RU2770558C2 - Method for creating tissue-engineering structures by bioprinting with bioink for cartilage tissue regeneration under body conditions - Google Patents
Method for creating tissue-engineering structures by bioprinting with bioink for cartilage tissue regeneration under body conditions Download PDFInfo
- Publication number
- RU2770558C2 RU2770558C2 RU2021126356A RU2021126356A RU2770558C2 RU 2770558 C2 RU2770558 C2 RU 2770558C2 RU 2021126356 A RU2021126356 A RU 2021126356A RU 2021126356 A RU2021126356 A RU 2021126356A RU 2770558 C2 RU2770558 C2 RU 2770558C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- bioink
- tissue
- bioprinting
- powder
- decm
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/14—Macromolecular materials
- A61L27/22—Polypeptides or derivatives thereof, e.g. degradation products
- A61L27/24—Collagen
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/50—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
- A61L27/52—Hydrogels or hydrocolloids
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/50—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
- A61L27/56—Porous materials, e.g. foams or sponges
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P19/00—Drugs for skeletal disorders
Abstract
Description
Изобретение относится к тканевой инженерии и 3D-биопечати, может быть использовано для создания тканеинженерных конструкций (скаффолдов).The invention relates to tissue engineering and 3D bioprinting and can be used to create tissue engineering structures (scaffolds).
3D-биопечать – перспективная технология изготовления тканевых конструкций сложной внешней геометрии и/или внутренней структуры, со строго определенными механическими свойствами,с персонализированным составом. Основным компонентом в 3D-биопечати являются биочернила, которые представляют собой биоматериал в форме гидрогеля, содержащим определенное количество и типы клеток. Биочернила должны обладать такими биологическими характеристиками как биосовместимость, цитосовместимость, биодеградация с контролируемой скоростью, близкой к скорости регенерации замещаемой ткани. Приготовление биочернил осуществляется с использованием различных природных и синтетических материалов и их комбинаций, таких как коллаген, желатин, агароза, фиброин шёлка, альгинат и т.д.Однако большинство этих материалов не способно воссоздать микроокружение, типичное для живых тканей, внутреннюю клеточную морфологию и функции.3D bioprinting is a promising technology for manufacturing tissue structures of complex external geometry and/or internal structure, with strictly defined mechanical properties, with a personalized composition. The main component in 3D bioprinting is bioink, which is a biomaterial in the form of a hydrogel containing a certain number and types of cells. Bioink should have such biological characteristics as biocompatibility, cytocompatibility, biodegradation at a controlled rate, close to the rate of regeneration of the replaced tissue. The preparation of bioink is carried out using various natural and synthetic materials and their combinations, such as collagen, gelatin, agarose, silk fibroin, alginate, etc. However, most of these materials are not able to recreate the microenvironment typical of living tissues, internal cellular morphology and functions .
Идеальным образцом такого материала может являться основа самой целевой ткани – ее внеклеточный матрикс (ВКМ). Состав ВКМ каждой ткани уникален. Он представлен сложной сетью компонентов, основными из которых являются волокнообразующие белки, такие как коллагены, эластин, фибронектин, ламинины, гликопротеины, протеогликаны и гликозаминогликаны [Theocharis AD, Skandalis SS, Gialeli C, Karamanos NK. Extracellular matrix structure. Adv Drug Deliv Rev. 2016, 97: 4-27. DOI: 10.1016/j.addr.2015.11.001.].ВКМ регулирует многие клеточные процессы, включая рост, миграцию, дифференцировку, гомеостаз и морфогенез [K.C. Clause, T.H. Barker. Extracellular matrix signaling in morphogenesis and repair. Curr. Opin. Biotechnol.,2013,24: 830-833; Theocharis AD, Skandalis SS, Gialeli C, Karamanos NK. Extracellular matrix structure. Adv Drug Deliv Rev. 2016; 97: 4-27. DOI: 10.1016/j.addr.2015.11.001.]. Он является основным источником и проводником биохимических и биомеханических сигналов, для обеспечения организации и функционирования ткани в целом [Herrera J, Henke CA, Bitterman PB. Extracellular matrix as a driver of progressive fibrosis. J Clin Invest. 2018, 128(1): 45-53. DOI: 10.1172/JCI93557.], обеспечивая физико-механическое микроокружение клеток [Theocharis AD, Skandalis SS, Gialeli C, Karamanos NK. Extracellular matrix structure. Adv Drug Deliv Rev. 2016, 97: 4-27. DOI: 10.1016/j.addr.2015.11.001]. An ideal sample of such a material can be the basis of the target tissue itself – its extracellular matrix (ECM). The composition of the ECM of each tissue is unique. It is represented by a complex network of components, the main of which are fiber-forming proteins such as collagens, elastin, fibronectin, laminins, glycoproteins, proteoglycans and glycosaminoglycans [Theocharis AD, Skandalis SS, Gialeli C, Karamanos NK. Extracellular matrix structure. Adv Drug Deliv Rev. 2016, 97: 4-27. DOI: 10.1016/j.addr.2015.11.001]. ECM regulates many cellular processes, including growth, migration, differentiation, homeostasis, and morphogenesis [K.C. Clause, T.H. barker. Extracellular matrix signaling in morphogenesis and repair. Curr. Opin. Biotechnol., 2013.24: 830-833; Theocharis AD, Skandalis SS, Gialeli C, Karamanos NK. Extracellular matrix structure. Adv Drug Deliv Rev. 2016; 97:4-27. DOI: 10.1016/j.addr.2015.11.001.]. It is the main source and conductor of biochemical and biomechanical signals to ensure the organization and functioning of the tissue as a whole [Herrera J, Henke CA, Bitterman PB. Extracellular matrix as a driver of progressive fibrosis. J Clin Invest. 2018, 128(1): 45-53. DOI: 10.1172/JCI93557.], providing a physical and mechanical microenvironment of cells [Theocharis AD, Skandalis SS, Gialeli C, Karamanos NK. Extracellular matrix structure. Adv Drug Deliv Rev. 2016, 97: 4-27. DOI: 10.1016/j.addr.2015.11.001].
В последнее время появляются данные о применении гидрогелей на основе децеллюляризованного ВМК (дВКМ) в биопечати. Биочернила на основе дВКМ изначально обладают тканеспецифичными свойствами. Recently, data have appeared on the use of hydrogels based on decellularized HMC (dVCM) in bioprinting. Bioinks based on dVCM initially have tissue-specific properties.
Однако использование дВКМв форме гидрогеля ограничено слабыми механическими свойствами получаемых тканеинженерных конструкций и низкой точностью самого процесса печати.However, the use of dVCM in the form of a hydrogel is limited by the weak mechanical properties of the resulting tissue engineering structures and the low accuracy of the printing process itself.
Известен вариант создания биочернил на основе фибринового геля с добавлением микрочастиц дВКМ для реконструкции роговицы глаза.[H. Yin, Q. Lu, X Wang, et al. Tissue-derived microparticles reduce inflammation and fibrosis in cornea wounds. Acta Biomater. 2019, 85:192-202. doi: 10.1016/j.actbio.2018.12.027; A Chandru, P Agrawal , SK Ojha , et al. Human Cadaveric Donor Cornea Derived Extra Cellular Matrix Microparticles for Minimally Invasive Healing/Regeneration of Corneal Wounds Biomolecules 2021, 11(4). 10.3390/biom11040532].В данных работах гидрогель применяли без 3D-биопечати.There is a variant of creating bio-ink based on fibrin gel with the addition of dVKM microparticles for the reconstruction of the cornea of the eye.[H. Yin, Q. Lu, X Wang, et al. Tissue-derived microparticles reduce inflammation and fibrosis in cornea wounds. Acta Biomater. 2019, 85:192-202. doi: 10.1016/j.actbio.2018.12.027; A Chandru, P Agrawal, SK Ojha, et al. Human Cadaveric Donor Cornea Derived Extra Cellular Matrix Microparticles for Minimally Invasive Healing/Regeneration of Corneal Wounds Biomolecules 2021, 11(4). 10.3390/biom11040532]. In these works, the hydrogel was used without 3D bioprinting.
Недостатком представленных выше способов является неприменимость данных гидрогелей для биопечати из-за реологических свойств гидрогелей.The disadvantage of the above methods is the inapplicability of these hydrogels for bioprinting due to the rheological properties of the hydrogels.
Наиболее близким к заявляемому изобретению(прототип) является способ применения биочернил представленный в работе M. Kimetal. [Kim MK, Jeong W, Lee SM, et al. Decellularized extracellular matrix-based bio-ink with enhanced 3D printability and mechanical properties. Biofabrication 2020; 12: 025003], где дВКМ использовали в виде микрочастиц в составе желатинового гидрогеля (гиалуроновая кислота 3 мг/мл + желатин 37,5 мг/мл + фибриноген 3мг/мл). Полученные формуляции биочернил исследовали на цитосовместимость в условиях in vitro. Данное исследование в первую очередь направлено на создание биочернил, которые могут исправить дефекты печени, для исправления дефектов хрящевой ткани они не могут быть применимы.Closest to the claimed invention (prototype) is a method of using bioink presented in the work of M. Kimetal. [Kim MK, Jeong W, Lee SM, et al. Decellularized extracellular matrix-based bio-ink with enhanced 3D printability and mechanical properties. Biofabrication 2020; 12: 025003], where dVKM was used in the form of microparticles as part of a gelatin hydrogel (hyaluronic acid 3 mg/ml + gelatin 37.5 mg/ml + fibrinogen 3 mg/ml). The resulting bioink formulations were examined for cytocompatibility under in vitro conditions. This research is primarily aimed at creating bio-inks that can correct liver defects, they cannot be applied to repair cartilage tissue defects.
Техническим результатом является создание тканеинженерных конструкций, воссоздающие клеточное строение и функцию заменяемой хрящевой ткани, а также обеспечение высокой точность создания тканеинженерной конструкции посредством 3D-биопечатиThe technical result is the creation of tissue engineering structures that recreate the cellular structure and function of the cartilage tissue to be replaced, as well as ensuring high accuracy in creating a tissue engineering structure using 3D bioprinting.
Технический результат решается тем, что так же, как и в известном способе приготавливают биочернила, которые получают непосредственно перед процессом 3D-биопечати и осуществляют биопечать тканеинженерной конструкции, способной воссоздать клеточное строение и функцию заменяемой ткани, экструзионной насадкой. The technical result is solved by the fact that, in the same way as in the known method, bioink is prepared, which is obtained immediately before the 3D bioprinting process and bioprinting of a tissue engineering structure capable of recreating the cellular structure and function of the replaced tissue is carried out with an extrusion nozzle.
Особенностью заявляемого способа является то, что биочернила включают в себя следующие компоненты: коллаген, мезенхимальные стволовые клетки (МСК) и порошок децеллюляризованного внеклеточного матрикса (дВКМ), причем дВКМ получали из реберных хрящей самок крыс линии Wistar, которые подвергали децеллюляризации и лиофилизации, полученный порошок просеивают через сито с диаметром пор 280 мкм и до использования хранят при +4°С, при приготовлении биочернил с концентрацией коллагена 4% используют стерильный ателоколлаген свиньи I типа – 80 мг/мл, который смешивают с МСК – 5×106 в мл, с буферным раствором – 250 мкл на мл и порошком дВКМ – 25 мг/мл, далее скаффолд печатают изаливают теплой питательной средой t37°C, после чего проводят процесс инкубации при 37°C в CO2-инкубаторе.A feature of the proposed method is that the bioink includes the following components: collagen, mesenchymal stem cells (MSCs) and decellularized extracellular matrix (dECM) powder, and dECM was obtained from the costal cartilage of female Wistar rats, which were subjected to decellularization and lyophilization, the resulting powder sieved through a sieve with a pore diameter of 280 μm and stored at +4°C until use; when preparing bioink with a collagen concentration of 4%, sterile type I porcine atelocollagen is used - 80 mg / ml, which is mixed with MSCs - 5 × 10 6 per ml, with a buffer solution - 250 µl per ml and dVKM powder - 25 mg/ml, then the scaffold is printed and poured with warm nutrient medium t37°C, after which the incubation process is carried out at 37°C in a CO 2 incubator.
Изобретение поясняется подробным описанием, примерами использования и иллюстрациями, на которых изображено:The invention is illustrated by a detailed description, examples of use and illustrations, which show:
Фиг. 1 – Тестовая печать для оценки печатопригодности биочернил (схематическое изображение напечатанного объекта).Fig. 1 - Test print to assess the printability of bioink (schematic representation of the printed object).
Фиг. 2 – Скаффолд через 1 неделю после имплантации, об. ×10.Fig. 2 - Scaffold 1 week after implantation, about. ×10.
Фиг. 3 – Формирование хрящевой ткани через 2 недели после имплантации, об. ×10.Fig. 3 - Formation of cartilage tissue 2 weeks after implantation, about. ×10.
Способ осуществляют следующим образом.The method is carried out as follows.
Для создания тканеинженерных конструкций используют коллагеновый гидрогель, порошкообразный ВКМ и культуру МСК. Порошкообразный ВКМ представлен в виде сухих лиофилизированных гранул, их диаметр не превышает диаметр сопла биопринтера. При необходимости клеточных факторов роста, их добавление в биочернила осуществляют на этапе смешивания. Печать производят на лабораторную культуральную посуду (например, чашки Петри, луночные планшеты) или на стекло, находящиеся сверху печатного столика. После процесса биопечати скаффолд заливают теплой питательной средой (от 25 до 37°C), например, RPMI-1640, DMEM, F-12.Процесс инкубации проводят при 37°C в CO2-инкубаторе. Замену среды в процессе инкубации производят один раз в сутки.To create tissue engineering constructs, collagen hydrogel, powdered ECM and MSC culture are used. Powdered ECM is presented in the form of dry lyophilized granules, their diameter does not exceed the diameter of the bioprinter nozzle. If necessary, cell growth factors, their addition to the bioink is carried out at the mixing stage. Printing is carried out on laboratory culture dishes (for example, Petri dishes, well plates) or on glass located on top of the printing table. After the bioprinting process, the scaffold is flooded with warm nutrient medium (from 25 to 37°C), for example, RPMI-1640, DMEM, F-12. The incubation process is carried out at 37°C in a CO 2 incubator. The medium is replaced during the incubation process once a day.
Для оценки печатопригодности биочернил на основе 4% коллагена и порошка дВКМ была проведена печать в тестовом режиме (Фиг.1), после которой появляется возможность оценки толщины линии (3 слоев филамента) в 12 местах и площади формируемых ниш в 8 местах (указывает на продолжающийся процесс полимеризации). Оба параметра оценивали в динамике: сразу после печати и через 24 часовой инкубации в буферном растворе PBS. Данные по биочернилам и гидрогелю на основе коллагена (без дВКМ) представлены в табл.1.To assess the printability of bioink based on 4% collagen and dVKM powder, printing was carried out in a test mode (Fig. 1), after which it becomes possible to evaluate the line thickness (3 layers of filament) in 12 places and the area of formed niches in 8 places (indicates ongoing polymerization process). Both parameters were evaluated in dynamics: immediately after printing and after 24 hours of incubation in PBS buffer. Data on bioink and hydrogel based on collagen (without dVKM) are presented in Table 1.
Таблица 1 Table 1
Результаты тестовой печати биочернилами на основе 4% коллагена с и без гранул дВКМResults of test printing with bio-ink based on 4% collagen with and without dVCM granules
[1,427÷1,605]1.516±0.125
[1.427÷1.605]
[1,338÷1,485]1.411±0.103
[1.338÷1.485]
[1,195÷1,376]1.286±0.126
[1.195÷1.376]
[1,030÷1,164]1.097±0.094
[1.030÷1.164]
[0,874÷0,898]0.886±0.017
[0.874÷0.898]
[0,882÷0,920]0.901±0.027
[0.882÷0.920]
[0,894÷0,946]0.920±0.036
[0.894÷0.946]
[0,938÷0,976]0.957±0.027
[0.938÷0.976]
Пример создания тканеинженерной конструкции in vivo для создания полноценной ткани de novo.An example of creating a tissue engineering construct in vivo to create a complete de novo tissue.
ВКМ получали из реберных хрящей крыс линии Wistar, самок, возрастом от 1 до 1,5 месяцев, которые предварительно обрабатывали, децеллюляризировали и лиофилизировали. Лиофилизированный хрящ размалывали пестиком в ступке. Полученный порошок просеивали через сито из нержавеющей стали с диаметром пор 280 мкм и до использования хранили в герметичной упаковке при +4°С. Для приготовления биочернил с концентрацией коллагена 4% использовали стерильный ателоколлаген свиньи I типа – 80 мг/мл, который смешивали с МСК – 5×106 в мл, буферным раствором трис-HCl – 250 мкл на мл, порошком дВКМ – 25 мг/мл. После приготовления бичернил осуществляли биопечать скаффолда. Скаффолд залили теплой (37°C) питательной средой DMEM. Далеев CO2-инкубаторе провели процесс инкубации при 37°C.ECM was obtained from the costal cartilage of Wistar rats, females, 1 to 1.5 months old, which had been pre-treated, decellularized and lyophilized. Lyophilized cartilage was ground with a pestle in a mortar. The resulting powder was sifted through a stainless steel sieve with a pore diameter of 280 μm and stored in a sealed package at +4°C until use. For the preparation of bioink with a collagen concentration of 4%, sterile type I porcine atelocollagen - 80 mg/ml was used, which was mixed with MSC - 5 × 10 6 per ml, Tris-HCl buffer solution - 250 μl per ml, dVKM powder - 25 mg/ml . After preparing the bi-ink, the scaffold was bioprinted. The scaffold was flooded with warm (37°C) DMEM nutrient medium. Further in the CO 2 -incubator held the process of incubation at 37°C.
Скаффолды были имплантированы беспородным белым крысам-самцам. Через 1 и 2 недели животных подвергли эвтаназии и отбирали материал для гистологического исследования. Через одну неделю после имплантации вокруг скаффолдов была сформирована соединительнотканная капсула, которая прорастала в коллаген, разделяя его на отдельные фрагменты, клетки располагались неравномерно, в отдельных участках скаффолдов сформировалась хрящевая ткань (Фиг. 2). Между пучками коллагена волокон также визуализировались клетки соединительной ткани. Через две недели после имплантации у животных скаффолды замещались вновь образованной хрящевой тканью (Фиг.3).The scaffolds were implanted in outbred male white rats. After 1 and 2 weeks, the animals were euthanized and the material was taken for histological examination. One week after implantation, a connective tissue capsule was formed around the scaffolds, which grew into collagen, dividing it into separate fragments, the cells were unevenly distributed, and cartilage tissue formed in some areas of the scaffolds (Fig. 2). Connective tissue cells were also visualized between bundles of collagen fibers. Two weeks after implantation in animals, the scaffolds were replaced by newly formed cartilage tissue (Figure 3).
Предложенный способ позволяет создавать тканеинженерные конструкции, воссоздающие клеточное строение и функцию заменяемой хрящевой ткани.The proposed method makes it possible to create tissue engineering structures that recreate the cellular structure and function of the replaced cartilage tissue.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2021126356A RU2770558C2 (en) | 2021-09-07 | 2021-09-07 | Method for creating tissue-engineering structures by bioprinting with bioink for cartilage tissue regeneration under body conditions |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2021126356A RU2770558C2 (en) | 2021-09-07 | 2021-09-07 | Method for creating tissue-engineering structures by bioprinting with bioink for cartilage tissue regeneration under body conditions |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2021126356A RU2021126356A (en) | 2021-10-27 |
RU2021126356A3 RU2021126356A3 (en) | 2022-02-22 |
RU2770558C2 true RU2770558C2 (en) | 2022-04-18 |
Family
ID=78289450
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2021126356A RU2770558C2 (en) | 2021-09-07 | 2021-09-07 | Method for creating tissue-engineering structures by bioprinting with bioink for cartilage tissue regeneration under body conditions |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2770558C2 (en) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN114940971B (en) * | 2022-06-24 | 2024-03-15 | 中山大学 | Construction method of high-activity cartilage tissue based on Faraday wave |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2016036275A1 (en) * | 2014-09-05 | 2016-03-10 | Частное Учреждение Лаборатория Биотехнологических Исследований "Зд Биопринтинг Солюшенс" | Device and methods for printing biological tissues and organs |
EP3771547A1 (en) * | 2019-08-02 | 2021-02-03 | Technische Universität Berlin | Method for 3d printing of vascularized tissues and organs |
-
2021
- 2021-09-07 RU RU2021126356A patent/RU2770558C2/en active
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2016036275A1 (en) * | 2014-09-05 | 2016-03-10 | Частное Учреждение Лаборатория Биотехнологических Исследований "Зд Биопринтинг Солюшенс" | Device and methods for printing biological tissues and organs |
EP3771547A1 (en) * | 2019-08-02 | 2021-02-03 | Technische Universität Berlin | Method for 3d printing of vascularized tissues and organs |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
КАЛЮЖНАЯ Л.И. и др., "Анализ мирового опыта использования биоматериалов пуповины в тканевой инженерии и 3D-биопечати" Медицина и организация здравоохранения, vol. 4, no. 1, 2019, pp. 40-55. * |
КРАСНОВ М.С. "Биорегуляторы регенерации - работают в сверхмалых дозах" Наука из первых рук, no. 6 (60), 2014, pp. 16-23. * |
ЦЕЛУЙКО С.С. и др., "3D биопечать на службе дыхательной системы (обзор литературы)" Бюллетень физиологии и патологии дыхания, no. 61, 2016, pp. 128-134. * |
ЦЕЛУЙКО С.С. и др., "3D биопечать на службе дыхательной системы (обзор литературы)" Бюллетень физиологии и патологии дыхания, no. 61, 2016, pp. 128-134. КАЛЮЖНАЯ Л.И. и др., "Анализ мирового опыта использования биоматериалов пуповины в тканевой инженерии и 3D-биопечати" Медицина и организация здравоохранения, vol. 4, no. 1, 2019, pp. 40-55. КРАСНОВ М.С. "Биорегуляторы регенерации - работают в сверхмалых дозах" Наука из первых рук, no. 6 (60), 2014, pp. 16-23. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2021126356A (en) | 2021-10-27 |
RU2021126356A3 (en) | 2022-02-22 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US20200282106A1 (en) | Concentrated Aqueous Silk Fibroin Solution and Use Thereof | |
CN108310467B (en) | Assembled cell-derived extracellular matrix membrane composite bone repair material and preparation method and application thereof | |
Correia et al. | Chitosan scaffolds containing hyaluronic acid for cartilage tissue engineering | |
AU2017219075B2 (en) | Muscle tissue regeneration using muscle fiber fragments | |
US10004827B2 (en) | Extracellular matrix-derived gels and related methods | |
CN101020082B (en) | Bone repairing material and its prepn process and use | |
US20090162415A1 (en) | Gel Scaffolds for Tissue Engineering | |
US20200254142A1 (en) | Injectable porous hydrogels | |
DE112007001197T5 (en) | Three-dimensional purified collagen matrices | |
US20230069580A1 (en) | Chemically cross-linked hydrogel and its microspheres, preparation method and application | |
US9993525B2 (en) | Biomaterial of chymotryptically isolated fraction of fibroin in a hydrogel | |
Dong et al. | Demineralized and decellularized bone extracellular matrix-incorporated electrospun nanofibrous scaffold for bone regeneration | |
EP4338764A2 (en) | Tissue scaffold | |
RU2770558C2 (en) | Method for creating tissue-engineering structures by bioprinting with bioink for cartilage tissue regeneration under body conditions | |
Fan et al. | Ectopic cartilage formation induced by mesenchymal stem cells on porous gelatin-chondroitin-hyaluronate scaffold containing microspheres loaded with TGF-β1 | |
Wang et al. | A sodium alginate/carboxymethyl chitosan dual-crosslinked injectable hydrogel scaffold with tunable softness/hardness for bone regeneration | |
Hu et al. | Construction of 3D-Bioprinted cartilage-mimicking substitute based on photo-crosslinkable Wharton's jelly bioinks for full-thickness articular cartilage defect repair | |
Li et al. | 3D printed hydroxyapatite/silk fibroin/polycaprolactone artificial bone scaffold and bone tissue engineering materials constructed with double-transfected bone morphogenetic protein-2 and vascular endothelial growth factor mesenchymal stem cells to repair rabbit radial bone defects | |
Cao et al. | Biomimetic injectable and bilayered hydrogel scaffold based on collagen and chondroitin sulfate for the repair of osteochondral defects | |
KR20220162115A (en) | Rotator cuff therapy using muscle fiber fragments | |
Zhu et al. | A pH-neutral bioactive glass empowered gelatin–chitosan–sodium phytate composite scaffold for skull defect repair | |
CN114931670B (en) | Application of active substance and self-healing hydrogel thereof in cartilage repair | |
Zhang et al. | The Effect of a Wheat Protein-based Magnesium Silicate Hydrogel Loaded with a Glucosamine Composite on the Regeneration of Cartilage | |
KR20240058835A (en) | Microparticulate tissue scaffold compositions, devices, manufacturing methods and uses thereof | |
CA3224921A1 (en) | Microparticle tissue scaffold compositions, apparatuses, methods of preparation, and uses thereof |