного типа [1-19].
В ранее предложенных способах инкубации икру размещают в полупогруженном и погруженном состоянии на чашках Петри, в специальных емкостях, в термостатированных аквариумах в один слой или несколько слоев и обеспечивают циркуляцию и аэрацию воды. При этом терморегуляция обеспечивается за счет общего пониженного температурного режима холодильной установки.
Одним из неблагоприятных условий среды при разведении рыб является забор воды для инкубации икры из естественных водоемов.
Принципы и возможные технические решения, позволяющие инкубировать икру сиговых рыб в экспериментальных лабораторных условиях в замкнутой инкубационной системе с периодической или постоянной подменой части используемой воды хорошо описаны в работе С.М. Семенченко и Н.В. Смешливой [6]. Авторами предложены три способа, позволяющие осуществлять большое разнообразие исследовательских целей и задач при инкубации небольших порций икры: в чашках Петри, в термостатируемых аквариумах, в простейшей рециркуляционной установке, оснащенной инкубационными аппаратами небольшого объема, работающими по принципу аппарата Вейса. Описанные способы позволяют строго сохранять одинаковые условия инкубации при качественном разнообразии различных партий икры и наоборот, при исходном однообразии икры контролируемо поддерживать разные условия факторов среды, влияние которых оценивается. При необходимости постановки большого количества опытов с малочисленными партиями икры авторы предлагают инкубировать икру в чашках Петри в полупогруженном состоянии, когда за счет силы поверхностного натяжения воды/инкубационного раствора икра остается постоянно смоченной, а дыхание зародыша обеспечивается диффузией газов через микропленку воды. При таком способе на одной чашке инкубируется до 400 икринок сиговых рыб. Однако, описанный способ инкубации икры на чашках Петри требует регулярной (с интервалом в двое суток) замены воды/инкубационного раствора ручным способом для обеспечения удовлетворительного санитарного состояния среды, т.к. ее качество ухудшается за счет накопления продуктов обмена и развития неблагоприятной микрофлоры.
Температура воды играет основополагающую роль в регулировании физиологии рыб [19]. В работе Тэйлора Стюарта с соавторами при инкубации икры сиговых рыб в 24-луночных планшетах [14] главной целью было экспериментально оценить реакцию эмбрионов группы холодных стенотермических рыб (Salmonidae Coregoninae) на повышенные температуры инкубации. Данная работа показывает удобство использования культуральных планшетов для экспериментов с отдельными эмбрионами рыб (изучение эмбриогенеза, влияния на него различных факторов и пр.), для статистической обработки результатов анализа.
Нами предложены шестилуночные планшеты, размер лунок которых позволяют увеличить объем жидкости и выращивать отдельных эмбрионов широкого спектра рыб. Искусственно оплодотворенная икра представителей трех семейств лососеобразных рыб инкубировалась в присутствии синтетические стимуляторы развития.
Раскрытие изобретения
Техническим результатом настоящего изобретения является отработанная методика инкубации небольших партий икры различных видов рыб (на примере представителей трех семейств лососеобразных рыб) в шеституночных культуральных планшетах, использование, которой позволяет:
- устранить неблагоприятные факторы (например, развитие сапролегнии и/или неблагоприятной микрофлоры, ведущих к гибели всей партии) при инкубации небольших количеств икры;
- увеличить скорость выклева (сократить время инкубации) и выживаемость эмбрионов рыб;
- повысить иммунитет эмбрионов;
- сократить объемы инкубируемой для получения рыб икры;
- снизить затраты на техническое обслуживание, устранение негативных факторов, лечение и профилактические мероприятия.
Техническим результатом так же является применение синтетического биологически активного вещества - стимулятора развития (CP). Для этого в процессе оплодотворения и инкубации оплодотворенной икры используют водный раствор арилхалькогенилацетатов трис(2-гидроксиэтил)аммония - «протатранов», с общей формулой:
ArXCH2C(O)O-⋅HN+(CH2CH2OH)3,
где Ar = арил; X = халькоген (О, S, SO, SO2, Se),
в частности, соединение формулы:
4-Cl-C6H4SO2CH2C(O)O-⋅HN+(CH2CH2OH)3.
Оплодотворенную икру на стадии глазка помещают на инкубацию в холодильную камеру. Инкубацию проводят в культуральных планшетах, в которых икра размещается по 1-3 икринки на лунку планшета и находится в погруженном состоянии в водном растворе арилхалькогенилацетата трис(2-гидроксиэтил)аммония, с химической формулой 4-Cl-C6H4SO2CH2C(O)O-⋅HN+(CH2CH2OH)3, с концентрацией не выше 0,0001%.
Протатраны указанных формул добавляют в водный раствор для инкубации икры рыб. Синтезированные авторами в Иркутском институте химии им. А.Е. Фаворского СО РАН соединения имеют уникальное трициклическое "атрановое", точнее, "протатрановое", строение [18].
Предложенный способ инкубации икры в шестилуночных планшетах с обработкой стимулятором развития (CP). Кроме ростстимулирующей активности, CP обладает также иммуностимулирующей активностью и способствует снижению смертности икринок. Впервые установлено, что при использовании шестилуночных культуральных планшетов и CP при искусственной инкубации икры лососеобразных рыб обеспечивается максимальная выживаемость икры без аэрации и с минимальными трудозатратами. Таким образом, данное техническое решение соответствует условиям изобретения: «новизна», «изобретательский уровень» и «промышленная применимость».
Краткое описание чертежей
На фиг. 1 показана инкубация икры сиговых рыб в шестилуночных культуральных планшетах:
а - модули планшетов, помещенные в холодильную установку; б - одиночный шестилуночный планшет; в - одиночный шестилуночный планшет с лунками, заполненными инкубационным раствором с на этапе выклева личинок.
Осуществление изобретения
Предложен оригинальный способ инкубации икры в экспериментальных целях и для выведения селекционных и опытных партий рыб. В шестилуночных культуральных планшетах с добавлением в инкубационный раствор стимуляторов развития предлагается осуществлять инкубацию икры лососеобразных рыб. Планшеты размещаются в холодильной установке как в единичном варианте, так и в виде модулей (фиг. 1а). Икра в планшетах должна находиться в погруженном состоянии.
Экспериментальные работы проводили в рамках фундаментальных научных исследований на базе уникальной научной установки «Экспериментальный пресноводный аквариумный комплекс байкальских гидробионтов» (ПАК), который является частью научно-технологической инфраструктуры Российской федерации и функционирует в Федеральном государственном бюджетном учреждении науки Лимнологический институт Сибирского отделения Российской академии наук (ЛИН СО РАН).
Возможность осуществления изобретения иллюстрируется приведенным ниже описанием проведенных работ. Полученные данные сведены в прилагаемые таблицы.
Пример 1. Результаты эксперимента по оплодотворению и развитию икры пеляди.
Материалом для данной работы послужила икра после искусственного оплодотворения диких производителей, отловленных в сетные ловушки рыбоводного пункта ООО "Байкальская рыба" на пути нерестовой миграции в река Белая (приток реки Ангара, вытекающей из озера Байкал). Зрелые половые продукты отбирали после выдерживания производителей в садках рыбоводного пункта до полного созревания. Оплодотворение и инкубация икры осуществлялись в байкальской воде с добавлением и без добавления стимулятора развития (CP). Обработка икры стимулятором развития (CP) и дальнейшая инкубация сокращает продолжительность эмбриогенеза (таблица 1) и увеличивает процент выживаемости эмбрионов (таблица 2).
28.10.2020 г. икру от нескольких "текучих" самок и самцов сцедили в отдельные пластиковые контейнеры, которые целиком погрузили в лед. В таком состоянии половые продукты хранили 2 суток, после чего икру оплодотворяли спермой нескольких самцов стандартным для лососевых рыб сухим методом. Оплодотворяли две порции икры (таблицы 1 и 2). Каждую порцию помещали в чашку Петри и тщательно смешивали с 25 мкл спермы без добавления жидкости. Далее в течении 7 мин добавляли небольшие объемы жидкости, до полного покрытия икры. После пятиминутного покоя троекратно осуществляли промывку и обесклеивание икры большим объемом жидкости в течении 45 мин и оставляли на 4 часа для набухания. Все процедуры проводили на ледяной бане. После набухания икру помещали на инкубацию в холодильную камеру в чашках Петри в полупогруженном состоянии, когда за счет силы поверхностного натяжения жидкости икра остается постоянно смоченной, а дыхание зародыша обеспечивается диффузией газов через микропленку жидкости [6]. Инкубацию на чашках осуществляли до стадии «глазка», после чего перемещали икринки в шестилуночные культуральные планшеты по 3 икринки в лунку в 5 мл жидкости, где продолжали инкубацию до вылупления личинки. % оплодотворенной икры (таблица 2) подсчитывали по количеству эмбрионов развившихся до стадии «глазка». % выживаемости определяли по количеству эмбрионов развившихся от стадии «глазка» до стадии свободного эмбриона (выклева).
Весь процесс инкубации проводили при 4°С. На протяжении всего эксперимента в первой порции жидкостью служила байкальская вода, во второй порции воду заменяли на 0,0001% раствор CP в байкальской воде. Продолжительность инкубации составила 127-164 дней с суммой тепла за этот период 636 - 784 градусо-дней (таблица 1).
Пример 2. Результаты эксперимента по оплодотворению и развитию икры радужной форели.
Материалом для данной работы послужила икра радужной форели после искусственного оплодотворения. Зрелые половые продукты сцеживались сразу после отлова из садков "текучих" производителей, искусственно выращенных на форелевом хозяйстве ООО "Иркутская форель", расположенной на р. Ангара в нижнем бьефе плотины Иркутской ГЭС. Оплодотворение и инкубация икры осуществлялись в байкальской воде с добавлением и без добавления стимулятора развития (CP). Обработка икры CP сокращает продолжительность эмбриогенеза (таблица 1) и увеличивает процент выживаемости эмбрионов (таблица 2).
Икру оплодотворяли 13.06.2021 г. смесью спермы нескольких самцов стандартным для лососевых рыб сухим методом [6]. Оплодотворяли две порции икры (таблицы 1 и 2). Каждую порцию помещали в чашку Петри и тщательно смешивали с 25 мкл спермы без добавления жидкости. Далее в течении 7 мин добавляли небольшие объемы жидкости, до полного покрытия икры. После пятиминутного покоя троекратно осуществляли промывку и обесклеивание икры большим объемом жидкости в течении 45 мин и оставляли на 4 часа для набухания. Все процедуры проводили на ледяной бане. После набухания икру помещали на инкубацию в холодильную камеру в чашках Петри в полупогруженном состоянии, когда за счет силы поверхностного натяжения жидкости икра остается постоянно смоченной, а дыхание зародыша обеспечивается диффузией газов через микропленку жидкости [6]. Инкубацию на чашках осуществляли до стадии "глазка" - начала пигментации глаз, после чего перемещали икринки в шестилуночные культуральные планшеты по одной икринке в лунку в 5 мл жидкости, где продолжали инкубацию до вылупления личинки. % оплодотворенной икры (таблица 2) подсчитывали по количеству эмбрионов развившихся до стадии "глазка". % выживаемости определяли по количеству эмбрионов развившихся от стадии "глазка" до стадии свободного эмбриона (выклева).
Весь процесс инкубации проводили при 10°С. На протяжении всего эксперимента в первой порции жидкостью служила байкальская вода, во второй порции воду заменяли на 0,0001% раствор CP в байкальской воде. Продолжительность инкубации составила 29-37 дней с суммой тепла за этот период 290-370 градусо-дней (таблица 1). Пример 3. Результаты эксперимента по оплодотворению и развитию икры сибирского хариуса.
Материалом для данной работы послужила икра после искусственного оплодотворения диких производителей, отловленных жаберными сетями на пути нерестовой миграции в р. Ангара выше плотины Иркутской ГЭС. Половые продукты отбирались после выдерживания отловленных рыб до полного созревания в проточной воде, закачиваемой из р. Ангара в бассейны рыбоводного завода, расположенного в пос. Бурдугуз (ООО "Байкальская рыба") на р. Ангара. Оплодотворение и инкубация икры осуществлялись в байкальской воде в присутствии стимулятора развития (CP). Обработка икры CP сокращает продолжительность эмбриогенеза (таблица 1) и увеличивает процент выживаемости эмбрионов (таблица 2).
26.06.2021 г. икру от нескольких "текучих" самок сцедили в пластиковые контейнеры, которые целиком погрузили в лед. Молоки от нескольких "текучих" вскрытых самцов протерли через газ-сито в пластиковые контейнеры, которые также целиком погрузили в лед. В таком состоянии половые продукты хранили 5 часов, после чего икру оплодотворяли смесью молок от нескольких самцов стандартным для лососевых рыб сухим методом [6]. Оплодотворяли две порции икры (таблицы 1 и 2). Каждую порцию помещали в чашку Петри и тщательно смешивали с 25 мкл спермы без добавления жидкости. Далее в течении 7 мин добавляли небольшие объемы жидкости, до полного покрытия икры. После пятиминутного покоя троекратно осуществляли промывку и обесклеивание икры большим объемом жидкости в течении 45 мин и оставляли на 4 часа для набухания. Все процедуры проводили на ледяной бане. После набухания икру помещали на инкубацию в холодильную камеру в чашках Петри в полупогруженном состоянии, когда за счет силы поверхностного натяжения жидкости икра остается постоянно смоченной, а дыхание зародыша обеспечивается диффузией газов через микропленку жидкости [6]. Инкубацию на чашках осуществляли до стадии "глазка" -начала пигментации глаз, после чего перемещали икринки в шестилуночные культуральные планшеты по одной икринке в лунку в 5 мл жидкости, где продолжали инкубацию до вылупления личинки. % оплодотворенной икры (таблица 2) подсчитывали по количеству эмбрионов развившихся до стадии "глазка". % выживаемости определяли по количеству эмбрионов развившихся от стадии "глазка" до стадии свободного эмбриона (выклева).
Весь процесс инкубации проводили при 10°С. На протяжении всего эксперимента в первой порции жидкостью служила байкальская вода, во второй порции воду заменяли на 0,0001% раствор CP в байкальской воде. Продолжительность инкубации составила 12-13 дней с суммой тепла за этот период 120-130 градусо-дней (таблица 1).
ИСТОЧНИКИ ИНФОРМАЦИИ
1. Biostimulants in agriculture / P. Brown, S. Saa // Front. Plant Sci. - 2015 - V. 6- P. 1-3;DOI: 10.3389/fpls.2015.00671.
2. The role of biostimulants and bioeffectors as alleviators of abiotic stress in crop plants / M. J. Van Oosten, O. Pepe, S. De Pascale, S. Silletti, A. Maggio // Chem. Biol. Technol. Agric.-2017.-4:5; DOI 10.1186/s40538-017-0089-5.
3. A.c. 1551308 СССР, МКИ A01K 61/00. Способ стимуляции развития гидробионтов / Фомовский М.А. и др.; Институт гидробиологии АН УССР. - №4451660/31-13; Заявл. 30.06.88; Опубл. 23.03.90. Бюл. №11.
4. Кеберлайн О.В. Влияние различных технологий обесклеивания икры на интенсивность зародышевого развития зеркального карпа в условиях промышленной технологии разведения / Кеберлайн О.В., Сахаров А.В., Макеев А.А. и др. // «Сибирский Вестник сельскохозяйственной науки».- Новосибирск, 03/2010.-С.63-70.
5. Stoimenovski, J. Enhanced membrane transport of pharmaceutically active protic ionic liquids [Text] / J. Stoimenovski, D.R. MacFarlane // Chem. Commun. - 2011. - V. 47. -P. 11429-11431; DOI: 10.1039/C6NJ03709G.
6. Семенченко С.М., Смешливая H.B. Инкубация икры сиговых рыб COREGONIDAE в лабораторных условиях/ Вестник рыбохозяйственной науки, Государственный научно-производственный центр рыбного хозяйства (Тюмень)/Том: 4, Номер: 4 (16),2017, стр. 4-13, ID: 35287796, ISSN: 2311-4274.
7. Черняев Ж.А. Воспроизводство сиговых рыб. Эколого-физиологические особенности размножения и. развития. М/Товарищество научных изданий КМК, Москва, 201, 329 с.
8. Черняев Ж.А. Основные принципы успешного осуществления инкубации икры сиговых на рыбоводном заводе (на примере опыта Большереченского рыбоводного завода) // Биология, биотехника разведения и состояние запасов сиговых рыб. - 2010, С. 277-281.
9. Смешливая Н.В., Семенченко С.М. Зависимость скорости дробления бластодиска зародышей сига-пыжьяна, тугуна и муксуна от температуры// Биология, биотехника разведения и состояние запасов сиговых рыб, 2010, С. 274-277.
10. Смешливая Н.В., Семенченко С.М. Взаимосвязь диаметра икры и размеров самок сиговых рыб Обь-Иртышского бассейна/ Биология, биотехника разведения и состояние запасов сиговых рыб, 2010, С. 271-274.
11. Сергиенко Л.Л. Биологические основы совершенствования заводского воспроизводства сиговых рыб: автореф....дис. канд. биол. наук. СПб., 1995. 19 с.
12. Эксперементальные аквариумные системы как основа для изучения физиолого-биохимических механизмов адаптации эндемичных гидробионтов. / О.Ю. Глызина, Л.В. Суханова, Ю.П. Сапожникова и др. // Физиологические, биохимические и молекулярно-генетические механизмы адаптации гидробионтов: материалы всерос. конф. (Борок, 22-27 сен. 2012 г. ), Борок, 2012. С 88-90.
13. Глызина О.Ю., Суханова Л.В., Адамович С.Н., Оборина Е.Н., Сапожникова Ю.П., Яхненко В.М., Тягун М.Л. Способ повышения жизнестойкости эмбрионов рыб в аквакультуре. Патент на изобретение №273483 5. Заявка №2020106330, Опубликовано: 23.10.2020 г. Правообладатель: ЛИН СО РАН; ИрИХ СО РАН. Федеральная служба по интеллектуальной собственности, 2020.
14. Stewart Т., Makinen М., Guillard С, Marjomaki Т., Lasne E., Karjalainen J., Stockwell J. Influence of warming temperatures on coregonine embryogenesis within and among species/ Hydrobiologia (2021) 848:4363-4385 https://doi.org/10.1007/sl0750-021-04648-0(0123456789().,-vol V) (01234567 89).
15. Методические указания по сбору и хранению икры сиговых рыб на временных рыбоводных пунктах, ее транспортировке и инкубации. М.: МИНРЫБХОЗ СССР, ИЭМЭЖ им. А.Н. Северцова АН СССР, ЦПАУ Главрыбвода. Изд-во: Типография ВИА имени В.В.Куйбышева. 1987. 50 с.
16. Патент №789063 RU, МПК А01К 61/00. Способ повышения жизнестойкости оплодотворенной икры молоди рыб / Чернышев В.И. и Тамбиев А.Х. - №2568164/28-13; Заявл. 09.01.78; Опубл. 23.12.80.
17. Патент №2028046 РФ, МПК А01К 61/00. Способ стимуляции развития рыб / Яковенко Е.Я. - №5007262/13; Заявл. 30.10.1991; Опубл. 09.02.1995.
18. Мирскова, А.Н. Протатраны - эффективные биостимуляторы для сельского хозяйства, биотехнологии и микробиологии / А.Н. Мирскова, С.Н. Адамович, Р.Г. Мирсков // Хим. интерес, устойч. развития. - 2016. - №24. - С. 713-729.
19. Семенченко С.М., Смешливая Н.В. Термотолерантность и терморезистентность сиговых рыб в эмбриогенезе // XII Съезд Гидробиологического общества при РАН: тезисы докладов. 16-20 сентября 2019 года г. Петрозаводск - г. Петрозаводск: КарНЦ РАН. - 2019. - С. 429 - 431.
Claims (1)
- Способ инкубации икры лососеобразных рыб, характеризующийся тем, что оплодотворенную икру на стадии глазка помещают на инкубацию в холодильную камеру, при этом инкубацию проводят в культуральных планшетах, в которых икра размещается по 1-3 икринки на лунку планшета и находится в погруженном состоянии в водном растворе арилхалькогенилацетата трис(2-гидроксиэтил)аммония, с химической формулой 4-Cl-C6H4SO2CH2C(O)O-⋅HN+(CH2CH2OH)3, с концентрацией не выше 0,0001%.
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2786438C1 true RU2786438C1 (ru) | 2022-12-21 |
Family
ID=
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102250936A (zh) * | 2011-05-31 | 2011-11-23 | 南京医科大学 | 利用锌指核酶技术培育斑马鱼的方法及其在建立药物筛选模型中的应用 |
| RU166308U1 (ru) * | 2016-06-08 | 2016-11-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт Биологии Карельского научного центра РАН | Устройство для инкубации икры лососевых рыб рода salmo и oncorhynchus в реках |
| CN105999303B (zh) * | 2016-05-03 | 2019-06-04 | 山东省科学院生物研究所 | 一种筛选具有调节斑马鱼胃肠动力活性化合物的方法 |
| RU2734835C1 (ru) * | 2020-02-11 | 2020-10-23 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Лимнологический институт Сибирского отделение Российской академии наук (ЛИН СО РАН) | Способ повышения жизнестойкости эмбрионов рыб в аквакультуре |
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102250936A (zh) * | 2011-05-31 | 2011-11-23 | 南京医科大学 | 利用锌指核酶技术培育斑马鱼的方法及其在建立药物筛选模型中的应用 |
| CN105999303B (zh) * | 2016-05-03 | 2019-06-04 | 山东省科学院生物研究所 | 一种筛选具有调节斑马鱼胃肠动力活性化合物的方法 |
| RU166308U1 (ru) * | 2016-06-08 | 2016-11-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт Биологии Карельского научного центра РАН | Устройство для инкубации икры лососевых рыб рода salmo и oncorhynchus в реках |
| RU2734835C1 (ru) * | 2020-02-11 | 2020-10-23 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Лимнологический институт Сибирского отделение Российской академии наук (ЛИН СО РАН) | Способ повышения жизнестойкости эмбрионов рыб в аквакультуре |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Rakaj et al. | Spawning and rearing of Holothuria tubulosa: A new candidate for aquaculture in the Mediterranean region | |
| Rosas et al. | Octopus maya | |
| RU2357414C1 (ru) | Способ искусственного разведения холодолюбивых рыб | |
| CN101690469A (zh) | 半滑舌鳎卵裂雌核发育鱼苗的诱导方法 | |
| Pavlov et al. | Bacterial destruction of the egg shell of common wolffish during incubation | |
| Rana | An evaluation of two types of containers for the artificial incubation of Oreochromis eggs | |
| RU2490884C2 (ru) | Способ искусственного воспроизводства рыбы | |
| RU2786438C1 (ru) | Способ инкубации икры лососеобразных рыб в шестилуночных культуральных планшетах с использованием стимуляторов развития | |
| Small et al. | Effect of low‐temperature incubation of channel catfish Ictalurus punctatus eggs on development, survival, and growth | |
| Miah et al. | Breeding biology and induced breeding status of freshwater mud eel, Monopterus cuchia | |
| Aydın et al. | Turbot and flounder aquaculture | |
| Brännäs et al. | Arctic charr farming Production of juveniles; a manual | |
| Ekici et al. | Genetic breeding studies of marine fish farming species | |
| Carlson et al. | Successful spawning of largemouth bass Micropterus salmoides (Lacepede) under laboratory conditions | |
| Toledo | Cryopreservation of Different Strains of the Euryhaline Rotifer Brachionus plicatilis Embryos. | |
| CN104067972A (zh) | 黄海大头鳕亲本培育及其受精卵孵化方法 | |
| Ward et al. | Vegetation during incubation improves the hatching success of Yellow Perch eyed eggs | |
| Kurbanov et al. | Maturation of African catfish, Clarias gariepinus, in condition of seasonal climate of Uzbekistan | |
| RU2788532C1 (ru) | Способ культивирования морских циклопоидных копепод oithona davisae | |
| Ingram et al. | Murray cod aquaculture—current information and current status | |
| RU2802585C9 (ru) | Биологический способ борьбы с сапролегниозом икры рыб при инкубации необесклеенной икры | |
| RU2802585C1 (ru) | Биологический способ борьбы с сапролегниозом икры рыб при инкубации необесклеенной икры | |
| Shindavina et al. | Criteria for the estimation of the artificial reproduction efficiency of salmon fish (on the Example of Females of the Lake Char Salvelinus lepechini Gmelin, 1778) | |
| Dragan et al. | Technology of sterlet reproduction by means of cryopreserved sperm | |
| Gerasimov et al. | Effect of environmental information richness during early development of bream (Abramis brama; Cyprinidae) upon feeding and defensive behavior of its yearlings |