RU2786044C1 - Express method for determining the amount of solutions of biologically active substances penetrating into the incubation egg of birds during treatment of eggs by spray method - Google Patents

Express method for determining the amount of solutions of biologically active substances penetrating into the incubation egg of birds during treatment of eggs by spray method Download PDF

Info

Publication number
RU2786044C1
RU2786044C1 RU2021136170A RU2021136170A RU2786044C1 RU 2786044 C1 RU2786044 C1 RU 2786044C1 RU 2021136170 A RU2021136170 A RU 2021136170A RU 2021136170 A RU2021136170 A RU 2021136170A RU 2786044 C1 RU2786044 C1 RU 2786044C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
egg
eggs
amount
solution
determining
Prior art date
Application number
RU2021136170A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Инесса Сергеевна Луговая
Татьяна Олеговна Азарнова
Марк Семенович Найденский
Сергей Владимирович Позябин
Леонид Карольевич Киш
Василина Александровна Грицюк
Михаил Михайлович Луговой
Юлия Валентиновна Петрова
Александр Александрович Антипов
Зоя Николаевна Никифорова
Галина Ивановна Бурлакова
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина" (ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина)
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Всероссийский государственный Центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов" (ФГБУ "ВГНКИ")
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина" (ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина), Федеральное государственное бюджетное учреждение "Всероссийский государственный Центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов" (ФГБУ "ВГНКИ") filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина" (ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина)
Application granted granted Critical
Publication of RU2786044C1 publication Critical patent/RU2786044C1/en

Links

Abstract

FIELD: agriculture.
SUBSTANCE: invention relates to the field of agriculture, namely, poultry farming. An express method for determining the amount of solutions of biologically active substances penetrating into the incubation egg of birds during their spray treatment consists in weighing the eggs one by one before processing the eggs, and then processing the incubation egg at a solution temperature of 18-22°C. The shell is dried completely and then each egg is weighed individually again. The value of the difference between the mass of the egg after processing and the mass of the egg before processing is the amount of solution that penetrated into the egg, g.
EFFECT: invention provides the speed and accuracy of determining the amount of solution that has penetrated into the incubation egg of birds during processing, as well as the number of one or more biostimulators using minimal equipment and by calculation.
1 cl, 4 tbl, 4 ex

Description

Данное изобретение относится к области сельского хозяйства, а именно, к птицеводству (определение количества раствора биологически активных веществ, проникающих в яйцо, экспресс-способом).This invention relates to the field of agriculture, namely, to poultry farming (determination of the amount of a solution of biologically active substances penetrating the egg, express method).

На сегодняшний день, обработку инкубационного яйца различных видов сельскохозяйственных птиц проводят все чаще, при этом используют различные водорастворимые формы моновеществ, обладающих биологически активными свойствами, а также различные композиции водорастворимых биостимуляторов (Азарнова Т.О. и др., 2011, 2020; Луговая И.С. и др., 2020, 2021).Today, the processing of hatching eggs of various species of agricultural birds is carried out more and more often, while using various water-soluble forms of monosubstances with biologically active properties, as well as various compositions of water-soluble biostimulants (Azarnova T.O. et al., 2011, 2020; Lugovaya I. .S. et al., 2020, 2021).

Учеными была доказана эффективность действия биостимуляторов на инкубационном яйце кур яичного и мясного направления, перепелов, индеек, и даже цесарок. При этом Кармолиевым Р.Х. и др. (2010) на примере сукцината марганца тетрагидрата доказана не только возможность его проникновения в яйцо и биологический эффект, но и конкретная концентрация действующего вещества, которую можно обнаружить в различных структурах развивающегося эмбриона.Scientists have proven the effectiveness of biostimulants on the hatching eggs of chickens for egg and meat, quails, turkeys, and even guinea fowls. At the same time Karmoliev R.Kh. et al. (2010) on the example of manganese succinate tetrahydrate proved not only the possibility of its penetration into the egg and the biological effect, but also the specific concentration of the active substance that can be found in various structures of the developing embryo.

Однако, несмотря на высокую точность данного метода, он является достаточно сложным, дорогим и длительным по исполнению.However, despite the high accuracy of this method, it is rather complicated, expensive and time-consuming in execution.

При этом также установлено, что наименьший размер пор в скорлупе и сложное строение имеет скорлупа яиц цесарок, поры яиц перепелов несколько крупнее цесариных, скорлупа куриных яиц считается одной из самых легко проницаемых, где в среднем размер пор составляет 25 мкм. По данным Бессарабова Б.Ф. и др. (2015), пористость скорлупы яиц кур составляет 120-150 пор/см2, цесарок - 60-80 пор/см2, по данным Царенко П.П. и др. (2017) число пор в перепелином яйце варьирует от 90 до 210 пор/см2.It was also found that the smallest pore size in the shell and the complex structure of the shell of eggs of guinea fowl, the pores of quail eggs are somewhat larger than caesar eggs, the shell of chicken eggs is considered one of the most easily permeable, where the average pore size is 25 microns. According to Bessarabov B.F. et al. (2015), the porosity of the egg shell of chickens is 120-150 pores/cm 2 , guinea fowl - 60-80 pores/cm 2 , according to Tsarenko P.P. et al. (2017) the number of pores in a quail egg varies from 90 to 210 pores/cm2 .

При этом, у ветеринарных врачей-производственников, работников инкубатория, а также специалистов фермерских хозяйств появляется закономерный вопрос: какое количество раствора какого-либо биостимулятора нужно для обработки партии яиц и сколько в конечном итоге из этого количества попадет в яйцо?At the same time, production veterinarians, hatchery workers, as well as farm specialists have a natural question: how much solution of any biostimulant is needed to process a batch of eggs and how much of this amount will end up in the egg?

Итак, зная рабочую концентрацию раствора, способ обработки (спрей-метод или аэрозольный) и объем емкости рассчитывают и разводят необходимое количество раствора. При этом необходимо учитывать средний расход раствора на 1 яйцо.So, knowing the working concentration of the solution, the method of processing (spray method or aerosol) and the volume of the container, calculate and dilute the required amount of the solution. In this case, it is necessary to take into account the average consumption of the solution per 1 egg.

На второй вопрос можно было бы ответить, применяя метод Кармолиева Р.Х. и др. (2010), однако данный способ был апробирован только для конкретного вещества, имеет ряд недостатков, как было представлено выше и неизвестно, будет ли он пригоден для всех групп веществ. Учитывая интенсивность технологических процессов, отсутствие высокоточного дорогостоящего оборудования и минимальное оснащение производственной лаборатории, а также нехватку времени персонала становится очевидным невозможность применения данного метода на производстве. Вместе с тем, учитывая актуальность данного вопроса и необходимость наличия доказательной базы для специалистов по представленной теме, был разработан экспресс-способ определения количества раствора одного или нескольких биостимуляторов, проникающих в инкубационное яйцо.The second question could be answered using the method of Karmoliev R.Kh. et al. (2010), however, this method was tested only for a specific substance, has a number of disadvantages, as presented above, and it is not known whether it will be suitable for all groups of substances. Considering the intensity of technological processes, the lack of high-precision expensive equipment and the minimum equipment of the production laboratory, as well as the lack of staff time, it becomes obvious that this method cannot be used in production. At the same time, taking into account the relevance of this issue and the need for an evidence base for specialists on the topic presented, an express method was developed for determining the amount of a solution of one or more biostimulants penetrating into an incubation egg.

Необходимо отметить, что для обработки яиц в большинстве случаев используют водорастворимые биостимуляторы, которые разводят в дистиллированной воде, при этом количество методик, которые могут быть использованы для их количественного определения, невелико и, как правило, они являются рутинными и трудновыполнимыми.It should be noted that for the treatment of eggs, in most cases, water-soluble biostimulants are used, which are diluted in distilled water, while the number of methods that can be used for their quantitative determination is small and, as a rule, they are routine and difficult to perform.

Данный способ позволяет определить, какое количество раствора биостимулятора попало внутрь яйца (т.е. количество действующего вещества вместе с растворителем - дистиллированной водой). Однако, зная концентрацию раствора можно также определить расчетным путем и количество одного или нескольких действующих веществ, проникающих в яйцо (умножить массу раствора на концентрацию каждого его компонента, а затем полученный результат суммировать).This method allows you to determine how much of the biostimulant solution got inside the egg (i.e. the amount of the active substance together with the solvent - distilled water). However, knowing the concentration of the solution, it is also possible to determine by calculation the amount of one or more active substances penetrating the egg (multiply the mass of the solution by the concentration of each of its components, and then summarize the result).

Также экспериментальным путем удалось установить расход раствора на 1 яйцо и его количество, которое проникает внутрь яйца.Also, experimentally, it was possible to establish the consumption of the solution per 1 egg and its amount that penetrates into the egg.

Из уровня техники известен метод, который заключаются в том, что инкубационные яйца контрольной и опытных партий подвергают обработке раствором Succ-Mn методом вакуумного подсоса. После обработки яйца инкубируют в инкубаторе в течение 24 часов. После чего отбирают от каждой партии яйца для дальнейших исследований, при этом из яиц берут пробы белка и желтка, которые помещают в термостат при температуре +60°С и высушивают до постоянной массы. Полученный таким образом биоматериал методом атомно-абсорбционной спектрометрии исследуют на содержание микроэлементов марганца, меди, цинка, железа, а также на содержание натрия пламенно-фотометрическим методом. На 19-е сутки от каждой партии отбирают несколько яиц с развивающимися эмбрионами. Эмбрионы с желточным мешком, а затем и без него взвешивают, после чего каждый эмбрион без желточного мешка подвергают гомогенизации. Расчет количества микромолей Succ-Mn, прошедшего через скорлупу, определяют по формуле:

Figure 00000001
где: X - количество Succ-Mn, тетрагидрата, проникшего в яйцо, мкмоль; 288,94 - молекулярная масса Succ-Mn (C8H10O8Mn), моль; Т - концентрация марганца в опытной пробе, мкмоль/яйцо; K - концентрация марганца в контрольной пробе, мкмоль/яйцо; 54,94 - атомная масса марганца. Определяется структура и физико-химические свойства сукцината магния тетрагидрата, а также количественный учет его проникновения при однократной предынкубационной обработке яиц различными по концентрации растворами. Однако предложенный нами способ значительно превосходит прототип (патент РФ № 2382551 С1, опубл. 27.02.2010).A method is known from the prior art, which consists in the fact that the incubation eggs of the control and experimental batches are subjected to treatment with a solution of Succ-Mn by the vacuum suction method. After processing, the eggs are incubated in an incubator for 24 hours. After that, eggs are taken from each batch for further research, while egg white and yolk samples are taken, which are placed in a thermostat at a temperature of +60°C and dried to a constant weight. The biomaterial obtained in this way by atomic absorption spectrometry is examined for the content of trace elements of manganese, copper, zinc, iron, as well as for the sodium content by the flame photometric method. On the 19th day, several eggs with developing embryos are taken from each batch. Embryos with and without a yolk sac are weighed, after which each embryo without a yolk sac is homogenized. The calculation of the number of micromoles of Succ-Mn that has passed through the shell is determined by the formula:
Figure 00000001
where: X is the amount of Succ-Mn, tetrahydrate, penetrated into the egg, µmol; 288.94 - molecular weight of Succ-Mn (C 8 H 10 O 8 Mn), mol; T is the concentration of manganese in the test sample, µmol/egg; K is the concentration of manganese in the control sample, µmol/egg; 54.94 is the atomic mass of manganese. The structure and physicochemical properties of magnesium succinate tetrahydrate are determined, as well as the quantitative accounting of its penetration during a single pre-incubation treatment of eggs with solutions of various concentrations. However, the proposed method is significantly superior to the prototype (RF patent No. 2382551 C1, publ. 27.02.2010).

Цель изобретения - разработка экспресс-способа определения количества растворов биостимуляторов, проникающих в инкубационные яйца сельскохозяйственных видов птиц, в условиях производства без применения специального оборудования и трудновыполнимых методик.The purpose of the invention is the development of an express method for determining the amount of biostimulant solutions penetrating into the hatching eggs of agricultural bird species under production conditions without the use of special equipment and difficult methods.

Технический результат - быстрый и точный способ определения количества раствора, которое проникло яйцо с использованием экспресс-способа, а также количество одного или нескольких биостимуляторов с использованием минимального оснащения и расчетным путем. Определение количества расхода раствора также установлено экспериментальным путем.The technical result is a fast and accurate method for determining the amount of solution that the egg has penetrated using the express method, as well as the amount of one or more biostimulants using minimal equipment and by calculation. Determining the amount of solution flow is also established experimentally.

Способ осуществляется следующим образом. Перед обработкой яиц необходимо взвесить сухие яйца по отдельности (минимальная выборка - 5 яиц в группе), затем произвести обработку инкубационного яйца при температуре раствора 18-22°С, дождаться полного высыхания скорлупы и взвесить индивидуально каждое яйцо еще раз. Разница между массой яйца после обработки и массой яйца до обработки будет является количеством раствора, проникшего в яйцо в г. При этом необходимы весы с высокой точностью - не менее 0,001 г. Для перерасчета массы раствора в объем необходимо полученное значение разделить на плотность раствора, согласно общепринятой формуле: V=m/p, где V - объем раствора, m - масса раствора, р - плотность раствора. При этом плотность раствора учитывается или согласно инструкции (наставлению) по применению или измеряется ареометром с точностью до 0,001 или пикнометром с точностью не менее 2 мл до обработки яиц. При использовании приборов измерения плотности необходимо предварительно измерить температуру раствора. Количество действующего вещества определяют путем умножения массы раствора на его концентрацию (для моновеществ) или на концентрацию каждого вещества по отдельности (для композиции веществ). Процент погрешности рассчитывается путем учета погрешности измерительных приборов и относительной погрешности измерений.The method is carried out as follows. Before processing eggs, it is necessary to weigh dry eggs separately (the minimum sample is 5 eggs in a group), then process the hatching egg at a solution temperature of 18-22 ° C, wait for the shell to dry completely and weigh each egg individually again. The difference between the mass of the egg after treatment and the mass of the egg before treatment will be the amount of solution that penetrated into the egg in g. In this case, scales with high accuracy are required - at least 0.001 g. To recalculate the mass of the solution into volume, it is necessary to divide the resulting value by the density of the solution, according to the generally accepted formula: V=m/p, where V is the volume of the solution, m is the mass of the solution, p is the density of the solution. In this case, the density of the solution is taken into account either according to the instructions (instruction) for use or measured with a hydrometer with an accuracy of 0.001 or a pycnometer with an accuracy of at least 2 ml before processing the eggs. When using density measuring instruments, the temperature of the solution must first be measured. The amount of the active substance is determined by multiplying the mass of the solution by its concentration (for mono-substances) or by the concentration of each substance separately (for a composition of substances). The error percentage is calculated by taking into account the error of measuring instruments and the relative measurement error.

В качестве доказательства эффективности данного способа приведены результаты экспериментов на яйцах кур, перепелов и цесарок с использованием разных концентраций композиции биостимуляторов, доказавших свою эффективность. Контрольные партии яиц обрабатывали только дистиллированной водой. Распыление спрея во всех группах было равномерным, затраты раствора были примерно одинаковыми.As evidence of the effectiveness of this method, the results of experiments on eggs of chickens, quails and guinea fowls using different concentrations of the composition of biostimulants that have proven their effectiveness are given. Control batches of eggs were treated with distilled water only. Spray spraying in all groups was uniform, solution costs were approximately the same.

Для всех примеров погрешность измерения весов составляет 0,0005 г (половину цены деления). Определение плотности проводили с использованием ареометра с точностью до 0,001 г/см3, относительная погрешность измерений представлена как отклонение от среднего по модулю. Плотность дистиллированной воды для всех примеров составила 0,995 г/см3 при температуре 22°С.For all examples, the measurement error of the scales is 0.0005 g (half the scale division). Density was determined using a hydrometer with an accuracy of 0.001 g/cm 3 , the relative measurement error is presented as a deviation from the average modulo. The density of distilled water for all examples was 0.995 g/cm 3 at 22°C.

Необходимо отметить, что температура раствора должна быть в пределах 18-22°С, поскольку она оптимальна для получения стабильного раствора, который не меняет своих физико-химических характеристик.It should be noted that the temperature of the solution should be in the range of 18-22°C, since it is optimal for obtaining a stable solution that does not change its physicochemical characteristics.

Пример 1. Яйца кур кросса «Хайсекс Уайт» получали от одного родительского стада, сортировали по 5 штук в каждую группу для проведения эксперимента по принципу аналогов. На поверхность скорлупы опытной группы из пульверизатора (спрей-метод) наносили раствор композиции биостимуляторов (коламина, янтарной кислоты, серина и пиридоксина гидрохлорида в концентрациях, оптимальных для яичного кросса кур ((Луговая И.С., 2021) - 0,1%, 0,1%, 0,2%, 0,1%), а на поверхность скорлупы яиц контрольной группы - дистиллированную воду. Затем производили учет показателей с использованием весов с точностью до 0,001 г. по схеме (аналогична для всех примеров), представленной в таблице 1. Предварительно, плотность приготовленного раствора измеряли ареометром с точностью до 0,001 г/см3 (она составила 0,995 г/см3). Результаты также представлены в таблице 1.Example 1. Eggs of hens of the "Hysex White" cross were obtained from one parent flock, sorted 5 pieces in each group for the experiment on the principle of analogues. A solution of a composition of biostimulants (colamine, succinic acid, serine and pyridoxine hydrochloride) was applied to the surface of the shell of the experimental group from a spray gun (spray method) at concentrations optimal for egg cross chickens ((Lugovaya I.S., 2021) - 0.1%, 0.1%, 0.2%, 0.1%), and on the surface of the shell of eggs of the control group - distilled water.Then, the indicators were recorded using weights with an accuracy of 0.001 g according to the scheme (similar for all examples) presented in table 1. Previously, the density of the prepared solution was measured with a hydrometer with an accuracy of 0.001 g / cm 3 (it was 0.995 g / cm 3 ) The results are also presented in table 1.

Figure 00000002
Figure 00000002

Как видно из таблицы 1, среднее значение разницы между яйцами сухими и после высыхания в опыте составляет 0,0038 г, в то время как в контроле - 0,0006 г. Анализ данных контрольной и опытной групп показывает, что при использовании растворов биостимуляторов масса яиц увеличивается, что не происходит в контрольной группе, где применяли для обработки только дистиллированную воду.As can be seen from Table 1, the average value of the difference between dry eggs and after drying in the experiment is 0.0038 g, while in the control it is 0.0006 g. increases, which does not occur in the control group, where only distilled water was used for treatment.

Известно, что в процессе газообмена происходит усушка яйца, т.е. уменьшение его массы. В контрольных и опытных группах газообмен происходил одинаково, однако за счет разницы между растворителем и действующим веществом в опытных группах массы яиц возросли.It is known that egg shrinkage occurs in the process of gas exchange; reduction in its mass. In the control and experimental groups, gas exchange occurred in the same way, however, due to the difference between the solvent and the active substance in the experimental groups, the weight of the eggs increased.

Разница массы между яйцом после обработки и сухим яйцом в контроле составляет -

Figure 00000003
в опыте -
Figure 00000004
Figure 00000005
The weight difference between the egg after treatment and the dry egg in the control is -
Figure 00000003
in experience -
Figure 00000004
Figure 00000005

При расчете объема раствора, проникшего в яйцо, было установлено, что он составляет 0,0038191 мл (3,8191 мкл). А масса действующих веществ без растворителя составляет 0,000019 г (0,019 мг).When calculating the volume of solution that penetrated the egg, it was found that it is 0.0038191 ml (3.8191 μl). And the mass of active substances without solvent is 0.000019 g (0.019 mg).

Необходимо отметить, что разница по массе сухого и влажного яйца составляет 0,99-1%, разница между сухим яйцом и после высыхания также составляет 1% по массе.It should be noted that the difference in weight of dry and wet eggs is 0.99-1%, the difference between dry eggs and after drying is also 1% by weight.

Пример 2. Яйца перепелов японской породы получали от одного родительского стада, сортировали по 5 штук в каждую группу для проведения эксперимента по принципу аналогов. На поверхность скорлупы опытной группы из пульверизатора (спрей-метод) наносили раствор композиции биостимуляторов (коламина, янтарной кислоты, серина и пиридоксина гидрохлорида в концентрациях, оптимальных для данной породы перепелов ((Луговая И.С., 2021) - 0,1%, 0,1%, 0,2%, 0,001%) (плотность раствора составила 0,994 г/см3), а на поверхность скорлупы яиц контрольной группы - дистиллированную воду. Затем производили учет показателей с использованием весов с точностью до 0,001 г. Результаты представлены в таблице 2.Example 2. Japanese quail eggs were obtained from one parent flock, sorted 5 pieces in each group for the experiment on the principle of analogues. A solution of a composition of biostimulants (colamine, succinic acid, serine and pyridoxine hydrochloride) was applied to the surface of the shell of the experimental group from a spray gun (spray method) at concentrations that are optimal for this breed of quail ((Lugovaya I.S., 2021) - 0.1%, 0.1%, 0.2%, 0.001%) (the density of the solution was 0.994 g/cm 3 ), and on the surface of the shell of eggs of the control group - distilled water.Then, the indicators were recorded using weights with an accuracy of 0.001 g. The results are presented in table 2.

Figure 00000006
Figure 00000006

Анализ данных контрольной и опытной групп показывает, что при использовании растворов биостимуляторов масса яиц увеличивается, а в контрольной группе масса, где применяли для обработки только дистиллированную воду уменьшается. Разница массы между яйцом после обработки и сухим яйцом в контроле составляет -

Figure 00000007
в опыте -
Figure 00000008
An analysis of the data from the control and experimental groups shows that when using solutions of biostimulants, the mass of eggs increases, and in the control group, the mass, where only distilled water was used for processing, decreases. The weight difference between the egg after treatment and the dry egg in the control is -
Figure 00000007
in experience -
Figure 00000008

При расчете объема раствора, проникшего в яйцо было установлено, что он составляет 0,0020121 мл (2,0121 мкл). А масса действующих веществ без растворителя составляет 0,00000804 г (0,00804 мг).When calculating the volume of the solution that penetrated the egg, it was found that it is 0.0020121 ml (2.0121 μl). And the mass of active substances without solvent is 0.00000804 g (0.00804 mg).

Необходимо отметить, что разница по массе сухого и влажного яйца составляет 0,99-1%, разница между сухим яйцом и после высыхания также составляет 1% по массе.It should be noted that the difference in weight of dry and wet eggs is 0.99-1%, the difference between dry eggs and after drying is also 1% by weight.

Пример 3. Яйца цесарок серо-крапчатой породы получали от одного родительского стада, сортировали по 5 штук в каждую группу для проведения эксперимента по принципу аналогов. На поверхность скорлупы опытной группы из пульверизатора (спрей-метод) наносили раствор композиции биостимуляторов (коламина, янтарной кислоты, серина и пиридоксина гидрохлорида в концентрациях, оптимальных для данной цесарок ((Луговая И.С., 2020) - 0,1%, 0,1%, 0,2%, 0,01%) (плотность раствора составила 0,996 г/см3), а на поверхность скорлупы яиц контрольной группы - дистиллированную воду. Затем производили учет показателей с использованием весов с точностью до 0,001 г. Результаты представлены в таблице 3.Example 3. Gray-speckled guinea fowl eggs were obtained from one parent flock, sorted 5 pieces into each group to conduct an experiment on the principle of analogues. A solution of a composition of biostimulants (colamine, succinic acid, serine and pyridoxine hydrochloride) was applied to the surface of the shell of the experimental group from a spray gun (spray method) at concentrations optimal for this guinea fowl ((Lugovaya I.S., 2020) - 0.1%, 0 ,1%, 0.2%, 0.01%) (the density of the solution was 0.996 g/cm 3) , and distilled water on the surface of the shell of the eggs of the control group.Then, the indicators were recorded using weights with an accuracy of 0.001 g. are presented in table 3.

Figure 00000009
Figure 00000009

Анализ данных контрольной и опытной групп показывает, что при использовании растворов биостимуляторов масса яиц достоверно увеличивается (р≤0,05), что не происходит в контрольной группе, где применяли для обработки только дистиллированную воду. Разница массы между яйцом после обработки и сухим яйцом в контроле составляет -

Figure 00000010
в опыте -
Figure 00000011
An analysis of the data from the control and experimental groups shows that when using solutions of biostimulants, the weight of eggs significantly increases (p≤0.05), which does not occur in the control group, where only distilled water was used for processing. The weight difference between the egg after treatment and the dry egg in the control is -
Figure 00000010
in experience -
Figure 00000011

При расчете объема раствора, проникшего в яйцо, было установлено, что он составляет 0,0084337 мл (8,4337 мкл). А масса действующих веществ без растворителя составляет 0,000042 г (0,042 мг).When calculating the volume of solution that penetrated the egg, it was found that it is 0.0084337 ml (8.4337 μl). And the mass of active substances without solvent is 0.000042 g (0.042 mg).

Необходимо отметить, что разница по массе сухого и влажного яйца составляет 0,99-1%, разница между сухим яйцом и после высыхания также составляет 1% по массе.It should be noted that the difference in weight of dry and wet eggs is 0.99-1%, the difference between dry eggs and after drying is also 1% by weight.

Полученная достоверная максимальная разница между опытом и контролем на цесариных яйцах относительно других видов птиц связана с тем, что при прочих равных условиях проникновения растворов биостимуляторов в яйца, уровень усушки яиц цесарок минимальный относительно других видов яиц птиц. Таким образом, уровень газообмена и испарения растворов в яйцах цесарок намного ниже, чем возможности проникновения растворов биостимуляторов, что и объясняет полученные результаты.The obtained reliable maximum difference between the experiment and control on guinea fowl eggs relative to other bird species is due to the fact that, other things being equal, the penetration of biostimulant solutions into eggs, the level of shrinkage of guinea fowl eggs is minimal relative to other types of bird eggs. Thus, the level of gas exchange and evaporation of solutions in guinea fowl eggs is much lower than the penetration of biostimulant solutions, which explains the results obtained.

Таким образом, экспериментально было установлено, что для всех видов птиц после высыхания в яйцо сможет проникнуть не более 1% от массы яйца. При расчете количества раствора, необходимого для обработки яйца следует учитывать данный процент, а также погрешность распыления, которая в зависимости от спреера составляет по данным работников птицепредприятий не более 10%.Thus, it was experimentally established that for all species of birds, after drying, no more than 1% of the egg mass can penetrate into the egg. When calculating the amount of solution required for egg treatment, this percentage should be taken into account, as well as the spraying error, which, depending on the sprayer, is no more than 10% according to poultry workers.

Время высыхания яиц после обработки зависит от относительной влажности и температуры в помещении. При соблюдении параметров микроклимата, установленных для каждого вида птицы, в среднем высыхание перепелиных яиц происходит за 40 минут, куриных - за 50-60 минут, цесариных - за 60 минут.The drying time of eggs after processing depends on the relative humidity and room temperature. Subject to the microclimate parameters established for each type of bird, on average, quail eggs dry out in 40 minutes, chicken eggs in 50-60 minutes, and caesar eggs in 60 minutes.

Пример 4. Количество пор в куриных яйцах варьировало в пределах 130-135 шт/см2, перепелиных - в пределах 110-115 шт/см2, а цесариных - 60-65 шт/см2.Example 4. The number of pores in chicken eggs varied within 130-135 pcs/cm 2 , quail eggs - within 110-115 pcs/cm 2 , and caesar eggs - 60-65 pcs/cm 2 .

На основании представленных ранее примерах составлена таблица толщины скорлупы яиц (таблица 4).Based on the examples presented earlier, a table of the thickness of the egg shell was compiled (table 4).

Figure 00000012
Figure 00000012

Как видно из таблицы 4, толщина скорлупы яиц опытных и контрольных групп птиц была одинаковой, таким образом, полученные данные (примеры 1, 2, 3) свидетельствуют, что толщина скорлупы и количество пор при их равнозначном количестве в опыте и контроле на полученные результаты не влияют. Результат связан именно со способностью скорлупы быть проницаемой для биостимуляторов.As can be seen from table 4, the shell thickness of the eggs of the experimental and control groups of birds was the same, thus, the data obtained (examples 1, 2, 3) indicate that the shell thickness and the number of pores, with their equivalent number in the experiment and control, did not influence. The result is connected precisely with the ability of the shell to be permeable to biostimulants.

Необходимо отметить, что уровень газообмена напрямую коррелирует с диаметром пор и их количеством, что и объясняет полученные результаты. Так, у куриных яиц поры самые крупные, у перепелов - меньше, а у цесарок - самые мелкие, соответственно аналогичная ситуация и с количеством пор (данные представлены выше). Поэтому в единицу времени уровень газообмена и усушки будет разным, что согласуется с данными Бессарабова Б.Ф. и др. (2015).It should be noted that the level of gas exchange directly correlates with the diameter of pores and their number, which explains the results obtained. So, in chicken eggs, the pores are the largest, in quails - less, and in guinea fowls - the smallest, respectively, the situation is similar with the number of pores (the data are presented above). Therefore, per unit time, the level of gas exchange and shrinkage will be different, which is consistent with the data of Bessarabov B.F. et al. (2015).

ЛитератураLiterature

1. Патент №2382551 С1 Российская Федерация, МПК А01К 43/00 (2006.01). Способ количественного определения проникновения сукцината марганца тетрагидрата в инкубационные яйца кур: №2008140854/12: заявл. 15.10.2008; опубл. 27.02.2010 / Кармолиев Р.Х., Ручий О.С., Кармолиев P.P., Кочиш И.И., Нестеров В.В.; заявитель Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина» (ФГБОУ ВО «МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина»).1. Patent No. 2382551 C1 Russian Federation, IPC A01K 43/00 (2006.01). Method for quantitative determination of the penetration of manganese succinate tetrahydrate into hatching eggs of chickens: No. 2008140854/12: Appl. 10/15/2008; publ. 02.27.2010 / Karmoliev R.Kh., Ruchiy O.S., Karmoliev R.R., Kochish I.I., Nesterov V.V.; applicant Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education "Moscow State Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology - MBA named after K.I. Skryabin" (FGBOU VO "MGAVMiB - MVA named after K.I. Skryabin").

2. Патент №2486752 С1 Российская Федерация, МПК А01К 45/00 (2006.01). Способ стимуляции эмбриогенеза кур яичного направления продуктивности и профилактики физиологического стрессового воздействия: №2011144760/13: заявл. 07.11.2011: опубл. 10.07.2013 / Азарнова Т.О., Ярцева И.С, Найденский М.С, Азарнова Л.Ю., Зайцев С.Ю., Ярцева И.А.; заявитель Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии имени К.И. Скрябина» (ФГБОУ ВПО МГАВМиБ).2. Patent No. 2486752 C1 Russian Federation, IPC A01K 45/00 (2006.01). A method for stimulating the embryogenesis of egg-laying hens and preventing physiological stress: No. 2011144760/13: Appl. 11/07/2011: publ. 07/10/2013 / Azarnova T.O., Yartseva I.S., Naidensky M.S., Azarnova L.Yu., Zaitsev S.Yu., Yartseva I.A.; applicant Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Professional Education “Moscow State Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology named after K.I. Scriabin" (FGBOU VPO MGAVMiB).

3. Патент №2711748 С1 Российская Федерация, МПК А01К 45/00 (2006.01), СПК А01К 45/00 (2019.08), А01К 45/007 (2019.08). Способ оптимизации гистогенеза органов желудочно-кишечного тракта у эмбрионов кур мясного направления продуктивности при использовании биологически активных веществ перед инкубацией: №2019123341: заявл. 19.07.2019: опубл. 21.01.2020 / Азарнова Т.О., Луговая И.С, Кочиш И.И., Найденский М.С., Луговой М.М., Антипов А.А.; заявитель Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина» (ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина).3. Patent No. 2711748 C1 Russian Federation, IPC A01K 45/00 (2006.01), SPK A01K 45/00 (2019.08), A01K 45/007 (2019.08). A method for optimizing the histogenesis of the organs of the gastrointestinal tract in chicken embryos of the meat direction of productivity when using biologically active substances before incubation: No. 2019123341: Appl. 07/19/2019: publ. 21.01.2020 / Azarnova T.O., Lugovaya I.S., Kochish I.I., Naidensky M.S., Lugovoi M.M., Antipov A.A.; applicant Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education "Moscow State Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology - MBA named after K.I. Scriabin" (FGBOU VO MGAVMiB - MVA named after K.I. Skryabin).

4. Патент №2753364 С1 Российская Федерация, МПК A61D 99/00 (2006.01), А01К 67/00 (2006.01), СПК A61D 99/00 (2021.02), А01К 67/00 (2021.02). Способ стимуляции роста и развития перепелов в раннем онтогенезе: №2020133687: заявл. 13.10.2020: опубл. 13.08.2021 / Луговая И.С., Азарнова Т.О., Кочиш И.И., Найденский М.С., Луговой М.М., Уляев А.И., Комар В.А., Антипов А.А., Петрова Ю.В.; заявитель Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина» (ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина).4. Patent No. 2753364 C1 Russian Federation, IPC A61D 99/00 (2006.01), А01К 67/00 (2006.01), SPK A61D 99/00 (2021.02), А01К 67/00 (2021.02). A method for stimulating the growth and development of quails in early ontogenesis: No. 2020133687: Appl. 10/13/2020: publ. 08/13/2021 / Lugovaya I.S., Azarnova T.O., Kochish I.I., Naidensky M.S., Lugovoi M.M., Ulyaev A.I., Komar V.A., Antipov A.A. ., Petrova Yu.V.; applicant Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education "Moscow State Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology - MBA named after K.I. Skryabin" (FGBOU VO MGAVMiB - MVA named after K.I. Skryabin).

5. Патент №2754459 С1 Российская Федерация, МПК А01К 67/00 (2006.01), А01К 67/02 (2006.01), A61D 7/00 (2006.01), СПК А01К 67/00 (2021.02), А01К 67/02 (2021.02), A61D 7/00 (2021.02). Способ повышения стрессоустойчивости молодняка кур яичного кросса: №2020131113: заявл. 21.09.2020: опубл. 02.09.2021 / Луговая И.С, Азарнова Т.О., Кочиш И.И., Найденский М.С., Луговой М.М., Аншаков Д.В., Золотухина Е.А., Антипов А.А., Петрова Ю.В., Монстакова Т.В.; заявитель Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина» (ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина).5. Patent No. 2754459 C1 Russian Federation, IPC A01K 67/00 (2006.01), A01K 67/02 (2006.01), A61D 7/00 (2006.01), SPK A01K 67/00 (2021.02), A01K 67/02 (2021.02) , A61D 7/00(2021.02). A method for increasing the stress resistance of young chickens of egg cross: No. 2020131113: Appl. 09/21/2020: publ. 09/02/2021 / Lugovaya I.S., Azarnova T.O., Kochish I.I., Naidensky M.S., Lugovoi M.M., Anshakov D.V., Zolotukhina E.A., Antipov A.A. , Petrova Yu.V., Monstakova T.V.; applicant Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education "Moscow State Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology - MBA named after K.I. Skryabin" (FGBOU VO MGAVMiB - MVA named after K.I. Skryabin).

6. Луговая, И.С. Применение биостимуляторов для "реанимации" эмбрионов перепелов / И.С. Луговая // Международный вестник ветеринарии. - 2020.- №3. - С. 65-70.6. Lugovaya, I.S. The use of biostimulants for the "resuscitation" of quail embryos / I.S. Lugovaya // International Veterinary Bulletin. - 2020.- №3. - S. 65-70.

7. Луговая, И.С. Увеличение количества кондиционного молодняка цесарок при использовании биостимуляторов перед инкубацией / И.С.Луговая // Международный вестник ветеринарии. - 2020. - №4.- С. 57-62.7. Lugovaya, I.S. Increasing the number of conditioned young guinea fowl when using biostimulants before incubation / I.S. Lugovaya // International Veterinary Bulletin. - 2020. - No. 4. - P. 57-62.

8. Бессарабов, Б.Ф. Инкубация яиц сельскохозяйственной птицы: Учебное пособие / Б. Ф. Бессарабов, А. А. Крыканов, А. Л. Киселев // СПб.: Издательство «Лань». - 2015. - 160 с.8. Bessarabov, B.F. Incubation of poultry eggs: Textbook / B. F. Bessarabov, A. A. Krykanov, A. L. Kiselev // St. Petersburg: Lan publishing house. - 2015. - 160 p.

9. Царенко, П.П. Влияние качества и условий хранения куриных и перепелиных яиц на их сохранность / П.П. Царенко, Л.А. Кулешова // Известия Санкт-Петербургского государственного аграрного университета. - 2017. - №48. - С. 99-104.9. Tsarenko, P.P. Influence of quality and storage conditions of chicken and quail eggs on their preservation / P.P. Tsarenko, L.A. Kuleshova // Proceedings of the St. Petersburg State Agrarian University. - 2017. - No. 48. - S. 99-104.

10. Луговая И.С. Увеличение количества кондиционного молодняка цесарок при использовании биостимуляторов перед инкубацией / И.С.Луговая // Международный вестник ветеринарии. - 2020. - №4. - С. 57-62.10. Lugovaya I.S. Increasing the number of conditioned young guinea fowl when using biostimulants before incubation / I.S. Lugovaya // International Veterinary Bulletin. - 2020. - №4. - S. 57-62.

Claims (1)

Экспресс-способ определения количества растворов биологически активных веществ, проникающих в инкубационное яйцо птиц при их обработке методом спрея, заключающийся в том, что перед обработкой яиц взвешивают яйца по одному, затем проводят обработку инкубационного яйца при температуре раствора 18-22°С, дожидаются полного высыхания скорлупы и взвешивают индивидуально каждое яйцо еще раз, величина разницы между массой яйца после обработки и массой яйца до обработки является количеством раствора, проникшего в яйцо в г.An express method for determining the amount of solutions of biologically active substances that penetrate into the hatching eggs of birds during their processing by the spray method, which consists in weighing the eggs one at a time before processing the eggs, then processing the hatching eggs at a solution temperature of 18-22 ° C, waiting for the full shell drying and weighing each egg individually again, the difference between the weight of the egg after treatment and the weight of the egg before treatment is the amount of solution that penetrated into the egg in g.
RU2021136170A 2021-12-08 Express method for determining the amount of solutions of biologically active substances penetrating into the incubation egg of birds during treatment of eggs by spray method RU2786044C1 (en)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2786044C1 true RU2786044C1 (en) 2022-12-16

Family

ID=

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1371658A1 (en) * 1985-05-13 1988-02-07 Украинский научно-исследовательский институт птицеводства Method of treatment of incubation eggs
RU2351125C2 (en) * 2007-02-21 2009-04-10 Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Кубанский государственный аграрный университет Method of weighing egg yolk without breaking shell
RU2382551C1 (en) * 2008-10-15 2010-02-27 ФГОУ ВПО "Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им. К.И. Скрябина" Method of quantitative determination of penetration of manganese succinate tetrahydrate into incubative chicken eggs
CN106376641A (en) * 2016-08-30 2017-02-08 西藏职业技术学院 Cleaning and fresh-keeping solution for Tibetan chicken eggs and cleaning and fresh-keeping method
CN107027697A (en) * 2017-03-17 2017-08-11 枞阳县恒祥生态农业有限公司 A kind of method for improving free range chicken hatching of breeding eggs rate

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1371658A1 (en) * 1985-05-13 1988-02-07 Украинский научно-исследовательский институт птицеводства Method of treatment of incubation eggs
RU2351125C2 (en) * 2007-02-21 2009-04-10 Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Кубанский государственный аграрный университет Method of weighing egg yolk without breaking shell
RU2382551C1 (en) * 2008-10-15 2010-02-27 ФГОУ ВПО "Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им. К.И. Скрябина" Method of quantitative determination of penetration of manganese succinate tetrahydrate into incubative chicken eggs
CN106376641A (en) * 2016-08-30 2017-02-08 西藏职业技术学院 Cleaning and fresh-keeping solution for Tibetan chicken eggs and cleaning and fresh-keeping method
CN107027697A (en) * 2017-03-17 2017-08-11 枞阳县恒祥生态农业有限公司 A kind of method for improving free range chicken hatching of breeding eggs rate

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU2013297168B2 (en) Gender, viability and/or developmental stage determination of avian embryos in ovo
Lourens et al. Effects of eggshell temperature and oxygen concentration on embryo growth and metabolism during incubation
De Smit et al. The effect of nonventilation during early incubation on the embryonic development of chicks of two commercial broiler strains differing in ascites susceptibility
Kolesnik et al. Clinical Diagnostics of Adaptive Resources of the Broiler Chicks’ Organism
Jefferies et al. Hyper-and hypothyroidism in pigeons fed DDT: an explanation for the ‘thin eggshell phenomenon’
Adamski et al. Effect of goose age on morphological composition of eggs and on level and activity of lysozyme in thick albumen and amniotic fluid.
Visschedijk et al. Variability of shell conductance and gas exchange of chicken eggs
RU2786044C1 (en) Express method for determining the amount of solutions of biologically active substances penetrating into the incubation egg of birds during treatment of eggs by spray method
Flores-Santin et al. Hematology from embryo to adult in the bobwhite quail (Colinus virginianus): Differential effects in the adult of clutch, sex and hypoxic incubation
Bojarski et al. Effects of embryonic exposure to chromium (VI) on blood parameters and liver microstructure of 1-day-old chickens
Christensen et al. Accelerating embryonic growth during incubation following prolonged egg storage. 2. Embryonic growth and metabolism
Kucharska-Gaca et al. The age of the geese from the parent flock and the laying period affect the features of the eggs
Tong et al. Physiological status of broiler chicks at pulling time and the relationship to duration of holding period
Jia et al. Effect of egg composition and oxidoreductase on adaptation of Tibetan chicken to high altitude
Lake et al. Effect on fertility of storing turkey semen for 24 hours at 10 C in fluids of different pH
Adamski et al. Effect of storage time on the quality of japanese quail eggs (Coturnix coturnix japonica)
Karabulut Relationship between weight, volume and specific gravity of goose eggs before incubation
Dunn et al. Age-specific changes in the major body components and caloric values of herring gull chicks
Liu et al. Effect of elevated carbon dioxide on chicken eggs during the early and late incubation periods
Iraqi et al. Effect of thermal manipulation on embryonic development, hatching process, and chick quality under heat-stress conditions
Wahab et al. Comparative study of hatchability rate and egg quality between different strains of Japanese Quail (Coturnix japonica)
Lomholt Oxygen affinity of bird embryo blood
RU2403907C2 (en) Method for better hatchability and safety of chickens
Reigh et al. Effects of relative humidity and elevated oxygen concentrations on egg‐hatching success of American alligator, Alligator mississippiensis
Kouatcho et al. Effect of Storage Time at Low Temperature on Physico-Chemical Characteristics of Eggs from Hens Kept in Backyard System in the City of Iasi in Romania