RU2770558C2 - Способ создания тканеинженерных конструкций методом биопечати биочернилами для регенерации хрящевой ткани в условиях организма - Google Patents

Способ создания тканеинженерных конструкций методом биопечати биочернилами для регенерации хрящевой ткани в условиях организма Download PDF

Info

Publication number
RU2770558C2
RU2770558C2 RU2021126356A RU2021126356A RU2770558C2 RU 2770558 C2 RU2770558 C2 RU 2770558C2 RU 2021126356 A RU2021126356 A RU 2021126356A RU 2021126356 A RU2021126356 A RU 2021126356A RU 2770558 C2 RU2770558 C2 RU 2770558C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
bioink
tissue
bioprinting
powder
decm
Prior art date
Application number
RU2021126356A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2021126356A3 (ru
RU2021126356A (ru
Inventor
Евгений Евгеньевич Бекетов
Елена Васильевна Исаева
Надежда Валерьевна Аргучинская
Анастас Андреевич Кисель
Анна Николаевна Филимонова
Григорий Александрович Демяшкин
Петр Викторович Шегай
Андрей Дмитриевич Каприн
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России) filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России)
Priority to RU2021126356A priority Critical patent/RU2770558C2/ru
Publication of RU2021126356A publication Critical patent/RU2021126356A/ru
Publication of RU2021126356A3 publication Critical patent/RU2021126356A3/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2770558C2 publication Critical patent/RU2770558C2/ru

Links

Images

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/14—Macromolecular materials
    • A61L27/22—Polypeptides or derivatives thereof, e.g. degradation products
    • A61L27/24—Collagen
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/50—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
    • A61L27/52—Hydrogels or hydrocolloids
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/50—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
    • A61L27/56—Porous materials, e.g. foams or sponges
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P19/00—Drugs for skeletal disorders

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Physical Education & Sports Medicine (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)

Abstract

Изобретение относится к медицине и касается способа создания тканеинженерных конструкций методом биопечати биочернилами для регенерации хрящевой ткани в условиях организма, включающего приготовление биочернил, которые получают непосредственно перед процессом 3D-биопечати, и далее используют для создания тканеинженерной конструкции, где биочернила включают в себя следующие компоненты: коллаген, мезенхимальные стволовые клетки (МСК) и порошок децеллюляризованного внеклеточного матрикса (дВКМ), причем дВКМ получали из реберных хрящей самок крыс, которые подвергали децеллюляризации и лиофилизации, полученный порошок просеивают через сито и до использования хранят при +4°С, при приготовлении биочернил используют стерильный ателоколлаген свиньи I типа, который смешивают с МСК, с буферным раствором и порошком дВКМ, далее скаффолд печатают и заливают теплой питательной средой, после чего проводят процесс инкубации в CO2-инкубаторе. Изобретение обеспечивает создание тканеинженерных конструкций, воссоздающих клеточное строение и функцию заменяемой хрящевой ткани, а также высокую точность создания тканеинженерной конструкции посредством 3D-биопечати. 3 ил., 1 табл., 1 пр.

Description

Изобретение относится к тканевой инженерии и 3D-биопечати, может быть использовано для создания тканеинженерных конструкций (скаффолдов).
3D-биопечать – перспективная технология изготовления тканевых конструкций сложной внешней геометрии и/или внутренней структуры, со строго определенными механическими свойствами,с персонализированным составом. Основным компонентом в 3D-биопечати являются биочернила, которые представляют собой биоматериал в форме гидрогеля, содержащим определенное количество и типы клеток. Биочернила должны обладать такими биологическими характеристиками как биосовместимость, цитосовместимость, биодеградация с контролируемой скоростью, близкой к скорости регенерации замещаемой ткани. Приготовление биочернил осуществляется с использованием различных природных и синтетических материалов и их комбинаций, таких как коллаген, желатин, агароза, фиброин шёлка, альгинат и т.д.Однако большинство этих материалов не способно воссоздать микроокружение, типичное для живых тканей, внутреннюю клеточную морфологию и функции.
Идеальным образцом такого материала может являться основа самой целевой ткани – ее внеклеточный матрикс (ВКМ). Состав ВКМ каждой ткани уникален. Он представлен сложной сетью компонентов, основными из которых являются волокнообразующие белки, такие как коллагены, эластин, фибронектин, ламинины, гликопротеины, протеогликаны и гликозаминогликаны [Theocharis AD, Skandalis SS, Gialeli C, Karamanos NK. Extracellular matrix structure. Adv Drug Deliv Rev. 2016, 97: 4-27. DOI: 10.1016/j.addr.2015.11.001.].ВКМ регулирует многие клеточные процессы, включая рост, миграцию, дифференцировку, гомеостаз и морфогенез [K.C. Clause, T.H. Barker. Extracellular matrix signaling in morphogenesis and repair. Curr. Opin. Biotechnol.,2013,24: 830-833; Theocharis AD, Skandalis SS, Gialeli C, Karamanos NK. Extracellular matrix structure. Adv Drug Deliv Rev. 2016; 97: 4-27. DOI: 10.1016/j.addr.2015.11.001.]. Он является основным источником и проводником биохимических и биомеханических сигналов, для обеспечения организации и функционирования ткани в целом [Herrera J, Henke CA, Bitterman PB. Extracellular matrix as a driver of progressive fibrosis. J Clin Invest. 2018, 128(1): 45-53. DOI: 10.1172/JCI93557.], обеспечивая физико-механическое микроокружение клеток [Theocharis AD, Skandalis SS, Gialeli C, Karamanos NK. Extracellular matrix structure. Adv Drug Deliv Rev. 2016, 97: 4-27. DOI: 10.1016/j.addr.2015.11.001].
В последнее время появляются данные о применении гидрогелей на основе децеллюляризованного ВМК (дВКМ) в биопечати. Биочернила на основе дВКМ изначально обладают тканеспецифичными свойствами.
Однако использование дВКМв форме гидрогеля ограничено слабыми механическими свойствами получаемых тканеинженерных конструкций и низкой точностью самого процесса печати.
Известен вариант создания биочернил на основе фибринового геля с добавлением микрочастиц дВКМ для реконструкции роговицы глаза.[H. Yin, Q. Lu, X Wang, et al. Tissue-derived microparticles reduce inflammation and fibrosis in cornea wounds. Acta Biomater. 2019, 85:192-202. doi: 10.1016/j.actbio.2018.12.027; A Chandru, P Agrawal , SK Ojha , et al. Human Cadaveric Donor Cornea Derived Extra Cellular Matrix Microparticles for Minimally Invasive Healing/Regeneration of Corneal Wounds Biomolecules 2021, 11(4). 10.3390/biom11040532].В данных работах гидрогель применяли без 3D-биопечати.
Недостатком представленных выше способов является неприменимость данных гидрогелей для биопечати из-за реологических свойств гидрогелей.
Наиболее близким к заявляемому изобретению(прототип) является способ применения биочернил представленный в работе M. Kimetal. [Kim MK, Jeong W, Lee SM, et al. Decellularized extracellular matrix-based bio-ink with enhanced 3D printability and mechanical properties. Biofabrication 2020; 12: 025003], где дВКМ использовали в виде микрочастиц в составе желатинового гидрогеля (гиалуроновая кислота 3 мг/мл + желатин 37,5 мг/мл + фибриноген 3мг/мл). Полученные формуляции биочернил исследовали на цитосовместимость в условиях in vitro. Данное исследование в первую очередь направлено на создание биочернил, которые могут исправить дефекты печени, для исправления дефектов хрящевой ткани они не могут быть применимы.
Техническим результатом является создание тканеинженерных конструкций, воссоздающие клеточное строение и функцию заменяемой хрящевой ткани, а также обеспечение высокой точность создания тканеинженерной конструкции посредством 3D-биопечати
Технический результат решается тем, что так же, как и в известном способе приготавливают биочернила, которые получают непосредственно перед процессом 3D-биопечати и осуществляют биопечать тканеинженерной конструкции, способной воссоздать клеточное строение и функцию заменяемой ткани, экструзионной насадкой.
Особенностью заявляемого способа является то, что биочернила включают в себя следующие компоненты: коллаген, мезенхимальные стволовые клетки (МСК) и порошок децеллюляризованного внеклеточного матрикса (дВКМ), причем дВКМ получали из реберных хрящей самок крыс линии Wistar, которые подвергали децеллюляризации и лиофилизации, полученный порошок просеивают через сито с диаметром пор 280 мкм и до использования хранят при +4°С, при приготовлении биочернил с концентрацией коллагена 4% используют стерильный ателоколлаген свиньи I типа – 80 мг/мл, который смешивают с МСК – 5×106 в мл, с буферным раствором – 250 мкл на мл и порошком дВКМ – 25 мг/мл, далее скаффолд печатают изаливают теплой питательной средой t37°C, после чего проводят процесс инкубации при 37°C в CO2-инкубаторе.
Изобретение поясняется подробным описанием, примерами использования и иллюстрациями, на которых изображено:
Фиг. 1 – Тестовая печать для оценки печатопригодности биочернил (схематическое изображение напечатанного объекта).
Фиг. 2 – Скаффолд через 1 неделю после имплантации, об. ×10.
Фиг. 3 – Формирование хрящевой ткани через 2 недели после имплантации, об. ×10.
Способ осуществляют следующим образом.
Для создания тканеинженерных конструкций используют коллагеновый гидрогель, порошкообразный ВКМ и культуру МСК. Порошкообразный ВКМ представлен в виде сухих лиофилизированных гранул, их диаметр не превышает диаметр сопла биопринтера. При необходимости клеточных факторов роста, их добавление в биочернила осуществляют на этапе смешивания. Печать производят на лабораторную культуральную посуду (например, чашки Петри, луночные планшеты) или на стекло, находящиеся сверху печатного столика. После процесса биопечати скаффолд заливают теплой питательной средой (от 25 до 37°C), например, RPMI-1640, DMEM, F-12.Процесс инкубации проводят при 37°C в CO2-инкубаторе. Замену среды в процессе инкубации производят один раз в сутки.
Для оценки печатопригодности биочернил на основе 4% коллагена и порошка дВКМ была проведена печать в тестовом режиме (Фиг.1), после которой появляется возможность оценки толщины линии (3 слоев филамента) в 12 местах и площади формируемых ниш в 8 местах (указывает на продолжающийся процесс полимеризации). Оба параметра оценивали в динамике: сразу после печати и через 24 часовой инкубации в буферном растворе PBS. Данные по биочернилам и гидрогелю на основе коллагена (без дВКМ) представлены в табл.1.
Таблица 1
Результаты тестовой печати биочернилами на основе 4% коллагена с и без гранул дВКМ
Коллаген Коллаген + дВКМ
X±S x [доверительный интервал]
После печати После инкубации После печати После инкубации
Ниши, мм2 1,516±0,125
[1,427÷1,605]
1,411±0,103
[1,338÷1,485]
1,286±0,126
[1,195÷1,376]
1,097±0,094
[1,030÷1,164]
Линии, мм 0,886±0,017
[0,874÷0,898]
0,901±0,027
[0,882÷0,920]
0,920±0,036
[0,894÷0,946]
0,957±0,027
[0,938÷0,976]
Пример создания тканеинженерной конструкции in vivo для создания полноценной ткани de novo.
ВКМ получали из реберных хрящей крыс линии Wistar, самок, возрастом от 1 до 1,5 месяцев, которые предварительно обрабатывали, децеллюляризировали и лиофилизировали. Лиофилизированный хрящ размалывали пестиком в ступке. Полученный порошок просеивали через сито из нержавеющей стали с диаметром пор 280 мкм и до использования хранили в герметичной упаковке при +4°С. Для приготовления биочернил с концентрацией коллагена 4% использовали стерильный ателоколлаген свиньи I типа – 80 мг/мл, который смешивали с МСК – 5×106 в мл, буферным раствором трис-HCl – 250 мкл на мл, порошком дВКМ – 25 мг/мл. После приготовления бичернил осуществляли биопечать скаффолда. Скаффолд залили теплой (37°C) питательной средой DMEM. Далеев CO2-инкубаторе провели процесс инкубации при 37°C.
Скаффолды были имплантированы беспородным белым крысам-самцам. Через 1 и 2 недели животных подвергли эвтаназии и отбирали материал для гистологического исследования. Через одну неделю после имплантации вокруг скаффолдов была сформирована соединительнотканная капсула, которая прорастала в коллаген, разделяя его на отдельные фрагменты, клетки располагались неравномерно, в отдельных участках скаффолдов сформировалась хрящевая ткань (Фиг. 2). Между пучками коллагена волокон также визуализировались клетки соединительной ткани. Через две недели после имплантации у животных скаффолды замещались вновь образованной хрящевой тканью (Фиг.3).
Предложенный способ позволяет создавать тканеинженерные конструкции, воссоздающие клеточное строение и функцию заменяемой хрящевой ткани.

Claims (1)

  1. Способ создания тканеинженерных конструкций методом биопечати биочернилами для регенерации хрящевой ткани в условиях организма, включающий приготовление биочернил, которые получают непосредственно перед процессом 3D-биопечати, и далее используют для создания тканеинженерной конструкции, отличающийся тем, что биочернила включают в себя следующие компоненты: коллаген, мезенхимальные стволовые клетки (МСК) и порошок децеллюляризованного внеклеточного матрикса (дВКМ), причем дВКМ получали из реберных хрящей самок крыс линии Wistar, которые подвергали децеллюляризации и лиофилизации, полученный порошок просеивают через сито с диаметром пор 280 мкм и до использования хранят при +4°С, при приготовлении биочернил с концентрацией коллагена 4% используют стерильный ателоколлаген свиньи I типа – 80 мг/мл, который смешивают с МСК – 5×106 в мл, с буферным раствором – 250 мкл на мл и порошком дВКМ – 25 мг/мл, далее скаффолд печатают и заливают теплой питательной средой t 37°C, после чего проводят процесс инкубации при 37°C в CO2-инкубаторе.
RU2021126356A 2021-09-07 2021-09-07 Способ создания тканеинженерных конструкций методом биопечати биочернилами для регенерации хрящевой ткани в условиях организма RU2770558C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2021126356A RU2770558C2 (ru) 2021-09-07 2021-09-07 Способ создания тканеинженерных конструкций методом биопечати биочернилами для регенерации хрящевой ткани в условиях организма

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2021126356A RU2770558C2 (ru) 2021-09-07 2021-09-07 Способ создания тканеинженерных конструкций методом биопечати биочернилами для регенерации хрящевой ткани в условиях организма

Publications (3)

Publication Number Publication Date
RU2021126356A RU2021126356A (ru) 2021-10-27
RU2021126356A3 RU2021126356A3 (ru) 2022-02-22
RU2770558C2 true RU2770558C2 (ru) 2022-04-18

Family

ID=78289450

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2021126356A RU2770558C2 (ru) 2021-09-07 2021-09-07 Способ создания тканеинженерных конструкций методом биопечати биочернилами для регенерации хрящевой ткани в условиях организма

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2770558C2 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2845514C1 (ru) * 2025-04-28 2025-08-21 Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский технологический университет "МИСиС" Рабочий орган роботизированной медицинской системы и роботизированная медицинская система для 3D-биопечати

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114940971B (zh) * 2022-06-24 2024-03-15 中山大学 一种基于法拉第波的高活性软骨组织的构建方法

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2016036275A1 (ru) * 2014-09-05 2016-03-10 Частное Учреждение Лаборатория Биотехнологических Исследований "Зд Биопринтинг Солюшенс" Устройство и способы печати биологических тканей и органов
EP3771547A1 (de) * 2019-08-02 2021-02-03 Technische Universität Berlin Verfahren zum 3d druck von vaskularisierten geweben und organen

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2016036275A1 (ru) * 2014-09-05 2016-03-10 Частное Учреждение Лаборатория Биотехнологических Исследований "Зд Биопринтинг Солюшенс" Устройство и способы печати биологических тканей и органов
EP3771547A1 (de) * 2019-08-02 2021-02-03 Technische Universität Berlin Verfahren zum 3d druck von vaskularisierten geweben und organen

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
КАЛЮЖНАЯ Л.И. и др., "Анализ мирового опыта использования биоматериалов пуповины в тканевой инженерии и 3D-биопечати" Медицина и организация здравоохранения, vol. 4, no. 1, 2019, pp. 40-55. *
КРАСНОВ М.С. "Биорегуляторы регенерации - работают в сверхмалых дозах" Наука из первых рук, no. 6 (60), 2014, pp. 16-23. *
ЦЕЛУЙКО С.С. и др., "3D биопечать на службе дыхательной системы (обзор литературы)" Бюллетень физиологии и патологии дыхания, no. 61, 2016, pp. 128-134. *
ЦЕЛУЙКО С.С. и др., "3D биопечать на службе дыхательной системы (обзор литературы)" Бюллетень физиологии и патологии дыхания, no. 61, 2016, pp. 128-134. КАЛЮЖНАЯ Л.И. и др., "Анализ мирового опыта использования биоматериалов пуповины в тканевой инженерии и 3D-биопечати" Медицина и организация здравоохранения, vol. 4, no. 1, 2019, pp. 40-55. КРАСНОВ М.С. "Биорегуляторы регенерации - работают в сверхмалых дозах" Наука из первых рук, no. 6 (60), 2014, pp. 16-23. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2850692C1 (ru) * 2025-03-31 2025-11-12 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ заполнения полимерных 3D-конструкций на основе коллагена колониями дермальных аутофибробластов
RU2845514C1 (ru) * 2025-04-28 2025-08-21 Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский технологический университет "МИСиС" Рабочий орган роботизированной медицинской системы и роботизированная медицинская система для 3D-биопечати
RU2857359C1 (ru) * 2025-06-26 2026-03-02 федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет) Иммуномодулирующий гидрогель-основа биочернил для направленной регенерации пародонтальных тканей в стоматологии

Also Published As

Publication number Publication date
RU2021126356A3 (ru) 2022-02-22
RU2021126356A (ru) 2021-10-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US11129921B2 (en) Concentrated aqueous silk fibroin solution and use thereof
US20230069580A1 (en) Chemically cross-linked hydrogel and its microspheres, preparation method and application
Lee et al. Mechanically-reinforced and highly adhesive decellularized tissue-derived hydrogel for efficient tissue repair
CN108310467B (zh) 一种组装型细胞衍生细胞外基质膜复合骨修复材料及其制备方法和应用
US11998658B2 (en) Injectable porous hydrogels
US9993525B2 (en) Biomaterial of chymotryptically isolated fraction of fibroin in a hydrogel
AU2017219075B2 (en) Muscle tissue regeneration using muscle fiber fragments
Dong et al. Demineralized and decellularized bone extracellular matrix-incorporated electrospun nanofibrous scaffold for bone regeneration
CN101020082B (zh) 一种骨修复材料及其制备方法和用途
Pan et al. Fabrication of modified dextran–gelatin in situ forming hydrogel and application in cartilage tissue engineering
US20090162415A1 (en) Gel Scaffolds for Tissue Engineering
US20100233267A1 (en) Composite hydrogel
Wang et al. A sodium alginate/carboxymethyl chitosan dual-crosslinked injectable hydrogel scaffold with tunable softness/hardness for bone regeneration
Hu et al. Construction of 3D-Bioprinted cartilage-mimicking substitute based on photo-crosslinkable Wharton's jelly bioinks for full-thickness articular cartilage defect repair
EP4338764A2 (en) Tissue scaffold
Teng et al. Extracellular matrix powder from cultured cartilage-like tissue as cell carrier for cartilage repair
Shi et al. Organic-inorganic nHA-Gelatin/Alginate high strength macroporous cryogel promotes bone regeneration
Zhu et al. A pH-neutral bioactive glass empowered gelatin–chitosan–sodium phytate composite scaffold for skull defect repair
Nguyen et al. Structurally and functionally optimized silk fibroin-alginate-based biomimetic scaffolds reinforced with nanobioceramics for bone tissue engineering applications
Wang et al. Chitosan/Gelatin/Carrageenan as a composite scaffolding material for cartilage tissue engineering
KR20220162115A (ko) 근육 섬유 단편을 사용하는 회전근개 요법
Fan et al. Ectopic cartilage formation induced by mesenchymal stem cells on porous gelatin-chondroitin-hyaluronate scaffold containing microspheres loaded with TGF-β1
US20240399024A1 (en) Microparticle tissue scaffold compositions, apparatuses, methods of preparation, and uses thereof
Li et al. 3D printed hydroxyapatite/silk fibroin/polycaprolactone artificial bone scaffold and bone tissue engineering materials constructed with double-transfected bone morphogenetic protein-2 and vascular endothelial growth factor mesenchymal stem cells to repair rabbit radial bone defects
Chen et al. Chondroitin Sulphate and Gas Foaming Concurrently Improve Articular Cartilage Regeneration in Electrospun Poly (L-lactide-co-ε-caprolactone)/Silk Fibroin Based Scaffolds