RU2762182C1 - Gausemycins a and b - glycolipopeptide antibacterial antibiotics and method for production thereof - Google Patents

Gausemycins a and b - glycolipopeptide antibacterial antibiotics and method for production thereof Download PDF

Info

Publication number
RU2762182C1
RU2762182C1 RU2020140343A RU2020140343A RU2762182C1 RU 2762182 C1 RU2762182 C1 RU 2762182C1 RU 2020140343 A RU2020140343 A RU 2020140343A RU 2020140343 A RU2020140343 A RU 2020140343A RU 2762182 C1 RU2762182 C1 RU 2762182C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
hausemycins
extract
sorbent
concentrate
peptide antibiotics
Prior art date
Application number
RU2020140343A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Татьяна Валерьевна Кравченко
Анна Александровна Баранова
Вера Александровна Алферова
Антон Павлович Тюрин
Владимир Аркадьевич Коршун
Гульнара Хусаиновна Кудрякова
Игорь Адамович Прохоренко
Наталия Эдуардовна Грамматикова
Ольда Анастасьевна Лапчинская
Елена Георгиевна Гладких
Мария Юльевна Лапчинская
Валерия Владимировна Погожева
Валентина Андреевна Филичева
Лидия Александровна Харитонова
Галина Ивановна Орлова
Захар Олегович Шенкарев
Александр Сергеевич Парамонов
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт по изысканию новых антибиотиков имени Г.Ф. Гаузе"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт по изысканию новых антибиотиков имени Г.Ф. Гаузе" filed Critical Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт по изысканию новых антибиотиков имени Г.Ф. Гаузе"
Priority to RU2020140343A priority Critical patent/RU2762182C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2762182C1 publication Critical patent/RU2762182C1/en

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/16Extraction; Separation; Purification by chromatography
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/30Extraction; Separation; Purification by precipitation
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K7/00Peptides having 5 to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P1/00Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes
    • C12P1/06Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes by using actinomycetales

Abstract

FIELD: chemistry.
SUBSTANCE: invention relates to a compound, namely to gausemycins A and B by the formula:
Figure 00000009
The invention also relates to a method for isolating said gausemycins A and B.
EFFECT: production of new compounds exhibiting antibacterial activity against gram-positive bacteria including methicillin-resistant Staphylococcus aureus, potentially applicable in medicine.
6 cl, 1 dwg, 2 tbl, 11 ex

Description

Область техники, к которой относится изобретениеThe technical field to which the invention relates

Изобретение относится к области химической технологии, химии природных соединений и медицины, а именно к многостадийному способу получения биологически активных соединений, проявляющих антибактериальную активность и применимых в качестве лекарственного препарата в медицинской практике.The invention relates to the field of chemical technology, chemistry of natural compounds and medicine, namely to a multistage method for producing biologically active compounds exhibiting antibacterial activity and applicable as a drug in medical practice.

Предшествующий уровень техникиPrior art

В последние годы значительно снижается эффективность существующих антибиотиков при лечении распространенных инфекций. В связи с этим в 2017 году всемирная организация здравоохранения сформировала список смертельно-опасных бактерий, для которых срочно требуется новая терапия [Tacconelli Е, Carrara Е, Savoldi A, et al., Discovery, research, and development of new antibiotics: the WHO priority list of antibiotic-resistant bacteria and tuberculosis. The Lancet Infectious Diseases. 2018;18(3):318-327]. К этому списку относится такой патоген, как золотистый стафилококк (Staphylococcus aureus), который является одним из самых распространенных и опасных болезнетворных микроорганизмов в человеческой популяции [Mulani MS, Kamble ЕЕ, Kumkar SN, Tawre MS, Pardesi KR. Emerging Strategies to Combat ESKAPE Pathogens in the Era of Antimicrobial Resistance: A Review. Frontiers in Microbiology. 2019; 10:539]. Природные антибиотики пептидной природы обладают существенным потенциалом применения в клинической практике для борьбы с резистентными патогенными микроорганизмами, яркими примерами коммерчески успешных препаратов являются гликопептидные антибиотики и их производные [Blaskovich MAT, Hansford KA, Butler MS, Jia Z, Mark AE, Cooper MA. Developments in Glycopeptide Antibiotics. ACS Infect Dis. 2018;4(5):715-735] и липопептидный антибиотик даптомицин [Raja A, LaBonte J, Lebbos J, Kirkpatrick P. Daptomycin. Nature Reviews Drug Discovery. 2003;2(12):943-944].In recent years, the effectiveness of existing antibiotics in the treatment of common infections has been significantly reduced. In this regard, in 2017, the world health organization compiled a list of deadly bacteria for which new therapy is urgently required [Tacconelli E, Carrara E, Savoldi A, et al., Discovery, research, and development of new antibiotics: the WHO priority list of antibiotic-resistant bacteria and tuberculosis. The Lancet Infectious Diseases. 2018; 18 (3): 318-327]. This list includes such a pathogen as Staphylococcus aureus (Staphylococcus aureus), which is one of the most common and dangerous pathogens in the human population [Mulani MS, Kamble EE, Kumkar SN, Tawre MS, Pardesi KR. Emerging Strategies to Combat ESKAPE Pathogens in the Era of Antimicrobial Resistance: A Review. Frontiers in Microbiology. 2019; 10: 539]. Natural antibiotics of a peptide nature have significant potential for use in clinical practice to combat resistant pathogenic microorganisms, striking examples of commercially successful drugs are glycopeptide antibiotics and their derivatives [Blaskovich MAT, Hansford KA, Butler MS, Jia Z, Mark AE, Cooper MA. Developments in Glycopeptide Antibiotics. ACS Infect Dis. 2018; 4 (5): 715-735] and the lipopeptide antibiotic daptomycin [Raja A, LaBonte J, Lebbos J, Kirkpatrick P. Daptomycin. Nature Reviews Drug Discovery. 2003; 2 (12): 943-944].

В НИИ по изысканию новых антибиотиков им. Г.Ф. Гаузе обнаружен штамм, продуцирующий антибиотический комплекс ИНА-5812, в котором более 20 химически родственных веществ [Лапчинская O.A., Катруха Г.С., Гладких Е.Г и др. Исследование антибиотического комплекса ИНА-5812. Биоорганическая химия. 2016;42(6):732-740]. Он активен в отношении грамположительных бактерий, в том числе метициллинрезистентного золотистого стафилококка. Был описан штамм продуцент Streptomyces roseoflavus ИНА-Ас-5812, способ получения сырца антибиотика из культуральной жидкости штамма и компонента с молярной массой 1917,8 Да [Патент RU 2572341]. Продуктивность штамма продуцента антибиотического комплекса была существенно повышена и получен новый штамм продуцент Streptomyces tendae ВКПМ Ас-1980, накапливающий большее количество антибиотического комплекса в культуральной жидкости при культивировании [Патент RU 2710733].At the Research Institute for the Research of New Antibiotics. G.F. Gauze found a strain producing the antibiotic complex INA-5812, in which more than 20 chemically related substances [Lapchinskaya O.A., Katrukha GS, Gladkikh EG and others. Study of the antibiotic complex INA-5812. Bioorganic chemistry. 2016; 42 (6): 732-740]. It is active against gram-positive bacteria, including methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Was described the producer strain of Streptomyces roseoflavus INA-Ac-5812, a method of obtaining a crude antibiotic from the culture fluid of the strain and a component with a molar mass of 1917.8 Da [Patent RU 2572341]. The productivity of the antibiotic complex producer strain was significantly increased and a new producer strain of Streptomyces tendae VKPM Ac-1980 was obtained, which accumulates a greater amount of the antibiotic complex in the culture liquid during cultivation [Patent RU 2710733].

Структура, способ определения структуры, способ выделения, брутто-формула, полный аминокислотный состав, биологическая активность заявляемых соединений в патентной и научно-технической литературе не описаны.The structure, the method for determining the structure, the method of isolation, the gross formula, the complete amino acid composition, the biological activity of the claimed compounds are not described in the patent and scientific and technical literature.

Сущность изобретенияThe essence of the invention

Сущность изобретения заключается в разработке технологии выделения индивидуальных компонентов антибиотического комплекса гауземицинов А и В, установлении их структуры, физико-химических свойств и антибактериальной активности.The essence of the invention lies in the development of technology for the isolation of individual components of the antibiotic complex of gauzemycins A and B, the establishment of their structure, physicochemical properties and antibacterial activity.

Способ выделения биологически активных соединений в индивидуальном виде является многостадийным. Можно условно разделить его на три основных этапа.The method for isolating biologically active compounds in an individual form is a multistage method. It can be roughly divided into three main stages.

1. Экстракция культуры штамма-продуцента.1. Extraction of the culture of the producer strain.

2. Получение концентрата антибиотика из экстракта с помощью комбинации методов (переосаждение, селективная сорбция/десорбция, хроматография).2. Obtaining an antibiotic concentrate from an extract using a combination of methods (reprecipitation, selective sorption / desorption, chromatography).

3. Выделение индивидуальных соединений из концентрата антибиотика с помощью препаративной хроматографии гидрофильных взаимодействий.3. Isolation of individual compounds from antibiotic concentrate using preparative chromatography of hydrophilic interactions.

Экстракция культуры штамма-продуцента заключается в отделении мицелия с помощью центрифугирования или фильтрования; последующей жидкостной или твердофазной экстракцией водной фазы; жидкостной экстракцией мицелия; обезжиривания полученных экстрактов.Extraction of the culture of the producer strain consists in the separation of the mycelium by centrifugation or filtration; subsequent liquid or solid phase extraction of the aqueous phase; liquid extraction of mycelium; defatting the obtained extracts.

Получение концентрата антибиотика из экстракта может осуществляться двумя способами.Obtaining an antibiotic concentrate from an extract can be carried out in two ways.

1. Последовательное хроматографическое обогащение экстракта при низком давлении на гель-сорбентах типа Sephadex G15, обращеннофазовом сорбенте (октадецилсиликагель) в нейтральных условиях и завершающем этапе осаждения в кислой среде.1. Sequential chromatographic enrichment of the extract at low pressure on gel sorbents of the Sephadex G15 type, reverse phase sorbent (octadecyl silica gel) under neutral conditions and the final stage of precipitation in an acidic medium.

2. Сорбции полученного экстракта твердофазным сорбентом LPS500-H, селективной десорбции, хроматографическом разделении полученного концентрата путем обращеннофазовой хроматографии.2. Sorption of the obtained extract with a solid-phase sorbent LPS500-H, selective desorption, chromatographic separation of the resulting concentrate by reversed phase chromatography.

Последующее выделение компонентов в индивидуальном виде осуществляется путем хроматографии гидрофильных взаимодействий в условиях ВЭЖХ. Полученные компоненты характеризуют физико-химическими и биологическими методами.The subsequent isolation of individual components is carried out by chromatography of hydrophilic interactions under HPLC conditions. The resulting components are characterized by physicochemical and biological methods.

По сравнению с раннее разработанными изобретениями [Патент RU 2572341, Патент RU 2710733] описываемый способ позволяет получать несколько индивидуальных компонентов из сложной смеси в количестве и с чистотой, достаточной для проведения физико-химических и биологических исследований.Compared with the earlier developed inventions [Patent RU 2572341, Patent RU 2710733], the described method makes it possible to obtain several individual components from a complex mixture in an amount and with a purity sufficient for carrying out physicochemical and biological studies.

Осуществление изобретенияImplementation of the invention

Пример 1. Экстракция культуры Streptomyces tendae ВКПМ Ас-1980Example 1. Extraction of a culture of Streptomyces tendae VKPM Ac-1980

Культуральную жидкость (271 мл) центрифугируют 20 мин при 5000g. Водную фазу декантируют, подкисляют HCl до рН 4 и экстрагируют н-бутанолом (2×52 мл). Органические вытяжки объединяют и упаривают досуха. Сухой остаток обезжиривают: заливают 19 мл этилацетата и озвучивают на ультразвуковой бане (40 кГц, 60 Вт, 10 мин при температуре 25°С), затем раствор фильтруют. Раствор отбрасывают, а с экстрактом (1,3 г), оставшимся на фильтре, проводят дальнейшую работу.The culture liquid (271 ml) is centrifuged for 20 min at 5000g. The aqueous phase is decanted, acidified with HCl to pH 4 and extracted with n-butanol (2 × 52 ml). The organic extracts are combined and evaporated to dryness. The dry residue is defatted: 19 ml of ethyl acetate is poured in and sonicated in an ultrasonic bath (40 kHz, 60 W, 10 min at a temperature of 25 ° C), then the solution is filtered. The solution is discarded, and further work is carried out with the extract (1.3 g) remaining on the filter.

Мицелий суспендируют в 50 мл этанола, озвучивают в ультразвуковой бане (40 кГц, 60 Вт, 20 мин при температуре 25°С) и фильтруют. Фильтрат упаривают в вакууме. Сухой остаток обезжиривают описанным выше способом. Масса экстракта мицелия 0,8 г. Экстракт мицелия наравне с экстрактом водной фазы может быть использован для получения гауземицинов.The mycelium is suspended in 50 ml of ethanol, sonicated in an ultrasonic bath (40 kHz, 60 W, 20 min at 25 ° C) and filtered. The filtrate is concentrated in vacuo. The dry residue is degreased as described above. The mass of the mycelium extract is 0.8 g. The mycelium extract, along with the extract of the aqueous phase, can be used to obtain hausemycins.

Пример 2. Экстракция культуры Streptomyces roseoflavus ИНА-Ас-5812Example 2. Extraction of a culture of Streptomyces roseoflavus INA-Ac-5812

Культуральную жидкость (7,0 л) отфильтровывают от мицелия. К водной фазе добавляют сорбент XAD-4 (из расчета 100 г воздушно-сухого сорбента на 1 л КЖ). Перемешивают 4-12 ч при комнатной температуре до насыщения сорбента. Отфильтровывают сорбент, фильтрат отбрасывают и промывают сорбент одним объемом 1%-ной уксусной кислоты. Элюируют активные вещества 3-кратным объемом метанола.The culture liquid (7.0 l) is filtered from the mycelium. The XAD-4 sorbent is added to the aqueous phase (at the rate of 100 g of air-dry sorbent per 1 L of CL). Stirred for 4-12 hours at room temperature until the sorbent is saturated. The sorbent is filtered off, the filtrate is discarded and the sorbent is washed with one volume of 1% acetic acid. The active substances are eluted with 3-fold volume of methanol.

Мицелий суспендируют в 500 мл метанола, озвучивают в ультразвуковой бане (40 кГц, 60 Вт, 20 мин при температуре 25°С) и фильтруют. Метанольные фильтраты объединяют и упаривают. Сухой остаток обезжиривают этилацетатом (2×100 мл) описанным в примере 1 способом.The mycelium is suspended in 500 ml of methanol, sonicated in an ultrasonic bath (40 kHz, 60 W, 20 min at 25 ° C) and filtered. The methanol filtrates are combined and evaporated. The dry residue is defatted with ethyl acetate (2 × 100 ml) by the method described in example 1.

С полученным экстрактом (17,3 г) проводят дальнейшую работу.Further work is carried out with the obtained extract (17.3 g).

Пример 3. Экстракция культуры Streptomyces tendae ВКПМ Ас-1980Example 3. Extraction of the culture of Streptomyces tendae VKPM Ac-1980

Культуральную жидкость (6,4 л) центрифугируют 15 мин при 5000g. Водную фазу декантируют, подкисляют HCl до рН 4 и экстрагируют изобутанолом (2×900 мл). Органические вытяжки объединяют и упаривают досуха. Сухой остаток обезжиривают этилацетатом (100 мл) описанным в примере 1 способом. Получают 10,7 г экстракта.The culture liquid (6.4 l) is centrifuged for 15 min at 5000g. The aqueous phase is decanted, acidified with HCl to pH 4 and extracted with isobutanol (2 × 900 ml). The organic extracts are combined and evaporated to dryness. The dry residue is defatted with ethyl acetate (100 ml) as described in example 1 by the method. 10.7 g of extract are obtained.

Мицелий суспендируют в 500 мл этанола, озвучивают в ультразвуковой бане (40 кГц, 60 Вт, 20 мин при температуре 25°С) и фильтруют. Дополнительно промывают остаток на фильтре 75 мл этанола. Фильтрат упаривают досуха, остаток обезжиривают этилацетатом (2×100 мл) описанным в примере 1 способом. Получают 12,3 г экстракта.The mycelium is suspended in 500 ml of ethanol, sonicated in an ultrasonic bath (40 kHz, 60 W, 20 min at 25 ° C) and filtered. The filter cake is additionally washed with 75 ml of ethanol. The filtrate was evaporated to dryness, the residue was defatted with ethyl acetate (2 × 100 ml) as described in Example 1. 12.3 g of extract are obtained.

Пример 4. Экстракция культуры Streptomyces roseoflavus ИНА-Ас-5812Example 4. Extraction of the culture of Streptomyces roseoflavus INA-Ac-5812

Культуральную жидкость (5,0 л) отфильтровывают от мицелия. К водной фазе добавляют сорбент Diaion HP-20 (из расчета 100 г воздушно-сухого сорбента на 1 л КЖ). Перемешивают 4-12 ч при комнатной температуре до насыщения сорбента. Отфильтровывают сорбент, фильтрат отбрасывают и промывают сорбент одним объемом 1%-ной уксусной кислоты. Элюируют активные вещества 3-кратным объемом изопропанола.The culture liquid (5.0 L) is filtered from the mycelium. Diaion HP-20 sorbent is added to the aqueous phase (at the rate of 100 g of air-dry sorbent per 1 L of CL). Stirred for 4-12 hours at room temperature until the sorbent is saturated. The sorbent is filtered off, the filtrate is discarded and the sorbent is washed with one volume of 1% acetic acid. The active substances are eluted with 3-fold volume of isopropanol.

Мицелий суспендируют в 450 мл изопропанола, озвучивают в ультразвуковой бане (40 кГц, 60 Вт, 20 мин при температуре 25°С) и фильтруют. Изопропанольные вытяжки объединяют и упаривают. Сухой остаток обезжиривают этилацетатом (3×100 мл) описанным в примере 1 способом. Получают 16.9 г экстракта.The mycelium is suspended in 450 ml of isopropanol, sonicated in an ultrasonic bath (40 kHz, 60 W, 20 min at 25 ° C) and filtered. Isopropanol extracts are combined and evaporated. The dry residue is defatted with ethyl acetate (3 × 100 ml) by the method described in example 1. 16.9 g of extract are obtained.

Пример 5. Получение концентрата антибиотика из экстрактаExample 5. Obtaining an antibiotic concentrate from an extract

Экстракт (1,3 г) очищают от низкомолекулярных примесей методом гель-фильтрации на колонке (22×70 мм) с сорбентом Sephadex G15 с использованием изократического элюирования (20% метанола в воде, скорость потока 7 мл/мин, детекция по поглощению при 210, 260, 360, 410 нм). Собирают фракцию 1 (0,44 г) с временем удерживания 0-10 мин.The extract (1.3 g) is purified from low-molecular impurities by gel filtration on a column (22 × 70 mm) with a Sephadex G15 sorbent using isocratic elution (20% methanol in water, flow rate 7 ml / min, absorption detection at 210 , 260, 360, 410 nm). Fraction 1 (0.44 g) was collected with a retention time of 0-10 minutes.

Фракцию 1 растворяют в 4 мл 50%-ного ацетонитрила и хроматографируют на колонке (25×130 мм) с обращеннофазовым сорбентом (октадецилсиликагель), с использованием ступенчатого элюирования (скорость потока 14 мл/мин, ступени по 5 минут: 20%, 30%, 40%, 50%, 60%, 80% ацетонитрил в воде; детекция по поглощению при 210, 260, 360, 410 нм). Емкость колонки - 0,2-0,3 г смеси. Фракция с временем удерживания 16.0-17.0 мин по данным хроматомасс-спектрометрии содержит в основном гауземицины А и В, и примеси. В результате разделения 0,440 г смеси получают 0,062 г данной фракции.Fraction 1 is dissolved in 4 ml of 50% acetonitrile and chromatographed on a column (25 × 130 mm) with a reversed phase sorbent (octadecyl silica gel) using step elution (flow rate 14 ml / min, 5 minute steps: 20%, 30% , 40%, 50%, 60%, 80% acetonitrile in water; absorption detection at 210, 260, 360, 410 nm). Column capacity - 0.2-0.3 g of the mixture. The fraction with a retention time of 16.0-17.0 min, according to chromatomass-spectrometry data, contains mainly hausemycins A and B, and impurities. Separation of 0.440 g of the mixture yields 0.062 g of this fraction.

Образец полученной смеси гауземицинов (0,12 г) растворяют в 2,4 мл водного аммиачного раствора с рН 10. Полученный раствор подкисляют водным раствором соляной кислоты до рН 5 и наблюдают образование темно-коричневого осадка. Раствор фильтруют, полученный осадок растворяют в 1,1 мл водного аммиачного раствора с рН 10 и подкисляют водным раствором соляной кислоты до рН 5, вновь наблюдают образование темно-коричневого осадка. В результате получают объединенный раствор после двух осаждений и осадок с массой 0,053 г. Раствор после двух осаждений (3 мл) экстрагируют бутанолом (3×3,85 мл). Органические вытяжки объединяют, промывают подкисленной водой с рН 5 и упаривают досуха. В результате получают порошок (0,036 г) с желтоватым оттенком. Данный концентрат антибиотика содержит в основном гауземицины А и В, его используют для выделения индивидуальных соединений.A sample of the resulting mixture of hausemycins (0.12 g) is dissolved in 2.4 ml of an aqueous ammonia solution with pH 10. The resulting solution is acidified with an aqueous solution of hydrochloric acid to pH 5 and the formation of a dark brown precipitate is observed. The solution is filtered, the resulting precipitate is dissolved in 1.1 ml of an aqueous ammonia solution with pH 10 and acidified with an aqueous solution of hydrochloric acid to pH 5; the formation of a dark brown precipitate is again observed. As a result, a combined solution is obtained after two precipitations and a precipitate with a mass of 0.053 g. The solution after two precipitations (3 ml) is extracted with butanol (3 × 3.85 ml). The organic extracts are combined, washed with acidified water at pH 5 and evaporated to dryness. The result is a powder (0.036 g) with a yellowish tinge. This antibiotic concentrate mainly contains gauzemycins A and B, and is used to isolate individual compounds.

Пример 6. Получение концентрата антибиотика из экстрактаExample 6. Obtaining an antibiotic concentrate from an extract

Экстракт (1 г) растворяют в 0,25 л воды с добавкой 10 мл концентрированного водного аммиака. Полученный раствор пропускают через колонку с 5 мл воздушно-сухого сорбента LPS500-H. Собирают фракцию «0», содержащую примеси, не связавшиеся с сорбентом. После чего проводят хроматографию с использованием ступенчатого элюирования с возрастающей концентрацией ацетонитрила в воде (ступени 0%, 10%, 20%, 30%, 40%, 50%, 100% по 50 мл). Получают семь фракций. Фракции 20-50% содержат в основном гауземицины А, В. В результате разделения 1 г экстракта получают 0,430 г фракции «0», 0,051 г фракции «0%», 0,044 г фракции «10%», 0,061 г фракции «20%», 0,085 г фракции «30%», 0,043 г фракции «40%», 0,072 г фракции «50%», 0,054 г фракции «100%».The extract (1 g) is dissolved in 0.25 l of water with the addition of 10 ml of concentrated aqueous ammonia. The resulting solution is passed through a column with 5 ml of LPS500-H air-dry sorbent. Collect fraction "0" containing impurities that have not bound to the sorbent. Then, chromatography is carried out using stepwise elution with an increasing concentration of acetonitrile in water (steps of 0%, 10%, 20%, 30%, 40%, 50%, 100%, 50 ml each). Seven fractions are obtained. Fractions 20-50% contain mainly hausemycins A, B. As a result of the separation of 1 g of the extract, 0.430 g of fraction "0", 0.051 g of fraction "0%", 0.044 g of fraction "10%", 0.061 g of fraction "20%" , 0.085 g of the "30%" fraction, 0.043 g of the "40%" fraction, 0.072 g of the "50%" fraction, 0.054 g of the "100%" fraction.

Фракцию «20%» (61 мг) растворяют в 2 мл 50%-ного ацетонитрила и наносят на препаративную колонку ZORBAX SB-C18 (250×21,2 мм, октадецилсиликагель, 7 мкм). Разделение осуществляется путем изократического элюирования раствором В (0,1% трифторуксусная кислота в ацетонитриле, элюент А - 0,1% трифторуксусная кислота в воде) 33% за 30 мин, затем элюированием 50% В за 10 мин, при скорости потока 20 мл/мин. Детектируют по поглощению в УФ при 210, 260, 360, 410 нм или с помощью диодно-матричного детектора. Фракция с временем удерживания 9-13 мин по данным хроматомасс-спектрометрии содержит, в основном, гауземицины А и В. Ее высушивают в вакууме. В результате получают 25 мг концентрата антибиотика в виде белого порошка.The fraction "20%" (61 mg) is dissolved in 2 ml of 50% acetonitrile and applied to a preparative ZORBAX SB-C18 column (250 × 21.2 mm, octadecyl silica gel, 7 μm). Separation is carried out by isocratic elution with solution B (0.1% trifluoroacetic acid in acetonitrile, eluent A - 0.1% trifluoroacetic acid in water) 33% for 30 min, then elution with 50% B for 10 min, at a flow rate of 20 ml / min. Detected by UV absorption at 210, 260, 360, 410 nm or using a diode array detector. The fraction with a retention time of 9-13 min, according to chromatomass spectrometry data, contains mainly hausemycins A and B. It is dried in a vacuum. The result is 25 mg of the antibiotic concentrate in the form of a white powder.

Пример 7. Препаративная жидкостная хроматография гидрофильных взаимодействийExample 7. Preparative liquid chromatography of hydrophilic interactions

Концентрат антибиотика (2 мг в 500 мкл 50%-ного ацетонитрила) хроматографируют на колонке VDSpher PUR 100 SIL (250×10 мм, 5 мкм) с использованием в качестве элюента смеси растворителей 0,1% трифторуксусной кислоты, 4% воды, 24% пропанола-1 и 71,9% ацетонитрила по объему. Скорость потока 6 мл/мин, детекция по поглощению в УФ при 205 нм. Фракция с временем удерживания 8.0-10.0 мин содержит гауземицин А, фракция с временем удерживания 10.0-13.0 мин содержит гауземицин В. Органические растворители удаляют из полученных фракций при пониженном давлении, получающийся водный раствор замораживают и лиофилизуют. Содержание основных компонентов во фракциях контролируют хроматографически и масс-спектрометрически, стадию хроматографии гидрофильных взаимодействий повторяют до полного удаления примесей.The antibiotic concentrate (2 mg in 500 μL of 50% acetonitrile) is chromatographed on a VDSpher PUR 100 SIL column (250 × 10 mm, 5 μm) using a solvent mixture of 0.1% trifluoroacetic acid, 4% water, 24% as eluent propanol-1 and 71.9% acetonitrile by volume. Flow rate 6 ml / min, detection by UV absorbance at 205 nm. The fraction with a retention time of 8.0-10.0 min contains gausemycin A, the fraction with a retention time of 10.0-13.0 min contains gausemycin B. Organic solvents are removed from the obtained fractions under reduced pressure, the resulting aqueous solution is frozen and lyophilized. The content of the main components in the fractions is controlled chromatographically and mass spectrometrically, the stage of hydrophilic interaction chromatography is repeated until the complete removal of impurities.

В результате разделения 36 мг концентрата антибиотика (полученного по методу, описанному в примере 3) получают 0,8 мг гауземицина А и 1,1 мг гауземицина В в виде белых порошков.Separation of 36 mg of the antibiotic concentrate (prepared according to the method described in Example 3) gives 0.8 mg of gauzemycin A and 1.1 mg of gauzemycin B in the form of white powders.

В результате разделения 25 мг концентрата антибиотика (полученного по методу, описанному в примере 4) получают 1,9 мг гауземицина А и 5,3 мг гауземицина В в виде белых порошков.Separation of 25 mg of the antibiotic concentrate (prepared according to the method described in Example 4) gives 1.9 mg of gauzemycin A and 5.3 mg of gauzemycin B in the form of white powders.

Пример 8. Аналитическая хроматография для контроля содержания гауземицинов А и ВExample 8. Analytical chromatography to control the content of hausemycins A and B

Для анализа содержания минорных компонентов антибиотического комплекса и низкомолекулярных примесей проводят аналитическую хроматографию. Для этого готовят раствор анализируемой пробы с концентрацией 4 мг/мл в метаноле, наносят на колонку Waters Sunfire (С 18; 5 мкм, 4,6×250 мм) 20 мкл анализируемого раствора и проводят градиентное элюирование (20-80% раствора В за 25 мин, где раствор А - 0,1% трифторуксусной кислоты в воде, раствор В - 0,1% трифторуксусной кислоты в ацетонитриле) со скоростью потока 1 мл/мин. Время удерживания группы соединений, включающий гауземицины А, В и компонент с массой 1930 мг составляет 10,2 мин.To analyze the content of minor components of the antibiotic complex and low molecular weight impurities, analytical chromatography is performed. For this, a solution of the analyzed sample with a concentration of 4 mg / ml in methanol is prepared, 20 μl of the analyzed solution is applied to a Waters Sunfire column (C 18; 5 μm, 4.6 × 250 mm), and a gradient elution is carried out (20-80% solution B for 25 min, where solution A is 0.1% trifluoroacetic acid in water, solution B is 0.1% trifluoroacetic acid in acetonitrile) at a flow rate of 1 ml / min. The retention time of a group of compounds, including gauzemycins A, B and a component with a weight of 1930 mg, is 10.2 minutes.

Хроматографический контроль содержания гауземицинов А, В и компонента с массой 1930 Да проводят в условиях нормальнофазовой аналитической ВЭЖХ. Готовят раствор анализируемой пробы с концентрацией 4 мг/мл в метаноле, наносят на колонку Waters Spherisorb Silica (Силикагель, 5 мкм, 4,6×250 мм) 10 мкл раствора. Проводят градиентное элюирование (5-17% раствора В за 20 мин, где раствор А - 0,1% TFA, 25% PrOH, 74,9% CH3CN, раствор В - 0,1% TFA в HrO, также на протяжении всей хроматографии была добавка) со скоростью потока 1 мл/мин. Время удерживания гауземицина А составляет 13,8 мин, гауземицина В 14,7 мин, компонента с массой 1930 Да - 15,5 мин. Для обеспечения воспроизводимости времени удерживания поддерживают постоянное насыщение нормальнофазовой колонки водой и периодически калибруют время удерживания по стандартным смесям.Chromatographic control of the content of gauzemycins A, B and a component with a mass of 1930 Da is carried out under normal phase analytical HPLC. Prepare a solution of the analyzed sample with a concentration of 4 mg / ml in methanol, applied to a Waters Spherisorb Silica column (Silica gel, 5 μm, 4.6 × 250 mm) 10 μl of the solution. Gradient elution is carried out (5-17% solution B in 20 min, where solution A is 0.1% TFA, 25% PrOH, 74.9% CH 3 CN, solution B is 0.1% TFA in HrO, also during all chromatography was additive) at a flow rate of 1 ml / min. The retention time of gausemicin A is 13.8 min, gausemicin B is 14.7 min, and the component with a mass of 1930 Da is 15.5 min. To ensure reproducibility of the retention time, the normal phase column is constantly saturated with water and the retention times are periodically calibrated against standard mixtures.

Масс-спектрометрический контроль получаемых образов проводят с помощью детектора Agilent 6340 Ion Trap с источником ионизации электрораспылением, соединенного с ВЭЖХ-системой Agilent 1100 HPLC system. Разделение пробы проводилось на колонке YMC-Triart С18 (YMC) (50×2.1 mm, 1.9 μ.м) путем элюирования линейным градиентом (2-98% ацетонитрила в воде с добавкой 0.1% муравьиной кислоты в оба элюента (при проведении анализа в хроматомасс-спектрометрическом режиме). Отслеживают содержание в образцах гауземицинов А и В по общему ионному току двухзарядных ионов с массами 924 Да и 959 Да соответственно, содержание компонента с массой 1930 отслеживают по ионному току двухзарядного иона с массой 967 Да. Содержание сторонних примесей также подтверждают масс-спектрометрически для хроматографически чистых образцов в связи с заметной ассоциацией гауземицинов с низкомолекулярными примесями.Mass spectrometric control of the obtained samples is carried out using an Agilent 6340 Ion Trap detector with an electrospray ionization source connected to an Agilent 1100 HPLC system. Sample separation was carried out on a YMC-Triart С18 (YMC) column (50 × 2.1 mm, 1.9 μ.m) by elution with a linear gradient (2-98% acetonitrile in water with the addition of 0.1% formic acid in both eluents (when analyzing in chromatomass The content of gauzemycins A and B in the samples is monitored by the total ionic current of doubly charged ions with masses of 924 Da and 959 Da, respectively, the content of a component with a mass of 1930 is monitored by the ion current of a doubly charged ion with a mass of 967 Da. -spectrometrically for chromatographically pure samples due to the noticeable association of gauzemycins with low molecular weight impurities.

Пример 9. Определение основных физико-химических и спектральных характеристик гауземицинов А, ВExample 9. Determination of the main physicochemical and spectral characteristics of hausemycins A, B

Полученные образцы гауземицинов А и В представляют собой аморфные твердые вещества.The resulting samples of gauzemycins A and B are amorphous solids.

Растворы веществ обладают оптической активностью. Измеренное удельное вращение: гауземицин А [α]22 D -6.9 (с 0.3, метанол); гауземицин В [α]25 D=-9.7 (с 0.4, метанол).Solutions of substances have optical activity. The measured specific rotation: gausemicin A [α] 22 D -6.9 (c 0.3, methanol); hausemycin B [α] 25 D = -9.7 (c 0.4, methanol).

Гауземицины обладают характерным спектром поглощения в УФ-диапазоне:Gausemycins have a characteristic UV absorption spectrum:

гауземицин А (метанол) λmax, нм (log ε) 203 (4.7), 229 (4.5), 262 (4.4), 363 (3.7);hausemycin A (methanol) λ max , nm (log ε) 203 (4.7), 229 (4.5), 262 (4.4), 363 (3.7);

гауземицин В (метанол) λmax, нм (log ε) 204 (4.7), 229 (4.5), 262 (4.4), 363 (3.7).hausemycin B (methanol) λ max , nm (log ε) 204 (4.7), 229 (4.5), 262 (4.4), 363 (3.7).

При облучении в УФ-диапазоне для обоих веществ наблюдается флуоресценция с максимумом эмиссии при 448 нм (96% этанол, С = 1 мкМ, λвозб 350 нм).When irradiated in the UV range for both substances, fluorescence is observed with an emission maximum at 448 nm (96% ethanol, C = 1 μM, λ exc 350 nm).

Спектры поглощения в ИК-диапазоне имеют характерные максимумы:The absorption spectra in the IR range have characteristic maxima:

гауземицин А (в KBr) νmax, см-1: 3330, 3070, 2960, 2930, 1660, 1540, 1450, 1200, 1180, 1070;hausemycin A (in KBr) ν max , cm -1 : 3330, 3070, 2960, 2930, 1660, 1540, 1450, 1200, 1180, 1070;

гауземицин В (в KBr) νmax, см-1: 3330, 3070, 2960, 2930, 1660, 1540, 1450, 1230, 1200, 1180, 1070.hausemycin B (in KBr) ν max , cm -1 : 3330, 3070, 2960, 2930, 1660, 1540, 1450, 1230, 1200, 1180, 1070.

Пример 10. Установление состава и структуры гауземицинов А, ВExample 10. Establishment of the composition and structure of hausemycins A, B

Брутто-формулы гауземицинов А и В устанавливают на основании масс-спектров высокого разрешения. В масс-спектре высокого разрешения гауземицина А наблюдается ион с m/z 1845.788, что согласуется с брутто-формулой C84H116ClN17O28 (расчетное значение m/z=1845.786 для [М+Н]+), масс-спектр высокого разрешения гауземицина В содержит двухзарядный ион с m/z 959.4187, что согласуется с брутто-формулой C87H121ClN18O29 (расчетное значение m/z=959.4191 для [М+2Н]2+).The gross formulas of gauzemycins A and B are established on the basis of high-resolution mass spectra. The high-resolution mass spectrum of hausemycin A contains an ion with m / z 1845.788, which is consistent with the gross formula C 84 H 116 ClN 17 O 28 (calculated value m / z = 1845.786 for [M + H] + ), mass spectrum high-resolution gauzemycin B contains a doubly charged ion with m / z 959.4187, which is consistent with the gross formula C 87 H 121 ClN 18 O 29 (calculated value m / z = 959.4191 for [M + 2H] 2+ ).

Структура гауземицинов А и В, представленная на Рисунке 1, была установлена на основании данных ЯМР (Таблица 1). Отнесение сигналов в спектрах ЯМР 1Н, 14N и13С проведено на оснований двумерных спектров, включающих как гомоядерные, так и гетероядерные корреляции. Спектры зарегистрированы для растворов индивидуальных веществ в пердейтеродиметилсульфоксиде при повышенной температуре (45°С) для упрощения наблюдаемой при более низких температурах сложной конформационной динамики. При более высоких температурах наблюдается частичная деструкция образца.The structure of hausemycins A and B shown in Figure 1 was established based on NMR data (Table 1). The assignment of signals in the 1 H, 14 N and 13 C NMR spectra was carried out on the basis of two-dimensional spectra, including both homonuclear and heteronuclear correlations. The spectra were recorded for solutions of individual substances in perdeuterodimethyl sulfoxide at an elevated temperature (45 ° C) to simplify the complex conformational dynamics observed at lower temperatures. At higher temperatures, partial destruction of the sample is observed.

Figure 00000001
Figure 00000001

Figure 00000002
Figure 00000002

Figure 00000003
Figure 00000003

Figure 00000004
Figure 00000004

Пример 11. Оценка антибактериальных свойств гауземицинов А, ВExample 11. Evaluation of the antibacterial properties of hausemycins A, B

Предварительные эксперименты показали, что гауземицины обладают заметной антибактериальной активностью в отношении грамположительных бактерий, прежде всего стафилококков. Антибактериальные свойства выделенных гауземицинов А и В оценивали методом серийных микроразведений в жидкой питательной среде согласно клиническим рекомендациям «Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам», версия 2018-03, утверждены 18.10.2017 г. экспертным совещанием профильной комиссии по специальности «Клиническая микробиология и антимикробная резистентность» при МЗ РФ. В качестве контроля использовали стандартные образцы пептидных антибиотиков (даптомицин, ванкомицин). Полученные значения минимальной подавляющей концентрации представлены в табл. 2.Preliminary experiments have shown that hausemycins have a marked antibacterial activity against gram-positive bacteria, primarily staphylococci. The antibacterial properties of the isolated hausemycins A and B were assessed by the method of serial microdilutions in a liquid nutrient medium in accordance with the clinical guidelines "Determination of the sensitivity of microorganisms to antimicrobial drugs", version 2018-03, approved on October 18, 2017 by an expert meeting of the profile commission in the specialty "Clinical microbiology and antimicrobial resistance. "At the Ministry of Health of the Russian Federation. Standard samples of peptide antibiotics (daptomycin, vancomycin) were used as a control. The obtained values of the minimum inhibitory concentration are presented in table. 2.

Figure 00000005
Figure 00000005

Claims (7)

1. Гауземицины А и В, обладающие антибактериальной активностью в отношении грамположительных бактерий, включая метициллинрезистеный золотистый стафилококк, и соответствующие формуле:1. Gausemycins A and B, which have antibacterial activity against gram-positive bacteria, including methicillin-resistant Staphylococcus aureus, and corresponding to the formula:
Figure 00000006
Figure 00000006
2. Способ выделения пептидных антибиотиков гауземицинов А и В из п. 1, заключающийся в выделении экстракта путем экстракции культуральной жидкости штамма-продуцента; получении концентрата антибиотика с помощью комбинации методов: переосаждение, селективная сорбция/десорбция, хроматография, препаративном разделении полученного концентрата путем хроматографии гидрофильных взаимодействий в условиях ВЭЖХ и физико-химической и биологической характеристикой полученных образцов.2. A method of isolating peptide antibiotics hausemycins A and B from claim 1, which consists in isolating the extract by extracting the culture fluid of the producer strain; obtaining an antibiotic concentrate using a combination of methods: reprecipitation, selective sorption / desorption, chromatography, preparative separation of the resulting concentrate by chromatography of hydrophilic interactions under HPLC conditions and physicochemical and biological characteristics of the obtained samples. 3. Способ выделения пептидных антибиотиков гауземицинов А и В из п. 1 в виде экстракта по п. 2, в котором проводят жидкостно-жидкостную экстракцию культуральной жидкости штамма-продуцента органическим растворителем, выбранным из н-бутанола или изобутанола; получение концентрата антибиотика проводят с помощью последовательных хроматографических разделений при низком давлении: гель-фильтрация на сорбенте Sephadex G15, обращеннофазовом сорбенте в нейтральных условиях; и последующем осаждении при подкислении.3. A method of isolating peptide antibiotics hausemycins A and B from p. 1 in the form of an extract according to p. 2, in which a liquid-liquid extraction of the culture liquid of the producer strain with an organic solvent selected from n-butanol or isobutanol is carried out; the antibiotic concentrate is obtained using sequential chromatographic separations at low pressure: gel filtration on Sephadex G15 sorbent, reversed phase sorbent under neutral conditions; and subsequent precipitation upon acidification. 4. Способ выделения пептидных антибиотиков гауземицинов А и В из п. 1 в виде экстракта по п. 2, в котором проводят экстракцию культуральной жидкости твердофазным сорбентом на основе полистирола.4. A method for isolating peptide antibiotics hausemycins A and B from claim 1 in the form of an extract according to claim 2, in which the culture liquid is extracted with a solid-phase sorbent based on polystyrene. 5. Способ выделения пептидных антибиотиков гауземицинов А и В из п. 1 в виде экстракта по п. 2, в котором экстракцию мицелия штамма-продуцента проводят органическим растворителем, выбранным из метанола, этанола, пропанола-2 или их смесями.5. A method for isolating peptide antibiotics hausemycins A and B from claim 1 in the form of an extract according to claim 2, in which the extraction of the mycelium of the producer strain is carried out with an organic solvent selected from methanol, ethanol, propanol-2 or mixtures thereof. 6. Способ выделения пептидных антибиотиков гауземицинов А и В из п. 1 в виде концентрата по п. 2, в котором используется сорбция экстракта твердофазным сорбентом LPS500-H, последующая селективная десорбция и хроматографическое разделение путем обращеннофазовой хроматографии в условиях ВЭЖХ.6. A method for isolating peptide antibiotics hausemycins A and B from claim 1 in the form of a concentrate according to claim 2, which uses extract sorption with a solid-phase sorbent LPS500-H, followed by selective desorption and chromatographic separation by reversed-phase chromatography under HPLC conditions.
RU2020140343A 2020-12-08 2020-12-08 Gausemycins a and b - glycolipopeptide antibacterial antibiotics and method for production thereof RU2762182C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020140343A RU2762182C1 (en) 2020-12-08 2020-12-08 Gausemycins a and b - glycolipopeptide antibacterial antibiotics and method for production thereof

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020140343A RU2762182C1 (en) 2020-12-08 2020-12-08 Gausemycins a and b - glycolipopeptide antibacterial antibiotics and method for production thereof

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2762182C1 true RU2762182C1 (en) 2021-12-16

Family

ID=79175369

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2020140343A RU2762182C1 (en) 2020-12-08 2020-12-08 Gausemycins a and b - glycolipopeptide antibacterial antibiotics and method for production thereof

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2762182C1 (en)

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2005108995A (en) * 2002-08-30 2005-11-10 К.Ю.Левен Рисерч Энд Дивелопмент (Be) Glycopeptide Antibiotic Derivatives
EA010294B1 (en) * 2003-07-17 2008-08-29 Майджиникс, Инк. Compositions of lipopeptide antibiotic derivatives and methods of use thereof
RU2512396C2 (en) * 2008-12-22 2014-04-10 Кьюбист Фармасьютикалз, Инк. Novel antibacterial medications for treatment of gram-positive infections
RU2526391C2 (en) * 2009-02-19 2014-08-20 Кселлия Фармасьютикалз Апс Lipopeptide purification method
RU2572341C2 (en) * 2013-09-20 2016-01-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение Научно-исследовательский институт по изысканию новых антибиотиков имени Г.Ф. Гаузе Российской академии медицинских наук (ФГБУ "НИИНА" РАМН) ANTIBIOTIC INA 5812, STRAIN-PRODUCER Streptomyces roseoflavus INA-As-5812 AND METHOD FOR ANTIBIOTIC OBTAINING
RU2710733C1 (en) * 2019-07-01 2020-01-10 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт по изысканию новых антибиотиков имени Г.Ф. Гаузе" Strain streptomyces tendae - producer of antibacterial antibiotic ina 5812

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2005108995A (en) * 2002-08-30 2005-11-10 К.Ю.Левен Рисерч Энд Дивелопмент (Be) Glycopeptide Antibiotic Derivatives
EA010294B1 (en) * 2003-07-17 2008-08-29 Майджиникс, Инк. Compositions of lipopeptide antibiotic derivatives and methods of use thereof
RU2512396C2 (en) * 2008-12-22 2014-04-10 Кьюбист Фармасьютикалз, Инк. Novel antibacterial medications for treatment of gram-positive infections
RU2526391C2 (en) * 2009-02-19 2014-08-20 Кселлия Фармасьютикалз Апс Lipopeptide purification method
RU2572341C2 (en) * 2013-09-20 2016-01-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение Научно-исследовательский институт по изысканию новых антибиотиков имени Г.Ф. Гаузе Российской академии медицинских наук (ФГБУ "НИИНА" РАМН) ANTIBIOTIC INA 5812, STRAIN-PRODUCER Streptomyces roseoflavus INA-As-5812 AND METHOD FOR ANTIBIOTIC OBTAINING
RU2710733C1 (en) * 2019-07-01 2020-01-10 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт по изысканию новых антибиотиков имени Г.Ф. Гаузе" Strain streptomyces tendae - producer of antibacterial antibiotic ina 5812

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Adeniyi et al. Antibacterial activity of diospyrin, isodiospyrin and bisisodiospyrin from the root of Diospyros piscatoria (Gurke)(Ebenaceae)
Erdmann et al. Isolation and identification of two antibacterial agents produced by a strain of Proteus mirabilis isolated from larvae of the screwworm (Cochliomyia hominivorax)(Diptera: Calliphoridae)
Tachibana et al. Recent developments in the molecular structure of ciguatoxin
US9012687B2 (en) Process for isolating kukoamine
Saravanan et al. Antimicrobial activity of mangrove leaves against drug resistant pathogens
Barbieri et al. Isolation of punicalagin from Punica granatum rind extract using mass-directed semi-preparative ESI-AP single quadrupole LC-MS
CN109053720B (en) Alkaloid compound and preparation method and application thereof
Argoudelis et al. Paulomycins A and B isolation and characterization
RU2762182C1 (en) Gausemycins a and b - glycolipopeptide antibacterial antibiotics and method for production thereof
Valenzuela Ruiz et al. Lipopeptides produced by biological control agents of the genus Bacillus: a review of analytical tools used for their study
Nkanwen et al. Antibacterial agents from the leaves of Crinum purpurascens herb (Amaryllidaceae)
CA2990748A1 (en) New bicyclic lipolantipeptide, preparation and use as antimicrobial agent
EP3978004A1 (en) A composition for use as a bactericide
Matern et al. Hofmannolin, a cyanopeptolin from Scytonema hofmanni PCC 7110
CN113816945B (en) Flavonol derivative and preparation method thereof
Carter et al. Levomycin. I. Isolation and chemical studies
Gandhi et al. Antifungal and haemolytic activities of organic extracts of Tecoma stans (Bignoniaceae)
CN107382863B (en) Trienomycin compound, preparation method and application for treating prostatic cancer
Gouda et al. Phytochemical profile and antimicrobial assessment of Abutilon fruticosum Guill. & Perr. growing in Gebel Elba, Egypt
Sivarajan et al. Screening, production, and characterization of biologically active secondary metabolite (s) from marine Streptomyces sp. PA9 for antimicrobial, antioxidant, and mosquito larvicidal activity
CN107011140A (en) A kind of monoterpenes compound and preparation method and application
Trenozhnikova et al. Characterization of the antibiotic compound no. 70 produced by Streptomyces sp. IMV-70
CN108285453B (en) Application of antibacterial compound
CN111253473B (en) Preparation method of bacitracin impurity L based on photocatalysis
CN108129538A (en) A kind of method that antimicrobial compound is extracted from scorpio