RU2757600C1 - Method for obtaining biological products of living microorganisms with an extended period of preservation of a high titer of viable cells by immobilization in gels based on silanol derivatives of humic substances - Google Patents

Method for obtaining biological products of living microorganisms with an extended period of preservation of a high titer of viable cells by immobilization in gels based on silanol derivatives of humic substances Download PDF

Info

Publication number
RU2757600C1
RU2757600C1 RU2021101780A RU2021101780A RU2757600C1 RU 2757600 C1 RU2757600 C1 RU 2757600C1 RU 2021101780 A RU2021101780 A RU 2021101780A RU 2021101780 A RU2021101780 A RU 2021101780A RU 2757600 C1 RU2757600 C1 RU 2757600C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
microorganisms
gel
humic substances
apts
bacteria
Prior art date
Application number
RU2021101780A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Юрий Александрович Николаев
Игорь Анатольевич Борзенков
Елена Витальевна Демкина
Наталия Геннадиевна Лойко
Тимур Александрович Канапацкий
Ирина Васильевна Перминова
Александр Борисович Воликов
Анна Николаевна Хрептугова
Олеся Александровна Галуза
Галина Ивановна Эль-Регистан
Original Assignee
Федеральное государственное учреждение «Федеральный исследовательский центр «Фундаментальные основы биотехнологии» Российской академии наук»
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное учреждение «Федеральный исследовательский центр «Фундаментальные основы биотехнологии» Российской академии наук» filed Critical Федеральное государственное учреждение «Федеральный исследовательский центр «Фундаментальные основы биотехнологии» Российской академии наук»
Priority to RU2021101780A priority Critical patent/RU2757600C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2757600C1 publication Critical patent/RU2757600C1/en

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention relates to biotechnology and can be used to stabilize biological products containing live microorganisms. The method provides for the preparation of a gel from alkaline solutions of humic substances (HS) and 3-aminopropyltrialkoxysilane (APTS) by titration with an acetic acid solution to a pH value close to neutral, followed by the addition of APTS, immobilization of microorganism cells in gels by mixing a suspension of bacteria and gel in a given ratio, the stage of keeping for several hours until the gel thickens.
EFFECT: invention allows microorganisms being kept in an active state for a long time.
12 cl, 6 dwg, 1 tbl, 6 ex

Description

Изобретение относится к области биотехнологий, в которых используются культуры живых микроорганизмов, например, биотехнологий очистки природных и техногенных объектов от загрязнений, а также пищевых биотехнологий. Более конкретно, изобретение может быть применено для стабилизации биопрепаратов, содержащих живые микроорганизмы, с целью продления сроков поддержания высокого титра живых микроорганизмов и высоких технологических свойств соответствующих биопрепаратов.The invention relates to the field of biotechnology, which uses the culture of living microorganisms, for example, biotechnology for cleaning natural and man-made objects from pollution, as well as food biotechnology. More specifically, the invention can be applied to stabilize biological products containing live microorganisms in order to prolong the maintenance of a high titer of living microorganisms and high technological properties of the corresponding biological products.

Для эффективного применения биопрепаратов, содержащих живые микроорганизмы, важно, чтобы концентрация жизнеспособных клеток была на уровне, достаточном для проявления целевых технологических свойств. Так, для очистки объектов окружающей среды от нефтепродуктов, биопрепараты должны иметь концентрацию углеводородокисляющих бактерий (УОБ), не ниже 108 клеток/г (RU2618699C1; Руководство…, 2018), а для реализации продуктом пробиотических свойств в нем должно содержаться клеток пробиотических бактерий не менее 106-8 КОЕ/мл в зависимости от типа микроорганизмов и цели их применения (Minelli, Benini, 2008). For the effective use of biological products containing living microorganisms, it is important that the concentration of viable cells is at a level sufficient for the manifestation of the target technological properties. So, to clean the environment from oil products, biological products must have a concentration of hydrocarbon-oxidizing bacteria (HCB), not less than 10 8 cells / g (RU2618699C1; Guide ..., 2018), and for the product to implement probiotic properties, it must contain cells of probiotic bacteria not less than 10 6-8 CFU / ml, depending on the type of microorganisms and the purpose of their use (Minelli, Benini, 2008).

Поскольку индивидуальные организмы не могут существовать вечно, при использовании живых микроорганизмов важно замедлить их отмирание. Для этого используют различные способы, например, высушивание препаратов, хранение при низких температурах (Сидякина, 1985), что наиболее эффективно, но удорожает стоимость и усложняет технологических процесс получения биопрепаратов. Распространенным способом сохранения микроорганизмов является иммобилизация - фиксация клеток на или в носителе с помощью физических или химических сил. Основными типами иммобилизации являются включение клеток в вещество, как правило – в гель, или прикрепление к твердой поверхности (Ефременко, 2018). Включение в плотные гели используют, когда целевым продуктом является какой-либо метаболит клеток (аминокислоты, глюкозно-фруктозные сиропы и др.), и необходимо использовать высокие объёмные концентрации клеток. Для технологий, требующих введения микроорганизмов, которые должны начать размножаться и распространяться в среде применения, важно, чтобы клетки могли покидать носитель – путем десорбции с поверхности или разрушения носителя. Например, необходимо, чтобы бактерии легко покидали носитель и равномерно распределялись по объему при биоремедиации почв и вод, при использовании в качестве заквасок при силосовании, в пищевых продуктах.Since individual organisms cannot exist forever, when using living microorganisms, it is important to slow down their dying off. For this, various methods are used, for example, drying preparations, storage at low temperatures (Sidyakina, 1985), which is most effective, but increases the cost and complicates the technological process of obtaining biological products. A common way of preserving microorganisms is immobilization - the fixation of cells on or in a carrier using physical or chemical forces. The main types of immobilization are the inclusion of cells in a substance, as a rule, in a gel, or attachment to a solid surface (Efremenko, 2018). Inclusion in dense gels is used when the target product is any cell metabolite (amino acids, glucose-fructose syrups, etc.), and it is necessary to use high volumetric cell concentrations. For technologies that require the introduction of microorganisms that must begin to multiply and spread in the environment of use, it is important that the cells can leave the carrier - by desorption from the surface or destruction of the carrier. For example, it is necessary that bacteria easily leave the carrier and be evenly distributed throughout the volume during bioremediation of soil and water, when used as ferments for silage, in food products.

Из уровня развития техники известен способ хранения микроорганизмов, заключающийся в выращивании микроорганизмов с их последующей иммобилизацией на синтетических волокнах из капрона, полипропилена, лавсана или других (Патент РФ № 2008348). Недостатком такого способа является трудность применения суспензий таких препаратов для обработки больших объектов. From the state of the art, a method for storing microorganisms is known, which consists in growing microorganisms with their subsequent immobilization on synthetic fibers made of nylon, polypropylene, lavsan or others (RF Patent No. 2008348). The disadvantage of this method is the difficulty of using suspensions of such preparations for the treatment of large objects.

Известно множество способов иммобилизации пробиотических культур микроорганизмов в гелях (Mitropoulouet G. et all., 2013). Наиболее распространенным веществом-основой гелей является альгинат, который образует гели с достаточной плотностью и прочностью. В биотехнологиях получения различных продуктов микробного метаболизма наиболее часто используют гели из альгината и поливинилового спирта (Ефременко, 2018). Однако, при необходимости высвободить клетки перед использованием биопрепарата, эти полимеры сложно использовать по причине их прочности. Поэтому мы обратили внимание на гели, которые легко разрушаются перед или в процессе использования.There are many ways to immobilize probiotic cultures of microorganisms in gels (Mitropoulouet G. et all., 2013). The most common gel base material is alginate, which forms gels with sufficient density and strength. In biotechnologies for obtaining various products of microbial metabolism, gels from alginate and polyvinyl alcohol are most often used (Efremenko, 2018). However, if it is necessary to release cells before using a biological product, these polymers are difficult to use due to their strength. Therefore, we paid attention to gels that are easily destroyed before or during use.

Известен способ получения геля на основе водорастворимых силанольных производных гуминовых веществ (СПГВ) (патент RU 2530024), которые модифицированы таким образом, что способны прочно сорбироваться на минеральных или органических гидроксилсодержащих веществах. Согласно способу щелочной раствор гуматов титруют неорганической кислотой до рН 3-7, после чего добавляют аминоорганосилан, выдерживают при определенной температуре, удаляют воду и используют для получения пленок. Данный способ был выбран нами как прототип по причине водорастворимости полученных композитных полимеров из СПГВ, известного свойств гуматов быть почвенными мелиорантами (Дагуров с соавт., 2005) и биологически активными добавками (RU2259147C2), а также способности гуматов повышать количество жизнеспособных бактерий при длительном хранении (Николаев с соавт., 2020). В результате модификации способа-прототипа были внесены такие изменения: использована органическая кислота (уксусная) для подкисления среды, что внесло в среду источник питания для микроорганизмов; в качестве поверхности для прикрепления геля использована поверхность живых клеток, содержащих ОН-группы, что необходимо для прикрепления геля и, одновременно – для иммобилизации микроорганизмов в нём; полученный гель использовали непосредственно в среде получения (без удаления воды) как матрицу, включающую живые бактерии разных видов. A known method of producing a gel based on water-soluble silanol derivatives of humic substances (SPGV) (patent RU 2530024), which are modified in such a way that they are able to be strongly sorbed on mineral or organic hydroxyl-containing substances. According to the method, an alkaline solution of humates is titrated with an inorganic acid to pH 3-7, after which aminoorganosilane is added, kept at a certain temperature, water is removed and used to obtain films. This method was chosen by us as a prototype due to the water solubility of the obtained composite polymers from SPGV, the known properties of humates to be soil ameliorants (Dagurov et al., 2005) and biologically active additives (RU2259147C2), as well as the ability of humates to increase the number of viable bacteria during long-term storage ( Nikolaev et al., 2020). As a result of the modification of the prototype method, the following changes were made: an organic acid (acetic acid) was used to acidify the medium, which introduced a food source for microorganisms into the medium; as a surface for the attachment of the gel, the surface of living cells containing OH groups was used, which is necessary for the attachment of the gel and, at the same time, for the immobilization of microorganisms in it; the resulting gel was used directly in the production medium (without removing water) as a matrix containing live bacteria of different species.

Техническим результатом предлагаемого решения является получение нового носителя живых микроорганизмов, способного растворятся в водных средах, обеспечивающего поддержание высокого титра жизнеспособных клеток, что обусловливает повышение сроков сохранности биопрепаратов, предназначенных для хранения без дополнительного охлаждения, относительная простота получения, а также присутствие в биопрепарате веществ с дополнительными полезными технологическими и потребительскими свойствами - гуматов.The technical result of the proposed solution is to obtain a new carrier of living microorganisms capable of dissolving in aqueous media, ensuring the maintenance of a high titer of viable cells, which leads to an increase in the shelf life of biological products intended for storage without additional cooling, the relative ease of obtaining, as well as the presence in the biological product of substances with additional useful technological and consumer properties - humates.

Предлагаемый способ получения иммобилизованных препаратов живых микроорганизмов включает стадию выращивания микроорганизмов, стадию приготовления геля из щёлочного растворов гуминовых веществ (ГВ) и 3-аминопропилтриалкоксисилана (АПТС) путем титрования раствором уксусной кислоты до значения рН, близкого к нейтральному, с последующим добавлением АПТС, стадию смешения суспензии бактерий и геля, стадию выдерживании в течение нескольких часов до загустения геля. Полученный гель может храниться в течение нескольких месяцев, при этом в нем сохраняется высокий титр жизнеспособных бактерий. Перед использованием гель растворяют в водной среде и используют как источник бактерий.The proposed method for obtaining immobilized preparations of living microorganisms includes the stage of growing microorganisms, the stage of preparing a gel from alkaline solutions of humic substances (HS) and 3-aminopropyltrialkoxysilane (APTS) by titration with an acetic acid solution to a pH value close to neutral, followed by the addition of APTS, the stage of mixing suspension of bacteria and gel, the stage of incubation for several hours until the gel thickens. The resulting gel can be stored for several months, while maintaining a high titer of viable bacteria. Before use, the gel is dissolved in an aqueous medium and used as a source of bacteria.

В соответствии с предлагаемым способом для получения геля на основе водорастворимых силанольных производных гуминовых веществ (СПГВ) могут быть использованы различные препараты гуминовых веществ.In accordance with the proposed method to obtain a gel based on water-soluble silanol derivatives of humic substances (SPGV), various preparations of humic substances can be used.

В соответствии с предлагаемым способом для получения СПГВ могут быть использованы аминоорганосиланы, предпочтительно, но не исключительно 3-аминопропилтриалкоксисилан.Aminoorganosilanes, preferably, but not exclusively, 3-aminopropyltrialkoxysilane, can be used for the production of SPGL in accordance with the proposed method.

В соответствии с предлагаемым способом для получения СПГВ могут быть использованы органические кислоты, предпочтительно, но не исключительно, уксусная кислота.In accordance with the proposed method, organic acids, preferably, but not exclusively, acetic acid can be used to produce SPGV.

В соответствии с предлагаемым способом могут быть использованы грамположительные и грамотрицательные бактерии разных физиологических групп – например, аэробные хемоорганотрофные углеводородокисляющие бактерии и аэротолерантные молочнокислые бактерии, выращенные на оптимальных для них средах до стационарной фазы роста. In accordance with the proposed method, gram-positive and gram-negative bacteria of different physiological groups can be used - for example, aerobic chemoorganotrophic hydrocarbon-oxidizing bacteria and aerotolerant lactic acid bacteria grown on optimal media for them until the stationary growth phase.

В соответствии с предлагаемым способом раствор ГВ 10-15% доводится кислотой до рН 6-7 в зависимости от свойств бактерий, к нему добавляется 2.5-5% АПТС, или рН доводится в смеси ГВ и АПТС, после чего к нейтрализованной смеси добавляется суспензия бактерий в количестве 0.4-0.5 от объема полученного раствора СПГВ и оставляется на несколько часов до загустения геля.In accordance with the proposed method, a 10-15% HS solution is brought with an acid to pH 6-7, depending on the properties of bacteria, 2.5-5% APTS is added to it, or the pH is adjusted in a mixture of HS and APTS, after which a suspension of bacteria is added to the neutralized mixture in the amount of 0.4-0.5 of the volume of the obtained SPGV solution and left for several hours until the gel thickens.

Полученные препараты могут храниться при условиях окружающей среды в течение нескольких месяцев и перед использованием растворяться в водных средах в необходимой пропорции.The obtained preparations can be stored under ambient conditions for several months and before use they can be dissolved in aqueous media in the required proportion.

Указанная выше совокупность признаков, включённая в три независимых пункта формулы, не известна из уровня техники. В объёме вышеуказанной совокупности признаков достигается заявленный технический результат, подтверждённый ниже. Ни в научно-технической, ни в патентной литературе не обнаружены сведения о возможном влиянии отличительных признаков независимых пунктов формулы (получение гелей на основе силанольных производных гуминовых веществ с применением органических кислот, введение живых микроорганизмов в такие гели в качестве твердой поверхности для прикрепления геля, использование этих гелей для продления жизнеспособности микроорганизмов) на технический результат, достигаемый при осуществлении заявленного способа. The above set of features included in three independent claims is not known from the prior art. Within the scope of the above set of features, the claimed technical result is achieved, which is confirmed below. Neither in the scientific, technical, nor in the patent literature was found information about the possible influence of the distinctive features of independent claims (obtaining gels based on silanol derivatives of humic substances using organic acids, introducing living microorganisms into such gels as a solid surface for attaching a gel, using these gels to extend the viability of microorganisms) on the technical result achieved when implementing the claimed method.

На фиг. 1 приведён вид геля на основе СПГВ (из гумата Powhumus) после затвердения.FIG. 1 shows the type of gel based on SPGV (from Powhumus humate) after hardening.

На фиг. 2 представлено содержание жизнеспособных клеток (КОЕ/мл) A.seifertii, иммобилизованных в гель на основе гумата Powhumus в течение 7 месяцев инкубации, где К – контрольная культура, Оп – культура в геле (опыт).FIG. 2 shows the content of viable cells (CFU / ml) of A. seifertii immobilized in a gel based on Powhumus humate during 7 months of incubation, where K is the control culture, Op is the culture in the gel (experiment).

На фиг. 3 представлено содержание жизнеспособных клеток (КОЕ/мл) P.aeruginosa, иммобилизованных в гель на основе гумата Байкал в течение 3.5 месяцев инкубации (опыт) в сравнении с контролем.FIG. 3 shows the content of viable cells (CFU / ml) of P. aeruginosa immobilized in a gel based on Baikal humate during 3.5 months of incubation (experiment) in comparison with the control.

На фиг. 4 представлено содержание жизнеспособных клеток (КОЕ/мл) E.faecium, иммобилизованных в гель на основе гумата Байкал в течение 28 cут инкубации (опыт) в сравнении с контролем.FIG. 4 shows the content of viable cells (CFU / ml) of E. faecium immobilized in a gel based on Baikal humate during 28 days of incubation (experiment) in comparison with the control.

На фиг. 5 представлена морфология клеток P.aeruginosa возраста 24 ч (А), 2 месяца (Б) и 2 месяца в геле на основе гумата Байкал (В). А и Б – фазовый контраст, В – окраска ДАПИ, инверсия (негатив).FIG. 5 shows the morphology of P. aeruginosa cells aged 24 h (A), 2 months (B), and 2 months in a gel based on Baikal humate (C). A and B - phase contrast, C - DAPI color, inversion (negative).

На фиг. 6 представлены скорости дыхания (накопления СО2) в культурах P.aeruginosa (А) и A.seifertii (Б) разных возрастов и при хранении в геле на основе гумата Байкал.FIG. 6 shows respiratory rate (accumulation of CO 2) in cultures of P.aeruginosa (A) and A.seifertii (B) of different ages and during storage in a gel based humate Baikal.

При создании нами предлагаемого инновационного способа стабилизации биопрепаратов (т.е. длительного поддержания высокого титра жизнеспособных клеток микроорганизмов) исходили из нескольких предпосылок: микроорганизмы, иммобилизованные в гели, обладают повышенной стрессоустойчивостью и выживаемостью по причине нахождения в состоянии, близком или идентичном к биопленочному фенотипу (Ефременко, 2018; Z’ur et al., 2016), и по этой причине остановились на гелевых биокомпозитах. Полученный гель должен быть легко растворим в водных средах перед использованием. Технология получения геля должна быть относительно простой, предпочтительно, в одном реакторе. Компоненты геля должны быть доступны, дешевы и, желательно, обладать дополнительными полезными свойствами.When we created the proposed innovative method for stabilizing biological products (i.e. long-term maintenance of a high titer of viable cells of microorganisms), we proceeded from several preconditions: microorganisms immobilized in gels have increased stress resistance and survival due to being in a state close to or identical to the biofilm phenotype ( Efremenko, 2018; Z'ur et al., 2016), and for this reason they settled on gel biocomposites. The resulting gel should be readily soluble in aqueous media before use. The technology for producing the gel should be relatively simple, preferably in a single reactor. The components of the gel should be readily available, inexpensive, and desirably have additional beneficial properties.

Сущность способа и его техническая реализуемость иллюстрируются следующими примерами.The essence of the method and its technical feasibility are illustrated by the following examples.

Пример 1.Example 1. Получение геля СПГВ при использовании гумата калия и натрия, получаемого из леонардита, Powhumus (Humintech, Германия) Obtaining SPGV gel using potassium and sodium humate obtained from leonardite, Powhumus (Humintech, Germany)

В качестве органосилана использовали 3-аминопропилтриэтоксисилан (АПТС) (препарат «АГМ-9», ООО «Пента 91», Россия) 1-1.5 г гумата растирали в ступке и растворяли в 10 мл дистиллированной воды при интенсивном перемешивании на магнитной мешалке, отделяли нерастворившуюся фракцию центрифугированием (5000 g, 5 минут), супернатант переливали в стакан и добавляли 0.3-0.5 мл АПТЭС при интенсивном перемешивании на магнитной мешалке, после чего титровали раствором ледяной уксусной кислоты до рН 6-7. Полученную смесь оставляли при комнатной температуре. В течение 2-12 часов происходило загустевание (желирование) реакционной смеси. Полученный гель был однородным, обладал умеренными прочностными свойствами – не вытекал из пробирок при их переворачивании (фиг. 1), сохранял свои свойства в течение нескольких месяцев, при добавлении воды и интенсивном перемешивании растворялся.The organosilane used was 3-aminopropyltriethoxysilane (APTS) (AGM-9, OOO Penta 91, Russia). 1-1.5 g of humate was ground in a mortar and dissolved in 10 ml of distilled water with vigorous stirring on a magnetic stirrer, the insoluble fraction by centrifugation (5000 g, 5 minutes), the supernatant was poured into a beaker and 0.3-0.5 ml of APTES was added with vigorous stirring on a magnetic stirrer, after which it was titrated with a solution of glacial acetic acid to pH 6-7. The resulting mixture was left at room temperature. Thickening (gelation) of the reaction mixture took place within 2-12 hours. The resulting gel was homogeneous, had moderate strength properties - it did not flow out of the test tubes when they were turned over (Fig. 1), retained its properties for several months, and dissolved with the addition of water and vigorous stirring.

Пример 2.Example 2. Получение геля СПГВ при использовании гумата калия и натрия, получаемого из бурого угля, Байкал («АгроТехГумат», РФ)Obtaining SPGV gel using potassium and sodium humate obtained from brown coal, Baikal ("AgroTechHumat", RF)

В качестве органосилана использовали АПТС того же производителя, что в примере 1. 10-15 г гумата растворяли в 100 мл дистиллированной воде при интенсивном перемешивании на магнитной мешалке, доводили рН до значения 6-7 ледяной уксусной кислотой, добавляли 5-10 мл водного раствора АПТЭС (50%) с рН 6-7, доведенного ледяной уксусной кислотой. Полученную смесь оставляли при комнатной температуре, в течение 2-12 часов происходило загустевание (желирование) реакционной смеси. Полученный гель был однородным, обладал умеренными прочностными свойствами – не вытекал из пробирок объёмом 20 мл при их переворачивании, сохранял свои свойства в течение нескольких месяцев, при добавлении воды и интенсивном перемешивании растворялся.The organosilane used was APTS of the same manufacturer as in Example 1. 10-15 g of humate was dissolved in 100 ml of distilled water with vigorous stirring on a magnetic stirrer, the pH was adjusted to 6-7 with glacial acetic acid, 5-10 ml of an aqueous solution was added APTES (50%) with pH 6-7, adjusted with glacial acetic acid. The resulting mixture was left at room temperature, within 2-12 hours thickening (gelation) of the reaction mixture occurred. The resulting gel was homogeneous, possessed moderate strength properties - it did not flow out of 20 ml tubes when they were turned over, retained its properties for several months, and dissolved with the addition of water and vigorous stirring.

Приведенные примеры 1 и 2 доказывает техническую реализуемость предлагаемого способа получения гелей на основе СПГВ с использованием разных препаратов гуматов, уксусной кислоты и способов смешения с АПТС и способов титрования.The above examples 1 and 2 prove the technical feasibility of the proposed method for producing gels based on SPGV using various preparations of humates, acetic acid and methods of mixing with APTS and titration methods.

Пример 3. Хранение культур углеводородокисляющих бактерий и дрожжей в гелях СПГВ на основе гумата PowhumusExample 3. Storage of cultures of hydrocarbon-oxidizing bacteria and yeast in SPGV gels based on Powhumus humate

Культуры углеводородокисляющих бактерий (Грамположительной Rhodococcus erythropolis, Грамотрицательных Acinetobacter seifertii и Pseudomonas aeruginosa) и одного дрожжевого организма (Yarrovia lypolytica) выращивали на среде LB до стационарной фазы роста, после чего смешивали со свежеполученным гелем на основе гумата Powhumus в пропорции 3 мл культуры и 7 мл геля, разливали по пробиркам типа Эппендорф (по 1 мл) или типа Фалькон объёмом 15 мл (5 мл геля) и хранили в течение нескольких месяцев, после чего ресуспендировали в стерильном физиологическом растворе и определяли титр жизнеспособных клеток (КОЕ).Cultures of hydrocarbon-oxidizing bacteria (Gram-positive Rhodococcus erythropolis, Gram-negative Acinetobacter seifertii and Pseudomonas aeruginosa) and one yeast organism (Yarrovia lypolytica) were grown in LB medium until the stationary growth phase, after which they were mixed with a freshly obtained gel based on humate 3 ml Powhum gel, poured into Eppendorf tubes (1 ml each) or Falcon tubes with a volume of 15 ml (5 ml gel) and stored for several months, after which they were resuspended in sterile saline and the titer of viable cells (CFU) was determined.

На фиг. 2 представлены кривые содержания жизнеспособных клеток A.seifertii, иммобилизованных в гель СПГВ на основе гумата Powhumus в течение 7 месяцев инкубации. Контрольная культура этой бактерии быстро отмирала и через 1 мес количество жизнеспособных клеток было ниже значения 108 КОЕ/мл. Клетки, включенные в силанольно-гуминовый гель в течение первого месяца продолжали размножаться, их титр вырос в несколько раз, после чего они стали отмирать со скоростью в 5 раз меньшей, чем в контроле. Через 4-7 мес хранения титр КОЕ в опытном варианте был в 150-40 раз выше, чем контрольном.FIG. 2 shows the curves of the content of viable A.seifertii cells immobilized in the SPGV gel based on Powhumus humate during 7 months of incubation. Control culture of bacteria rapidly dying out and after 1 month the number of viable cells was below the value of 10 8 cfu / ml. The cells included in the silanol-humic gel continued to multiply during the first month, their titer increased several times, after which they began to die off at a rate 5 times lower than in the control. After 4-7 months of storage, the CFU titer in the experimental variant was 150-40 times higher than in the control one.

Для других культур были получены аналогичные кривые содержания КОЕ от времени в опытных и контрольных вариантах. Во всех случаях через несколько месяцев хранения титр КОЕ в опытных вариантах был выше, чем в контроле на 1-2 порядка (таблица 1).For other cultures, similar curves of the CFU content versus time were obtained in the experimental and control variants. In all cases, after several months of storage, the CFU titer in the experimental variants was 1-2 orders of magnitude higher than in the control (Table 1).

Таблица 1. Превышение титра жизнеспособных клеток (КОЕ/мл) культур R. erythropolis, A. seifertii, P. aeruginosa и Y. lypolytica в опытном варианте над контрольным через 4 месяца хранения.Table 1. The excess of the titer of viable cells (CFU / ml) of cultures of R. erythropolis, A. seifertii, P. aeruginosa and Y. lypolytica in the experimental variant over the control after 4 months of storage.

МикроорганизмMicroorganism Отношения КОЕ
Опыт/контроль
CFU ratios
Experience / control
R. erythropolis R. erythropolis 11eleven A. seifertiiA. seifertii 150150 P. aeruginosaP. aeruginosa 11eleven Y. lypolyticaY. lypolytica 8eight

Пример 4. Хранение культур углеводородокисляющих бактерий в гелях СПГВ на основе гумата БайкалExample 4. Storage of cultures of hydrocarbon-oxidizing bacteria in SPGV gels based on Baikal humate

Для одной из углеводородокисляющих бактерий, P.aeruginosa, было исследовано хранение в течение 3.5 мес при иммобилизации в гель на основе другого гумата, Байкал. На фиг. 3 представлены кривые титра КОЕ в контрольном варианте и при включении клеток в гель на основе 10%-ного содержания гумата. Для геля на основе 15%-ного содержания гуматов данные аналогичны и не представлены. Из фигуры 3 ясно видно, что включение в гель предотвращает отмирание клеток в течение 2 месяцев, приводит к росту числа живых клеток в 1.5 раза, тогда как за это же время в контроле титр КОЕ снизился в 40 раз.For one of the hydrocarbon-oxidizing bacteria, P. aeruginosa, storage for 3.5 months was studied during immobilization in a gel based on another humate, Baikal. FIG. 3 shows the curves of the CFU titer in the control variant and when cells are included in the gel based on 10% humate content. For a gel based on a 15% humate content, the data are similar and not presented. Figure 3 clearly shows that inclusion in the gel prevents cell death within 2 months, leads to an increase in the number of living cells by 1.5 times, while during the same time in the control, the CFU titer decreased by 40 times.

Пример 5. Хранение культур молочнокислых бактерий в гелях СПГВExample 5. Storage of cultures of lactic acid bacteria in SPGV gels

Молочнокислые бактерии являются группой бактерий, важных для медицины, пищевой промышленности и биотехнологий, которая характеризуется высокими скоростями отмирания, поэтому на этой группе бактерий также было испытано хранение в гелях СПГВ. Молочнокислую бактерию Enterococcus faecium выращивали на молоке при 30оС и хранили в течение 4х недель при комнатной температуре в колбах в стационарных условиях (контроль) или помещали в гель на основе гуматов Powhumus или Байкал.Lactic acid bacteria are a group of bacteria important for medicine, food industry and biotechnology, which is characterized by high rates of death, therefore storage in SPGV gels was also tested on this group of bacteria. Lactic acid bacterium Enterococcus faecium were grown in milk at 30 ° C and stored for 4 weeks at room temperature in a flask under stationary conditions (control) or placed in a gel based on humates Powhumus or Baikal.

На Фиг. 4 видно, что в течение 4х недель хранения титр жизнеспособных клеток снижался в контроле почти на 4 порядка. Включение в гель на основе гумата Powhumus замедляло отмирание, что обусловило превышение титра жизнеспособных клеток над контрольным вариантов в 30 раз через 4 недели хранения. Иммобилизация клеток в гель на основе гумата Байкал была менее эффективной – превышение титра КОЕ в опыте над контролем составило 6 раз, что связано с разнокачественностью препаратов гуматов, и что необходимостью учитывать при разработке способов стабилизации биопрепаратов.FIG. 4 it can be seen that during 4 weeks of storage, the titer of viable cells decreased in the control by almost 4 orders of magnitude. The inclusion of Powhumus in the gel based on humate slowed down the death, which caused the titer of viable cells to exceed the control variants by 30 times after 4 weeks of storage. Immobilization of cells in a gel based on Baikal humate was less effective - the excess of the CFU titer in the experiment over the control was 6 times, which is associated with the different quality of humate preparations, and that it is necessary to take into account when developing methods for stabilizing biological products.

Приведенные примеры №№ 3-5 доказывают техническую реализуемость предлагаемого способа хранения всех испытанных бактерий в силанольно-гуминовых гелях и высокую эффективность этого способа по поддержанию жизнеспособности клеток различных микроорганизмов в течение длительного времени.The given examples No. 3-5 prove the technical feasibility of the proposed method of storing all tested bacteria in silanol-humic gels and the high efficiency of this method in maintaining the viability of cells of various microorganisms for a long time.

Пример 6. Определение состояния культур бактерий, стабилизированных с применением гелей СПГВ на основе гумата Байкал, после 2 месяцев храненияExample 6. Determination of the state of bacterial cultures stabilized using SPGV gels based on Baikal humate, after 2 months of storage

Полученные в примерах 3 и 4 результаты продемонстрировали, что клетки бактерий, включенные в гели СПГВ, в течение некоторого времени могут размножаться, что может быть обусловлено тем, что в составе гелей присутствуют органические вещества, которые могут потребляться микроорганизмами и служить источниками энергии и углерода - уксусная кислота, добавляемая как титрант (до 1.5 г/л) и этанол, образующийся в реакции этерификации (до 0.5 г/л).The results obtained in examples 3 and 4 demonstrated that bacterial cells included in SPGV gels can multiply for some time, which may be due to the fact that the gels contain organic substances that can be consumed by microorganisms and serve as sources of energy and carbon - acetic acid added as a titrant (up to 1.5 g / l) and ethanol formed in the esterification reaction (up to 0.5 g / l).

О физиологическом состоянии клеток судили по двум показателям – дыхательной активности и внешнему виду культур, определяемому микроскопически.The physiological state of cells was judged by two indicators - respiratory activity and the appearance of cultures, determined microscopically.

Культуры P.aeruginosa и A.seifertii после 2 мес хранения в геле на основе гумата Байкал (10%) переносили в среду Раймонда без источников углерода (5% по объёму) и инкубировали на качалке при 30оС в течение 24 ч. Дыхание клеток инициировалось нагреванием и поступлением кислорода. Метаболическую активность клеток оценивали по повышению концентрации углекислого газа в культуральной среде, что определяли путем переноса 1 мл среды в герметично закрытые флаконы (V=18 мл) с 0.2 мл фосфорной кислоты с использованием газового хроматографа Кристалл 5000 (РФ). P.aeruginosa culture A.seifertii and after 2 months of storage in gel based humate Baikal (10%) was transferred to a medium without carbon source Raimond (5% by volume) and incubated on shaker at 30 C for 24 hours. The cells Breath initiated by heating and oxygen supply. The metabolic activity of cells was assessed by increasing the concentration of carbon dioxide in the culture medium, which was determined by transferring 1 ml of the medium into hermetically sealed vials (V = 18 ml) with 0.2 ml of phosphoric acid using a Kristall 5000 gas chromatograph (RF).

Микроскопические исследования проводили с использованием фазово-контрастной и флуоресцентной микроскопии с использованием микроскопа Axio Imager M2, Carl Zeiss Microscopy GmbH, Германия. Использовали флюоресцентный краситель ДАПИ (DAPI). Microscopic studies were performed using phase contrast and fluorescence microscopy using an Axio Imager M2 microscope, Carl Zeiss Microscopy GmbH, Germany. Used fluorescent dye DAPI (DAPI).

После двух месяцев пребывания в геле на основе гумата Байкал культура P.aeruginosa выглядела как растущая активная – в ней доминировали удлиненные клетки, отсутствовали лизированные и разрушенные клетки (фиг. 5). Длина клеток в геле (фиг. 5 В) превосходила среднюю длину клеток активной молодой культуры (фиг. 5 А). При этом в контрольной 2-месячной культуре клетки характеризуются укороченными размерами, меньшей рефрактерностью и меньшим количеством (Фиг. 5 Б). Низкая рефрактерность является признаком лизированных или разрушенных клеток. Для A.seifertii данные аналогичны и не представлены.After two months of staying in the Baikal humate-based gel, the P. aeruginosa culture looked like a growing active - it was dominated by elongated cells, there were no lysed and destroyed cells (Fig. 5). The length of the cells in the gel (Fig. 5B) exceeded the average cell length of the active young culture (Fig. 5A). In this case, in the control 2-month culture, the cells are characterized by shortened sizes, less refractoriness and fewer numbers (Fig. 5B). Low refractoriness is a sign of lysed or destroyed cells. For A.seifertii, the data are similar and not presented.

Обе 2-месячные культуры, хранившиеся в геле, обнаружили более высокие скорости дыхания без добавления источника углерода, чем оба контроля, как 2-суточные, так и 2-месячной культуры (фиг. 6). Отметим, что дыхание культур могло происходить только за счет наличия эндогенных источников углерода – остатков питательной среды для молодой культуры, автолизатов клеток для старых культур, а при наличии геля – также и ацетата и этанола. Скорость дыхания культуры P.aeruginosa с гелем превышала контрольные в 2-3 раза, а A.seifertii – в 1.2-1.7 раза, что отражает выявленную микроскопически и по титру КОЕ большую сохранность культур в геле на основе гумата Байкал по сравнению с контрольной культурой. Both 2-month-old cultures stored in the gel showed higher respiration rates without added carbon source than both 2-day-old and 2-month-old controls (FIG. 6). Note that culture respiration could occur only due to the presence of endogenous carbon sources - the remains of the nutrient medium for a young culture, autolysates of cells for old cultures, and in the presence of a gel - also acetate and ethanol. The respiration rate of P. aeruginosa culture with gel exceeded control by 2-3 times, and A. seifertii - 1.2-1.7 times, which reflects the microscopically and by CFU titer greater safety of the cultures in the gel based on Baikal humate in comparison with the control culture.

Приведенный пример иллюстрирует механизм эффективного поддержания количества жизнеспособных клеток в культурах бактерий в гелях СПГВ при длительном хранении – путем поддержания их в активном метаболическом состоянии, что позволяет применять такой способ хранения для широкого круга микроорганизмов. This example illustrates the mechanism of effective maintenance of the number of viable cells in bacterial cultures in SPGV gels during long-term storage - by maintaining them in an active metabolic state, which allows this storage method to be used for a wide range of microorganisms.

Цитированные источникиCited sources

1. Иммобилизованные клетки: биокатализаторы и процессы. Под ред. Е.Н. Ефременко. М. Риор, 2018.1. Immobilized cells: biocatalysts and processes. Ed. E.N. Efremenko. M. Rior, 2018.

2. Żur J., Wojcieszyńska D., Guzik U. Metabolic Responses of Bacterial Cells to Immobilization Molecules. 2016 Jul; 21(7): 958.2. Żur J., Wojcieszyńska D., Guzik U. Metabolic Responses of Bacterial Cells to Immobilization Molecules. 2016 Jul; 21 (7): 958.

3. Minelli E.B., Benini A. Relationship between number of bacteria and their probiotic effects // Microb. Ecol. Health Dis. 2008. V. 20. P. 180–183.3. Minelli E.B., Benini A. Relationship between number of bacteria and their probiotic effects // Microb. Ecol. Health Dis. 2008. V. 20. P. 180-183.

4. Руководство по проведению биологической очистки почвы, загрязненной нефтепродуктами, в Арктических условиях. ООО «НАВЭКОСЕРВИС», 2018. http://archive.iwlearn.net/npaarctic.iwlearn.org/Documents/demos/new/bioremed_guide.pdf4. Guidelines for biological treatment of soil contaminated with oil products in Arctic conditions. NAVEKOSERVICE LLC, 2018. http://archive.iwlearn.net/npaarctic.iwlearn.org/Documents/demos/new/bioremed_guide.pdf

5. Mitropoulouet G., Nedovic V., Goyal A., Kourkoutas Y. Immobilization Technologies in Probiotic Food Production Journal of Nutrition and Metabolism. V. 2013, Article ID 716861| https://doi.org/10.1155/2013/7168615. Mitropoulouet G., Nedovic V., Goyal A., Kourkoutas Y. Immobilization Technologies in Probiotic Food Production Journal of Nutrition and Metabolism. V. 2013, Article ID 716861 | https://doi.org/10.1155/2013/716861

6. Перминова И.В., Пономаренко С.А., Воликов А.Б. Патент RU 2530024, 2014 г, Гуминовые силанольные производные, способ их получения и применения.6. Perminova I.V., Ponomarenko S.A., Volikov A.B. Patent RU 2530024, 2014, Humic silanol derivatives, a method for their preparation and use.

7. Сидякина Т. М. Консервация микроорганизмов, Пущино, 1985.7. Sidyakina TM Conservation of microorganisms, Pushchino, 1985.

8. Дагуров А.В. Стом Д.И., Вятчина О.Ф., Балаян А.Э., Кушнарев Д.Ф. О механизме антидотного действия гуматов по отношению к нефтепродуктам. // ACTA BIOMEDICA SCIENTIFICA 2005 Т. 6. № 44. С. 143-145.8. Dagurov A.V. Stom D.I., Vyatchina O.F., Balayan A.E., Kushnarev D.F. On the mechanism of the antidote action of humates in relation to petroleum products. // ACTA BIOMEDICA SCIENTIFICA 2005 T. 6. No. 44. S. 143-145.

9. Николаев Ю.А., Лойко Н.Г., Демкина Е.В., Атрощик Е.А., Константинов А.И., Перминова И.В., Эль-Регистан Г.И. ФУНКЦИОНАЛЬНАЯ АКТИВНОСТЬ ГУМИНОВЫХ ВЕЩЕСТВ В ПРОЛОНГИРОВАНИИ ВЫЖИВАНИЯ ПОПУЛЯЦИИ УГЛЕВОДОРОДОКИСЛЯЮЩЕЙ БАКТЕРИИ ACINETOBACTER JUNII // Микробиология. 2020. Т. 89. № 1. С. 74-87.9. Nikolaev Yu.A., Loiko N.G., Demkina E.V., Atroschik E.A., Konstantinov A.I., Perminova I.V., El-Registan G.I. FUNCTIONAL ACTIVITY OF HUMIC SUBSTANCES IN PROLONGING THE SURVIVAL OF A POPULATION OF ACINETOBACTER JUNII HYDROCARBON BACTERIA // Microbiology. 2020.Vol. 89.No. 1.P. 74-87.

Claims (12)

1. Способ получения препаратов живых микроорганизмов путем иммобилизации клеток микроорганизмов в гели на основе силанольных производных гуминовых веществ (СПГВ), включающий стадию выращивания микроорганизмов, стадию приготовления геля из щёлочного растворов гуминовых веществ (ГВ) и 3-аминопропилтриалкоксисилана (АПТС) путем титрования раствором уксусной кислоты до значения рН, близкого к нейтральному, с последующим добавлением АПТС, стадию смешения суспензии бактерий и геля, стадию выдерживании в течение нескольких часов до загустения геля. 1. A method of obtaining preparations of live microorganisms by immobilizing cells of microorganisms in gels based on silanol derivatives of humic substances (SPGV), including the stage of growing microorganisms, the stage of preparing a gel from alkaline solutions of humic substances (HS) and 3-aminopropyltrialkoxysilane (APXS) by titration with a solution of urea acid to a pH value close to neutral, followed by the addition of APTS, the stage of mixing the suspension of bacteria and the gel, the stage of holding for several hours until the gel thickens. 2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что препараты живых микроорганизмов смешивают со свежеполученными гелями на основе СПГВ в пропорции 0.4-0.5:1 по объёму.2. A method according to claim 1, characterized in that the preparations of living microorganisms are mixed with freshly prepared gels based on SPGV in a ratio of 0.4-0.5: 1 by volume. 3. Способ по п. 1, отличающийся тем, что гели на основе СПГВ получают путем смешения растворов гуминовых веществ и аминоорганосилана АПТС, доведения рН до нейтральных или слабокислых значений, выдерживания в течение нескольких часов.3. The method according to claim 1, characterized in that gels based on SPGV are obtained by mixing solutions of humic substances and aminoorganosilane APTS, bringing the pH to neutral or slightly acidic values, holding for several hours. 4. Способ по п. 3, отличающийся тем, что гуминовые вещества используют в виде водных растворов в концентрации 10-15%.4. The method according to claim 3, characterized in that the humic substances are used in the form of aqueous solutions at a concentration of 10-15%. 5. Способ по п. 3, отличающийся тем, что аминоорганосилан АПТС используется в чистом виде или в виде 50%-ного водного раствора. 5. The method according to claim 3, characterized in that the aminoorganosilane APTS is used in pure form or in the form of a 50% aqueous solution. 6. Способ по п. 3, отличающийся тем, что гуминовые вещества и аминоорганосилан смешивают в массовой пропорции 7.5:1-2:1.6. A method according to claim 3, characterized in that humic substances and aminoorganosilane are mixed in a mass ratio of 7.5: 1-2: 1. 7. Способ по п. 3, отличающийся тем, что для доведения рН используется уксусная кислота.7. A method according to claim 3, characterized in that acetic acid is used to adjust the pH. 8. Способ по п. 3, отличающийся тем, что доведение рН до нейтральных значений проводят как по отдельности для растворов гуминовых веществ и аминоорганосилана АПТС, так и для их смеси.8. The method according to claim 3, characterized in that bringing the pH to neutral values is carried out both separately for solutions of humic substances and aminoorganosilane APTS, and for their mixture. 9. Способ по п. 1, отличающийся тем, что микроорганизмы выращивают до стационарной фазы роста на оптимальных для них питательных средах.9. The method according to claim 1, characterized in that the microorganisms are grown to the stationary growth phase on nutrient media that are optimal for them. 10. Способ по п. 9, отличающийся тем, что микроорганизмы могут быть представлены грамположительными бактериями. 10. The method according to claim 9, characterized in that the microorganisms can be gram-positive bacteria. 11. Способ по п. 9, отличающийся тем, что микроорганизмы могут быть представлены грамотрицательными бактериями.11. The method according to claim 9, characterized in that the microorganisms can be gram-negative bacteria. 12. Способ по п. 9, отличающийся тем, что микроорганизмы могут быть представлены дрожжами.12. The method according to claim 9, wherein the microorganisms can be yeast.
RU2021101780A 2021-01-27 2021-01-27 Method for obtaining biological products of living microorganisms with an extended period of preservation of a high titer of viable cells by immobilization in gels based on silanol derivatives of humic substances RU2757600C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2021101780A RU2757600C1 (en) 2021-01-27 2021-01-27 Method for obtaining biological products of living microorganisms with an extended period of preservation of a high titer of viable cells by immobilization in gels based on silanol derivatives of humic substances

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2021101780A RU2757600C1 (en) 2021-01-27 2021-01-27 Method for obtaining biological products of living microorganisms with an extended period of preservation of a high titer of viable cells by immobilization in gels based on silanol derivatives of humic substances

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2757600C1 true RU2757600C1 (en) 2021-10-19

Family

ID=78286589

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2021101780A RU2757600C1 (en) 2021-01-27 2021-01-27 Method for obtaining biological products of living microorganisms with an extended period of preservation of a high titer of viable cells by immobilization in gels based on silanol derivatives of humic substances

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2757600C1 (en)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2429068C2 (en) * 2006-03-07 2011-09-20 Ирина Васильевна Перминова Humic derivatives, production method and use thereof
RU2466713C1 (en) * 2011-07-26 2012-11-20 Учреждение Российской академии наук Институт химии нефти Сибирского отделения РАН (ИХН СО РАН) Method for producing biopreparation ferrigel
RU2530024C2 (en) * 2012-11-23 2014-10-10 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ) Humic silanol derivatives, method for production and use thereof

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2429068C2 (en) * 2006-03-07 2011-09-20 Ирина Васильевна Перминова Humic derivatives, production method and use thereof
RU2466713C1 (en) * 2011-07-26 2012-11-20 Учреждение Российской академии наук Институт химии нефти Сибирского отделения РАН (ИХН СО РАН) Method for producing biopreparation ferrigel
RU2530024C2 (en) * 2012-11-23 2014-10-10 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ) Humic silanol derivatives, method for production and use thereof

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
NIKOLAEV YU.A. et al. Functional activity of humic substances in prolonging the survival of the population of the hydrocarbon-oxidizing bacteria Acinetobacter Junii, Microbiology. 2020.Vol. 89.N. 1.S. 74-87. *
НИКОЛАЕВ Ю.А. и др. Функциональная активность гуминовых веществ в пролонгировании выживания популяции углеворородокисляющей бактерии Acinetobacter Junii, Микробиология. 2020. Т. 89. N 1. С. 74-87. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Praveen et al. Photosynthetic aeration in biological wastewater treatment using immobilized microalgae-bacteria symbiosis
US9404163B2 (en) Pseudomonas putida strain as well as its microbial inoculum and application
TW408179B (en) Method for preserving a suspension of cells or immobilized cells having nitrile hydratase or nitrilase enzyme activity
RU2728345C1 (en) Methylococcus capsulatus vkpm b-13479 strain - producer of microbial protein mass, resistant to aggressive medium
Jeong et al. Rhamnolipid production by Pseudomonas aeruginosa immobilised in polyvinyl alcohol beads
BRPI1006861B1 (en) methods to isolate bacteria
CN109321482A (en) A kind of environmental protection complex micro organism fungicide solid particulate product and preparation method thereof
Jufri The effect of environmental factors on microbial growth
Zhang et al. Vacuum lyophilization preservation and rejuvenation performance of anammox bacteria
Pane et al. Viability of the marine microalga Tetraselmis suecica grown free and immobilized in alginate beads
RU2757600C1 (en) Method for obtaining biological products of living microorganisms with an extended period of preservation of a high titer of viable cells by immobilization in gels based on silanol derivatives of humic substances
Schlieker et al. A novel immobilization method for entrapment: LentiKats®
Kokufuta et al. Immobilization of Paracoccus denitrificans cells with polyelectrolyte complex and denitrifying activity of the immobilized cells
DK2092054T3 (en) PROCEDURE FOR MANAGING THE GROWTH OF CELL CULTURE
JP4890816B2 (en) Immobilization of bacterial cells on hydrophobic carrier
RU2312891C1 (en) Bioemulgator-producing association microorganism strains for degradation of petroleum and petroleum products in soil, fresh and sea water
JP2013132248A (en) Method for culturing photosynthetic bacterium and photosynthetic bacterium
Ivanov et al. Formation and structure of granulated microbial aggregates used in aerobic wastewater treatment
Filonov et al. Growth and survival of Pseudomonas putida strains degrading naphthalene in soil model systems with different moisture levels
Yetti et al. Potency of microbial consortium F14 from three selected bacterial strains (Labrenzia agregata LBF-1-0016, Pseudomonas balearica LBF 1-0062, and Lysobacter concretionis LBF-1-0080) for oil degradation
RU2751360C1 (en) Method for obtaining biological products of living microorganisms with extended period of preservation of high titer of viable cells
Qiao et al. Optimized immobilization of activated sludge in poly (ethylene glycol) gels by UV technology
RU2754927C1 (en) Method for immobilizing microorganisms on montmorillonite clays
RU2809513C1 (en) Method of obtaining biomass of diatom algae nanofrustulum shiloi
WO2024047922A1 (en) Method for culturing cold-resistant nitrifying bacteria, method for treating nitrogen-containing water, and device for treating nitrogen-containing water