RU2782316C2 - Method for studying microbiota of large intestine by polymerase chain reaction method with fluorescence detection in real time and set of reagents for implementation thereof - Google Patents

Method for studying microbiota of large intestine by polymerase chain reaction method with fluorescence detection in real time and set of reagents for implementation thereof Download PDF

Info

Publication number
RU2782316C2
RU2782316C2 RU2020140132A RU2020140132A RU2782316C2 RU 2782316 C2 RU2782316 C2 RU 2782316C2 RU 2020140132 A RU2020140132 A RU 2020140132A RU 2020140132 A RU2020140132 A RU 2020140132A RU 2782316 C2 RU2782316 C2 RU 2782316C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
fam
bhq
microbiota
sample
saaroe
Prior art date
Application number
RU2020140132A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2020140132A (en
Inventor
Мария Александровна Суворова
Виктория Иосифовна Людыно
Original Assignee
Общество с ограниченной ответственностью «АЛЬФАЛАБ»
Filing date
Publication date
Application filed by Общество с ограниченной ответственностью «АЛЬФАЛАБ» filed Critical Общество с ограниченной ответственностью «АЛЬФАЛАБ»
Publication of RU2020140132A publication Critical patent/RU2020140132A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2782316C2 publication Critical patent/RU2782316C2/en

Links

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: decribed is a method for studying the microbiota of the large intestine by determining the DNA of intestinal microorganisms by the PCR method, including a microbiota sample interacting with a set of oligonucleotide primers, determining, for each oligonucleotide in said set of primers, the amount of nucleotide target sequences thereof present in said sample, and obtaining a microbiota profile from the relative amounts of nucleotide target sequences present in the sample. Also described is a corresponding set of primers.
EFFECT: invention expands the scope of tools for studying the intestinal microbiota.
2 cl

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к способам диагностирования заболеваний кишечника.The invention relates to medicine, namely to methods for diagnosing bowel diseases.

Известен патент РФ на изобретение №2605913 от 16.12.2011 в котором описана группа изобретений, представленная набором олигонуклеотидных зондов для профилирования микробиоты желудочно-кишечного тракта (ЖКТ), где указанный набор включает в частности (а) олигонуклеотид, состоящий из (ai) нуклеотидной последовательности, выбранной из

Figure 00000001
(SEQ ID NO: 1) необязательно с не более тремя замещенными основаниями или
Figure 00000002
(SEQ ID NO: 27) необязательно с не более тремя замещенными основаниями, и (aii) 0-5 нуклеотидов в дополнение к (ai), где олигонуклеотид согласно (а) способен гибридизоваться с SEQ ID NO: 27 или SEQ ID NO: 1, соответственно, в строгих условиях гибридизации. Также предоставлены способы профилирования микробиоты ЖКТ индивидуума и способы диагностики или мониторинга заболевания или состояния у индивидуума или прогнозирования или оценки риска развития у индивидуума заболевания или состояния, в которых используют набор олигонуклеотидных зондов.Known RF patent for invention No. 2605913 dated 12/16/2011 which describes a group of inventions represented by a set of oligonucleotide probes for profiling the microbiota of the gastrointestinal tract (GIT), where the specified set includes in particular (a) an oligonucleotide consisting of (ai) a nucleotide sequence selected from
Figure 00000001
(SEQ ID NO: 1) optionally with up to three substituted bases, or
Figure 00000002
(SEQ ID NO: 27) optionally with no more than three substituted bases, and (aii) 0-5 nucleotides in addition to (ai) wherein the oligonucleotide according to (a) is capable of hybridizing to SEQ ID NO: 27 or SEQ ID NO: 1 , respectively, under stringent hybridization conditions. Also provided are methods for profiling the gastrointestinal microbiota of an individual, and methods for diagnosing or monitoring a disease or condition in an individual, or predicting or assessing an individual's risk of developing a disease or condition, using an array of oligonucleotide probes.

Использование изобретений позволяет выявлять присутствие и количество определенных бактерий среди множества с высокой точностью благодаря комбинированному эффекту используемого набора зондов.The use of the inventions makes it possible to detect the presence and quantity of certain bacteria among a multitude with high accuracy due to the combined effect of the set of probes used.

К недостаткам известного решения относится узкий спектр микроорганизмов, определяемый набором зондов.The disadvantages of the known solutions include a narrow spectrum of microorganisms, determined by a set of probes.

Задача, на решение которой направлено заявляемое решение разработка способа исследования микробиоты и набора для его проведения более информативного за счет большего количества определяемых последовательностей мишеней, использования более точных олигонуклеотидных праймеров.The task to be solved by the claimed solution is the development of a method for studying the microbiota and a kit for its implementation, more informative due to the greater number of determined target sequences, the use of more accurate oligonucleotide primers.

Поставленная задача решается путем применения способа исследования микробиоты толстого кишечника путем определения ДНК микроорганизмов кишечника методом полимеразной цепной реакции. Способ включает взаимодействие образца микробиоты с набором олигонуклеотидных праймеров, определением для каждого олигонуклеотида в указанном наборе праймеров количества его нуклеотидных последовательностей-мишеней, которая присутствует в указанном образце. На основании этого получение профиля микробиоты из относительных количеств нуклеотидных последовательностей-мишеней, присутствующих в образце. При этом в состав набора олигонуклеотидных праймеров входят стрипы со смесями олигонуклеатидных праймеров (указаны в порядке прямой праймер, обратный праймер, флуорисцентный зонд) для амплификации, запечатанные воском, раствор Taq-полимеразы, положительный контрольный образец, отрицательный контрольный образец, минеральное масло. В качестве смесей праймеров в наборе 1 используют олигонуклеотиды:The problem is solved by applying a method for studying the microbiota of the large intestine by determining the DNA of intestinal microorganisms by polymerase chain reaction. The method includes interaction of a microbiota sample with a set of oligonucleotide primers, determining for each oligonucleotide in the specified primer set the number of its target nucleotide sequences that is present in the specified sample. Based on this, obtaining a microbiota profile from the relative amounts of target nucleotide sequences present in the sample. At the same time, the set of oligonucleotide primers includes strips with mixtures of oligonucleotide primers (listed in the order of forward primer, reverse primer, fluorescent probe) for amplification, sealed with wax, Taq polymerase solution, positive control sample, negative control sample, mineral oil. The following oligonucleotides are used as primer mixtures in set 1:

Figure 00000003
Figure 00000003

Figure 00000004
Figure 00000004

Figure 00000005
Figure 00000005

Figure 00000006
Figure 00000006

Figure 00000007
Figure 00000007

Figure 00000008
Figure 00000008

Figure 00000009
Figure 00000009

Figure 00000010
Figure 00000010

Figure 00000011
Figure 00000011

Figure 00000012
Figure 00000012

Figure 00000013
Figure 00000013

В качестве смесей праймеров в наборе 2 используют олигонуклеотиды:The following oligonucleotides are used as primer mixtures in set 2:

Figure 00000014
Figure 00000014

Figure 00000015
Figure 00000015

Figure 00000016
Figure 00000016

Figure 00000017
Figure 00000017

Figure 00000018
Figure 00000018

Figure 00000019
Figure 00000019

Figure 00000020
Figure 00000020

Figure 00000021
Figure 00000021

Figure 00000022
Figure 00000022

Figure 00000023
Figure 00000023

Figure 00000024
Figure 00000024

Figure 00000025
Figure 00000025

Figure 00000026
Figure 00000026

Figure 00000027
Figure 00000027

Figure 00000028
Figure 00000028

Figure 00000029
Figure 00000029

Figure 00000030
Figure 00000030

Figure 00000031
Figure 00000031

Figure 00000032
Figure 00000032

Figure 00000033
Figure 00000033

Figure 00000034
Figure 00000034

Figure 00000035
Figure 00000035

Figure 00000036
Figure 00000036

В качестве смесей праймеров в наборе 3 используют олигонуклеотиды:The following oligonucleotides are used as primer mixtures in set 3:

Figure 00000037
Figure 00000037

Figure 00000038
Figure 00000038

Figure 00000039
Figure 00000039

Figure 00000040
Figure 00000040

Figure 00000041
Figure 00000041

Figure 00000042
Figure 00000042

Figure 00000043
Figure 00000043

Figure 00000044
Figure 00000044

Figure 00000045
Figure 00000045

Figure 00000046
Figure 00000046

Figure 00000047
Figure 00000047

Figure 00000048
Figure 00000048

Figure 00000049
Figure 00000049

Figure 00000050
Figure 00000050

Figure 00000051
Figure 00000051

Figure 00000052
Figure 00000052

Для приготовления компонентов набора используются водные растворы реагентов, разбавителем в которых является вода деионизованная с удельной электропроводностью не более 4.3 мкСим/см. Далее по тексту под термином «водный раствор» подразумевается раствор реагента в деионизованной воде. Олигонуклеотидные праймеры представляют собой олигонуклеотиды, специфичные для определяемых микроорганизмов. То есть нуклеотидные последовательности праймеров и зондов комплементарны участкам ДНК соответствующих детектируемых микроорганизмов.To prepare the components of the kit, aqueous solutions of reagents are used, the diluent in which is deionized water with a specific electrical conductivity of not more than 4.3 μS/cm. Hereinafter, the term "aqueous solution" means a solution of the reagent in deionized water. Oligonucleotide primers are oligonucleotides specific for the microorganisms to be determined. That is, the nucleotide sequences of the primers and probes are complementary to the DNA regions of the corresponding detectable microorganisms.

Олигонуклеотидные праймеры получают путем химического синтеза на ДНК-синтезаторе (Applied Biosystems ABI 3900 и другие приборы со сходными техническими характеристиками) и подвергают очистке методом электрофореза в полиакриламидном геле или методом обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии. Олигонуклеотидные праймеры поставляются в лиофилизированном виде.Oligonucleotide primers are prepared by chemical synthesis on a DNA synthesizer (Applied Biosystems ABI 3900 and other devices with similar specifications) and purified by polyacrylamide gel electrophoresis or reverse phase high performance liquid chromatography. Oligonucleotide primers are supplied in lyophilized form.

Олигонуклеотидные праймеры получают путем химического синтеза на ДНК-синтезаторе с химической модификацией и подвергают двухэтапной очистке: методом электрофореза в полиакриламидном геле с последующей очисткой методом обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии. Химическая модификация заключается во введении молекулы флуорофора и молекулы гасителя флуоресценции.Oligonucleotide primers are obtained by chemical synthesis on a DNA synthesizer with chemical modification and are subjected to two-stage purification: by electrophoresis in polyacrylamide gel, followed by purification by reverse-phase high-performance liquid chromatography. Chemical modification consists in introducing a fluorophore molecule and a fluorescence quencher molecule.

В качестве флуорофора для канала флуоресценции FAM используют следующие красители: FAM [485 нм (возбуждение), 520 нм (эмиссия)]; для канала HEX используется краситель HEX [530 нм (возбуждение), 556 нм (эмиссия)]; допускается использование красителей VIC или R6G со сходными спектральными характеристиками. В качестве гасителя флуоресценции для канала FAM используют гаситель BHQ-1, для канала HEX используют гаситель BHQ-1 или BHQ-2.The following dyes are used as the fluorophore for the FAM fluorescence channel: FAM [485 nm (excitation), 520 nm (emission)]; the HEX channel uses the HEX dye [530 nm (excitation), 556 nm (emission)]; the use of VIC or R6G dyes with similar spectral characteristics is allowed. The BHQ-1 quencher is used as a fluorescence quencher for the FAM channel, and the BHQ-1 or BHQ-2 quencher is used for the HEX channel.

Для приготовления водного раствора дезоксинуклеозидтрифосфатов (дНТФ) используют хроматографически чистые (99%) дезоксинуклеозидтрифосфаты (2'-дезоксиаденозин-5'-трифосфат 2'-дезоксигуанозин-5'-трифосфат 2'-дезокситимидин-5'-трифосфат 2'-дезоксицитидин-5'-трифосфат), свободные от примесей эндонуклеаз, экзонуклеаз и никаз, следовых количеств ДНК и нуклеотидов, поставляемые в концентрации не менее 100 mM.To prepare an aqueous solution of deoxynucleoside triphosphates (dNTPs), chromatographically pure (99%) deoxynucleoside triphosphates (2'-deoxyadenosine-5'-triphosphate 2'-deoxyguanosine-5'-triphosphate 2'-deoxythymidine-5'-triphosphate 2'-deoxycytidine-5 '-triphosphate), free from impurities of endonucleases, exonucleases and nycases, trace amounts of DNA and nucleotides, supplied in a concentration of at least 100 mM.

Для приготовления раствора Taq-полимеразы используют термостабильную ДНК-полимеразу, полученную из бактерий Thermus aquaticus YT1, свободную от нуклеаз, с удельной активностью 5 ед/мкл.To prepare a solution of Taq polymerase, a thermostable DNA polymerase obtained from Thermus aquaticus YT1 bacteria, free from nucleases, with a specific activity of 5 units/μl, is used.

Материалом для изготовления положительного контрольного образца являются образцы плазмидной ДНК, полученные методом генной инженерии с использованием продуктов специфической амплификации участка генома детектируемых микроорганизмов. Амплифицированные фрагменты встраивают в плазмиды путем лигирования, полученные конструкции используют для трансформации E.coli. Культуру E.coli выращивают на селективных средах; плазмидную ДНК со встроенными фрагментами очищают с помощью набора для очистки плазмидной ДНК.The material for the production of a positive control sample is plasmid DNA samples obtained by genetic engineering using products of specific amplification of the genome region of the detected microorganisms. The amplified fragments are inserted into plasmids by ligation, and the resulting constructs are used to transform E. coli. E. coli culture is grown on selective media; plasmid DNA with inserted fragments is purified using a plasmid DNA purification kit.

Реагенты и смеси реагентов помещают в пробирки и стрипованные пробирки (стрипы) из полипропилена, предназначенные для ПЦР, сертифицированные на отсутствие следовых количеств ДНК, ДНК-аз, РНК-аз и ингибиторов ПЦР. Пробирки должны быть изготовлены из высококачественного полипропилена.Reagents and mixtures of reagents are placed in test tubes and strip tubes (strips) made of polypropylene intended for PCR, certified for the absence of trace amounts of DNA, DNase, RNase and PCR inhibitors. The tubes must be made of high quality polypropylene.

Для запечатывания смесей для амплификации в пробирках и стрипах используют воск для ПЦР с температурой плавления 37°С.PCR wax with a melting point of 37°C is used to seal the amplification mixtures in tubes and strips.

Для количественной оценки результатов анализа используют ЭВМ с программным обеспечением, которое преобразует полученные для каждого выявляемого показателя значения порогового цикла Ct в количество копий на мл. Пересчет проводится на основе метода Пфаффла с поправкой на эффективность амплификации. Полученные значения (копий/мл) преобразуются в КОЕ/мл с учетом копийности гена, используемого для амплификации и являются окончательным результатом теста.To quantify the results of the analysis, a computer with software is used that converts the threshold cycle Ct values obtained for each indicator to be detected into the number of copies per ml. The recalculation is carried out on the basis of the Pfaffl method, adjusted for the amplification efficiency. The obtained values (copies/ml) are converted to CFU/ml taking into account the copy number of the gene used for amplification and are the final result of the test.

В один стрип с олигонуклеатидным праймером входит:One strip with an oligonucleotide primer includes:

- олигонуклеотидный праймер, представляющий водный раствор полученных на ДНК-синтезаторе двух олигонуклеотидных праймеров, специфичных для генома исследуемых микроорганизмов. Концентрация каждого праймера в реакционной смеси - 4,0 пмоль/мкл;- oligonucleotide primer representing an aqueous solution obtained on a DNA synthesizer of two oligonucleotide primers specific for the genome of the studied microorganisms. The concentration of each primer in the reaction mixture is 4.0 pmol/µl;

- водный раствор дезоксинуклеозидтрифосфатов (дНТФ); концентрация каждого дНТФ - 2,5 мМ;- an aqueous solution of deoxynucleoside triphosphates (dNTPs); the concentration of each dNTP - 2.5 mm;

- 10-кратный буферный раствор, содержащий 300 mM Трис-HCl, 166 mM аммония сульфат, 25 mM магния хлорид, рН 8,6;- 10-fold buffer solution containing 300 mM Tris-HCl, 166 mM ammonium sulfate, 25 mM magnesium chloride, pH 8.6;

- флуоресцентный зонд для специфического фрагмента. Содержат флуорофор FAM [485 нм (возбуждение), 520 нм (эмиссия)] или флуорофор HEX [530 нм (возбуждение), 556 нм (эмиссия)]. Концентрация каждого зонда в реакционной смеси - 0,5 пмоль/мкл;- fluorescent probe for a specific fragment. Contain FAM fluorophore [485 nm (excitation), 520 nm (emission)] or HEX fluorophore [530 nm (excitation), 556 nm (emission)]. The concentration of each probe in the reaction mixture is 0.5 pmol/µl;

- вода дистиллированная (ГОСТ 6709-72).- distilled water (GOST 6709-72).

Раствор Taq-полимеразы представляет собой 2 пробирки по 200 мкл [термостабильная ДНК-полимераза, полученная из бактерий Thermus aquaticus YT1, свободная от нуклеаз, в буферном растворе с рН 8.6, состоящем из 700 mM Трис-HCl, 60% глицерина; 1 мМ дитиотрейтола; 166 mM аммония сульфата, 25 mM магния хлорида, удельная активность фермента - 1 ед/мкл.The Taq polymerase solution is 2 x 200 µl tubes [thermostable DNA polymerase derived from Thermus aquaticus YT1 bacteria free of nucleases in pH 8.6 buffer solution consisting of 700 mM Tris-HCl, 60% glycerol; 1 mM dithiothreitol; 166 mM ammonium sulfate, 25 mM magnesium chloride, enzyme specific activity 1 U/µl.

Отрицательный контрольный образец 1 пробирка (150 мкл) - вода дистиллированная (ГОСТ 6709-72). Положительный результат в этом образце свидетельствует о необходимости заменить реагенты и переставить эксперимент.Negative control sample 1 tube (150 µl) - distilled water (GOST 6709-72). A positive result in this sample indicates the need to change reagents and re-arrange the experiment.

При осуществлении способа по заявляемому изобретению из биологического материала (кал человека) выделяется бактериальная ДНК с помощью набора реагентов, предназначенных для этих целей. На одно определение генетических маркеров заболевания для одного образца используется 6 пробирок с подготовленной реакционной смесью, содержащей специфические синтетические олигонуклеотидные праймеры и интеркалирующий краситель. Во все подготовленные пробирки, не повреждая слой парафина, добавляется раствор Taq-полимеразы.When implementing the method according to the claimed invention, bacterial DNA is isolated from biological material (human feces) using a set of reagents designed for these purposes. For one determination of genetic markers of the disease for one sample, 6 tubes with a prepared reaction mixture containing specific synthetic oligonucleotide primers and an intercalating dye are used. Taq-polymerase solution is added to all prepared tubes without damaging the paraffin layer.

В каждую пробирку, кроме пробирок с отрицательным контрольным образцом и положительным контрольным образцом, при постановке реакции амплификации добавляется образец бактериальной ДНК, выделенной из образца кала человека. Все пробирки устанавливаются в блок амплификатора, амплификация проводится согласно стандартным режимам. Детекция результатов осуществляется детектирующим амплификатором автоматически во время амплификации. Анализ результатов проводится в соответствии с инструкцией к прибору. В случае наличия в ДНК специфических маркеров, комплементарных праймерам, происходит наработка ПЦР-продукта и возрастание уровня флуоресценции. Интенсивность флуоресценции свидетельствует о количестве образующегося продукта. Для количественной оценки результатов анализа используют ЭВМ с программным обеспечением, которое преобразует полученные для каждого выявляемого показателя значения порогового цикла Ct в количество копий на мл. Пересчет проводится на основе метода Пфаффла с поправкой на эффективность амплификации. Выявляемое изменение титра 10^4 коп/мл.In each tube, except for tubes with a negative control sample and a positive control sample, when setting up the amplification reaction, a sample of bacterial DNA isolated from a human feces sample is added. All test tubes are installed in the cycler block, amplification is carried out according to standard modes. Detection of results is carried out automatically by the detecting cycler during amplification. Analysis of the results is carried out in accordance with the instructions for the device. In the case of the presence of specific markers in DNA that are complementary to primers, the PCR product is produced and the fluorescence level increases. The intensity of fluorescence is indicative of the amount of product formed. To quantify the results of the analysis, a computer with software is used that converts the threshold cycle Ct values obtained for each indicator to be detected into the number of copies per ml. The recalculation is carried out on the basis of the Pfaffl method, adjusted for the amplification efficiency. The detected change in titer is 10^4 kop/ml.

Разработанный способ исследования микробиоты толстого кишечника и варианты наборов для его осуществления позволяют выявить присутствие патогенных микроорганизмов или значительное увеличение отдельных представителей микрофлоры кишечника, например, снижение содержания бифидобактерий и/или лактобацилл, изменение количества сапрофитной, грибов или условно-патогенной микрофлоры, изменение соотношения субпопуляций анаэробных бактерий, осуществляющих различные виды брожения (например, продуцентов бутирата и продуцентов пропионата).The developed method for studying the microbiota of the large intestine and variants of kits for its implementation make it possible to detect the presence of pathogenic microorganisms or a significant increase in individual representatives of the intestinal microflora, for example, a decrease in the content of bifidobacteria and / or lactobacilli, a change in the number of saprophytic, fungi or opportunistic microflora, a change in the ratio of subpopulations of anaerobic bacteria that carry out various types of fermentation (for example, butyrate producers and propionate producers).

Разработанный способ и набор для его осуществления, за счет комбинации показателей используемых праймеров позволяет диагностировать дисбактериозы кишечника, кандидомикозный сепсис, антибиотик-ассоцированную диарею, иммунодефицитные состояния, гастроэнтерит, энтерит, энтероколит, стафилококковый дисбактериоз, антибиотик-ассоциированный колит, псевдомембранозный колит, пищевые токсикоинфекции, некротический энтерит, неспецефический язвенный колит, острые кишечные инфекционные заболевания, гастрит, неопластические процессы в толстом кишечнике, канцерогенез, генерализованный тифопаратифозный инфекционный процесс, дизентерию, дисбиоз, болезнь Крона, неспецифический язвенный колит, диабеты 1-го и 2-го типа, цирроз печени, избыточный бактериальный рост, анаэробный дисбаланс, различные аутоиммунные патологии, синдром раздраженной толстой кишки, аллергию, патологии желчевыводящих путей, полипоз тостого кишечника, колоректальный рак.The developed method and a set for its implementation, due to the combination of indicators of the primers used, makes it possible to diagnose intestinal dysbacteriosis, candidiasis sepsis, antibiotic-associated diarrhea, immunodeficiency states, gastroenteritis, enteritis, enterocolitis, staphylococcal dysbacteriosis, antibiotic-associated colitis, pseudomembranous colitis, food poisoning, necrotizing enteritis, nonspecific ulcerative colitis, acute intestinal infectious diseases, gastritis, neoplastic processes in the large intestine, carcinogenesis, generalized typhoid and paratyphoid infectious process, dysentery, dysbiosis, Crohn's disease, nonspecific ulcerative colitis, type 1 and type 2 diabetes, liver cirrhosis , bacterial overgrowth, anaerobic imbalance, various autoimmune pathologies, irritable bowel syndrome, allergies, biliary tract pathologies, colon polyposis, colorectal cancer.

Claims (60)

1. Способ исследования микробиоты толстого кишечника путём определения ДНК микроорганизмов кишечника методом полимеразной цепной реакции, включающий взаимодействие образца микробиоты с набором олигонуклеотидных праймеров, определением для каждого олигонуклеотида в указанном наборе праймеров количества его нуклеотидных последовательностей-мишеней, которая присутствует в указанном образце, и получении профиля микробиоты из относительных количеств нуклеотидных последовательностей-мишеней, присутствующих в образце, отличающийся тем, что в качестве набора олигонуклеотидных праймеров используют набор праймеров со следующими олигонуклеотидами:1. A method for studying the microbiota of the large intestine by determining the DNA of intestinal microorganisms by polymerase chain reaction, including the interaction of a microbiota sample with a set of oligonucleotide primers, determining for each oligonucleotide in the specified set of primers the number of its target nucleotide sequences that is present in the specified sample, and obtaining a profile microbiota from the relative amounts of target nucleotide sequences present in the sample, characterized in that a primer set with the following oligonucleotides is used as a set of oligonucleotide primers: - Ca_its_F 5’CAGCGAAATGCGATACGTAATATG 3’- Ca_its_F 5'CAGCGAAATGCGATACGTAATATG 3' Ca_its_R 5’GTCTTTCAAGCAAACCCAAGTC 3’Ca_its_R 5'GTCTTTCAAGCAAACCCAAGTC 3' Ca_its_Z 5’ - FAM- CCTGTTTGAGCGTCGTTTCTCCCT - BHQ-1;Ca_its_Z 5' - FAM- CCTGTTTGAGCGTCGTTTCTCCCCT - BHQ-1; - SaAROE_F 5’AAAGGATTGCACAGCGTTTATC 3’- SaAROE_F 5'AAAGGATTGCACAGCGTTTATC 3' SaAROE_R 5’CGCAACAGTTAATTTGGGCTTTA 3’SaAROE_R 5’CGCAACAGTTAATTTGGGCTTTA 3’ SaAROE_z1 5' (R6G) TACCTTTACTTGCACCACCTGCGC (BHQ1);SaAROE_z1 5' (R6G) TACCTTTACTTGCACCACCTGCGC (BHQ1); - Kspp_F 5’GTTAACGCCCTGTCGCAGAAGC 3’- Kspp_F 5'GTTAACGCCCTGTCGCAGAAGC 3' Kspp_R 5’TTC(G/A) T(A/G) GCTCGGCCAGAA(G/A) CGCAC 3’;Kspp_R 5'TTC(G/A) T(A/G) GCTCGGCCAGAA(G/A) CGCAC 3'; - Clodif_F 5’TTGAGCGATTTACTTCGGTAAAGA 3’- Clodif_F 5'TTGAGCGATTTACTTCGGTAAAGA 3' Clodif_R 5’TGTACTGGCTCACCTTTGATATTCA 3’Clodif_R 5'TGTACTGGCTCACCTTTGATATTCA 3' Clo_Taqman 5’ FAM CCACGCGTTACTCACCCGTCCG BHQ1 3’;Clo_Taqman 5' FAM CCACGCGTTACTCACCCGTCCG BHQ1 3'; - Fprau_F 5’CCATGAATTGCCTTCAAAACTGTT3’- Fprau_F 5'CCATGAATTGCCTTCAAAACTGTT3' Fprau_R 5’GAGCCTCAGCGTCAGTTGGT3’Fprau_R 5'GAGCCTCAGCGTCAGTTGGT3' Fprau_Z 6'FAM-AATTCCCGGTGTAGCGGTGGAA-BHQ-1;Fprau_Z 6'FAM-AATTCCCGGTGTAGCGGTGGAA-BHQ-1; - Bac_frag_F 5’CGGAGGATCCGAGCGTTA 3’- Bac_frag_F 5'CGGAGGATCCGAGCGTTA 3' Bac_frag_R 5’CCGCAAACTTTCACAACTGACTTA 3’Bac_frag_R 5'CCGCAAACTTTCACAACTGACTTA 3' Bac_frag_Z 6'FAM-CGCTCCCTTTAAACCCAATAAATCCGG-BHQ-1;Bac_frag_Z 6'FAM-CGCTCCCTTTAAACCCAATAAATCCGG-BHQ-1; - eaeRT_F 5’CAGGCTGATGTATGAGCAGTAT 3’- eaeRT_F 5'CAGGCTGATGTATGAGCAGTAT 3' eaeRT_R 5’TGCTGAGACCACGGTTTATC 3’ eaeRT_R 5'TGCTGAGACCACGGTTTATC 3' eae_z 5’FAM-TATAGTTTACACCAACGGTCGCCGC-BHQ-1; eae_z 5'FAM-TATAGTTTACACCAACGGTCGCCGC-BHQ-1; - Bif_F 5’GCGTGCTTAACACATGCAAGTC3’ - Bif_F 5'GCGTGCTTAACACATGCAAGTC3' Bif_R 5’CACCCGTTTCCAGGAGCTATT3’ Bif_R 5'CACCCGTTTCAGGAGCTATT3' Bif_Z 6'FAM-TCACGCATTACTCACCCGTTCGCC-BHQ-1; Bif_Z 6'FAM-TCACGCATTACTCACCCGTTCGCC-BHQ-1; - Lacto_1 5’TCGGCTATCACTTCTGGATGGA3’ - Lacto_1 5'TCGGCTATCACTTCTGGATGGA3' Lacto_2 5’CCATTGTGGAAGATTCCCTACTGC3’Lacto_2 5'CCATTGTGGAAGATTCCCCTACTGC3' Lacto_Z 6'FAM-ATCGGCCACATTGGGACTGAGAC-BHQ-1;Lacto_Z 6'FAM-ATCGGCCACATTGGGACTGAGAC-BHQ-1; - Tot_F 5’TCCTACGGGAGGCAGCAGT3’- Tot_F 5'TCCTACGGGAGGCAGCAGT3' Tot_R 5’GGACTACCAGGGTATCTAATCCTGTT3’Tot_R 5'GGACTACCAGGGTATCTAATCCTGTT3' Tot_Z 6'FAM-CGTATTACCGCGGCTGCTGGCAC-BHQ-1.Tot_Z 6'FAM-CGTATTACCGCGGCTGCTGGCAC-BHQ-1. 2. Набор для проведения способа по п. 1, включающий стрипы со смесями олигонуклеатидных праймеров для амплификации, запечатанные воском, раствор Taq-полимеразы, положительный контрольный образец, отрицательный контрольный образец, минеральное масло, отличающийся тем, что в качестве смесей праймеров используют следующие олигонуклеотиды:2. A kit for carrying out the method according to claim 1, including strips with mixtures of oligonucleotide primers for amplification, sealed with wax, Taq polymerase solution, a positive control sample, a negative control sample, mineral oil, characterized in that the following oligonucleotides are used as primer mixtures : - Ca_its_F 5’CAGCGAAATGCGATACGTAATATG 3’- Ca_its_F 5'CAGCGAAATGCGATACGTAATATG 3' Ca_its_R 5’GTCTTTCAAGCAAACCCAAGTC 3’Ca_its_R 5'GTCTTTCAAGCAAACCCAAGTC 3' Ca_its_Z 5’ - FAM- CCTGTTTGAGCGTCGTTTCTCCCT - BHQ-1;Ca_its_Z 5' - FAM- CCTGTTTGAGCGTCGTTTCTCCCCT - BHQ-1; - SaAROE_F 5’AAAGGATTGCACAGCGTTTATC 3’- SaAROE_F 5'AAAGGATTGCACAGCGTTTATC 3' SaAROE_R 5’CGCAACAGTTAATTTGGGCTTTA 3’SaAROE_R 5’CGCAACAGTTAATTTGGGCTTTA 3’ SaAROE_z1 5' (R6G) TACCTTTACTTGCACCACCTGCGC (BHQ1);SaAROE_z1 5' (R6G) TACCTTTACTTGCACCACCTGCGC (BHQ1); - Kspp_F 5’GTTAACGCCCTGTCGCAGAAGC 3’- Kspp_F 5'GTTAACGCCCTGTCGCAGAAGC 3' Kspp_R 5’TTC(G/A) T(A/G) GCTCGGCCAGAA(G/A) CGCAC 3’;Kspp_R 5'TTC(G/A) T(A/G) GCTCGGCCAGAA(G/A) CGCAC 3'; - Clodif_F 5’TTGAGCGATTTACTTCGGTAAAGA 3’- Clodif_F 5'TTGAGCGATTTACTTCGGTAAAGA 3' Clodif_R 5’TGTACTGGCTCACCTTTGATATTCA 3’Clodif_R 5'TGTACTGGCTCACCTTTGATATTCA 3' Clo_Taqman 5’ FAM CCACGCGTTACTCACCCGTCCG BHQ1 3’;Clo_Taqman 5' FAM CCACGCGTTACTCACCCGTCCG BHQ1 3'; - Fprau_F 5’CCATGAATTGCCTTCAAAACTGTT3’- Fprau_F 5'CCATGAATTGCCTTCAAAACTGTT3' Fprau_R 5’GAGCCTCAGCGTCAGTTGGT3’Fprau_R 5'GAGCCTCAGCGTCAGTTGGT3' Fprau_Z 6'FAM-AATTCCCGGTGTAGCGGTGGAA-BHQ-1;Fprau_Z 6'FAM-AATTCCCGGTGTAGCGGTGGAA-BHQ-1; - Bac_frag_F 5’CGGAGGATCCGAGCGTTA 3’- Bac_frag_F 5'CGGAGGATCCGAGCGTTA 3' Bac_frag_R 5’CCGCAAACTTTCACAACTGACTTA 3’Bac_frag_R 5'CCGCAAACTTTCACAACTGACTTA 3' Bac_frag_Z 6'FAM-CGCTCCCTTTAAACCCAATAAATCCGG-BHQ-1;Bac_frag_Z 6'FAM-CGCTCCCTTTAAACCCAATAAATCCGG-BHQ-1; - eaeRT_F 5’CAGGCTGATGTATGAGCAGTAT 3’- eaeRT_F 5'CAGGCTGATGTATGAGCAGTAT 3' eaeRT_R 5’TGCTGAGACCACGGTTTATC 3’ eaeRT_R 5'TGCTGAGACCACGGTTTATC 3' eae_z 5’FAM-TATAGTTTACACCAACGGTCGCCGC-BHQ-1; eae_z 5'FAM-TATAGTTTACACCAACGGTCGCCGC-BHQ-1; - Bif_F 5’GCGTGCTTAACACATGCAAGTC3’ - Bif_F 5'GCGTGCTTAACACATGCAAGTC3' Bif_R 5’CACCCGTTTCCAGGAGCTATT3’ Bif_R 5'CACCCGTTTCAGGAGCTATT3' Bif_Z 6'FAM-TCACGCATTACTCACCCGTTCGCC-BHQ-1; Bif_Z 6'FAM-TCACGCATTACTCACCCGTTCGCC-BHQ-1; - Lacto_1 5’TCGGCTATCACTTCTGGATGGA3’ - Lacto_1 5'TCGGCTATCACTTCTGGATGGA3' Lacto_2 5’CCATTGTGGAAGATTCCCTACTGC3’Lacto_2 5'CCATTGTGGAAGATTCCCCTACTGC3' Lacto_Z 6'FAM-ATCGGCCACATTGGGACTGAGAC-BHQ-1;Lacto_Z 6'FAM-ATCGGCCACATTGGGACTGAGAC-BHQ-1; - Tot_F 5’TCCTACGGGAGGCAGCAGT3’- Tot_F 5'TCCTACGGGAGGCAGCAGT3' Tot_R 5’GGACTACCAGGGTATCTAATCCTGTT3’Tot_R 5'GGACTACCAGGGTATCTAATCCTGTT3' Tot_Z 6'FAM-CGTATTACCGCGGCTGCTGGCAC-BHQ-1.Tot_Z 6'FAM-CGTATTACCGCGGCTGCTGGCAC-BHQ-1.
RU2020140132A 2020-12-07 Method for studying microbiota of large intestine by polymerase chain reaction method with fluorescence detection in real time and set of reagents for implementation thereof RU2782316C2 (en)

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2021131090A Division RU2781855C1 (en) 2021-10-25 Method for studying the microbiota of the large intestine by the polymerase chain reaction method with fluorescence detection in real time and set of reagents for implementation thereof

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2020140132A RU2020140132A (en) 2022-06-07
RU2782316C2 true RU2782316C2 (en) 2022-10-25

Family

ID=

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2605913C2 (en) * 2010-12-16 2016-12-27 Дженетик Энэлисиз Ас Sets of oligonucleotide probes and methods of gastrointestinal microbiota profiling

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2605913C2 (en) * 2010-12-16 2016-12-27 Дженетик Энэлисиз Ас Sets of oligonucleotide probes and methods of gastrointestinal microbiota profiling

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
С.М. ЮДИН, А.М. ЕГОРОВА и др., АНАЛИЗ МИКРОБИОТЫ ЧЕЛОВЕКА. РОССИЙСКИЙ И ЗАРУБЕЖНЫЙ ОПЫТ, Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований, 2018, N 11, часть 1 - С. 175-180. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Dunbar et al. Quantitative, multiplexed detection of bacterial pathogens: DNA and protein applications of the Luminex LabMAP™ system
Avaniss-Aghajani et al. Molecular technique for rapid identification of mycobacteria
KR0171629B1 (en) Rapid assays for amplification products
CN106399517B (en) Nucleic acid detection technology combining multi-cross constant-temperature amplification with gold nano biosensing
JP7391877B2 (en) Biomarker panels and methods for detecting microsatellite instability in cancer
US6063572A (en) Method of assay of nucleic acid sequences
CN102918155B (en) Chlamydia trachomatis detection primer and probe and use the detection method of chlamydia trachomatis of this primer and probe
CN113201594A (en) Method for rapidly detecting food-borne Burkholderia gladioli
JP2018528780A (en) Improved detection of short homopolymer repeats
Jannes et al. A review of current and future molecular diagnostic tests for use in the microbiology laboratory
CN105755134B (en) Endonuclease-mediated real-time multiple cross-displacement nucleic acid amplification technology and application
CN109777861A (en) The loop-mediated isothermal amplification method of mispairing tolerance and application
CA2489196C (en) Method and test kit for quantitative determination of polynucleotides in a mixture
Mianzhi et al. Contemporary nucleic acid-based molecular techniques for detection, identification, and characterization of Bifidobacterium
Rintamäki et al. Detection of Streptococcus pneumoniae DNA by using polymerase chain reaction and microwell hybridization with Europium-labelled probes
RU2782316C2 (en) Method for studying microbiota of large intestine by polymerase chain reaction method with fluorescence detection in real time and set of reagents for implementation thereof
RU2781855C1 (en) Method for studying the microbiota of the large intestine by the polymerase chain reaction method with fluorescence detection in real time and set of reagents for implementation thereof
Galluzzi et al. Current molecular techniques for the detection of microbial pathogens
US7368246B2 (en) Quantitative gene expression profiling
WO2011086006A1 (en) Method for detecting more than one target in a pcr-based approach applying an unspecific dye which is not interfering with the emission of fluorophore-labeled probes
US20100112563A1 (en) Multiplex analysis of nucleic acids
JP2003174900A (en) Method for determining pyrophosphoric acid and nucleic acid and apparatus therefor
Thies Molecular methods for studying soil ecology
JP2009504173A (en) Analysis method and kit
Clarke Detection of Neisseria meningitidis, Streptococcus pneumoniae, and Haemophilus influenzae in blood and cerebrospinal fluid using fluorescence-based PCR