RU2784815C1 - STREPTOMYCES sp. KMM 9044 - PRODUCER OF COMPOUNDS WITH ANTIBACTERIAL ACTIVITY - Google Patents

STREPTOMYCES sp. KMM 9044 - PRODUCER OF COMPOUNDS WITH ANTIBACTERIAL ACTIVITY Download PDF

Info

Publication number
RU2784815C1
RU2784815C1 RU2022119466A RU2022119466A RU2784815C1 RU 2784815 C1 RU2784815 C1 RU 2784815C1 RU 2022119466 A RU2022119466 A RU 2022119466A RU 2022119466 A RU2022119466 A RU 2022119466A RU 2784815 C1 RU2784815 C1 RU 2784815C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
compounds
kmm
antibacterial activity
streptomyces
strain
Prior art date
Application number
RU2022119466A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Татьяна Николаевна Макарьева
Людмила Александровна Романенко
Константин Сергеевич Минеев
Лариса Кимовна Шубина
Елена Борисовна Гугля
Наталья Ивановна Калиновская
Наталья Владимировна Иванчина
Алла Григорьевна Гузий
Ольга Александровна Белозерова
Роман Сергеевич Попов
Валерий Викторович Михайлов
Александр Сергеевич Щеглов
Павел Сергеевич Дмитренок
Илья Викторович ЯМПОЛЬСКИЙ
Валентин Аронович Стоник
Original Assignee
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГАОУ ВО РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГАОУ ВО РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России) filed Critical Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГАОУ ВО РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России)
Application granted granted Critical
Publication of RU2784815C1 publication Critical patent/RU2784815C1/en

Links

Images

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention relates to biotechnology and can be used to obtain compounds of the class of depsipeptides (DP) with antibacterial activity. Streptomyces sp. KMM 9044 from the collection of marine microorganisms of the Pacific Institute of bioorganic chemistry of Far Eastern Branch of Russian Academy of Sciences deposit certificate No. 16146-203 dated May 19, 2022 - a producer of compounds with antibacterial activity, as well as the use of this strain to obtain compounds with antibacterial activity.
EFFECT: invention makes it possible to obtain new depsipeptide compounds having antibacterial activity.
2 cl, 7 dwg, 2 tbl, 3 ex

Description

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для получения соединений класса депсипептидов (ДП), обладающих антибактериальной активностью.The invention relates to biotechnology and can be used to obtain compounds of the class of depsipeptides (DP) with antibacterial activity.

Уровень техникиState of the art

Несмотря на успехи, связанные с применением существующих антибактериальных агентов, продолжает сохраняться потребность в новых антибиотиках. Для многих патогенов повторное взаимодействие с применяемыми антибиотиками, приводит к отбору вариантов штаммов, устойчивых к широкому спектру антибиотиков. Потеря силы и эффективности антибиотика, определяемые возникновением механизмов устойчивости, приводит к неэффективности антибиотика и, следовательно, может вести к некоторым угрожающим жизни инфекциям, которые практически не поддаются лечению. Как только на рынке появляются и начинают применяться новые антибиотики, микроорганизмы начинают эволюционировать в сторону развития устойчивости к данным новым лекарствам, эффективно создавая потребность в создании новых антибактериальных агентов для борьбы с данными возникающими штаммами.Despite the successes associated with the use of existing antibacterial agents, there continues to be a need for new antibiotics. For many pathogens, repeated exposure to applied antibiotics results in selection of strain variants that are resistant to a wide range of antibiotics. The loss of antibiotic potency and efficacy determined by the emergence of resistance mechanisms results in antibiotic ineffectiveness and therefore may lead to some life-threatening infections that are virtually untreatable. As new antibiotics are introduced and used on the market, microorganisms begin to evolve towards developing resistance to these new drugs, effectively creating a need for new antibacterial agents to combat these emerging strains.

Депсипептиды - это антибактериальные агенты, которые относятся к нерибосомальным пептидам, которые синтезируются с помощью ферментных комплексов пептид-синтетаз, состоящих из повторяющихся доменов с модульной организацией для активации и связывания аминокислот. Основными продуцентами природных ДП являются почвенные бактерии, морские организмы и грибы. Эти соединения могут обладать антибактериальной, иммуномодулирующей, противоопухолевой активностью, а также эффективны против различных микроорганизмов и гельминтов.Depsipeptides are antibacterial agents that refer to non-ribosomal peptides that are synthesized by peptide-synthetase enzyme complexes consisting of repetitive domains with a modular organization to activate and bind amino acids. The main producers of natural DPs are soil bacteria, marine organisms, and fungi. These compounds may have antibacterial, immunomodulatory, antitumor activity, and are also effective against various microorganisms and helminths.

Так, из уровня техники известен циклический депсипептид тейксобактин, открытый в 2015 г как метаболит почвенной β-протеобактериии Eleftheria terrae [Ling, L.L., Schneider, Т., Peoples, A.J., Spoering, A.L., Engels, I., Conlon, B.P., Mueller, A., Schaberle, T.F., Hughes, D.E., Epstein, S., Jones, M., 2015. A new antibiotic kills pathogens without detectable resistance. Nature 517 (7535), 455-459], а впоследствии синтезированный [Karas JA, Chen F, Schneider-Futschik EK, Kang Z, Hussein M, Swarbrick J, Hoyer D, Giltrap AM, Payne RJ, Li J, Velkov T. Synthesis and structure-activity relationships of teixobactin. Ann N Y Acad Sci. 2020 Jan; 1459(1): 86-105. doi: 10.1111/nyas.14282], является перспективным кандидатом на разработку лекарственного средства [Teixobactin and preparation method thereof (патент CN107266531A)].Thus, the cyclic depsipeptide teixobactin is known from the prior art, discovered in 2015 as a metabolite of the soil β-proteobacterium Eleftheria terrae [Ling, L.L., Schneider, T., Peoples, A.J., Spoering, A.L., Engels, I., Conlon, B.P., Mueller , A., Schaberle, T.F., Hughes, D.E., Epstein, S., Jones, M., 2015. A new antibiotic kills pathogens without detectable resistance. Nature 517 (7535), 455-459], and subsequently synthesized [Karas JA, Chen F, Schneider-Futschik EK, Kang Z, Hussein M, Swarbrick J, Hoyer D, Giltrap AM, Payne RJ, Li J, Velkov T. Synthesis and structure-activity relationships of teixobactin. Ann N Y Acad Sci. Jan 2020; 1459(1): 86-105. doi: 10.1111/nyas.14282], is a promising candidate for drug development [Teixobactin and preparation method thereof (patent CN107266531A)].

Наиболее близким аналогом заявляемого изобретения является штамм-продуцент антимикробных соединений Streptomyces roseosporus, из культуральной жидкости которого был выделен циклический депсипептид даптомицин как самый активный компонент смеси соединений с 13-членным аминокислотным циклом. Пройдя все стадии изучения, он был зарегистрирован как лекарственный препарат [Tedesco KL, Rybak MJ. Daptomycin. Pharmacotherapy. 2004 Jan; 24(1):41-57. Review.]. Даптомицин проявлял высокую активность in vitro против Грам-положительных бактерий - энтерококков, включая устойчивые к ванкомицину (VRE), стафилококков, включая устойчивые к метициллину (MRSA), стрептококков и коринебактерий. Известно изобретение, относящееся к улучшению способа очистки даптомицина (патент RU 2348647 С2, опубл. 10.03.2009).The closest analogue of the claimed invention is the strain-producer of antimicrobial compounds Streptomyces roseosporus, from the culture fluid of which the cyclic depsipeptide daptomycin was isolated as the most active component of a mixture of compounds with a 13-membered amino acid cycle. Having passed all the stages of study, it was registered as a drug [Tedesco KL, Rybak MJ. Daptomycin. pharmaceutical therapy. 2004 Jan; 24(1):41-57. Review.]. Daptomycin showed high activity in vitro against Gram-positive bacteria - enterococci, including vancomycin-resistant (VRE), staphylococci, including methicillin-resistant (MRSA), streptococci and corynebacteria. An invention is known relating to the improvement of the purification method of daptomycin (patent RU 2348647 C2, publ. 10.03.2009).

На основании анализа гена 16S рРНК и полных геномов штаммы Streptomyces sp. KMM 9044 и S. roseosporus NRRL 11379 принадлежат к разным видам рода Streptomyces (16S рРНК - 98.15%, ANI - 77.37%, dDDH - 22.50%) и имеют характерные фенотипические признаки для представителей этого рода.Based on the analysis of the 16S rRNA gene and complete genomes, strains of Streptomyces sp. KMM 9044 and S. roseosporus NRRL 11379 belong to different species of the genus Streptomyces (16S rRNA - 98.15%, ANI - 77.37%, dDDH - 22.50%) and have characteristic phenotypic features for representatives of this genus.

Вместе с тем, в настоящее время не известны точные аналоги (штаммы-продуценты) нового антибактериального соединения, стрептоциннамида, активного в отношении грамположительных бактерий.At the same time, exact analogues (producing strains) of the new antibacterial compound, streptocinnamide, active against gram-positive bacteria, are not currently known.

Поскольку в получении депсипептидных соединений важную роль играют микроорганизмы, получение штаммов-продуцентов новых ДП является актуальной задачей в борьбе с антибиотикорезистентностью патогенных бактерий.Since microorganisms play an important role in the production of depsipeptide compounds, the production of new DP producing strains is an urgent task in combating the antibiotic resistance of pathogenic bacteria.

Задачей, решаемой с помощью заявляемого изобретения, является получение штамма-продуцента антимикробных соединений класса депсипептидов с высоким выходом, обладающих высокой активностью.The problem solved with the help of the claimed invention is to obtain a strain-producer of antimicrobial compounds of the class of depsipeptides with a high yield and high activity.

Для решения этой задачи предлагается штамм Streptomyces sp. КММ 9044 из коллекции морских микроорганизмов Федерального государственного бюджетного учреждения науки Тихоокеанский институт биоорганической химии им. Г.Б. Елякова дальневосточного отделения Российской академии наук (ТИБОХ ДВО РАН), справка о депонировании №16146-203 от 19.05.2022 - продуцент соединений, обладающих антибактериальной активностью, а также применение указанного штамма для получения соединений, обладающих антибактериальной активностью.To solve this problem, a strain of Streptomyces sp. KMM 9044 from the collection of marine microorganisms of the Federal State Budgetary Institution of Science Pacific Institute of Bioorganic Chemistry. G.B. Elyakova of the Far Eastern Branch of the Russian Academy of Sciences (TIBOCH FEB RAS), deposit certificate No. 16146-203 dated May 19, 2022 - producer of compounds with antibacterial activity, as well as the use of this strain to obtain compounds with antibacterial activity.

Техническим результатом заявляемого изобретения является получение штамма-продуцента новых депсипептидных соединений, обладающих антибактериальной активностью.The technical result of the claimed invention is to obtain a strain-producer of new depsipeptide compounds with antibacterial activity.

Раскрытие сущности изобретенияDisclosure of the essence of the invention

Штамм Streptomyces sp. KMM 9044 относится к роду Streptomyces (семейство Streptomycetaceae, класс Actinobacteria).Streptomyces sp. KMM 9044 belongs to the genus Streptomyces (family Streptomycetaceae, class Actinobacteria).

Штамм Streptomyces sp. КММ 9044 выделен из образца грунта, отобранного в прибрежной зоне в бухте Джигит, Японское море, Россия, 26.10.2009. Штамм выделен методом прямого посева суспензии грунта на агаризованную среду SWM с добавлением морской воды следующего состава (г/л): пептон - 5.0; гидролизат казеина - 2.0; дрожжевой экстракт - 2.5; глюкоза - 1.0; K2HPO4 - 0.2; MgSO4 - 0.05; 500 мл дистиллированной воды, 500 мл морской воды.Streptomyces sp. KMM 9044 was isolated from a soil sample taken in the coastal zone in Dzhigit Bay, Sea of Japan, Russia, on October 26, 2009. The strain was isolated by direct inoculation of a soil suspension on an agar medium SWM with the addition of sea water of the following composition (g/l): peptone - 5.0; casein hydrolyzate - 2.0; yeast extract - 2.5; glucose - 1.0; K 2 HPO 4 - 0.2; MgSO4 - 0.05; 500 ml distilled water, 500 ml sea water.

Штамм Streptomyces sp. KMM 9044 выращивали при 28°С на плотных и жидких питательных средах следующего состава (г/л):Streptomyces sp. KMM 9044 was grown at 28°C on solid and liquid nutrient media of the following composition (g/L):

1) среда SWM: пептон - 5.0, растворимый крахмал - 10.0, глюкоза - 1.0, дрожжевой экстракт - 2.5, K2HPO4 - 0.2, MgSO4 - 0.05, морская вода - 500 мл, дистиллированная вода - 500 мл, рН 6.8.1) SWM medium: peptone - 5.0, soluble starch - 10.0, glucose - 1.0, yeast extract - 2.5, K 2 HPO 4 - 0.2, MgSO 4 - 0.05, sea water - 500 ml, distilled water - 500 ml, pH 6.8.

2) среда ISP4: растворимый крахмал - 10.0, K2HPO4 - 1.0, MgSO4x7H2O - 1.0, NaCl - 1.0, (NH4)2SO4 - 2.0, СаСО3 - 2.0, FeSO4x6H2O - 0.001, MnCl2x7H2O - 0.001, ZnSO4x7H2O - 0.001, глюкоза - 2.0, дистиллированная вода - до 1 л, рН 7.3.2) ISP4 medium: soluble starch - 10.0, K 2 HPO 4 - 1.0, MgSO 4 x7H 2 O - 1.0, NaCl - 1.0, (NH4) 2 SO 4 - 2.0, CaCO 3 - 2.0, FeSO 4 x6H 2 O - 0.001 , MnCl 2 x7H 2 O - 0.001, ZnSO 4 x7H 2 O - 0.001, glucose - 2.0, distilled water - up to 1 l, pH 7.3.

3) среда ISP4 с добавлением NaBr - 8.0 г/л, рН 7.3.3) ISP4 medium with the addition of NaBr - 8.0 g/l, pH 7.3.

4) среда Sucrose yeast (SY): сахароза - 40.0; дрожжевой экстракт - 5.0; K2HPO4 - 1.5; MgSO4x7H2O - 3.1; NaCl - 2.0; (NH4)2SO4 - 2.0; СаСО3 - 4.0; FeSO4x6H2O - 0.001; MnCl2x7H2O - 0.001; глюкоза - 2.0, дистиллированная вода - до 1 л, рН 6.8.4) Sucrose yeast (SY) medium: sucrose, 40.0; yeast extract - 5.0; K 2 HPO 4 - 1.5; MgSO 4 x7H 2 O - 3.1; NaCl - 2.0; (NH 4 ) 2 SO 4 - 2.0; CaCO 3 - 4.0; FeSO 4 x6H 2 O - 0.001; MnCl 2 x7H 2 O - 0.001; glucose - 2.0, distilled water - up to 1 l, pH 6.8.

5) среда SY без добавления СаСО3, рН 6.8.5) SY medium without CaCO 3 addition, pH 6.8.

6) Marine Broth 2216 (Sigma-Aldrich): пептон - 5.0, дрожжевой экстракт - 1.0, цитрат железа - 0.1, хлорид натрия - 19.45, хлорид магния - 5.9, сульфат магния - 3.24, хлорид кальция - 1.8, хлорид калия - 0.55, бикарбонат натрия - 0.16, бромид калия - 0.08, хлорид стронция - 0.034, борная кислота - 0.022, силикат натрия - 0.004, фторид натрия - 0.0024, нитрат аммония - 0.0016, динатрий фосфат - 0.008, рН 7.6.6) Marine Broth 2216 (Sigma-Aldrich): peptone - 5.0, yeast extract - 1.0, iron citrate - 0.1, sodium chloride - 19.45, magnesium chloride - 5.9, magnesium sulfate - 3.24, calcium chloride - 1.8, potassium chloride - 0.55, sodium bicarbonate - 0.16, potassium bromide - 0.08, strontium chloride - 0.034, boric acid - 0.022, sodium silicate - 0.004, sodium fluoride - 0.0024, ammonium nitrate - 0.0016, disodium phosphate - 0.008, pH 7.6.

7) TSB (Sigma-Aldrich): триптон - 17.0, соевый пептон (сойтон) - 3.0, глюкоза - 2.5, хлорид натрия - 5.0, фосфат калия - 2.5, рН 6.8.7) TSB (Sigma-Aldrich): tryptone - 17.0, soy peptone (soyton) - 3.0, glucose - 2.5, sodium chloride - 5.0, potassium phosphate - 2.5, pH 6.8.

Штамм Streptomyces sp. KMM 9044 выращивали на чашках Петри в течение 7-8 сут при температуре 28°С, поддерживали на агаризованной среде SY, хранили не более трех месяцев при температуре около 4°С в холодильной камере. Длительное хранение культуры осуществляли в жидком глицерине при -70°С.Streptomyces sp. KMM 9044 was grown on Petri dishes for 7–8 days at a temperature of 28°C, maintained on SY agar medium, stored for no more than three months at a temperature of about 4°C in a refrigerator. Long-term storage of the culture was carried out in liquid glycerol at -70°C.

На всех вышеуказанных средах колонии изученного штамма KMM 9044 желтые или светло-желтые, выпуклые, плотные, непрозрачные, складчатые с неровным краем, врастающие в агар. Белый воздушный мицелий образуется на среде Sucrose yeast в течение 5-7 суток. Вегетативные и воздушные гифы слабо или интенсивно фрагментируются с возрастом на палочковидные неподвижные элементы. Морфология изученных штаммов характерна для описанных видов стрептомицетов.On all the above media, the colonies of the studied strain KMM 9044 are yellow or light yellow, convex, dense, opaque, folded with an uneven edge, growing into agar. White aerial mycelium is formed on the Sucrose yeast medium within 5-7 days. Vegetative and aerial hyphae are weakly or intensively fragmented with age into rod-shaped immovable elements. The morphology of the studied strains is characteristic of the described species of streptomycetes.

Штамм Streptomyces sp. КММ 9044 представляет собой аэробные галотолерантные бактерии, растущие при содержании хлористого натрия в среде 0-6% и при температуре 15-37°С. Бактерия КММ 9044 гидролизует казеин, крахмал, твин-40, твин-80 и ДНК, и показала отрицательные реакции на нитратредукцию, гидролиз желатина, деградацию тирозина, гидролиз целлюлозы, ксантина, гипоксантина и продукцию сероводорода из тиосульфата натрия.Streptomyces sp. KMM 9044 is an aerobic halotolerant bacteria growing at a sodium chloride content in the medium of 0-6% and at a temperature of 15-37°C. The KMM 9044 bacterium hydrolyzes casein, starch, tween-40, tween-80 and DNA and has shown negative reactions to nitrate reduction, gelatin hydrolysis, tyrosine degradation, cellulose hydrolysis, xanthine, hypoxanthine, and production of hydrogen sulfide from sodium thiosulfate.

Штамм Streptomyces sp.КММ 9044 продуцирует стрептоциннамиды А и Б (Scm A, Scm В), показывающие антимикробную активность в отношении Micrococcus luteus. Общий выход вещества составляет 3-5 мг на 1 л культуральной жидкости (КЖ). Количество извлекаемого продукта и соотношение компонентов Scm А и Scm В в образцах может варьировать из-за влияния разных факторов на продукцию штамма.The Streptomyces sp.KMM 9044 strain produces streptocinnamides A and B (Scm A, Scm B), showing antimicrobial activity against Micrococcus luteus. The total yield of the substance is 3-5 mg per 1 liter of culture fluid (QOL). The amount of the extracted product and the ratio of the Scm A and Scm B components in the samples may vary due to the influence of various factors on the production of the strain.

Биотехнология получения Scm А и Scm В состоит из следующих этапов.Biotechnology for obtaining Scm A and Scm B consists of the following steps.

1. Подготовка посевного материала.1. Preparation of seed.

2. Выращивание посевного материала 1-й генерации.2. Cultivation of seed material of the 1st generation.

3. Выращивание посевного материала 2-й генерации (второго инокулята).3. Cultivation of inoculum of the 2nd generation (second inoculum).

4. Культивирование в ферментере.4. Cultivation in a fermenter.

5. Отделение КЖ от биомассы.5. Separation of QOL from biomass.

6. Подготовка сорбционного картриджа.6. Preparation of the sorption cartridge.

7. Нанесение КЖ на полимерный сорбент.7. Application of CL on a polymeric sorbent.

8. Элюирование с картриджа.8. Elution from the cartridge.

9. Идентификацию компонентов.9. Identification of components.

10. Очистка субстанции.10. Purification of substance.

11. Получение сухого продукта.11. Getting a dry product.

Краткое описание поясняющих материаловBrief description of explanatory materials

Таблица 1 - Значения ANI (внизу) и dDDH (вверху) между геномами штамма Streptomyces sp. КММ 9044 и наиболее близкими типовыми штаммами известных видов Streptomyces, %.Table 1 - ANI (bottom) and dDDH (top) values between genomes of Streptomyces sp. KMM 9044 and the closest type strains of known Streptomyces species, %.

Таблица 2. Минимальные ингибирующие концентрации (МИК) соединений I и IITable 2. Minimum inhibitory concentrations (MICs) of compounds I and II

Рис. 1. Структура (I), вместе с данными ЯМР. Протонные, углеродные и азотные химические сдвиги при 30С в CDCl3 показаны красным, голубым и зеленым цветом соответственно.Rice. 1. Structure (I), along with NMR data. Proton, carbon and nitrogen chemical shifts at 30C in CDCl 3 are shown in red, blue and green, respectively.

Рис. 2. Различающиеся фрагменты структуры компонентов (I) и (II) и ЯМР данные для этих фрагментов.Rice. 2. Different fragments of the structure of components (I) and (II) and NMR data for these fragments.

Рис. 3а - Спектры MS1 молекулярного иона Scm A(Z) [М+Н]+ и [M+Na]+,Rice. 3a - MS1 spectra of the molecular ion Scm A(Z) [M+H]+ and [M+Na]+,

Рис. 3б - спектр MS2 молекулярного иона [М+Н]+ при 1190.4234,Rice. 3b - MS2 spectrum of the molecular ion [M+H]+ at 1190.4234,

Рис. 3в - схема фрагментации родительского иона.Rice. 3c - fragmentation scheme of the parent ion.

Рис. 4а - спектр MS2 молекулярного иона Scm B(Z) [М+Н]+ при 1154.4461,Rice. 4a - MS2 spectrum of the molecular ion Scm B(Z) [M+H]+ at 1154.4461,

Рис. 4б - схема фрагментации родительского иона.Rice. 4b is a diagram of the fragmentation of the parent ion.

Осуществление изобретенияImplementation of the invention

Пример 1. Получение и характеристики штаммаExample 1 Preparation and Characterization of the Strain

Штамм Streptomyces sp.КММ 9044 культивировали в лабораторных условиях при 28°С на плотных и жидких питательных средах нескольких составов (см. выше).The Streptomyces sp.KMM 9044 strain was cultivated under laboratory conditions at 28°C on solid and liquid nutrient media of several compositions (see above).

Штамм выращивали на чашках Петри в течение 7-8 суток при температуре 28°С, поддерживали на агаризованной среде SY, хранили не более трех месяцев при температуре около 4°С в холодильной камере. Длительное хранение культуры осуществляли в жидком глицерине при -70°С.The strain was grown on Petri dishes for 7-8 days at a temperature of 28°C, maintained on SY agar medium, stored for no more than three months at a temperature of about 4°C in a refrigerator. Long-term storage of the culture was carried out in liquid glycerol at -70°C.

На основании анализа нуклеотидных последовательностей фрагментов генов 16S рРНК штамм относится к роду Streptomyces (семейство Streptomycetaceae, класс Actinobacteria), наиболее близок к известным видам S. pseudovenezuelae DSM 40212T (98.97% сходства), S. variegatus NRRL В-16380T (98.96%), S. cahuitamycinicus 13K301T (98.96%), S. qaidamensis S10T (98.83%), S cacaoi subsp.asoensis NRRL В-16592T (98.76%), S. phaeoluteigriseus DSM 41896T (98.76%), S. adustus WH-9T (98.69%) и S. humidus NBRC 12877T (98.69%).Based on the analysis of the nucleotide sequences of the 16S rRNA gene fragments, the strain belongs to the genus Streptomyces (family Streptomycetaceae, class Actinobacteria), is closest to the known species S. pseudovenezuelae DSM 40212 T (98.97% similarity), S. variegatus NRRL B-16380 T (98.96% ), S. cahuitamycinicus 13K301 T (98.96%), S. qaidamensis S10 T (98.83%), S cacaoi subsp.asoensis NRRL В-16592 T (98.76%), S. phaeoluteigriseus DSM 41896 T (98.76%), S. adustus WH-9 T (98.69%) and S. humidus NBRC 12877 T (98.69%).

Результаты анализа геномной сборки Streptomyces sp. КММ 9044 показали, что штамм имеет размер генома 7.15 млн п. н. и ГЦ-состав ДНК - 71.1 мол%.The results of the analysis of the genomic assembly of Streptomyces sp. KMM 9044 showed that the strain has a genome size of 7.15 million bp. and GC-composition of DNA - 71.1 mol%.

Значения средней идентичности нуклеотидов (ANI) и ДНК-ДНК гибридизации in silico (dDDH) между геномами штамма KMM 9044 и наиболее близких известных видов (Таблица 1) не превышают пороговых значений ANI (95-96%) и dDDH (70%), предложенных для определения принадлежности штаммов к одному виду [Chun J., Oren A., Ventosa А., Christensen Н., Arahal D.R., da Costa M.S., Rooney A.P., Yi H., Xu X.W., De Meyer S., Trujillo M.E. 2018. Proposed minimal standards for the use of genome data for the taxonomy of prokaryotes. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 68(1):461-466].The values of the average nucleotide identity (ANI) and DNA-DNA hybridization in silico (dDDH) between the genomes of strain KMM 9044 and the closest known species (Table 1) do not exceed the threshold values of ANI (95-96%) and dDDH (70%) proposed by to determine whether strains belong to the same species [Chun J., Oren A., Ventosa A., Christensen H., Arahal D.R., da Costa M.S., Rooney A.P., Yi H., Xu X.W., De Meyer S., Trujillo M.E. 2018. Proposed minimal standards for the use of genome data for the taxonomy of prokaryotes. Int. J. Syst. Evol. microbiol. 68(1):461-466].

Полученные нами нуклеотидная последовательность гена 16S рРНК и полного генома штамма КММ 9044 депонированы в базы данных DDBJ/ENA/GenBank.The nucleotide sequences of the 16S rRNA gene and the complete genome of the KMM 9044 strain that we obtained were deposited in the DDBJ/ENA/GenBank databases.

Пример 2.Example 2

Технология получения Scm A, Scm В основана на культивировании штамма-продуцента КММ 9044 и извлечении субстанции из культуральной жидкости (КЖ) указанного штамма методом твердофазной экстракции и жидкостной хроматографии. Биотехнология состоит из следующих этапов.The technology for obtaining Scm A, Scm B is based on the cultivation of the producer strain KMM 9044 and the extraction of the substance from the culture liquid (CL) of the specified strain by solid-phase extraction and liquid chromatography. Biotechnology consists of the following steps.

1. Подготовка посевного материала. Штамм Streptomyces sp.KMM 9044 выращивали на чашках Петри в течение 7 сут при температуре 28°С на среде Sucrose yeast.1. Preparation of seed. The Streptomyces sp.KMM 9044 strain was grown on Petri dishes for 7 days at 28°С on Sucrose yeast medium.

2. Выращивание посевного материала 1-й генерации (первого инокулята). Культуру переносили с поверхности агаризованной среды в колбу Эрленмейера объемом 750 мл с 50 мл питательной среды SY. Культивирование осуществляли при 28°С в течение 5 сут на термостатируемой качалке Innova 40 (New Brunswick Scientific) при 150 об/мин.2. Growing seed material of the 1st generation (first inoculum). The culture was transferred from the surface of the agar medium to a 750 ml Erlenmeyer flask with 50 ml of SY nutrient medium. Cultivation was carried out at 28°С for 5 days on an Innova 40 thermostatically controlled shaker (New Brunswick Scientific) at 150 rpm.

3. Выращивание посевного материала 2 генерации (второго инокулята). Посевную культуру второй генерации выращивали в среде SY в аналогичных условиях в течение 5 сут, используя для засева первый инокулят в количестве 5% об.3. Growing inoculum of the 2nd generation (second inoculum). The seed culture of the second generation was grown in the SY medium under similar conditions for 5 days, using the first inoculum for seeding in the amount of 5% vol.

4. Культивирование в ферментере. Культивирование проводили в ферментере BIOSTAT A plus (Sartorius BBI Systems) объемом 2 л. В ферментер, содержащий 1350 мл стерильной среды SY, вносили посевной материал в объеме 10% (150 мл культуры на 1.5 л среды) и 150 мл стерильного раствора глюкозы с концентрацией 20 г/л (конечная концентрация 2 г/л). Культивирование проводили при температуре 28°С. Концентрацию растворенного кислорода (pO2) поддерживали на уровне 90%, скорость перемешивания составила 300 об/мин, количество стерильного воздуха, подаваемого в аппарат, - 1.5 л/мин, рН среды поддерживали в интервале 6.8 титрованием 25% раствором аммиака. Пеногаситель силикон (0.01%) вносили в конце первого дня культивирования. Продолжительность ферментации составила 43 ч.4. Cultivation in a fermenter. Cultivation was carried out in a 2 L BIOSTAT A plus fermenter (Sartorius BBI Systems). Inoculation material in a volume of 10% (150 ml of culture per 1.5 L of medium) and 150 ml of sterile glucose solution at a concentration of 20 g/L (final concentration 2 g/L) were added to a fermenter containing 1350 ml of sterile SY medium. Cultivation was carried out at a temperature of 28°C. The concentration of dissolved oxygen (pO2) was maintained at 90%, the stirring speed was 300 rpm, the amount of sterile air supplied to the apparatus was 1.5 L/min, and the pH of the medium was maintained in the range of 6.8 by titration with 25% ammonia solution. Silicone defoamer (0.01%) was added at the end of the first day of cultivation. The duration of fermentation was 43 hours.

5. Отделение КЖ от биомассы. Выращенную культуру центрифугировали на скорости 10000 rpm (центрифуга Beckman J2-21), после чего супернатант фильтровали. Были использованы стекловолоконные фильтры Whatman glass microfiber GF/A и MF-Millipore MCE membrane с диаметром пор 0.45 мкм. Полученный объем КЖ составил 1.2 л.5. Separation of QOL from biomass. The grown culture was centrifuged at 10,000 rpm (Beckman J2-21 centrifuge), after which the supernatant was filtered. Whatman glass microfiber GF/A and MF-Millipore MCE membrane glass fiber filters with a pore diameter of 0.45 µm were used. The resulting volume of QOL was 1.2 liters.

6. Подготовка сорбционного картриджа. Картридж заполняли полимерным сорбентом LPS-500-H, фракция 70 мкм (компании «Техносорбент») насыпным способом. Использовали картридж объемом 45 мл, вес сорбента около 7.5 г.6. Preparation of the sorption cartridge. The cartridge was filled with polymeric sorbent LPS-500-H, fraction 70 μm (Technosorbent company) in bulk. A 45 ml cartridge was used; the sorbent weight was about 7.5 g.

7. Нанесение КЖ на полимерный сорбент. Картридж промывали 150 мл ацетонитрила (АЦН) и активировали 150 мл дистиллированной воды с помощью перистальтического насоса Masterflex Easy-Load 11 при скорости потока 15 мл/мин. При той же скорости наносили КЖ; по окончании картридж промывали 150 мл воды. Картридж можно использовать повторно, но не более 5 раз.7. Application of CL on a polymeric sorbent. The cartridge was washed with 150 ml of acetonitrile (ACN) and activated with 150 ml of distilled water using a Masterflex Easy-Load 11 peristaltic pump at a flow rate of 15 ml/min. QOL was applied at the same speed; when finished, the cartridge was washed with 150 ml of water. The cartridge can be reused, but not more than 5 times.

8. Элюирование с картриджа с использованием флэш-хроматографа. Картридж присоединяли к линии подачи элюента хроматографа PuriFlash 5.250 и элюировали со скоростью 15 мл/мин смесью растворителей вода - АЦН (степень чистоты "для ВЭЖХ"). Содержание АЦН в элюенте было задано по следующей программе: начальный состав - 5%; 1 мин - 45%, 10 мин - 45%, 11 мин - 100%, 22 мин - 100%. Состав элюата контролировали с помощью УФ детектора при длине волны 290 нм. УФ профили имели два пика: мажорный пик в области 5-6 мин, отвечающий сумме нецелевых соединений, и минорный пик в области 13-15 мин, содержащий целевые соединения Scm А и Scm В, УФ спектр которых имеет максимум при 290 нм. Данную фракцию объемом около 30 мл собирали с помощью коллектора фракций.8. Elution from the cartridge using a flash chromatograph. The cartridge was attached to the eluent line of a PuriFlash 5.250 chromatograph and eluted at a rate of 15 ml/min with a mixture of solvents water - ACN (HPLC grade). The content of ACN in the eluent was set according to the following program: initial composition - 5%; 1 min - 45%, 10 min - 45%, 11 min - 100%, 22 min - 100%. The composition of the eluate was monitored using a UV detector at a wavelength of 290 nm. The UV profiles had two peaks: a major peak at 5–6 min, corresponding to the sum of non-target compounds, and a minor peak at 13–15 min, containing the target compounds Scm A and Scm B, whose UV spectrum has a maximum at 290 nm. This fraction of about 30 ml was collected using a fraction collector.

9. Очистка субстанции. Очистку Scm А и Scm В проводили методом ВЭЖХ (хроматограф Шимадзу Нексера). Весь объем фракции после картриджа помещали в колбу роторного испарителя (Buchi Rotavapor), концентрировали примерно в 5 раз. К раствору добавляли раствор 0.1% уксусной кислоты - половину от полученного объема (в конкретном случае 30 мл концентрировали до 6 мл и добавляли 3 мл раствора уксусной кислоты). При наличии осадка раствор центрифугируют на скорости 10000 rpm, супернатант переносят в пробирки. Разделение проводят колонке полупрепаративного размера на сорбенте типа С18, фракция 5 или 10 мкм, при том же составе элюента, температуре термостата колонки и длине волны УФ детектора, как в п. 5. Расходы элюента и объем пробы, элюируемой за один цикл разделения, выбирают в зависимости от размера колонки. На колонке 9.2 х 150 мм проводили разделения порциями по 1.5 мл при скорости потока 3 мл/мин. Продолжительность каждого разделения составляет 20 мин. Для очистки всего объема фракции требуется повторить операцию несколько раз, в данном случае 6 раз.9. Purification of substance. Scm A and Scm B were purified by HPLC (Shimazu Necker chromatograph). The entire volume of the fraction after the cartridge was placed in a flask of a rotary evaporator (Buchi Rotavapor), concentrated by about 5 times. A solution of 0.1% acetic acid was added to the solution - half of the volume obtained (in the specific case, 30 ml was concentrated to 6 ml and 3 ml of acetic acid solution was added). In the presence of a precipitate, the solution is centrifuged at a speed of 10000 rpm, the supernatant is transferred into test tubes. Separation is carried out on a semi-preparative size column on a C18 sorbent, fraction 5 or 10 μm, with the same eluent composition, column thermostat temperature and UV detector wavelength, as in step 5. Eluent flow rates and sample volume eluted in one separation cycle are selected depending on column size. On a 9.2 x 150 mm column, separations were performed in 1.5 ml portions at a flow rate of 3 ml/min. The duration of each separation is 20 min. To clean the entire volume of the fraction, it is necessary to repeat the operation several times, in this case 6 times.

10. Получение сухого продукта из растворов фракций. Растворы фракций объединяют, сливают в колбу и высушивают на роторном испарителе с минимальным подогревом или на лиофильной сушке с центрифугой типа MyVac. Общий выход вещества составляет 3-5 мг на 1 л КЖ. Количество извлекаемого продукта и соотношение компонентов Scm А и Scm В в образцах может варьировать из-за влияния разных факторов на продукцию штамма.10. Obtaining a dry product from solutions of fractions. Fraction solutions are combined, poured into a flask and dried on a rotary evaporator with minimal heating or freeze-drying with a MyVac centrifuge. The total yield of the substance is 3-5 mg per 1 liter of QOL. The amount of the extracted product and the ratio of the Scm A and Scm B components in the samples may vary due to the influence of various factors on the production of the strain.

Для полученных соединений Scm А (структурная формула I) и, Scm В (структурная формула II) установлены структурные формулы по результатам ЯМР-спектроскопии (рис. 1, 2) и тандемной масс-спектрометрии высокого разрешения (рис. 3, 4).For the obtained compounds Scm A (structural formula I) and Scm B (structural formula II), the structural formulas were established by the results of NMR spectroscopy (Fig. 1, 2) and high-resolution tandem mass spectrometry (Fig. 3, 4).

Пример 3. Подтверждение антибактериальной активности полученных соединений.Example 3. Confirmation of the antibacterial activity of the obtained compounds.

Для тестирования были использованы штаммы Micrococcus sp. KMM 1467 из коллекции морских микроорганизмов ТИБОХ им. Г.Б. Елякова, Arthrobacter sp. 21022 (АТСС) и Mycobacterium smegmatis АТСС 700084 из коллекции Lytech Co. Ltd.For testing, strains of Micrococcus sp. KMM 1467 from the collection of marine microorganisms of the TIBOKH im. G.B. Elyakova, Arthrobacter sp. 21022 (ATCC) and Mycobacterium smegmatis ATCC 700084 from the collection of Lytech Co. Ltd.

Минимальные ингибирующие концентрации (МИК) бактерий определяли серийными двукратными разведениями (0.1-10000 нг/мл) в бульоне 2YT (BD, США). МИК определяли, как наименьшую концентрацию, препятствующую росту тестируемого организма в 96-луночном планшете после 16 ч культивирования. Для Mycobacterium smegmatis МИК определяли через 60 ч культивирования. Минимальную бактерицидную концентрацию (МБК) определяли, как наименьшую концентрацию, препятствующую повторному культивированию тест-организма через 24 ч инкубации. Длительное культивирование приводит к разложению Scm и к завышенным значениям МИК. Временной ход роста бактерий отслеживали при 800 нм с использованием многорежимного считывающего устройства Varioskan Flash (Thermo Fisher Scientific, Уолтем, Массачусетс, США).Minimal inhibitory concentrations (MICs) of bacteria were determined by serial twofold dilutions (0.1–10000 ng/mL) in 2YT broth (BD, USA). MIC was defined as the lowest concentration that interferes with growth of a test organism in a 96-well plate after 16 hours of culture. For Mycobacterium smegmatis, MICs were determined after 60 hours of cultivation. The minimum bactericidal concentration (MBC) was defined as the lowest concentration preventing re-cultivation of the test organism after 24 hours of incubation. Prolonged cultivation results in Scm degradation and inflated MIC values. The temporal course of bacterial growth was monitored at 800 nm using a Varioskan Flash multimode reader (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA).

Оба варианта структур Scm А (I) и Scm В (II) имеют противомикробную активность, причем для репортерного штамма Micrococcus sp. KMM 1467 величины минимальных ингибирующих концентраций (МИК) были на уровне нг/мл: 6 нг/мл для Scm А и 2 нг/мл для Scm В, т.е. значения для эпокси-производного в несколько раз ниже, чем значения для хлор-производного.Both variants of structures Scm A (I) and Scm B (II) have antimicrobial activity, and for the reporter strain Micrococcus sp. KMM 1467 minimum inhibitory concentrations (MICs) were at the level of ng/ml: 6 ng/ml for Scm A and 2 ng/ml for Scm B, i.e. the values for the epoxy derivative are several times lower than those for the chlorine derivative.

В отношении других патогенов активность соединений была существенно ниже. Были измерены МИКи для Scm А (структура I). Результаты исследования представлены в табл. 2.Against other pathogens, the activity of the compounds was significantly lower. MICs were measured for Scm A (structure I). The results of the study are presented in table. 2.

Figure 00000001
Figure 00000001

Claims (2)

1. Штамм Streptomyces sp. КММ 9044 из коллекции морских микроорганизмов ТИБОХ ДВО РАН, предназначенный для получения соединений, обладающих антибактериальной активностью.1. Strain Streptomyces sp. KMM 9044 from the collection of marine microorganisms TIBOCH FEB RAS, intended for obtaining compounds with antibacterial activity. 2. Применение штамма по п. 1 для получения соединений, обладающих антибактериальной активностью.2. Use of the strain according to claim 1 to obtain compounds with antibacterial activity.
RU2022119466A 2022-07-15 STREPTOMYCES sp. KMM 9044 - PRODUCER OF COMPOUNDS WITH ANTIBACTERIAL ACTIVITY RU2784815C1 (en)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2784815C1 true RU2784815C1 (en) 2022-11-29

Family

ID=

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2348647C2 (en) * 2001-08-06 2009-03-10 Кьюбист Фармасьютикалз, Инк New depsipeptides and methods of their obtainment

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2348647C2 (en) * 2001-08-06 2009-03-10 Кьюбист Фармасьютикалз, Инк New depsipeptides and methods of their obtainment

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
LING, L.L., et al, A new antibiotic kills pathogens without detectable resistance., 2015, Nature 517 (7535), 455-459. *
TEDESCO KL, et al, Daptomycin. Pharmacotherapy. 2004 Jan; 24(1):41-57, Review. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP3123078B2 (en) Deacylation of cyclic lipopeptide substances
Driche et al. A new Streptomyces strain isolated from Saharan soil produces di-(2-ethylhexyl) phthalate, a metabolite active against methicillin-resistant Staphylococcus aureus
El-Naggar Moustafa et al. Meroparamycin production by newly isolated Streptomyces sp. strain MAR01: taxonomy, fermentation, purification and structural elucidation
JPH0362715B2 (en)
GB2220657A (en) Antifungal fermentation product
NZ509306A (en) Nocathiacin antibiotics
KR0139628B1 (en) Antibiotic mersacidine, process for producing it and its use as a medicament
US10301690B2 (en) Streptomyces filamentosus variant and method for producing daptomycin using same
KR960013432B1 (en) Antimicrobial agent fr 109615 and production thereof
KR930003107B1 (en) Antitumor antibiotic compound
RU2784815C1 (en) STREPTOMYCES sp. KMM 9044 - PRODUCER OF COMPOUNDS WITH ANTIBACTERIAL ACTIVITY
JP5144167B2 (en) Novel KB-3346-5 substance and production method thereof
Ramakrishnan et al. Streptomyces sp. SCBT isolated from rhizosphere soil of medicinal plants is antagonistic to pathogenic bacteria
RU2795449C1 (en) New depsipeptide compounds with antibacterial activity
FI101402B (en) A method for preparing a new antibiotic, balhimycin
EP0276947B1 (en) Carboxylic acid derivatives
EP0193608B1 (en) Gif-2 and its preparation
RU2789838C1 (en) New producer strain of ramoplanin actinoplanes ramoplaninifer
RU2801749C1 (en) New producer strain of vancomycin amycolatopsis keratiniphila
RU2724537C1 (en) Amycolatopsis rifamycinica - producer of tetracenomycin x antibiotic
JP3830964B2 (en) A novel thiodepsipeptide isolated from marine actinomycetes
RU2802575C1 (en) Streptomyces baarnensis, a new daptomycin producer
RU2788348C1 (en) New strain producing vancomycin amycolatopsis japonica
KR20200073354A (en) Novel microorganism Brevibacillus sp. TGS2-1 and compounds isolated from TGS2-1 strain for inhibiting growth of methicillin resistance Staphylococcus aureus
AU631666B2 (en) Antibiotics plusbacin